Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Mapowanie węzłów wartowniczych i biopsja raka endometrium we wczesnym stadium za pomocą laparoskopii

14.4K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63044

⸱

19 sierpnia 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Obstetrics and Gynecology Hospital of Fudan University

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół opisuje identyfikację i resekcję wartowniczych węzłów chłonnych, aby operacja była jak najłatwiejsza i jak najmniej inwazyjna.

Streszczenie

Mapowanie i biopsja węzłów wartowniczych (SLN) to obiecująca technika wizualizacji i oceny stanu węzłów chłonnych w raku. Podejście to było zalecane dla pacjentek z rakiem endometrium (EC) niskiego ryzyka przez autorytatywne międzynarodowe wytyczne, ale nie było stosowane na szeroką skalę w Chinach i na całym świecie. Praca ta ma na celu opisanie szczegółowego mapowania SLN i procedur biopsji w celu promowania zastosowania klinicznego. Mapowanie SLN i pooperacyjne patologiczne badanie ultrastologiczne przeprowadzono u pacjenta z EC niskiego ryzyka przy użyciu barwnika zieleni indocyjaninowej (ICG) do śledzenia SLN pod laparoskopią i całkowitego wycięcia ich w celu ultraoceny stopnia zaawansowania. Podsumowując, protokół ten opisuje szczegóły iniekcji ICG oraz mapowania i biopsji SLN u pacjentów z EC w oparciu o doświadczenia zdobyte podczas praktyki klinicznej.

Wprowadzenie

Rak endometrium (EC) jest jedną z najczęstszych chorób w onkologii ginekologicznej, a częstość jego występowania rośnie1,2. Chirurgia jest leczeniem pierwszego rzutu we wczesnym stadium EC3,4. Ocena przerzutów do węzłów chłonnych jest istotną częścią oceny stopnia zaawansowania chirurgicznego w EC. Badanie Gynecologic Oncology Group (GOG) 33 wykazało, że przerzuty do węzłów chłonnych są związane ze złym rokowaniem5.

Jako nowa i niezbędna technika oceny przerzutów do węzłów chłonnych, mapowanie i biopsja węzłów wartowniczych (SLN) pojawiły się w ostatnich latach i są zalecane do stosowania u pacjentek z widocznym ograniczeniem macicy EC zgodnie z wytycznymi National Comprehensive Cancer Network (NCCN) dotyczącymi raka macicy6,7,8,9,Mapowanie 10. SLN jest również szeroko stosowane w nowotworach takich jak rak piersi11, rak płuc12, rak tarczycy13 i czerniak14. Patologiczne badanie ultra stopnia zaawansowania osiągnęło dobre wyniki w leczeniu raka jelita grubego i ginekologicznego15,16,17 i jest zalecane przez autorytatywne europejskie wytyczne18. Chociaż zasady mapowania SLN dla stopnia zaawansowania EC zostały podane w międzynarodowych wytycznych10,19, w innych prezentowanych pracach nie ma szczegółowych manipulacji chirurgią.

Ta praca przedstawia protokół szczegółowego mapowania SLN i biopsji z ICG u 28-letniej kobiety, u której klinicznie zdiagnozowano wczesne stadium EC, poprawiając w ten sposób i promując diagnostykę pacjentów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury chirurgiczne związane z opisanym tutaj pacjentem zostały zatwierdzone przez Komisje Etyczne Szpitala Położnictwa i Ginekologii Uniwersytetu Fudan w Szanghaju, Chiny. Uzyskano świadomą zgodę od pacjenta.

1. Wskazania do mapowania SLN z ICG u pacjentów EC

  1. Upewnij się, że u pacjentek zdiagnozowano klinicznie pierwotne EC ograniczone do macicy z czynnikami niskiego ryzyka (rak endometrioidalny stopnia 1. lub 2., przedoperacyjna zmiana endometrium ≤2 cm i inwazja mięśniówki macicy <50%).
  2. Upewnij się, że pacjenci nie są uczuleni na wywoływacz (ICG).
  3. Upewnij się, że pacjenci nie doświadczyli rozwarstwienia węzłów chłonnych zaotrzewnowych z jakiegokolwiek powodu przed chorobą.
  4. Upewnij się, że pacjenci rozumieją procedury chirurgiczne SLN i podpisali formularze zgody na zabieg chirurgiczny.
  5. Upewnij się, że pacjenci nie mogą wykonywać systematycznej limfadenektomii, ale mapowanie SLN w celu oceny stopnia zaawansowania chirurgicznego z jakiegokolwiek powodu.
  6. Upewnij się, że pacjenci są włączeni do badania klinicznego do grupy mapowania SLN, jeśli są z EC średniego wysokiego ryzyka.

