Artykuł metodologiczny

Tani zautomatyzowany pułap przechwytujący lot do czasowego pobierania próbek owadów latających zwabionych przez sztuczne światło w nocy

DOI:

10.3791/63156

⸱

29 grudnia 2021

 ,  ,  , 
1Department of Ecology, Environment and Evolution, La Trobe University, 2Independent researcher

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby zbadać wpływ sztucznego światła w nocy (ALAN) na nocne owady latające, pobieranie próbek musi być ograniczone do nocy. Protokół opisuje tanią, zautomatyzowaną pułapkę przechwytującą lot, która umożliwia naukowcom pobieranie próbek w zdefiniowanych przez użytkownika okresach ze zwiększoną replikacją.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Metody pobierania próbek są wybierane w zależności od gatunku docelowego lub przestrzennych i czasowych wymagań badania. Jednak większość metod pasywnego pobierania próbek od owadów latających ma słabą rozdzielczość czasową, ponieważ jest to czasochłonne, kosztowne i/lub logistycznie trudne do wykonania. Skuteczne pobieranie próbek owadów latających przyciąganych przez sztuczne światło w nocy (ALAN) wymaga pobierania próbek w zdefiniowanych przez użytkownika punktach czasowych (tylko w nocy) w dobrze odtworzonych miejscach, co skutkuje dużym nakładem czasu i pracy badawczej lub kosztownymi zautomatyzowanymi technologiami. Opisana tutaj jest tania zautomatyzowana pułapka przechwytująca, która nie wymaga specjalistycznego sprzętu ani umiejętności do budowy i obsługi, co czyni ją realną opcją dla badań, które wymagają czasowego podpróbkowania w wielu miejscach. Pułapka może być wykorzystana do rozwiązania wielu innych problemów ekologicznych, które wymagają większej skali czasowej i przestrzennej niż jest to możliwe w przypadku poprzedniej technologii pułapek.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Istnieje wiele technik pobierania próbek stawonogów 1,2,3, ale ekolodzy często mają trudności z zastosowaniem tych metod w sposób odpowiedni do ich pytań badawczych (patrz4). Wybierając odpowiednią metodę pobierania próbek owadów, ekolodzy muszą wziąć pod uwagę gatunki docelowe, czas, wysiłek i koszty związane z różnymi technikami. Na przykład częstym ograniczeniem jest to, że może być logistycznie trudne pobieranie podpróbek w określonych okresach czasu na zreplikowanych miejscach w celu ilościowego określenia zmiennych czasowych, które wpływają na aktywność gatunków, takich jak zmiany pogody lub aktywność okołodobowa (ale zobacz5). Większość pasywnych pułapek na owady jest ustawiana na długie okresy (np. na wiele dni, tygodni, a nawet miesięcy), bez precyzyjnej rozdzielczości czasowej1. W przypadku badań ukierunkowanych na określone okresy czasu w wielu miejscach replikacji (np. nocne pobieranie próbek tylko w różnych lokalizacjach) może być wymagany duży zespół do odwiedzania miejsc przez wiele dni w tych samych punktach czasowych (np. w ciągu 30 minut od wschodu i zachodu słońca) w celu zebrania próbek i zresetowania pułapek6; W przeciwnym razie wymagane jest automatyczne urządzenie do zalewkowania5,7,8.

