Artykuł metodologiczny

Neuronawigacja i laparoskopia Wprowadzenie zastawki komorowo-otrzewnowej pod kontrolą w leczeniu wodogłowia

DOI:

10.3791/62678

14 października 2022

W tym artykule

Podsumowanie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wyniki leczenia operacji zastawki komorowo-otrzewnowej (VP), podstawowej metody leczenia wodogłowia u dorosłych, są słabe z powodu wysokiego wskaźnika niepowodzeń zastawek. Przedstawiamy śródoperacyjny materiał filmowy z wprowadzenia zastawki VP przy użyciu neuronawigacji i laparoskopii, w celu zmniejszenia ryzyka awarii odpowiednio proksymalnego i dystalnego cewnika zastawkowego.

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wodogłowie jest powszechnym schorzeniem neurochirurgicznym u dorosłych, zwykle wymagającym leczenia za pomocą przetoki płynu mózgowo-rdzeniowego (CSF), z której najczęstszym typem jest zastawka komorowo-otrzewnowa (VP). Niestety, wskaźniki niepowodzeń zastawek VP są alarmująco wysokie, a nawet 50% pacjentów wymaga operacji rewizyjnej w ciągu 2 lat. Niewydolność zastawki VP może wystąpić z powodu infekcji lub nieprawidłowego ułożenia cewnika, migracji i okluzji. Podjęliśmy wspólną współpracę w zakresie neurochirurgii i chirurgii ogólnej w 7-letnim, prospektywnym, nierandomizowanym, konsekwentnym badaniu kohortowym poprawy jakości w celu zmniejszenia częstości niepowodzeń zastawki komorowo-otrzewnowej (VP) u 224 dorosłych pacjentów w placówce opieki trzeciego stopnia. Inicjatywa ta połączyła wykorzystanie elektromagnetycznej neuronawigacji stereotaktycznej w celu umieszczenia cewnika proksymalnego oraz laparoskopii w celu umieszczenia dystalnego cewnika w bezpośredniej wizualizacji. Z pomocą laparoskopową cewnik dystalny został zakotwiczony przez mały otwór utworzony w więzadle poskrowym i umieszczony w prawej przestrzeni zawątrobowej, wolnej od sieci nerwowej, zrostów lub jelita, które mogłyby blokować końcówkę cewnika. Operacje zostały przeprowadzone przy użyciu protokołu zapobiegania zakażeniom zastawkowym w celu zmniejszenia ryzyka infekcji zastawki. Tutaj prezentujemy śródoperacyjny film z zabiegu chirurgicznego. Przestrzeganie strategii redukcji infekcji zastawki oraz połączone wykorzystanie technik neuronawigacji i laparoskopii w chirurgii zastawki VP u dorosłych spowodowało zmniejszenie ryzyka całkowitego niepowodzenia zastawki o 44%. Znaczący pozytywny wpływ na wyniki leczenia bez niewydolności zastawki wśród pacjentów, którzy przeszli operację zastawki VP przy użyciu tej strategii, podkreśla wartość związaną ze stosowaniem tych nowoczesnych technik śródoperacyjnych i współpracy międzyspecjalistycznej podczas operacji zastawki VP.

Wprowadzenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wodogłowie, powszechne zaburzenie neurologiczne dotykające około 175 na 100 000 dorosłych na całym świecie1 charakteryzuje się gromadzeniem się płynu mózgowo-rdzeniowego (CSF) w komorach mózgowych z powodu braku równowagi między procesami produkcji i wychwytu płynu mózgowo-rdzeniowego w mózgu2. Ponieważ różne terapie niechirurgiczne okazały się nieskuteczne3, jedynym realnym sposobem leczenia wodogłowia jest chirurgiczne przekierowanie płynu mózgowo-rdzeniowego z komór mózgowych. Najczęstszym podejściem stosowanym u dorosłych jest umieszczenie zastawki, która odprowadza płyn mózgowo-rdzeniowy komory do jamy otrzewnej (zastawka komorowo-otrzewnowa [VP])4,5.

Zastawka VP ma trzy podskórnie zlokalizowane elementy: cewnik proksymalny wprowadzany do komory płynu mózgowo-rdzeniowego przez otwór w czaszce, zastawkę regulującą przepływ oraz dystalny cewnik łączący zastawkę z jamą otrzewną, gdzie płyn mózgowo-rdzeniowy jest odkładany i ponownie wchłaniany (Rysunek 1). Alternatywnie, zastawka może drenować do układu żylnego na poziomie prawego przedsionka (zastawka komorowo-przedsionkowa [VA])6,7 lub przekierować płyn mózgowo-rdzeniowy z kręgosłupa do jamy otrzewnej (zastawka lędźwiowo-otrzewnowa [LP])8. Obecnie nie ma dowodów na poparcie wyższości systemów bocznikowych VP w porównaniu z VA w porównaniu z LP. U dorosłych, 15%-25%9,10,11,12 nowych zastawek VP kończy się niepowodzeniem, zwykle w ciągu pierwszych 6 miesięcy, a ponad 50% kończy się niepowodzeniem w populacjach wysokiego ryzyka13. Niepowodzenie zastawki VP może być wtórne do infekcji zastawki, nieprawidłowego działania zastawki lub uszkodzenia cewnika w miejscu bliższym lub dalszym12,14,15,16,17. Każda awaria zastawki wymaga powtórnej operacji, co wiąże się ze skumulowanym ryzykiem powikłań okołooperacyjnych18,19 i stresem dla pacjentów i ich rodzin, a także zwiększonymi kosztami infrastruktury opieki zdrowotnej20,21,22,23,24.

"Tradycyjna" technika wprowadzania zastawki VP polega na odręcznym wprowadzeniu cewnika proksymalnego za pomocą anatomicznych punktów orientacyjnych na powierzchni i umieszczeniu dystalnego cewnika za pomocą mini-laparotomii lub przewodu trokarowego25,26,27. Techniki te nie pozwalają na śledzenie w czasie rzeczywistym ani bezpośrednią wizualizację końcowej lokalizacji podczas lub po wprowadzeniu cewnika. Niemożność osiągnięcia idealnej pozycji dla tych cewników może prowadzić do niewydolności zastawki, która jest najczęstszym długotrwałym powikłaniem związanym z leczeniem wodogłowia zastawkowym VP10,28. Cewniki proksymalne zwykle ulegają uszkodzeniu z powodu nieprawidłowego ułożenia i/lub późniejszej niedrożności przez tkanki splotu naczyniówkowego lub resztki wewnątrzkomorowe. Główne przyczyny niewydolności cewnika dystalnego u dorosłych to nieprawidłowe ułożenie cewnika, migracja i/lub niedrożność przez tkanki omentalne, jelita oraz resztki lub zrosty wewnątrz pęcherza11, 28,29,30,31.

Ostatnie dowody sugerują, że modyfikacja technik wprowadzania zastawki VP poprzez umieszczenie cewników proksymalnych i dystalnych odpowiednio pod kontrolą neuronawigacji i laparoskopii, wiąże się ze zmniejszonym ryzykiem niepowodzeń zastawki26,32,33. Ponadto wykazano, że przestrzeganie protokołów redukcji zakażeń zastawką zmniejsza ryzyko niepowodzenia zastawki wtórnego do infekcji34. Ponadto Svoboda i wsp. opisali "technikę falciform", w której dystalny cewnik był zakotwiczony w więzadle sierpowym i umieszczony w przestrzeni okołowątrobowej z dala od sieci komórkowej, co pomogło zmniejszyć ryzyko migracji cewnika i niedrożności przez omentum35. Zgodnie z naszą wiedzą, chociaż stosowanie neuronawigacji i laparoskopii zostało niezależnie ocenione, ich łączne korzyści nie zostały zgłoszone, a techniki chirurgiczne nie zostały odpowiednio opisane w literaturze.

Niedawno zakończyliśmy 7-letnie badanie nad potencjalną poprawą jakości, które łączyło neuronawigację, laparoskopię, technikę falciform i protokół redukcji infekcji zastawki u dorosłych pacjentów z wodogłowiem36. Dzięki naszemu połączonemu podejściu ogólne ryzyko awarii bocznika zostało zmniejszone o 44%36. Celem tego artykułu jest przedstawienie filmu chirurgicznego wraz z przewodnikiem krok po kroku po technikach operacyjnych w celu promowania zmiany paradygmatu w kierunku stosowania tych środków pomocniczych w celu zmniejszenia ryzyka niepowodzeń zastawki u dorosłych.

Przedstawione tutaj podejście chirurgiczne może być wykonane dla każdej operacji wprowadzenia zastawki VP. Opisujemy przypadek 72-letniego mężczyzny, u którego zdiagnozowano idiopatyczne wodogłowie przy normalnym ciśnieniu (iNPH) i który spełnił kryteria insercji zastawki VP 37. Pacjent zgłosił się z 1-roczną historią postępującego chodu i zaburzeń poznawczych, z przerywanym nietrzymaniem moczu. Jego wcześniejsza historia medyczna była istotna dla nadciśnienia tętniczego i chirurgicznego leczenia raka pęcherza moczowego. Rezonans magnetyczny (MRI) oceny mózgu pacjenta wykazał powiększenie komór z indeksem Evana wynoszącym 0,41. Ocena MRI przeprowadzona 4 lata wcześniej nie wykazała powiększenia komór z indeksem Evana wynoszącym 0,29 (Ryc. 2). Jego badanie neurologiczne potwierdziło, że ma szeroki chód szurający z niskim krokiem i nienormalnie niską prędkością chodu wynoszącą 0,83 m/s. Nie miał żadnych oznak mielopatii. Jego wynik Montreal Cognitive Assessment (MoCA) w wersji 7.1 wynosił 22/30, co potwierdziło jego łagodne lub umiarkowane upośledzenie funkcji poznawczych. Po 3-dniowym badaniu zewnętrznego drenażu lędźwiowego (ELD) z godzinnym usuwaniem płynu mózgowo-rdzeniowego w celu sprawdzenia reakcji na objawy usunięcia płynu mózgowo-rdzeniowego, jego prędkość chodu poprawiła się do 1,2 m/s, a wynik MoCA wzrósł o 3 punkty.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Poniższy protokół jest zgodny z wytycznymi Rady Etyki Badań nad Zdrowiem Uniwersytetu w Calgary. Uzyskano świadomą zgodę mediów na zabieg, a pacjent wyraził pisemną zgodę na tę publikację.

1. Pozycjonowanie i przygotowanie do zabiegu

  1. Uzyskaj przedoperacyjny rezonans magnetyczny czaszki lub tomografię komputerową (CT) z odpowiednim protokołem neuronawigacji.
  2. Ułóż pacjenta na wznak na zagłówku w kształcie pączka z głową zwróconą w stronę przeciwległą i umieść rolkę na ramię, aby zwiększyć odsłonięcie okolicy potylicznej (Ryc. 3).
  3. Prześlij przedoperacyjny rezonans magnetyczny czaszki lub tomografię komputerową pacjenta, zarejestruj go w systemie neuronawigacji i zakończ planowanie stacji roboczej neuronawigacji.
  4. Wybierz punkt wejścia i cel dla cewnika proksymalnego i zaznacz konkretne miejsce wejścia na skórze głowy pacjenta.
    UWAGA: Standardowo preferowany jest prawostronny dostęp tylny, chyba że wyklucza to sytuacja pacjenta. Idealny punkt wejścia to taki, którego trajektoria przecina minimalny miąższ, pomijając wszelkie możliwe do zidentyfikowania naczynia na swojej drodze do ciała prawej komory bocznej (Ryc. 3).
  5. Zaznacz odwrócone nacięcie w kształcie litery U (w kształcie podkowy), aby uwzględnić punkt wejścia. Ogol włosy otaczające nacięcie maszynką do strzyżenia (Rysunek 3).
  6. Zaznacz 1 cm nacięcie brzucha w linii przyśrodkowej na skrzyżowaniu, bezpośrednio poniżej i po prawej stronie mieczyka.
  7. Naciekać nacięcie skóry głowy środkiem znieczulającym miejscowo.
  8. Przestrzegaj ścisłego protokołu zapobiegania infekcjom (pakiet) (Rysunek 4)38.
  9. Przygotować całe pole operacyjne za pomocą 2% roztworu glukonianu chlorheksydyny/70% alkoholu izopropylowego i pozostawić do wyschnięcia na co najmniej 3 minuty przed rozpoczęciem obłożenia operacyjnego.
    UWAGA: Przed obłożenie operacyjne cały personel chirurgiczny musi założyć podwójne rękawice, a po zakończeniu obłożenia pacjenta musi wymienić rękawice zewnętrzne na nowe.
  10. Ułóż całe pole operacyjne obłożeniem z antybakteryjnym nacięciem, które pomoże utrzymać zasłony na miejscu i zmniejszy bezpośredni kontakt zespołu chirurgicznego ze skórą.
  11. Zastosuj standardową serwetę laparoskopową i rozciągnij otwór w kierunku czaszki do krawędzi obłożenia, aby umożliwić odsłonięcie pola operacyjnego czaszki i klatki piersiowej.

2. Ekspozycja czaszki

  1. Użyj skalpela #15, aby naciąć nacięcie w kształcie podkowy.
  2. Użyj kauteryzacji monopolarnej z cienką końcówką, aby pogłębić nacięcie, upewniając się, że zachowałeś warstwę okostnej.
  3. Cofnij krawędzie skóry za pomocą samozatrzymującego się zwijacza.
  4. Wykonaj krzyżowe nacięcie okostnej w środku rany, aby odsłonić czaszkę za pomocą kauteryzacji monopolarnej.
  5. Wykonaj około 2-centymetrowy otwór w kształcie zadzioru w środku ekspozycji okostnej, upewniając się, że leżąca pod spodem opona twarda jest zachowana (Rysunek 5).

3. Podskórne umieszczenie dystalnego cewnika

  1. Wykonaj nacięcie poniżej wyrostka mieczyka środkowego aż do warstwy tłuszczu okołopowięziowego.
  2. Tępo wypreparuj tkankę podskórną 2-3 cm w kierunku czaszki.
  3. Ostrożnie poprowadź drążek tunelowy z osłonką z tworzywa sztucznego w warstwie podskórnej i przełóż go w kierunku nacięcia czaszki, zachowując wszelkie środki ostrożności, aby pozostać powyżej żeber i obojczyka i unikać przekłuwania skóry.
  4. Gdy dolna część nacięcia czaszki zostanie przebita przez drążek tunelowy, wycofaj sztylet, pozostawiając plastikową osłonę na miejscu (Rysunek 5).
  5. Utwórz kieszeń podskórną na dolnej krawędzi nacięcia czaszki wokół plastikowej osłonki, która jest wystarczająco duża, aby zakopać zbiornik zastawkowy za pomocą monopolarnej kauteryzacji i sekcji za pomocą kleszczy Kelly'ego.
  6. Wyjmij dystalny cewnik ze sterylnego opakowania i umieść go w sterylnym roztworze soli fizjologicznej.
  7. Przeciągnij dystalny cewnik przez plastikową osłonę od strony czaszki do kierunku ogonowego, minimalizując kontakt elementów bocznika z zasłonami, a następnie usuń plastikową osłonę.
  8. Zalać system sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aby usunąć powietrze.
  9. Mocowanie zaworu
    1. Jeśli używany jest programowalny zawór bocznikowy, zaprogramuj go na żądane ustawienie przed wyjęciem go z opakowania. Wyjmij zastawkę bocznikową VP i dystalne cewniki ze sterylnego opakowania i umieść elementy w sterylnym roztworze soli fizjologicznej.
    2. Przymocuj dystalny port zastawki do bliższego końca dystalnego cewnika, zabezpiecz go dwukrotnie jedwabnymi opaskami 3-0 i zalej system sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aby usunąć wszelkie resztki śluz powietrznych. Owinąć zastawkę i odsłonięty cewnik gąbką nasączoną solą fizjologiczną, dokładając wszelkich starań, aby system zastawkowy nie dotykał zasłon.

4. Wprowadzenie cewnika komorowego (proksymalnego)

  1. Wyjmij cewnik komorowy ze sterylnego opakowania i umieść go w sterylnym roztworze soli fizjologicznej.
  2. Utworzyć małą, centralnie położoną okrągłą durotomię odpowiadającą średnicy cewnika proksymalnego (obejmującego leżącą pod spodem pia i pajęczynówkę) za pomocą kauteryzacji monopolarnej z cienką końcówką.
  3. Za pomocą sztyftu nawigacyjnego w cewniku proksymalnym wprowadzić cewnik do komory ipsilateralnej, korzystając z nawigacji w czasie rzeczywistym wzdłuż zaprogramowanej trajektorii do docelowej głębokości.
    UWAGA: Często przepływ płynu mózgowo-rdzeniowego występuje na wysokości około 5 cm, jednak należy upewnić się, że cewnik jest przesuwany dalej na głębokość około 8-10 cm (cel).
  4. Po osiągnięciu docelowej głębokości wyjmij sondę sztyftu nawigacyjnego z cewnika komorowego i potwierdź swobodny przepływ płynu mózgowo-rdzeniowego. Następnie zaciśnij cewnik za pomocą zatrzasku za pomocą butów, aby chronić cewnik.
  5. Przyciąć cewnik proksymalny w odstępie około 2 cm od zewnętrznej powierzchni czaszki (Ryc. 5).
  6. Przymocuj dystalny koniec proksymalnego cewnika do bliższego wylotu zastawki i zabezpiecz go dwukrotnie jedwabnymi opaskami 3-0.
  7. Ostrożnie umieść zastawkę w kieszeni podgalealnej i zakotwicz tuleję zaworu do zachowanej okostnej za pomocą jedwabnego szwu 4-0.
  8. Zastosuj delikatną trakcję dystalnego cewnika w miejscu nacięcia brzucha, aby upewnić się, że nie ma załamań cewnika.
  9. Upewnij się, że spontaniczny przepływ płynu mózgowo-rdzeniowego znajduje się na bardzo dystalnym (brzusznym) końcu układu zastawkowego.

5. Umieszczenie cewnika dobrzusznego (dystalnego)

UWAGA: Cewnik dystalny jest umieszczany laparoskopowo w jamie otrzewnej, najlepiej przez chirurga ogólnego.

  1. Wykonaj krzywoliniowe nacięcie okołopępowinkowe skalpelem #15, a następnie rozcięcie aż do powięzi ściany brzucha.
  2. Chwyć powięź z każdej strony kleszczami Kochera i naciąć ją w pionie, aby zapewnić wejście do jamy otrzewnej.
  3. Umieść szwy poliglaktynowe #2 przez powięź po obu stronach, a następnie włóż trokar Hassona.
  4. Napełnij jamę brzuszną dwutlenkiem węgla (CO2 ).
  5. Włóż laparoskop pod kątem 30° przez port dostępowy trokara Hasson (Rysunek 6).
  6. Umieść port 5 mm w standardowy sposób pod bezpośrednim widzeniem, zwykle po lewej stronie, ale może się to różnić w zależności od gęstości i położenia zrostów wewnątrzotrzewnowych (Rysunek 6).
  7. Wykonaj dowolną lizę zrostów, które mogą być wymagane.
  8. Wykonaj mały otwór w więzadle sierpowym (od lewej strony więzadła) za pomocą kombinacji elektrokoagulacji i laparoskopowych nożyczek Metzenbauma (Rysunek 6). Otwór musi znajdować się jak najbliżej wątroby i przepony (cefalad).
  9. Utwórz poprzeczny tunel brzuszny dla cewnika zastawkowego VP za pomocą haka do elektrokoagulacji w nacięciu utworzonym w kroku 3.1 (gdzie dystalny cewnik wychodzi z przestrzeni podskórnej).
  10. Wprowadzić dystalny cewnik zastawkowy VP do jamy otrzewnej ścieżką utworzoną za pomocą wprowadzacza osłonki odklejanej 11F.
  11. Gdy cewnik zostanie uwidoczniony w jamie brzusznej, chwyć go i umieść przez otwór w więzadle sierpowym (Ryc. 6).
  12. Przeciągnij pozostały cewnik przez otwór więzadła poskrowego z prawej strony i wsuń go za wątrobę (po przyśrodkowej mobilizacji prawego tylnego odcinka wątroby). Ostatecznym miejscem spoczynku cewnika musi być przestrzeń zawątrobowa (Rysunek 6).
  13. Przyciąć cewnik tak, aby jego koniec znajdował się tuż nad dolnym brzegiem wątroby. Końcowa pozycja cewnika powinna być idealnie niższa od przepony, ale wyższa i tylna w stosunku do zmobilizowanej wątroby, bezpośrednio nad prawą rynną okołokolkową. Upewnij się, że nadal występuje spontaniczny przepływ płynu mózgowo-rdzeniowego przez cewnik pod bezpośrednią wizualizacją (Rysunek 6).
    UWAGA: Nie ma z góry określonej długości cewnika. Cewnik jest przycinany tak, aby pasował do anatomii pacjenta śródustrojowo.
  14. Usuń resztki (przyciętą część cewnika) przez boczny port 5 mm.
  15. Opróżnij brzuch powoli i ostrożnie, aby upewnić się, że cewnik nie migruje, a następnie usuń wszystkie narzędzia.

6. Zamknięcie

  1. Zamknij ranę czaszki w sposób warstwowy za pomocą prostych przerwanych szwów poliglaktynowych 3-0 w warstwie galei i zszywek w skórze. Nałożyć opatrunek.
  2. Zamknąć powięź brzuszną za pomocą wcześniej założonych szwów poliglaktynowych, a następnie szwów podskórnych 4-0 poliglekapronu-25 i kleju akrylowego do zamykania skóry. Założyć opatrunek chirurgiczny.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W dniu pooperacyjnym #1, pacjent przedstawiony na filmie przeszedł tomografię komputerową głowy i prześwietlenie brzucha (Rycina 7). Obrazowanie to wykazało odpowiednio optymalne umiejscowienie cewnika proksymalnego w prawej komorze bocznej oraz umiejscowienie cewnika dystalnego w przestrzeni okołowątrobowej. Podczas 3-miesięcznych i rocznych ocen klinicznych po operacji po założeniu zastawki VP, jego prędkość chodu poprawiła się z 0,83 m/s przed operacją do 1,4 m/s, a wynik MoCA znormalizował się na ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pacjenci dobrze znoszą zabieg, są ekstubowani natychmiast po zatrzymaniu i nadają się do nocnego monitorowania na oddziałach nieostrych. Naszą praktyką było uzyskanie zwykłego tomografu komputerowego głowy następnego ranka w celu potwierdzenia umieszczenia cewnika proksymalnego i jako obrazowanie wyjściowe dla przyszłego leczenia. Dodatkowo uzyskujemy zdjęcie rentgenowskie jamy brzusznej w celu potwierdzenia pooperacyjnego ułożenia cewnika brzusznego. Większość naszych pacjentów jest oceniana zarówno przez terapię zajęci...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dziękujemy Panu Quentinowi Collierowi za pomoc w tworzeniu filmu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Laparoskop kątowy 30 stopni Stryker0502-937-030
Cewnik proksymalny impregnowany barem Medtronic41101
Chwytak jelitowyRichard Wolf8393.25
Zawór Certas inline Codman82-8800
Chloraprep3M355-S10325/103.25
ElektrokoagulacjaKarl Storz28160KA Bezramkowy
system neuronawigacji ze śledzeniem magnetycznym (AxiEM)Medtronic9735428/9734887
Trokar Hasson Applied Medical IncC0R95
Ioban3M6661EZ
MonocrylEthiconD8550
Otwarty cewnik proksymalny impregnowany barem Medtronic23092
Pneumatyczna wiertarka chirurgicznaMedtronicPM100
Steri-Strips3MR1547
System wideo EndoskopiaStrykerNiedostępny

Bibliografia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Isaacs, A. M., et al. Age-specific global epidemiology of hydrocephalus: Systematic review, metanalysis and global birth surveillance. PLoS One. 13 (10), 0204926(2018).
  2. Rekate, H. L. A contemporary definition and classification of hydrocephalus. Seminars in Pediatric Neurology. 16 (1), 9-15 (2009).
  3. Del Bigio, M. R., Di Curzio, D. L. Nonsurgical therapy for hydrocephalus: a comprehensive and critical review. Fluids and Barriers of the CNS. 13 (1), 3(2016).
  4. Reddy, G. K., Bollam, P., Shi, R., Guthikonda, B., Nanda, A. Management of adult hydrocephalus with ventriculoperitoneal shunts: Long-term single-institution experience. Neurosurgery. 69 (4), 780-771 (2011).
  5. Isaacs, A. M., Williams, M. A., Hamilton, M. G. Current update on treatment strategies for idiopathic normal pressure hydrocephalus. Current Treatment and Options in Neurology. 21 (12), 65(2019).
  6. Isaacs, A. M., Krahn, D., Walker, A. M., Hurdle, H., Hamilton, M. G. Transesophageal echocardiography-guided ventriculoatrial shunt insertion. Operative Neurosurgery. 19 (1), Hagerstown. 25-31 (2020).
  7. Hung, A. L., et al. Ventriculoatrial versus ventriculoperitoneal shunt complications in idiopathic normal pressure hydrocephalus. Clinical Neurology and Neurosurgery. 157, 1-6 (2017).
  8. Kazui, H., Miyajima, M., Mori, E., Ishikawa, M., Investigators, S. - Lumboperitoneal shunt surgery for idiopathic normal pressure hydrocephalus (SINPHONI-2): An open-label randomised trial. Lancet Neurology. 14 (6), 585-594 (2015).
  9. Khan, F., Rehman, A., Shamim, M. S., Bari, M. E. Factors affecting ventriculoperitoneal shunt survival in adult patients. Surgical Neurology International. 6, 25(2015).
  10. Lund-Johansen, M., Svendsen, F., Wester, K. Shunt failures and complications in adults as related to shunt type, diagnosis, and the experience of the surgeon. Neurosurgery. 35 (5), 839-844 (1994).
  11. Anderson, I. A., et al. Factors associated with 30-day ventriculoperitoneal shunt failure in pediatric and adult patients. Journal of Neurosurgery. 130 (1), 145-153 (2018).
  12. Korinek, A. M., et al. Morbidity of ventricular cerebrospinal fluid shunt surgery in adults: an 8-year study. Neurosurgery. 68 (4), 985-994 (2011).
  13. Albanese, A., et al. Antibiotic-impregnated ventriculo-peritoneal shunts in patients at high risk of infection. Acta Neurochirurgica (Wien). 151 (10), 1259-1263 (2009).
  14. Reddy, G. K., Bollam, P., Caldito, G. Ventriculoperitoneal shunt surgery and the risk of shunt infection in patients with hydrocephalus: Long-term single institution experience. World Neurosurgery. 78 (1-2), 155-163 (2012).
  15. Lundar, T., Langmoen, I. A., Hovind, K. H. Shunt failure caused by valve collapse. Journal of Neurology, Neurosurgery, Psychiatry. 54 (6), 559-560 (1991).
  16. Leibold, A. T., Weyhenmeyer, J., Rodgers, R., Lee, A. Ventriculoperitoneal shunt valve fracture after traumatic motor vehicle collision. Interdisciplinary Neurosurgery. 16, 79-81 (2019).
  17. Sainte-Rose, C. Shunt obstruction: A preventable complication. Pediatric Neurosurgery. 19 (3), 156-164 (1993).
  18. Hamilton, M. G. Treatment of hydrocephalus in adults. Seminars in Pediatric Neurology. 16 (1), 34-41 (2009).
  19. Jaraj, D., et al. Prevalence of idiopathic normal-pressure hydrocephalus. Neurology. 82 (16), 1449-1454 (2014).
  20. Williams, M. A., Sharkey, P., van Doren, D., Thomas, G., Rigamonti, D. Influence of shunt surgery on healthcare expenditures of elderly fee-for-service Medicare beneficiaries with hydrocephalus. Journal in Neurosurgery. 107 (1), 21-28 (2007).
  21. Rosenbaum, B. P., Vadera, S., Kelly, M. L., Kshettry, V. R., Weil, R. J. Ventriculostomy: Frequency, length of stay and in-hospital mortality in the United States of America, 1988-2010. Journal of Clinical Neurosciences. 21 (4), 623-632 (2014).
  22. Smith, E. R., Butler, W. E., Barker, F. G. In-hospital mortality rates after ventriculoperitoneal shunt procedures in the United States, 1998 to 2000: Relation to hospital and surgeon volume of care. Jouranl of Neurosurgery. 100, 90-97 (1998).
  23. Simon, T. D., et al. Hospital care for children with hydrocephalus in the United States: utilization, charges, comorbidities, and deaths. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 1 (2), 131-137 (2008).
  24. Tullberg, M., et al. Shunt surgery in idiopathic normal pressure hydrocephalus is cost-effective-a cost utility analysis. Acta Neurochirurgica (Wien). 160 (3), 509-518 (2018).
  25. Tubbs, R. S., Maher, C. O., Young, R. L., Cohen-Gadol, A. A. Distal revision of ventriculoperitoneal shunts using a peel-away sheath). Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 4 (4), 402-405 (2009).
  26. Naftel, R. P., et al. Laparoscopic versus open insertion of the peritoneal catheter in ventriculoperitoneal shunt placement: Review of 810 consecutive cases. Journal of Neurosurgery. 115 (1), 151-158 (2011).
  27. Lind, C. R., Tsai, A. M., Lind, C. J., Law, A. J. Ventricular catheter placement accuracy in non-stereotactic shunt surgery for hydrocephalus. Journal of Clinical Neurosciences. 16 (7), 918-920 (2009).
  28. Reddy, G. K., Bollam, P., Caldito, G. Long-term outcomes of ventriculoperitoneal shunt surgery in patients with hydrocephalus. World Neurosurgery. 81 (2), 404-410 (2014).
  29. Puca, A., Anile, C., Maira, G., Rossi, G. Cerebrospinal fluid shunting for hydrocephalus in the adult: factors related to shunt revision. Neurosurgery. 29 (6), 822-826 (1991).
  30. Paff, M., Alexandru-Abrams, D., Muhonen, M., Loudon, W. Ventriculoperitoneal shunt complications: A review. Interdisciplinary Neurosurgery. 13, 66-70 (2018).
  31. Cozzens, J. W., Chandler, J. P. Increased risk of distal ventriculoperitoneal shunt obstruction associated with slit valves or distal slits in the peritoneal catheter. Journal of Neurosurgery. 87 (5), 682-686 (1997).
  32. Hayhurst, C., et al. Effect of electromagnetic-navigated shunt placement on failure rates: a prospective multicenter study. Journal of Neurosurgery. 113 (6), 1273-1278 (2010).
  33. Shao, Y., et al. A laparoscopic approach to ventriculoperitoneal shunt placement with a novel fixation method for distal shunt catheter in the treatment of hydrocephalus. Minimum Invasive Neurosurgery. 54 (1), 44-47 (2011).
  34. Kestle, J. R., et al. A new Hydrocephalus Clinical Research Network protocol to reduce cerebrospinal fluid shunt infection. Journal of Neurosurgery Pediatrics. 17 (4), 391-396 (2016).
  35. Svoboda, S. M., et al. Preventing distal catheter obstruction in laparoscopic ventriculoperitoneal shunt placement in adults: The "Falciform Technique". Journal of Laparoendoscopy and Advanced Surgical Techiques A. 25 (8), 642-645 (2015).
  36. Isaacs, A. M., et al. Reducing the risks of proximal and distal shunt failure in adult hydrocephalus: A shunt outcomes quality improvement study. Journal of Neurosurgery. 136 (3), 877-886 (2022).
  37. Relkin, N., Marmarou, A., Klinge, P., Bergsneider, M., Black, P. M. Diagnosing idiopathic normal-pressure hydrocephalus. Neurosurgery. 57, 3 Suppl 4-16 (2005).
  38. Muram, S., et al. A standardized infection prevention bundle for reduction of CSF shunt infections in adult ventriculoperitoneal shunt surgery performed without antibiotic-impregnated catheters. Journal of Neurosurgery. , 1-9 (2022).
  39. Hamilton, M., Fung, A., Liam-Li, D., Isaacs, A., Conly, J. Development and application of a surgical site infection prevention bundle for shunt-related insertions and revisions. Fluids and Barriers of the CNS. 15, (2018).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Technika neuronawigacjiprowadzenie laparoskopoweleczenie wodog owiazapobieganie infekcjom drena uumieszczenie cewnikacewnik proksymalnycewnik dystalnynawigacja r doperacyjnabadanie nad popraw jako ci

Powiązane artykuły