2. Przygotowanie pacjenta

  1. Przedoperacyjne przygotowanie jelit
    1. Zapewnij środki przeczyszczające do przygotowania jelit i lewatywy pacjentom, którzy przeszli wiele operacji miednicy i jamy brzusznej.
      UWAGA: Przygotowanie jelit nie jest wymagane u pacjentów bez historii operacji jelit.
  2. Przygotowanie diety przedoperacyjnej
    1. Przez 8 godzin przed zabiegiem należy unikać pokarmów stałych, przez 6 godzin przed zabiegiem należy unikać diety półpłynnej, a także zaprzestać picia na 2 godziny przed zabiegiem.
  3. znieczulenie
    1. Należy podać dożylnie środki (np. propofol) w celu utraty przytomności i dodać pewne blokery nerwowo-mięśniowe drogą wziewną lub dożylną, aby uzyskać wymaganą głębokość znieczulenia. Stosować kombinację dawek w celu utrzymania znieczulenia, aby pacjent był nieprzytomny i w pełni zrelaksowany, ze stabilnymi parametrami życiowymi przez cały czas trwania operacji.
      UWAGA: Stosowanie środków znieczulających będzie zgodne z zasadami oddziału anestezjologii każdego ośrodka.
  4. pozycja
    1. Po znieczuleniu pacjenta należy pozwolić mu znaleźć się w pozycji litotomii z pozycją Trendelenburga.
  5. Przygotuj skórę w miejscu operacji. Wykonaj przygotowanie skóry preparatem antyseptycznym (np. jodowidonem) w zorganizowany sposób od zamierzonego miejsca nacięcia promieniującego do krawędzi zamierzonego obszaru ekspozycji skóry, z górną granicą płaskiego wyrostka mieczykowatego, bocznymi granicami linii środkowych pach i dolną granicą górnej części uda (Ryc. 1).

3. Przygotowanie barwnika fluorescencyjnego

  1. Preparat zieleni indocyjaninowej (ICG)
    1. Rozpuścić 25 mg ICG w 20 ml sterylnej wody, aby uzyskać końcowe stężenie 1,25 mg/ml i delikatnie wstrząsnąć.

4. Wstrzyknięcie ICG

  1. Za pomocą strzykawki o pojemności 2 ml (o rozmiarze igły 0,6 mm x 32 mm TW LB) wstrzyknąć 0,5 ml przygotowanego ICG na godzinie 3 i 9 szyjki macicy odpowiednio na powierzchownej (2-3 mm) i głębokiej (1-2 cm) szyjki macicy (Rycina 2).
    UWAGA: W niektórych przypadkach można również wybrać pozycje ectocervix na godzinie 6 i 12. Należy unikać ICG po wstrzyknięciu do torbieli Nesslera.

