Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Śledzenie cząstek 3D do nieinwazyjnej analizy in vivo dynamiki mikrotubul synaptycznych w dendrytach i połączeniach nerwowo-mięśniowych Drosophila

1.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/61159

⸱

12 maja 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

To badanie przedstawia nieinwazyjną strategię obrazowania neuronów w trybie przyżyciowym w połączeniu z nową strategią oprogramowania w celu osiągnięcia zautomatyzowanego, bezstronnego śledzenia i analizy dynamiki in vivo mikrotubul (MT) plus end w dendrytach czuciowych i połączeniach nerwowo-mięśniowych Drosophila.

Streszczenie

Mikrotubule (MT) odgrywają kluczową rolę w rozwoju neuronów, ale pozostaje wiele pytań dotyczących molekularnych mechanizmów ich regulacji i funkcji. Co więcej, pomimo postępów w zrozumieniu postsynaptycznych MT, znacznie mniej wiadomo na temat udziału presynaptycznych MT w morfogenezie neuronów. W szczególności badania dynamiki MT in vivo w dendrytach czuciowych Drosophila dostarczyły istotnych informacji na temat zachowania polimerów. Jednak wyzwania techniczne i analityczne związane z obrazowaniem na żywo połączenia nerwowo-mięśniowego muchy (NMJ) ograniczyły porównywalne badania dynamiki presynaptycznego MT. Co więcej, chociaż istnieje wiele bardzo skutecznych strategii oprogramowania do automatycznej analizy dynamiki MT in vitro i ex vivo, dane in vivo często wymagają znacznego wkładu operatora lub całkowicie ręcznej analizy ze względu na z natury gorszy stosunek sygnału do szumu na obrazach i złożoną morfologię komórkową. Aby rozwiązać ten problem, w ramach badania zoptymalizowano nową platformę oprogramowania do automatycznego i bezstronnego wykrywania cząstek in vivo. Przeprowadzono wieloparametryczną analizę poklatkowych obrazów konfokalnych na żywo MT znakowanych EB1-GFP zarówno w dendrytach, jak i NMJ larw Drosophila i stwierdzono uderzające różnice w zachowaniu MT. Dynamika MT została ponadto przeanalizowana po knockdown białka związanego z MT (MAP) dTACC, kluczowego regulatora rozwoju synaps Drosophila, i zidentyfikowano statystycznie istotne zmiany w dynamice MT w porównaniu z typem dzikim. Wyniki te pokazują, że ta nowatorska strategia zautomatyzowanej wieloparametrycznej analizy dynamiki MT zarówno pre-, jak i postsynaptycznej na poziomie polimerów znacznie zmniejsza kryteria human-in-the-loop. Badanie pokazuje ponadto przydatność tej metody w wykrywaniu różnych zachowań MT po knockdown dTACC, wskazując na możliwe przyszłe zastosowanie funkcjonalnych badań przesiewowych czynników regulujących dynamikę MT in vivo. Przyszłe zastosowania tej metody mogą również koncentrować się na wyjaśnianiu typów komórek i/lub specyficznych dla przedziałów zachowań MT oraz wielokolorowym obrazowaniu korelacyjnym EB1-GFP z innymi interesującymi markerami komórkowymi i subkomórkowymi.

Wprowadzenie

Komórki organizują się, tworząc funkcjonalne struktury poprzez koordynację zmian wewnątrz- i międzykomórkowych poprzez morfogenezę. Niezwykłym przykładem morfogenezy jest rozwój wysoce wyspecjalizowanej struktury neuronalnej. Neurony wykazują niezwykłą polaryzację, w której rozciągają dwa strukturalnie i funkcjonalnie odrębne typy procesów, dendryty i aksony1, które mogą osiągać ogromne długości. Złożoność rozwoju neuronów wynika nie tylko z samej wielkości dendrytów i aksonów, ale także z trudności w tworzeniu ich misternie rozgałęzionych geometrii2,3. Morfogeneza neuronów i jej konsek....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Generacja okazów Drosophila

