Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Chromatografia wykluczania wielkości do analizy niejednorodności pęcherzyków błony zewnętrznej bakterii

5.8K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/62429

⸱

31 marca 2021

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Pęcherzyki bakteryjne odgrywają ważną rolę w patogenezie i mają obiecujące zastosowania biotechnologiczne. Niejednorodność pęcherzyków komplikuje analizę i użytkowanie; Dlatego konieczna jest prosta, powtarzalna metoda oddzielania pęcherzyków o różnych rozmiarach. Tutaj pokazujemy zastosowanie chromatografii wykluczania wielkości do oddzielania heterogenicznych pęcherzyków wytwarzanych przez Aggregatibacter actinomycetemcomitans.

Streszczenie

Ściana komórkowa bakterii Gram-ujemnych składa się z wewnętrznej (cytoplazmatycznej) i zewnętrznej błony (OM), oddzielonych cienką warstwą peptydoglikanu. Podczas wzrostu błona zewnętrzna może błyszczeć, tworząc kuliste pęcherzyki błony zewnętrznej (OMV). Te OMV są zaangażowane w wiele funkcji komórkowych, w tym dostarczanie ładunku do komórek gospodarza i komunikację z komórkami bakteryjnymi. Ostatnio zaczęto badać potencjał terapeutyczny OMV, w tym ich zastosowanie jako szczepionek i nośników leków. Chociaż OMV pochodzą z OM, od dawna zdawano sobie sprawę, że ładunek lipidów i białek OMV różni się, często znacząco, od ładunku OM. Niedawno odkryto dowody na to, że bakterie mogą uwalniać wiele typów OMV i istnieją dowody na to, że rozmiar może wpływać na mechanizm ich wchłaniania przez komórki gospodarza. Badania w tej dziedzinie są jednak ograniczone ze względu na trudności w skutecznym oddzieleniu OMV o niejednorodnych rozmiarach. W tym celu tradycyjnie stosuje się wirowanie w gradionym spadku gęstości (DGC); Jednak ta technika jest czasochłonna i trudna do skalowania. Z drugiej strony, chromatografia wykluczająca ze względu na rozmiar (SEC) jest mniej kłopotliwa i nadaje się do niezbędnego przyszłego zwiększenia skali w celu terapeutycznego zastosowania OMV. W tym miejscu opisujemy podejście SEC, które umożliwia powtarzalne oddzielanie pęcherzyków o niejednorodnych rozmiarach, wykorzystując jako przypadek testowy OMV wytwarzane przez Aggregatibacter actinomycetemcomitans, których średnica waha się od mniej niż 150 nm do ponad 350 nm. Pokazujemy separację "dużych" (350 nm) OMV i "małych" (<150 nm) OMV, weryfikowaną za pomocą dynamicznego rozpraszania światła (DLS). Zalecamy techniki oparte na SEC zamiast technik opartych na DGC do oddzielania pęcherzyków o niejednorodnych rozmiarach ze względu na łatwość użycia, odtwarzalność (w tym między użytkownikami) i możliwość zwiększenia skali.

Wprowadzenie

Bakterie Gram-ujemne uwalniają pęcherzyki pochodzące z ich zewnętrznej błony, tak zwane pęcherzyki błony zewnętrznej (OMB), podczas całego wzrostu. Te OMV odgrywają ważną rolę w komunikacji międzykomórkowej, zarówno między bakteriami a gospodarzem, jak i między komórkami bakteryjnymi, przenosząc szereg ważnych biomolekuł, w tym DNA/RNA, białka, lipidy i peptydoglikany1,2. W szczególności rola OMV w patogenezie bakteryjnej została szeroko zbadana ze względu na ich wzbogacenie w niektóre czynniki wirulencji i toksyny3,4,5

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie buforów

  1. Aby przygotować bufor do płukania w teście ELISA, należy dodać 3,94 g Tris-base, 8,77 g NaCl oraz 1 g albuminy surowicy bydlęcej (BSA) do 1 L wody dejonizowanej (DI). Dodać 500 µL polisorbatasu-20. Dostosować pH do wartości 7,2 za pomocą HCl lub NaOH.
  2. Aby przygotować bufor blokujący, należy dodać 3,94 g Tris-base, 8,77 g NaCl oraz 10 g BSA. Dodać 500 µL polisorbatasu-20 do 1 L wody DI. Dostosować pH do wartości 7,2 za pomocą HCl lub NaOH.
  3. Aby przygotować bufor do elucji (PBS), należy dodać 8,01 g NaCl, 2,7 g KCl, 1,42 g Na2HPO4 oraz 0,24 g KH2PO4 do 1 L wody DI. Dostos....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Rycina 2 przedstawia reprezentatywne wyniki uzyskane za pomocą tej metody. OMVs produkowane przez szczep JP2 A. actinomycetemcomitans zostały najpierw oczyszczone z supernatantu hodowli przy użyciu ultrawirowania15. Wcześniej ustaliliśmy, że szczep ten produkuje dwie populacje OMVs: jedną o średnicy około 300 nm i drugą o średnicy około 100 nm15. Aby rozdzielić te populacje OMV, oczyszczono próbkę zgodnie z opisanym powyżej protokołem .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W tym miejscu przedstawiliśmy protokół prostego, szybkiego i powtarzalnego oddzielania subpopulacji bakteryjnych OMV. Chociaż technika ta jest stosunkowo prosta, istnieją pewne kroki, które należy wykonać bardzo ostrożnie, aby zapewnić skuteczną separację w kolumnie. Po pierwsze, ważne jest, aby żel był ładowany do kolumny ostrożnie i powoli, aby uniknąć pęcherzyków powietrza. Zaobserwowaliśmy, że pozostawienie żelu w temperaturze pokojowej na kilka godzin przed załadowaniem kolumny pozwala żelowi zrównoważyć się i minim.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do zgłaszania konfliktu interesów.

Podziękowania

Ta praca została sfinansowana przez National Science Foundation (1554417) i National Institutes of Health (DE027769).

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1-stopniowe filtry Ultra TMB-ELISAThermo Scientific34028
Amicon 50 kDaMillipore SigmaUFC905024
Albumina surowicy bydlęcej (BSA)Fisher ScientificBP9704-100
Płytki immunologiczne ELISAThermo Scientific442404
FM 4-64Thermo ScientificT133201,5 x 50 cm
Szklany czytnik płytek Econo-ColumnBioRad7371552
Infinite 200 Pro Tecan
Chlorek potasu (KCl)Amresco (VWR)0395-500G
Fosforan potasu jednozasadowy bezwodny (KH2PO4)Amresco (VWR)0781-500G
Sephacryl S-1000 SuperfineGE Healthcare17-0476-01
Chlorek sodu (NaCl)Fisher ChemicalS271-3
Fosforan sodu dwuzasadowy bezwodny (Na2HPO4)Amresco (VWR)0404-500G
Tris BaseVWR0497-1KG
Tween(R) 20Acros Organics23336-2500

Bibliografia

  1. Kuehn, M. J., Kesty, N. C. Bacterial outer membrane vesicles and the host-pathogen interaction. Genes and Development. 19, 2645-2655 (2005).
  2. Kulp, A., Kuehn, M. J. Biological functions and biogenesis of secreted bacterial outer membrane vesicles....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Pęcherzyki błony zewnętrznejheterogeniczność pęcherzyków bakteryjnychdynamiczne rozpraszanie światławirowanie w gradiencie gęstościseparacja pęcherzykówanaliza ELISAilościowe oznaczanie białekpomiar lipidówśledzenie cząstek