5. Śródoperacyjna identyfikacja SLN

  1. Przygotowanie przed rozwojem
    1. Chwyć skórę wokół pępka dwoma kleszczami do ręczników, aby podnieść ścianę brzucha. Wykonaj nacięcie o szerokości około 10 mm w skórze pępka oraz przez powięź i otrzewną.
    2. Wprowadzić trokar 10 mm przez pępek, wytwarzając odmę otrzewnową z ciśnieniem dootrzewnowym około 13-14 mmHg. Włóż laparoskop (ze źródłem światła i kamerami) przez trokar.
    3. Wykonaj trzy inne małe nacięcia o szerokości ~5 mm w dolnej części brzucha i wprowadź 5 mm trokary przez ścianę brzucha do jamy. Włóż narzędzia do manipulacji za pomocą pozostałych trzech trokarów 5 mm (Rysunek 1).
    4. Zidentyfikuj jajowody pod laparoskopią. Chwyć i podnieś rurki w pobliżu fimbrii i zawiąż ligaturę wokół rurki za pomocą jedwabnego szwu 2-0/T.
      UWAGA: Ten krok służy do zapobiegania przedostawaniu się komórek nowotworowych endometrium do jamy brzusznej wzdłuż jajowodów z jamy macicy.
    5. Popłuczyny otrzewnowe należy podawać 100 ml soli fizjologicznej przed jakimkolwiek znaczącym obchodzeniem się lub manipulacją macicą. Zbierz płyn do płukania do cytologii.
    6. Otwórz tryb fluorescencji endoskopowego systemu obrazowania fluorescencyjnego (patrz krok 5.2). Podnieś jednostronne więzadło lejka miednicy i macicę, aby odsłonić boczną otrzewną i poszukaj fluorescencyjnych naczyń limfatycznych.
      UWAGA: Jeśli nie zidentyfikowano fluorescencyjnych naczyń limfatycznych, dopuszcza się wielokrotne wstrzykiwanie ICG.
  2. Mapowanie SLN
    1. Przygotowanie endoskopowego systemu obrazowania fluorescencyjnego (PINPOINT).
    2. Dostosuj tryb fluorescencji do lasera bliskiej podczerwieni (światło wzbudzenia, 805 nm), aby uzyskać najlepsze pole widzenia.
      UWAGA: System endoskopowego obrazowania fluorescencyjnego ma kilka trybów, takich jak białe światło HD (High Definition), fluorescencja SPY, fluorescencja PINPOINT i tryb SPY CSF, a chirurg może w razie potrzeby przełączyć się na inny tryb.
  3. Zidentyfikuj SLN pod laparoskopią fluorescencyjną.
    1. Każdą ręką trzymaj skalpel ultradźwiękowy i bezzębne kleszcze (wykonywane przez chirurga).
      UWAGA: Asystent chwyta bezzębne kleszcze, aby współpracować z chirurgiem.
    2. Podnieś i otwórz otrzewną, oddziel tłuszcz podotrzewnowy i tkankę łączną, aby odsłonić niezbędne struktury, w tym moczowód, wewnętrzne naczynia biodrowe i nerwy zasłonowe zgodnie ze wskazaniem linii limfatycznych z zieloną fluorescencyjną, a także chronić je przed uszkodzeniem.
      UWAGA: Skalpel ultradźwiękowy z aktywacją służy do cięcia tkanek, natomiast skalpel inaktywowany może być używany do rozwarstwienia.
    3. Obserwuj SLN pokryte otrzewną około 5-10 minut po wstrzyknięciu ICG.
      UWAGA: Zazwyczaj SLN występują wraz z fluorescencyjnymi naczyniami limfatycznymi z obu stron szyjki macicy co najmniej do wysokości wspólnego naczynia krwionośnego biodrowego. Czasami SLN pojawiają się obok aorty brzusznej. Sprzęt PINPOINT ma wiele trybów, w tym światło białe, fluorescencyjne i czarno-białe. Przełączanie między wieloma trybami pomaga określić lokalizację SLN.