  1. Wybrać odpowiedni oznacznik MT plus-end. W tym badaniu wykorzystano EB1 oznaczony GFP, dobrze scharakteryzowany marker końca plusa z silnym, wyraźnym sygnałem11,12. Alternatywy obejmują inne +TIPs, takie jak EB310,13, CLASP/Orbit53 i CLIP-17054.
  2. Pozyskiwanie lub generowanie much ze znacznikiem MT pod kontrolą promotora bezzałogowego systemu powietrznego (np. UAS-EB1-GFP).
  3. Wybierz odpowiedni sterownik Gal4 specyficzny dla dane....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Muchy zostały wyhodowane ze stabilnych stad, które konstytutywnie wyrażają transgen UAS-EB1-GFP albo panneuronalnie (elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP)58,59 lub w neuronach czuciowych (221-Gal4; UAS-EB1-GFP)60,61. EB1 został wybrany do tego badania, ponieważ specyficznie lokalizuje się na rosnących końcach i dysocjuje natychmiast po pauzie i skurczeniu14,

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W artykule omówiono protokół wykonywania nieinwazyjnego obrazowania przyżyciowego dynamiki MT w dendrytach i w NMJ podczas rozwoju. Wkład człowieka jest wymagany na etapach doświadczalnych, takich jak wybór zwierząt do obrazowania, i może wprowadzać stronniczość w procesie gromadzenia danych, której nie można racjonalnie usunąć. W związku z tym kluczowym celem protokołu jest zminimalizowanie stronniczości wszędzie tam, gdzie to możliwe, poprzez przeprowadzenie automatycznej analizy za pomocą nowego oprogramowania (sekcja.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy Hoyin Lai, Michael Jones, Hideki Sasaki, Luciano A.G. Lucas, Sam Alworth (dawniej) i James Shih-Jong Lee są pracownikami firmy DRVision Technologies LLC, która produkuje oprogramowanie używane w tym protokole.

