Artykuł metodologiczny

Kwantyfikacja perfuzji mózgowej za pomocą obrazowania plamek laserowych i objętości zawału za pomocą MRI w przedklinicznym modelu udaru krążenia tylnego

DOI:

10.3791/61673

⸱

17 listopada 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurological Surgery, The Ohio State University Medical Center, 2Department of Anatomy, The Ohio State University Medical Center, 3Department of Internal Medicine, The Ohio State University Medical Center, 4Department of Radiology, The Ohio State University Medical Center

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Psi model udaru LVO został wykorzystany do opracowania laserowego obrazowania plamkowego do monitorowania perfuzji mózgowej w czasie rzeczywistym. Rezonans magnetyczny zależny dyfuzją został zoptymalizowany do obrazowania objętości zawału przy użyciu wysokiej wartości b, umożliwiając ADC i MRA, skorelowane z DSA w momencie udaru. Wreszcie, rekonstrukcje ADC korelowały z wynikami histologicznymi.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tło: Niedrożność tętnicy podstawnej (BAO) jest podzbiorem udaru krążenia tylnego, który niesie ze sobą śmiertelność sięgającą 90%. Obecny standard kliniczny do diagnozowania udaru niedokrwiennego obejmuje tomografię komputerową (CT), angiografię CT oraz obrazowanie perfuzji i rezonansu magnetycznego (MRI). Brakuje modeli przedklinicznych na dużych zwierzętach, które dokładnie odzwierciedlałyby chorobę kliniczną, a także metod oceny obciążenia udarem mózgu i oceny leczenia.

Metody: Opisujemy psi model udaru okluzji dużych naczyń (LVO) w krążeniu tylnym i opracowaliśmy protokół obrazowania laserowego (LSI) do monitorowania zmian perfuzji w czasie rzeczywistym. Następnie wykorzystaliśmy rezonans magnetyczny o wysokiej wartości b DWI (b=1800s/mm2), aby zwiększyć czułość wykrywania. Oceniliśmy również zdolność angiografii rezonansu magnetycznego (MRA) do oceny niedrożności tętnic i korelacji z DSA. Na koniec zweryfikowaliśmy rozmiar zawału na podstawie mapowania pozornego współczynnika dyfuzji (ADC) za pomocą histologii.

Wyniki: Podanie choroby zakrzepowo-zatorowej spowodowało zamknięcie tętnicy podstawnej, jak śledzono przez DSA (n=7). LSI korelowało z DSA, wykazując zmniejszenie perfuzji po wystąpieniu udaru, które utrzymywało się przez cały eksperyment, co pozwoliło nam monitorować perfuzję w czasie rzeczywistym. DWI ze zoptymalizowaną wartością b dla psów zilustrowało objętość wyrzutową i pozwoliło nam uzyskać obrazy ADC i angiografii rezonansu magnetycznego (MRA). MRA wykonane na koniec eksperymentu korelowało z DSA wykonanym po okluzji. Wreszcie, obciążenie udarem w MRI korelowało z histologią.

Wnioski: Nasze badania pokazują obrazowanie perfuzji w czasie rzeczywistym za pomocą LSI psiego modelu LVO krążenia tylnego, który wykorzystuje obrazowanie multimodalne ważne w diagnostyce i leczeniu udaru niedokrwiennego.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Częstość występowania udaru mózgu na całym świecie wynosi prawie 25,7 miliona, z czego większość to udar niedokrwienny1. Udar krążenia tylnego stanowi 20% wszystkich udarów, z których niedrożność tętnicy podstawnej jest najcięższa, zbliżając się do 90% śmiertelności1,2. W 1995 roku rekombinowany tkankowy aktywator plazminogenu (rtPA) był pierwszą ostrą terapią opracowaną dla udaru niedokrwiennego u pacjentów, którzy ujawnili się w ciągu 3 godzin od wystąpienia udaru3. Ostatnio trombektomia mechaniczna wykazała korzyści w leczeniu ostrego udaru niedokrwiennego u pacjentów, u których występuje okluzja dużego naczynia (LVO), która obejmuje wewnątrzczaszkową część tętnicy szyjnej wewnętrznej lub pierwszy segment tętnic przednich i środkowych mózgu4. Żadne z ostatnich badań klinicznych nie obejmowało udaru krążenia tylnego, a jego wyniki pozostają ponure pomimo zastosowania trombektomii mechanicznej w przypadku niedrożności tętnicy podstawnej5,6.

Postępy w technikach oceny u pacjentów po udarze mózgu mają wpływ na przewidywanie szans na powrót do stanu funkcjonalnego i przeżycie7. Przedkliniczne modele udaru krążenia tylnego zostały już wcześniej opisane8,9,10, jednak ocena obciążenia udarem i rewaskularyzacja pozostają nieoptymalne. Mniejsze gatunki, takie jak gryzonie, oferują kilka zalet, w tym łatwość manipulacji genetycznej, niedrogi zakup zwierząt i niskie dzienne koszty utrzymania11,12. Jednak eksperymenty na małych zwierzętach czasami nie odzwierciedlają w pełni unaczynienia dużych zwierząt i ludzi, warunków fizjologicznych lub powiązanych reakcji zapalnych7. Duże zwierzęta bardziej naśladują ludzki udar 2,7,13,14. Ponadto można wykonać seryjne pobieranie krwi w celu analizy krwi pod kątem markerów zakrzepowych i zapalnych.

W tym badaniu opisujemy psi model niedrożności tętnicy podstawnej, zweryfikowany przez cyfrową angiografię subtrakcyjną (DSA) od początku udaru. Wykorzystujemy laserowe obrazowanie perfuzji plamkowej (LSI) do monitorowania perfuzji w czasie rzeczywistym. Następnie wykorzystujemy nowatorski algorytm poprawy mikrokrążenia oparty na akwizycji laserowego obrazowania perfuzji plamkowej (LSI), a także technikę obrazowania rezonansu magnetycznego (MRI) o wysokiej wartości b, aby zoptymalizować obrazowanie zawału15. Te techniki pozwalają nam monitorować i określać ilościowo lokalne i globalne niedokrwienie. Na koniec korelujemy te wyniki obrazowania z histologią. Zrozumienie rokowania i potrzeby zbadania udaru krążenia tylnego w modelach przedklinicznych ma kluczowe znaczenie dla ulepszenia terapii.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury zostały przeprowadzone zgodnie z Ustawą o Dobrostanie Zwierząt oraz Przewodnikiem do Opieki i Użytkowania Zwierząt Laboratoryjnych (NRC 2011), zatwierdzonym przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Stanowego Ohio (IACUC).

1. Krok 1: Przygotowanie zwierząt i protokół chirurgiczny Użyto psiego modelu udaru niedrożności tętnicy podstawnej (BAO), jak opisano wcześniej9,10.

  1. Szybkie dorosłe beagle (8-13 kg, 14-21 miesięcy) nocne z bezpłatnym dostępem do wody.
  2. Wstrzyknąć, przed znieczuleniem, domięśniowo acepromazynę (0,2 mg/kg)
  3. Wprowadzić cewnik o rozmiarze 20 do żyły głowowej.
  4. Wywołać znieczulenie za pomocą dożylnego podania ketaminy (10 mg/kg) i midazolamu (0,025 mg/kg).
  5. Po indukcji znieczulenia należy zaintubować psy i przewietrzyć je mechanicznie przy użyciu stałego znieczulenia wziewnego (2-3% izofluranu).
  6. Stwórz okienko kraniotomii 1cm2 do laserowego obrazowania plamkowego.
  7. Wprowadzić osłonkę tętniczą 7F do prawej tętnicy udowej w celu uzyskania dostępu i pomiaru ciśnienia krwi.
  8. Wprowadzić angiocewnik o rozmiarze 16 do prawej żyły udowej w celu pobrania krwi.
  9. Przygotuj chorobę zakrzepowo-zatorową (skrzep krwi) zgodnie z wcześniejszym opisem16. Pokrótce narysuj i wymieszaj 5 ml pełnej krwi psa z 0,5 g siarczanu baru (Ba2SO4) w plastikowej probówce do pobierania krwi z surowicy, tocząc się przez 30 sekund. Odpocznij mieszaninę w spokoju przez 60 minut w temperaturze pokojowej przed podaniem cewnika.
  10. Rozpocznij rejestrowanie wyjściowej cyfrowej angiografii subtrakcyjnej (DSA) przed uzyskaniem dostępu do środkowej tętnicy podstawnej. Wprowadzić cewnik prowadzący 4F pod kontrolą fluoroskopową, stosując wsteczne podejście przezaortalne, do osłonki tętniczej 7F uprzednio umieszczonej w prawej tętnicy udowej przez tętnicę kręgową do podstawy tętnicy podstawnej. Wstrzyknąć dwa mililitry środka kontrastowego z solą fizjologiczną, aby zidentyfikować tętnicę podstawną.
  11. Za pomocą skalpela chirurgicznego wyciąć skrzep na małe kawałki z warstwami bogatymi zarówno w fibrynę, jak i erytrocyty16, aby załadować do strzykawki o pojemności 3 ml i wstrzyknąć przez mikrocewnik do środka tętnicy podstawnej. Pozwól skrzepowi ustabilizować się przez 10 minut. Wykonaj kontrolny angiogram, aby zweryfikować pożądaną lokalizację skrzepu. Niedrożność tętnic można zweryfikować za pomocą DSA, a zmniejszenie perfuzji mózgowej za pomocą laserowego obrazowania plamkowego (LSI).