6. Śródoperacyjna biopsja SLN

  1. Zlokalizuj SLN, pierwszy zmapowany węzeł chłonny wzdłuż drenażu z parametrium w każdej półmiednicy i użyj wielu trybów, aby to potwierdzić. Całkowicie odsłoń SLN w celu całkowitej resekcji (Rysunek 3).
  2. Chwyć i podnieś SLN za pomocą bezzębnych kleszczy i wykonaj całkowitą resekcję węzła chłonnego wzdłuż obwodu węzła chłonnego w białym świetle.
    UWAGA: Unikaj uszkodzenia węzłów chłonnych, które może spowodować zanieczyszczenie komórkami nowotworowymi.
  3. Umieść usunięte SLN w dole zasłonowym lub włóż je do małej, prostej torby. Po całkowitym usunięciu macicy i wyjęciu jej przez pochwę, obustronne SLN są usuwane całkowicie przez pochwę, a nie przez otwór trokaru o średnicy 5 mm, aby uniknąć fragmentacji.
  4. Wyślij usunięte węzły chłonne do oddziału patologii w celu patomorfologicznego badania ultrastologicznego.
  5. Podczas operacji należy jednocześnie wyciąć powiększone lub podejrzane węzły chłonne i wysłać je do badania patologicznego.
  6. Rejestruj lokalizacje SLN na ustandaryzowanych formularzach gromadzenia danych śródoperacyjnych.
  7. Jeśli mapowanie SLN nie powiedzie się po jednej lub obu stronach, należy wykonać limfadenektomię swoistą dla strony zgodnie z wytycznymi NCCN.
    UWAGA: Jeśli w miednicy półmiednicy nie ma węzła fluorescencyjnego, kontynuuj poszukiwanie zmapowanego węzła wzdłuż naczyń limfatycznych aż do obszaru przyaortalnego ze względu na możliwość mapowania w nieoczekiwanych miejscach. Nieudane mapowanie SLN po obu stronach oznacza, że żaden fluorescencyjny zielony węzeł nie jest widoczny z fluorescencyjnymi zielonymi naczyniami limfatycznymi lub bez nich pod fluorescencyjnym systemem laparoskopowym po obu stronach miednicy i okolicy przyaortalnej.
  8. Wykonaj całkowitą histerektomię i obustronną salpingektomię.
    UWAGA: Ponieważ była to 28-letnia pacjentka z rakiem endometrioidalnym we wczesnym stadium, która miała silne pragnienie zachowania płodności i normalnie wyglądającego raka jajnika i nie miała widocznej historii rodzinnej raka piersi/jajnika lub zespołu Lyncha, można rozważyć zachowanie jajników.
  9. Zanurz rurkę drenażową w celu usunięcia potencjalnych zalegających płynów w miednicy.
  10. Wyjmij laparoskop i uwolnij gaz z brzucha. Zamknij nacięcia w pępku i dolnej części brzucha pojedynczym szwem jedwabnym szwem 2-0/T.

7. Pooperacyjne badanie ultra SLN20

  1. Przeciąć SLN wzdłuż maksymalnej średnicy i przeciąć mikro w odległości 50 μm od siebie, aby uzyskać trzy szkiełka hematoksyliny-eozyny (H&E) i jedno szkiełko immunohistochemiczne (IHC) z przeciwciałem antycytokeratynowym (AE1/AE3).
    UWAGA: Ultrastopniowanie polega na cienkim cięciu seryjnym SLN brutto. Cytokeratyna IHC nie jest niezbędna. Żaden standardowy protokół nie jest przeznaczony do ultrastagingu.
  2. Przerzuty do węzłów chłonnych opisano jako makroprzerzuty (>2 mm), mikroprzerzuty (0,2-2,0 mm) lub izolowane komórki nowotworowe (ITC) zgodnie z klasyfikacją American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Opisz patologię pooperacyjną ze szczegółami dotyczącymi wielkości guza, rodzaju i stopnia histologicznego, inwazji mięśniówki macicy, zajęcia przestrzeni naczyniowej limfatycznej, zajęcia zrębu szyjki macicy, liczby i stanu węzłów chłonnych oraz cytologii popłuczin otrzewnowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Pacjentką w niniejszym przypadku była 28-letnia kobieta z nieregularnymi krwawieniami z dróg rodnych trwającymi od 2 lat, u której 4 miesiące temu zdiagnozowano nieprawidłowość błony śluzowej macicy. Badanie ultrasonograficzne przezpochwowe wykazało niejednorodną grubość endometrium oraz masę w okolicach przydatków. Rezonans magnetyczny (MRI) jamy brzusznej i miednicy wykonany w lokalnym szpitalu wykazał masę o wymiarach 51 mm x 56 mm x 88 mm z wyraźną granicą w jamie macicy z wysokim sygnałem w obrazowaniu T2WI. Następn...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Mapowanie i biopsja SLN to bardziej selektywne i dostosowane do potrzeb podejście do wycinki węzłów chłonnych, które jest stosowane w klinice od prawie 20 lat. W dziedzinie EC, mapowanie SLN i biopsja są coraz częściej zalecane w kilku wytycznych ze względu na ich wysoką skuteczność diagnostyczną we wczesnym stadium EC, osiągając ogólne i obustronne wskaźniki wykrywalności odpowiednio 89%-95% i 52%-82%, przy czułości 84%-100% i ujemnej wartości predykcyjnej 97%-100%22. Niniejsze badanie przedstawi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Ta praca była częściowo wspierana przez granty z Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin (81772777), Shanghai Science and Technology Commission Medical Guidance Project (18411963700), Clinical Research Plan of SHDC (No. SHDC2020CR4079); Projekt Talentów Pujiang w Szanghaju (17PJ1401400). Dziękujemy za pomoc udzieloną w odpowiednim czasie przez Fenghua Ma z oddziału radiologii w zakresie obrazów MR i Chao Wang z oddziału patologii w zakresie obrazów patologicznych ze Szpitala Położnictwa i Ginekologii Uniwersytetu Fudan.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Strzykawka 2 mlBecton, Dickinson and Company, USA301940
Kleszcze do krzepnięciaShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Fabryka instrumentów chirurgicznychD0A010
Mikroskop fluorescencyjnyOlympusIX73
Skalpel harmonicznySoering GmbHSONOCA190
Barwienie hematoksyliną i eozynąBeyotime Biotechnologies Corporation, CNC0107
Immunohistochemiczne barwienie cytokeratynąMXB Biotechnologies Corporation, CNKit-0020
Zieleń indocyjaninowa (ICG)Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation.3599-32-4
PararaffinSangon biotech Co., Ltd.
Pinpoint Endoskopowy system obrazowania fluorescencyjnegoNovadaq Technoloies Bonita, Springs, FLNA
Propofol InjectionFresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., NiemcyH20030124
Pleciony jedwabny niewchłanialny szewShanghai EthiconSA854G
Nić jedwabnaPekin AKIN AIEN International Medical Technologia Co., Sp. z o.o.
Rurka ssąco-irygacyjnaShanghai SMAFYX980D
Kleszcze bezzębneShanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Fabryka instrumentów chirurgicznychJ41010
TrocarETHICON Co,. Ltd, Stany ZjednoczoneB10LT, B5LT
A601889VCPP71D