Podziękowania

Dziękujemy naszym kolegom z laboratorium Van Vactor i z DRVision oraz doktorom Maxowi Heimanowi, Pascalowi Kaeserowi, Davidowi Pellmanowi i Thomasowi Schwarzowi za pomocną dyskusję. Dziękujemy dr Melissie Rolls za hojne dostarczenie elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-DCR2 oraz 221-Gal4; Akcje UAS-EB1-GFP wykorzystane w tym badaniu. Dziękujemy dr Jennifer Waters i dr Annie Jost z Centrum Obrazowania Nikon na Harvardzie za ekspertyzę w zakresie mikroskopii świetlnej. Praca ta jest finansowana przez National Institutes of Health (F31 NS101756-03 do V.T.C., SBIR 1R43MH100780-01D do J.S.L.).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Probówka do mikrowirówek 1,5 mlEppendorf21008-959Przygotowanie próbki
1000 &mikro; L Końcówki do pipet TipOneUSA Scientific1111-2721Przygotowanie próbki
200 &mikro; L Końcówki do pipet TipOneUSA Scientific1120-8710Przygotowanie próbki
221-Gal4 muchyBloomington Drosophila Stock Center (US)26259Genetyka Drosophila / krzyżówki Soczewka obiektywowa
60xNikonPlan Apo 60x OlejAkwizycja obrazu
Płytka 6-dołkowaBD Falcon353224Przygotowanie próbki
AgarMoorAgar41084Pokarm dla Drosophila
AiviaDRVision LLCZoptymalizowane w ramach tego badania
Chloroform (stabilizowany amylenami)Sigma-AldrichC2432Przygotowanie próbki
Dmuchawka CO2 (do selekcji much do krzyżówek)Genesee54-104Genetyka Drosophila / krzyżówki
Bełkot CO2 (do selekcji much do krzyżówek)Genesee59-180Genetyka Drosophila / krzyżówki
Chłodzona kamera CCDHamamatsuORCA-R2Akwizycja obrazu
Mąka kukurydzianaGenesee62-101Żywność Drosophila
destylowanaŻywność Drosophila
Taśma dwustronnaTaśma SzkockaPrzygotowanie próbki
Fiolki DrosophilaGenesee32-109Żywność Drosophila
Zatyczki Droso (korki piankowe do fiolek)Genesee59-200Drosophila food
Dumont #5 Biologie Inox KleszczeFine Science Tools11252-20Przygotowanie próbki
elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-DCR2 leciPrezent Melissy Rolls (Penn State University)Nie dotyczygenetyki Drosophila/krzyżówek
Etanol (95%)VWR75811-022Żywność Drosophila
Oświetlacz światłowodowy/źródło światła do mikroskopu stereoskopowegoNikonNI-150Przygotowanie próbki
Flypad (do wyboru much do krzyżówek)Genesee59-172Genetyka Drosophila / krzyżówki
Forma Komora/InkubatorŚrodowiskowy ThermoFisher3940Genetyka Drosophila / krzyżówki Olej
halowęglowy 700Sigma-AldrichH8898Przygotowanie próbki
Olejek immersyjnyNikonMXA22168Akwizycja obrazu
Kimwipe Delikatne chusteczkiFisher Scientific34120Przygotowanie próbki
Moduł scalania laserowegoSpectral Badania stosowaneLMM-5Akwizycja obrazu
Źródło światła do konfokalnegoLumentoraSOLA 54-10021Akwizycja obrazu
Mikroskopia MetaMorph Automatyzacja i Oprogramowanie do analizy obrazumolekularneAkwizycja obrazu
Mikro okulary ochronne, kwadratowe, nr 1 1/2 (#1.5)VWR48366-205Przygotowanie próbki
Zmotoryzowany mikroskop odwrócony z systemem Perfect FocusNikonTI-ND6-PFS-SAkwizycja obrazu
Zmotoryzowany stolik i żaluzjeWcześniejszyProscan IIIAkwizycja obrazu
Nożyczki wielofunkcyjneScotchMMM1428Przygotowanie próbki
Lakier do paznokciSally Hansen784179032016 074170382839Przygotowanie próbki
Filtr optycznyChromaET480/40mAkwizycja obrazu
P1000 PipetmanGilsonF123602Przygotowanie próbki
P200 PipetmanGilsonF123601Przygotowanie próbki
PBS (10X) ph 7,4ThermoFisher70011044Przygotowanie próbki
Kwas propionowyFisherA258-500Żywność Drosophila
Skaner konfokalny z wirującym dyskiemYokagawaCSU-X1Akwizycja obrazu
Mikroskop stereoskopowyNikonSMZ800NPrzygotowanie próbki
Cukier (sacharoza)Genesee62-112Drysophila food
Superfrost SlideVWR48311-600Przygotowanie próbki
TegoseptGenesee20-258Drosophila food
UAS-dtacc-RNAi leciWiedeń Drosophila Resource Center (Wiedeń, Austria)VDRC-101439Genetyka Drosophila / krzyżówki
Wazelina wazelinawazelina DVOCB311003Mason Przygotowanie próbki
Winsor & Newton Brush Regency Gold 520, rozmiar 0Zszywki5012000Genetyka Drosophila/krzyżówki
DrożdżeVWRTorula Drożdże IC90308580Drosophila food
Yokogawa dichroiczny beamsplitterSemrockDi01-T405/488/568/647-13x15x0.5Akwizycja obrazu
Woda Urządzenia

Bibliografia

  1. Rolls, M. M. Neuronal polarity in Drosophila: Sorting out axons and dendrites. Developmental Neurobiology. 71 (6), 419-429 (2011).
  2. Jan, Y. N., Jan, L. Y. Branching out: Mechanisms of dendritic arborization. Nature Reviews Neuroscience. 11 ....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

złącze nerwowo-mięśniowe Drosophilamikrotubule znakowane EB1-GFPanaliza obrazu konfokalnegoknockdown dTACCzautomatyzowana detekcja cząstekanaliza multiparametrycznaobrazowanie live time-lapsedynamika presynaptycznych mikrotubul

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny