Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Indukcja całkowitego uszkodzenia rdzenia kręgowego typu transsection u myszy

9.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/61131

⸱

6 maja 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół opisuje, jak stworzyć precyzyjną laminektomię do indukcji stabilnego uszkodzenia rdzenia kręgowego typu transsection w modelu mysim, z minimalnymi szkodami ubocznymi dla badań nad uszkodzeniem rdzenia kręgowego.

Streszczenie

Uraz rdzenia kręgowego (SCI) w dużej mierze prowadzi do nieodwracalnej i trwałej utraty funkcji, najczęściej w wyniku urazu. Badanych jest kilka opcji leczenia, takich jak metody przeszczepu komórek, w celu przezwyciężenia wyniszczającej niepełnosprawności wynikającej z SCI. Większość badań przedklinicznych na zwierzętach przeprowadza się na modelach SCI u gryzoni. Podczas gdy modele szczurze SCI były szeroko stosowane, modelom mysim poświęcono mniej uwagi, mimo że modele myszy mogą mieć znaczną przewagę nad modelami szczurzymi. Niewielki rozmiar myszy równa się niższym kosztom utrzymania zwierząt niż w przypadku szczurów, a dostępność wielu transgenicznych modeli myszy jest korzystna dla wielu rodzajów badań. Wywołanie powtarzalnych i precyzyjnych urazów u zwierząt jest głównym wyzwaniem dla badań nad SCI, które u małych gryzoni wymagają bardzo precyzyjnej operacji. Model urazu typu transekcyjnego był powszechnie stosowanym modelem urazu w ciągu ostatniej dekady w badaniach terapeutycznych opartych na transplantacji, jednak nie istnieje ustandaryzowana metoda wywoływania całkowitego urazu typu transekcyjnego u myszy. Opracowaliśmy protokół chirurgiczny do wywoływania całkowitego urazu typu przecięcia u myszy C57BL / 6 na poziomie kręgów piersiowych 10 (T10). W zabiegu wykorzystuje się wiertło z małą końcówką zamiast rongeurs do precyzyjnego usunięcia blaszki, po czym do wywołania przecięcia rdzenia kręgowego używa się cienkiego ostrza z zaokrągloną krawędzią tnącą. Metoda ta prowadzi do powtarzalnego urazu typu przecięcia u małych gryzoni z minimalnym pobocznym uszkodzeniem mięśni i kości, a tym samym minimalizuje czynniki zakłócające, szczególnie tam, gdzie analizowane są behawioralne wyniki funkcjonalne.

Wprowadzenie

Uraz rdzenia kręgowego (SCI) to złożony problem medyczny, który powoduje drastyczne zmiany w zdrowiu i stylu życia. Nie ma lekarstwa na SCI, a patofizjologia SCI nie jest dokładnie poznana. Zwierzęce modele SCI, w szczególności modele gryzoni, stanowią nieocenione narzędzie do testowania nowych metod leczenia i są wykorzystywane do badania SCI od dziesięcioleci. Do tej pory w ponad 72% przedklinicznych badań SCI wykorzystano modele szczurze, w porównaniu z zaledwie 16%, w których użyto myszy1. Chociaż szczury, ze względu na ich większe rozmiary i tendencję do tworzenia jam podobnych do ludzkiego SCI, tradycyjnie były preferowanymi zwierzętami m....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury zostały przeprowadzone za zgodą Komitetu Etyki Zwierząt Uniwersytetu Griffith (ESK/04/16 AEC i MSC/04/18 AEC) zgodnie z wytycznymi Narodowej Rady Zdrowia i Badań Medycznych Australii.

1. Procedura przygotowania zwierzęcia do operacji

  1. Znieczulić i ustabilizować zwierzę.
    1. Użyj 8–10-tygodniowych samic myszy C57BL/6. Użyj 5% izofluranu w 1 l/min tlenu do indukcji znieczulenia. Do podtrzymania znieczulenia należy stosować 1,5–2% izofluranu w 1 l/min tlenu. Potwierdź odpowiednie znieczulenie, ustalając brak odruchu bólowego w ogonie i tylnych łapach.
  2. Podawać buprenorfinę (0,03 mg....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Opracowana metoda, przedstawiona na Rysunku 1, obejmuje odpowiednią stabilizację myszy (Rysunek 1A) oraz dobrą wizualizację kręgosłupa i tkanek okołokręgosłupowych (Rysunek 1B). Wyrostki kolczyste i łuki kręgów można wyraźnie uwidocznić przy minimalnej dyssekcji mięśni i niewielkiej utracie krwi (Rysunek 1C, zaznaczona strefa). Wiercenie precyzyjnym wiertłem wykonuje się zgodnie z R.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Metoda ta indukuje u myszy całkowite uszkodzenie typu transsekcji na poziomie kręgów T10, co skutkuje całkowitą paraplegią zwierzęcia, poniżej poziomu urazu. Ogólnie rzecz biorąc, metoda ta skutkuje minimalnym krwawieniem, znikomymi uszkodzeniami ubocznymi i stabilnym, powtarzalnym urazem. W porównaniu z wcześniej opublikowanymi metodami przecięcia bez laminektomii10, metoda ta oferuje korzyści w postaci bezpośredniej wizualizacji bez manipulowania krzywizną kręgosłupa, lepszej kontroli nad komple.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez stypendium Griffith University International Student (PhD) dla RR, Perry Cross Foundation Grant dla JE i JSJ, Clem Jones Foundation Grant dla JSJ i JE, oraz grant Motor Accident Insurance Commission of Queensland dla JSJ i JE.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Baytril do wstrzykiwań 50 mg/mL, 50 mLProvetBAYT ILek do pielęgnacji pooperacyjnej
Betadine 500 mLProvetBETA ASMateriałowy
uchwyt na igły Castroviejo, blokującyProSciTechT149C
Ceramiczne ostrze z tlenku cyrkonu, okrągłe z ostrymi bokami, z pojedynczą krawędzią, kątowebawełniane wielokrotnego użytkuProSciTechTXD101A-X
( 5szt)Multigate21-893Materiały eksploatacyjne
Dremel MicroDREMEL8050-N/18Akumulatorowe narzędzie
obrotowe Kleszcze do opatrunków drobneMultigate06-306Jednorazowe
wiertłaKemmer Prä zisionSM 32 M 0550 070
Kleszcze do #7bDumont Fine Science Tools11270-20
Pęseta DumontProSciTechT05-822
Trymer do futraWAHLWA9884-312Trymer do włosów Zero Overlap
Nożyczki do irysów, Ti, ostre końcówki, proste, 90mmProSciTechTY-3032Wielokrotnego użytku
Izoteza izofluranowa NXT 250ProvetISOF 00 HSŚrodek znieczulający
Colibri Retraktor - 4cmFine Science Tools17000-04
Rękojeść skalpelaProSciTechT133
Lateksowe rękawiczki chirurgiczne wielokrotnego użytku rozmiar 7,5MedlineMSG5475Materiał eksploatacyjny
Chlorek sodu 0,9%STSPHA19042005Materiały eksploatacyjne
Sterylny zestaw opatrunkowyMultigate08-709Jednorazowa
sterylna serweta nieprzepuszczalna dla płynów 60x60 cmMultigate29-220Jednorazowa
spirytus chirurgiczny 100 mlProvet# SURG SPMateriał do zszywania materiałów eksploatacyjnych
- JEDWAB BLK 45CM 5/0 FS-2Johnson & Materiałszwów jedwabnych682G
- Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2Johnson & Johnson MedicalVCP421HVicryl Suture
Temgesic 0,3 mg w 1 ml, x 5 ampułek (lek klasy S8)ProvetTEMG ILek do opieki pooperacyjnej
Waciki wielokrotnego użytku wielokrotnego użytku, styl 5 wielokrotnego użytku wielokrotnego użytku jednorazowa do Johnson Medical

Bibliografia

  1. Sharif-Alhoseini, M., et al. Animal models of spinal cord injury: a systematic review. Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).
  2. Lee, D. H., Lee, J. K. Animal models of axon regeneration after spinal cord injury. Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013)....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Model mysikręg T10procedura laminektomiiusuwanie kości wiertłemprzerwanie rdzenia kręgowegoanaliza immunohistochemicznatesty behawioralneskala Basso dla myszyprotokół chirurgiczny