2. Krok 2: Laserowe obrazowanie plamek

  1. Ustaw ostrość kamerę do obrazowania perfuzji plamkowej (LSI) na oknie czaszki. Skonfiguruj system kamer do obrazowania plamkami laserowymi o wysokiej rozdzielczości (LSI) zgodnie z wcześniejszym opisem15.
  2. Rejestruj perfuzję z przerwami podczas wykonywania angiogramu w żądanych punktach czasowych. Zbieraj dane z pola widzenia 1,5 cm x 1,5 cm za pomocą laserów o długości fali 785 nm i 80 mW z częstotliwością próbkowania 60 Hz w odległości roboczej 10 cm w tym psim modelu.
  3. Z wykresów perfuzji w czasie rzeczywistym wybierz interesujący Cię czas (TOI), aby uwzględnić tylko niższe szczyty, aby wykluczyć artefakty związane z ruchem oddechowym. Średnie względne jednostki perfuzji w okresie próbkowania 10 s przy użyciu oprogramowania PimSoft v1.4. Wykonaj laserową analizę kontrastu plamek (LASCA) zgodnie z wcześniejszym opisem15.
  4. Aby zoptymalizować kwantyfikację mikrokrążenia mózgu w tym psim modelu, rejestruj obrazy z prędkością 15 klatek na sekundę i wykonuj obliczenia intensywności i wariancji z uśrednianiem czasoprzestrzennym na obszarze 5 x 5 pikseli z 5 klatkami. Ogólna liczba klatek na sekundę dla danych intensywności i wariancji wynosiła 3 klatki na sekundę. Wybierz medianę wartości perfuzji dla każdego piksela, aby zmniejszyć wpływ na średnią dużych nagłych zmian odczytów perfuzji spowodowanych ruchem oddychania psów. Konwertuj surowe dane na pliki binarne i przetwarzaj je na znaczące obrazowanie układu krwionośnego. Wykorzystaj przerobiony algorytm LASCA (rt-LASCA), aby wykorzystać wariancję danych kontrastu w czasie do określenia lokalizacji naczyń krwionośnych, jak opisano wcześniej15.

3. Krok 3: Rezonans magnetyczny (MRI) i angiografia rezonansu magnetycznego

  1. W razie potrzeby wykonaj rezonans magnetyczny dzień przed operacją w celu porównania, a następnie powtórz, aby potwierdzić BAO i ponownie przed ofiarą, jeśli ma być oceniany środek terapeutyczny.
  2. Umieść stale znieczulone kły głową do przodu w pozycji leżącej, jak opisano wcześniej w skanerze MRI Siemens Prisma 3 Tesla o natężeniu pola i średnicy 60 cm, w tym 32-kanałowej cewki głowicy, jako odbiornik o zwiększonej wydajności obrazowania równoległego w celu uzyskania obrazów mózgu17.
  3. Wykonaj skany lokalizacyjne w celu uzyskania pilotażowych obrazów mózgu każdego psa przed rozpoczęciem obrazowania anatomicznego. System wykorzystany do uzyskania prezentowanych danych posiada zintegrowany system obrazowania, który umożliwia szybsze skanowanie w optymalnych rozdzielczościach przestrzennych i czasowych. Gradienty 80 mT/m generują wysokiej jakości obrazy T2-zależne, dyfuzyjne i angiogramy MR. Obrazowanie dyfuzyjne (DWI) jest wystarczająco czułe i może pokazać więcej anatomicznej podstruktury niż konwencjonalne strukturalne metody MRI, takie jak obrazy T2-zależne. W tym badaniu rezonans magnetyczny wykonano 4 godziny po BAO.
  4. Po prawidłowej lokalizacji wykonaj obrazowanie echa gradientowego T2-zależnego (parametry: FOV = 130 mm, rozmiar matrycy = 320 x 320, rozmiar piksela = 0,3 x 0,3 mm, grubość warstwy = 3 mm, TR= 4s, FA= 180 stopni, BW = 255 Hz / piksel, NEX= 2, TE= 75 ms, rozdzielczość = 2,4615 pikseli na mm), a następnie obrazowanie z tłumieniem przepływu (FLAIR) w celu wizualizacji struktury anatomii mózgu.
  5. Wykonaj angiografię rezonansu magnetycznego (MRA), aby uwidocznić anatomię naczyń krwionośnych i pomiar krążenia krwi. Uzyskaj MRA mózgu pokrywającego głowę i szyję sekwencją czasu przelotu 3D (TOF) w widoku poprzecznym (parametry: FOV = 129x129 mm, rozmiar matrycy = 768 x 768, rozmiar piksela = 0,3 x 0,3 mm, grubość warstwy = 81,59 mm, TR= 25 ms, FA= 18 stopni, BW = 185 Hz/piksel, NEX= 1, TE=4,22 ms, rozdzielczość = 5,91 pikseli na mm). Wykonaj projekcję maksymalnej intensywności (MIP) z wizualizacją 3D oznaczoną kolorami, aby zmaksymalizować intensywność sygnału w naczyniach krwionośnych. Po przetworzeniu uzyskano obrazy DICOM w celu wizualizacji naczyń krwionośnych i potwierdzenia, że tętnica podstawna została niedrożna.

4. Krok 4: Obrazowanie ważone dyfuzją i obliczanie objętości wyrzutowej

  1. Wykonaj sekwencję obrazowania ważoną dyfuzją, aby wykryć ostre udary niedokrwienne (parametry: FOV = 149 mm x 149 mm, rozmiar matrycy = 132 x0x0x 100, rozmiar piksela = 0,30 mm x 0,30 mm, grubość warstwy = 4 mm, TR = 4,6 s, FA = 90 stopni, BW = 255 Hz / piksel, NEX = 1, TE = 86 ms, rozdzielczość = 0,93 piksela na mm). Przesyłanie obrazów DICOM do przetwarzania końcowego.
  2. Generuj mapy dyfuzji pozornej (ADC) z obrazów DWI i obliczaj objętości zawału za pomocą oprogramowania OsiriX MD v.5.0.
  3. Prześledź zarówno półkule mózgu, jak i obszary zawału na plasterku i pomnóż przez grubość warstwy, aby uzyskać objętość zawału.
  4. Przelicz bezwzględną całkowitą objętość na 100 jednostek, aby obliczyć procentową objętość wyrzutową każdego psa.

5. Krok 5: Hematoksylina i Eozyna barwiące histologię mózgu

  1. W momencie składania ofiary w znieczulonym psie należy pobrać mózg i przeciąć ostrym skalpelem dwie przyśrodkowe sekcje o grubości 4 mm, jedna sekcja zostanie użyta do barwienia TTC poniżej.
  2. Zamocuj odcinek 4 mm w 10% formalinie na co najmniej 7 dni, aby umożliwić infiltrację w całej sekcji.
  3. Osadź nieruchomą sekcję mózgu w parafinie zgodnie z naszym protokołem17.
  4. Przycinanie i poziomowanie każdego bloku parafiny (wiele bloków może być przechowywanych i przetwarzanych w tym samym czasie).
  5. Przekrój każdy blok parafiny na 4 μm i umieść przeciętą tkankę na szkiełku o wymiarach 2 x 3 cale.
  6. Przetwarzaj każde szkiełko w Hematoxylin 560 przez 8 minut, różnicuj z 1% kwaśnym alkoholem przez 1 s trzy razy, spłukując w wodzie z kranu.
  7. Niebieski każde szkiełko 1% wodorotlenkiem amonu przez 1 s i płukać przez 2 s wodą z kranu.
  8. Odwodnić w 70% etanolu przez 1 s dwanaście razy, przeciwbarwić w eozynie przez 1 minutę.
  9. Odwodnić w 95% przez 1 s dwanaście razy, a następnie 100% etanolu.
  10. Wyczyść ksylen i nałóż szkiełko nakrywkowe o wymiarach 2" x 3" z mediami montażowymi, usuwając pęcherzyki powietrza.

6. Krok 6 2% barwienie mózgu chlorkiem 2,3,5-trifenylotetrazolu

  1. Drugą sekcję o średnicy 4 mm, która została zebrana, umieścić obok sekcji H&E w uprzednio przygotowanym roztworze zawierającym 100 ml 2% chlorku 2,3,5-trifenylo-2H-tetrazolu (TTC) o pH 7,4 PBS, ogrzanym w ciemności do 37 °C.
  2. Inkubować w ciemności w temperaturze 37 °C przez co najmniej 20 minut, delikatnie obracając sekcję mózgu co 5 minut.
  3. Gdy przekrój zmieni kolor na wiśniowy po obu stronach, usuń roztwór TTC i zastąp go 4% paraformaldehydem w PBS, pH 7,4, aby zoptymalizować kontrast przez noc.
  4. Gdy kontrast między białym i czerwonym zabarwieniem mózgu jest optymalny (1-3 dni), umieść między przezroczystymi plastikowymi arkuszami, wysusz nadmiar płynu i zeskanuj w wysokiej rozdzielczości.
  5. Prześledź obszary niedokrwienne i cały slajd mózgu, aby uzyskać procent zawału w każdej sekcji, jak opisano wcześniej17.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Laserowe nagrywanie i obrazowanie perfuzji plamkowej: Zapis perfuzji był wykonywany w sposób ciągły, dopóki zwierzę nie zostało przetransportowane do MRI, a następnie ponownie podczas składania w ofierze (Rysunek 1A). Dane wykazały, że perfuzja mózgowa zmniejszyła się o ~ 15% do 83 ± 10% w momencie przed niedrożnością tętnicy podstawnej (przed BAO). Ten nominalny spadek jest prawdopodobnie wynikiem wprowadzenia mikrocewnika do dalszej tętnicy kręgowej. Po wstrzyknięciu przygotowanej c...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Najczęstsze przyczyny udaru krążenia tylnego to zatorowość, miażdżyca tętnic dużych i choroba tętnic małych5. Niedrożność tętnic podstawnych (BAO) stanowi podzbiór udarów krążenia tylnego, niosących ze sobą znaczną zachorowalność i śmiertelność13. W tym kontekście wykorzystano psi model ostrego udaru tylnego i opracowaliśmy protokół LSI do monitorowania perfuzji okluzyjnego obszaru w czasie rzeczywistym. Laserowe obrazowanie perfuzji plamkowej przeprowadzono przez małe okno...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była częściowo wspierana przez granty Fundacji Edukacji i Badań Mayfield #GRT00049047 oraz Nagrodę Akceleratora Agencji Usług Ohio #TECG20180269 dla SMN.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
2% chlorek 2,3,5-trifenylotetrazolu (TTC w PBS, pH 7,4)Sigma AldrichT8877
EDTA K3 vacutainersBecton DickinsonBD455036
EosinSurgipath3801602
Formalin, neutralny buforowany, 10%Richard-Allan Scientific5701
Hematoxylin 560Surgipath3801570
System pozycjonowania HUG-U-VAC  DRE Veterinary1320
Oprogramowanie LabChartADInstruments Inc.
Laserowa kamera do obrazowania plamkowegoPerimed Inc., Jarfalla, SzwecjaPeriCam PSI HR System
Vacutainer heparyny litowej, 4,5%Becton DickinsonBD 368056
MatlabThe MathWorks, Inc., Natick, MA
Oprogramowanie OsiriX MD v.5.0Pixmeo Inc, Genewa
Paraformaldehyd 4% w PBSAlfa Aesar
Oprogramowanie PimSoft v1.4firmy Perimed Inc.oprogramowanie towarzyszące sprzętowi
Prisma Fit 3 tesla (3T)magnes Diagnostyka Siemen's Heparyna
sodowa do wstrzykiwań (do powlekania strzykawki do gazometrii krwi)NovaPlus402525D
AAJ61899APLSI

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Donkor, E. S. Stroke in the 21(st) Century: A Snapshot of the Burden, Epidemiology, and Quality of Life. Stroke Research and Treatment. 2018, 3238165(2018).
  2. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: replicating human stroke pathophysiology. Neural Regeneration Research. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Mokin, M., Rojas, H., Levy, E. I. Randomized trials of endovascular therapy for stroke--impact on stroke care. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 86-94 (2016).
  5. Sparaco, M., Ciolli, L., Zini, A. Posterior circulation ischaemic stroke-a review part I: anatomy, aetiology and clinical presentations. Neurological Sciences. , (2019).
  6. Lekic, T., Ani, C. Posterior circulation stroke: animal models and mechanism of disease. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 587590(2012).
  7. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 907575(2011).
  8. Atchaneeyasakul, K., et al. Large animal canine endovascular ischemic stroke models: A review. Brain Research Bulletin. 127, 134-140 (2016).
  9. Qureshi, A. I., et al. Randomized comparison of intra-arterial and intravenous thrombolysis in a canine model of acute basilar artery thrombosis. Neuroradiology. 46 (12), 988-995 (2004).
  10. Boulos, A. S., et al. Tamoxifen as an effective neuroprotectant in an endovascular canine model of stroke. Journal of Neurosurgery. 114 (4), 1117-1126 (2011).
  11. Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. A mouse model of permanent focal ischemia: distal middle cerebral artery occlusion. Methods in Molecular Biology. 1135, 103-110 (2014).
  12. Wen, Z., et al. The effect of anterior communicating artery flow on neurovascular injury and neurobehavioral outcomes in mice with recurrent stroke. Brain Research. , (2019).
  13. Demel, S. L., Broderick, J. P. Basilar Occlusion Syndromes: An Update. Neurohospitalist. 5 (3), 142-150 (2015).
  14. Cai, B., Wang, N. Large Animal Stroke Models vs. Rodent Stroke Models, Pros and Cons, and Combination. Acta Neurochirurgica Supplement. 121, 77-81 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling Laser Speckle Contrast Analysis Algorithm to Enhance Non-Invasive High Resolution Laser Speckle Functional Imaging of Cutaneous Microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048(2017).
  16. Kan, I., et al. A novel method of thrombus preparation for use in a swine model for evaluation of thrombectomy devices. American Journal of Neuroradiology. 31 (9), 1741-1743 (2010).
  17. Huttinger, A. L., et al. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  18. Siemonsen, S., et al. Elevated T2-values in MRI of stroke patients shortly after symptom onset do not predict irreversible tissue infarction. Brain. 135, Pt 6 1981-1989 (2012).
  19. Leiva-Salinas, C., Wintermark, M. Imaging of acute ischemic stroke. Neuroimaging Clinics of North America. 20 (4), 455-468 (2010).
  20. Ishikawa, C., Ito, D., Tanaka, N., Kitagawa, M. Use of three-dimensional time-of-flight magnetic resonance angiography at 1.5 Tesla to evaluate the intracranial arteries of 39 dogs with idiopathic epilepsy. American Journal of Veterinary Research. 80 (5), 480-489 (2019).
  21. Mohr, J. P., et al. Magnetic resonance versus computed tomographic imaging in acute stroke. Stroke. 26 (5), 807-812 (1995).
  22. Rosso, C., et al. Diffusion-weighted MRI in acute stroke within the first 6 hours: 1.5 or 3.0 Tesla. Neurology. 74 (24), 1946-1953 (2010).
  23. Cheng, Q., et al. High b value DWI in evaluation of the hyperacute cerebral ischemia at 3T: A comparative study in an embolic canine stroke model. Experimental and Therapeutic. 12 (2), 951-956 (2016).
  24. Xu, X. Q., et al. Use of FLAIR imaging to identify onset time of cerebral ischemia in a canine model. American Journal of Neuroradiology. 35 (2), 311-316 (2014).
  25. Rodriguez, D., Rylander, H., Vigen, K. K., Adams, W. M. Influence of field strength on intracranial vessel conspicuity in canine magnetic resonance angiography. Veterinary Radiology & Ultrasound. 50 (5), 477-482 (2009).
  26. Bosmans, H., Wilms, G., Dymarkowski, S., Marchal, G. Basic principles of MRA. European Journal of Radiology. 38 (1), 2-9 (2001).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Cerebral PerfusionLaser Speckle ImagingInfarct VolumeMagnetic Resonance ImagingPosterior Circulation StrokeBasilar Artery OcclusionLarge Vessel OcclusionDiffusion Weighted ImagingMagnetic Resonance AngiographyCanine Stroke Model
Film wkrótce dostępny

Powiązane artykuły