Bibliografia

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 69 (1), 7-34 (2019).
  2. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  3. Morice, P., Leary, A., Creutzberg, C., Abu-Rustum, N., Darai, E. Endometrial cancer. Lancet. 387 (10023), London, England. 1094-1108 (2016).
  4. de Boer, S. M., et al. Adjuvant chemoradiotherapy versus radiotherapy alone for women with high-risk endometrial cancer (PORTEC-3): final results of an international, open-label, multicentre, randomised, phase 3 trial. The Lancet. Oncology. 19 (3), 295-309 (2018).
  5. Creasman, W. T., et al. Surgical pathologic spread patterns of endometrial cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Cancer. 60 (8), 2035-2041 (1987).
  6. Bodurtha Smith, A., Fader, A., Tanner, E. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  7. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  8. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  9. Gezer, S., et al. Cervical versus endometrial injection for sentinel lymph node detection in endometrial cancer: a randomized clinical trial. International Journal of Gynecological Cancer. 30 (3), 325-331 (2020).
  10. McMillian, N., Motter, A. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology of Uterine Neoplasms 2021 v1. , Available from: www.nccn.org (2021).
  11. Manca, G., et al. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: Indications, contraindications, and controversies. Clinical Nuclear Medicine. 41 (2), 126-133 (2016).
  12. Digesu, C. S., Weiss, K. D., Colson, Y. L. Near-infrared sentinel lymph node identification in non-small cell lung cancer. JAMA Surgery. 153 (5), 487-488 (2018).
  13. Garau, L. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in small papillary thyroid cancer. A review on novel surgical techniques. Endocrine. 62 (2), 340-350 (2018).
  14. Gonzalez, A. Sentinel lymph node biopsy: Past and present implications for the management of cutaneous melanoma with nodal metastasis. American Journal of Clinical Dermatology. 19, Suppl 1 24-30 (2018).
  15. Levenback, C. F., et al. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in women with squamous cell carcinoma of the vulva: a gynecologic oncology group study. Journal of Clinical Oncology. 30 (31), 3786-3791 (2012).
  16. Protic, M., et al. Prognostic effect of ultra-staging node-negative colon cancer without adjuvant chemotherapy: A prospective national cancer institute-sponsored clinical trial. Journal of the American College of Surgeons. 221 (3), 643-651 (2015).
  17. Price, P. M., Badawi, R. D., Cherry, S. R., Jones, T. Ultra staging to unmask the prescribing of adjuvant therapy in cancer patients: the future opportunity to image micrometastases using total-body 18F-FDG PET scanning. The Journal of Nuclear Medicine. 55 (4), 696-697 (2014).
  18. Concin, N., et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with endometrial carcinoma. Virchows Archiv: An International Journal of Pathology. 478 (2), 153-190 (2021).
  19. FIGO Committee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for carcinoma of the vulva, cervix, and corpus uteri. International journal of gynaecology and obstetrics: the official organ of the International Federation of Gynaecology and Obstetrics. 125 (2), 97-98 (2014).
  20. Barlin, J. N., et al. The importance of applying a sentinel lymph node mapping algorithm in endometrial cancer staging: beyond removal of blue nodes. Gynecologic Oncology. 125 (3), 531-535 (2012).
  21. Amin, M. B., et al. AJCC Cancer Staging Manual, 8th edition. , Springer. (2017).
  22. Eriksson, A. G. Z., et al. Update on sentinel lymph node biopsy in surgical staging of endometrial carcinoma. Clinical Medicine. 10 (14), (2021).
  23. Kelley, M. C., Hansen, N., McMasters, K. M. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer. The American Journal of Surgery. 188 (1), 49-61 (2004).
  24. Sakorafas, G. H., Peros, G. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: what a physician should know, a decade after its introduction in clinical practice. European Journal of Cancer Care. 16 (4), 318-321 (2007).
  25. Niikura, H., et al. Tracer injection sites and combinations for sentinel lymph node detection in patients with endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 131 (2), 299-303 (2013).
  26. Backes, F. J., et al. Prospective clinical trial of robotic sentinel lymph node assessment with isosulfane blue (ISB) and indocyanine green (ICG) in endometrial cancer and the impact of ultrastaging (NCT01818739). Gynecologic Oncology. 153 (3), 496-499 (2019).
  27. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  28. Ballester, M., et al. Detection rate and diagnostic accuracy of sentinel-node biopsy in early stage endometrial cancer: a prospective multicentre study (SENTI-ENDO). The Lancet. Oncology. 12 (5), 469-476 (2011).
  29. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  30. Mayoral, M., et al. F-FDG PET/CT and sentinel lymph node biopsy in the staging of patients with cervical and endometrial cancer. Role of dual-time-point imaging. Revista Espanola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular. 36 (1), 20-26 (2017).
  31. Lecointre, L., et al. Diagnostic accuracy and clinical impact of sentinel lymph node sampling in endometrial cancer at high risk of recurrence: A meta-analysis. Journal of Clinical Medicine. 9 (12), (2020).
  32. Bodurtha Smith, A. J., Fader, A. N., Tanner, E. J. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  33. Bonneau, C., Bricou, A., Barranger, E. Current position of the sentinel lymph node procedure in endometrial cancer. Bulletin du Cancer. 98 (2), 133-145 (2011).
  34. Tanner, E. J., et al. Factors associated with successful bilateral sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 138 (3), 542-547 (2015).
  35. Ianieri, M. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in the treatment of endometrial cancer: Why we fail? Results of a prospective multicenter study on the factors associated with failure of node mapping with indocyanine green. Gynecologic and Obstetric Investigation. 84 (4), 383-389 (2019).
  36. Naoura, I., Canlorbe, G., Bendifallah, S., Ballester, M., Daraï, E. Relevance of sentinel lymph node procedure for patients with high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 136 (1), 60-64 (2015).
  37. Schiavone, M. B., et al. Survival of patients with uterine carcinosarcoma undergoing sentinel lymph node mapping. Annals of Surgical Oncology. 23 (1), 196-202 (2016).
  38. Soliman, P. T., et al. A prospective validation study of sentinel lymph node mapping for high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 146 (2), 234-239 (2017).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Biopsja laparoskopowaziele indocyjaninowaobrazowanie fluorescencyjnepatologiczne ultrastagingca kowita histerektomiaobustronna salpingektomiabarwienie immunohistochemiczne
Mapowanie węzłów wartowniczych i biopsja raka endometrium we wczesnym stadium za pomocą laparoskopii
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.