Istnieje coraz więcej możliwości pracy nad wpływem sztucznego światła w nocy (ALAN) na wzorce aktywności owadów i lokalną dynamikę populacji9,10; oraz nad interakcjami między ALAN a wskaźnikami drapieżnictwa owadów4,11,12,13. Jednakże, aby zbadać wpływ ALAN na taksony owadów prowadzących nocny tryb życia, pobieranie próbek musi być ograniczone do pory nocnej. Opisano kilka różnych aktywnych pułapek świetlnych, które zostały wykorzystane do automatycznego czasowego pobierania próbek owadów prowadzących nocny tryb życia14. Niektóre przykłady obejmują proste urządzenia separujące z opadającą tarczą, w których zaczep wpada do wąskiej rury, a dysk opada co godzinę, aby oddzielić catch15, lub urządzenia rozdzielające ze stołem obrotowym, które obracają butelki zbiorcze w określonych odstępach czasu7,16,17. Te poprzednie zautomatyzowane pułapki świetlne rozwiązują problemy związane z pobieraniem próbek związanych z wymaganiami pomiarów czasowych, ale często są duże i nieporęczne oraz wykorzystują przestarzałą lub zawodną technologię. Niedawno opracowano i przetestowano nowe zautomatyzowane pasywne urządzenie do pobierania próbek8. To urządzenie wykorzystywało dostępną na rynku pułapkę przechwytującą lot w połączeniu z lekkim, specjalnie zaprojektowanym urządzeniem do zbierania próbek, składającym się z talerza obrotowego trzymającego kubek do pobierania próbek, który pozwala na zbieranie zawartości pułapki w zdefiniowanych przez użytkownika odstępach czasu8. Ta nowa zautomatyzowana pułapka wykorzystuje zaawansowane programowanie, które może być obsługiwane za pomocą smartfona, ale jest zbyt drogie w budowie i kosztuje około 700 EURO (1 000 AUD) za pułapkę8.

Pułapki przechwytujące lot są jednym z najbardziej efektywnych sposobów badania owadów latających1,18,19 i działają na zasadzie, że latające owady spadają na ziemię, gdy zderzają się z pionową powierzchnią. Pułapki przechwytujące lot są dostępne w różnych wersjach. Jednak większość z nich jest zwykle zbudowana z przezroczystej lub siatkowej powierzchni i pojemnika zbiorczego wypełnionego wodą i/lub środkiem konserwującym. Nowa pułapka opisana tutaj wykorzystuje typ poprzecznej łopatki/przegrody lub wielokierunkową pułapkę przechwytującą20, biorąc pod uwagę, że wykazano, że przegrody krzyżowe zwiększają szybkość przechwytywania14,21 i pobieraj próbki owadów ze wszystkich kierunków. Celem tej pułapki jest zbadanie nocnych owadów latających, które przyciąga sztuczne światło. Ta fototaksja powoduje, że owady krążą wokół źródła światła22; dlatego najbardziej odpowiednia jest pułapka wielokierunkowa.

Opisana tutaj jest tania automatyczna pułapka przechwytująca, która nie wymaga specjalistycznego sprzętu ani umiejętności do budowy i obsługi. Pułapka wykorzystuje dostępny na rynku automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych i popularne przedmioty dostępne w sklepach ze sprzętem. Konstrukcja tego projektu kosztuje mniej niż 66 EURO (105 AUD) za pułapkę (tabela 1), co czyni ją realną opcją dla badań wymagających czasowego podpróbkowania w wielu miejscach jednocześnie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Budowa pułapki

UWAGA: Wszystkie komponenty potrzebne do budowy pułapek można znaleźć w Tabeli Materiałów. Każda pułapka została skonstruowana tak, jak pokazano na Rysunek 1 i Rysunek 2 przez jedną osobę w ciągu 2 godzin.

  1. Za pomocą wyrzynarki pociąć blachy dachowe z poliwęglanu (8 mm x 610 mm x 2400 mm) na odcinki o wymiarach 610 mm x 230 mm (Rysunek 1, pozycja 1 i 2). Następnie wytnij środkowy rowek o średnicy 8 mm w połowie środka każdej szyby (610 mm x 230 mm), aby umożliwić zsunięcie się obu szyb w celu utworzenia przegrody krzyżowej.
  2. Wsuń skrzyżowane przegrody ciasno w plastikowy otwór lejka (Rysunek 1, pozycja 4) i przymocuj je do lejka za pomocą kątowników ze stali nierdzewnej 20 mm (rys. 1, poz. 5b).
  3. Po założeniu kątownika wywierć otwory, a następnie użyj i nakrętek M4 z podkładkami (Rysunek 1, poz. 6b), aby przymocować przegrody krzyżowe do lejka.
  4. Ponownie za pomocą wyrzynarki wytnij kawałek folii poliwęglanowej (230 mm x 305 mm) z pozostałych arkuszy i zabezpiecz za pomocą kątowników ze stali nierdzewnej o średnicy 20 mm (Rysunek 1, poz. 5a) pod kątem 90° do górnej części skrzyżowanych przegród, aby utworzyć dach ochronny (Rysunek 1, pozycja 3).
  5. Po założeniu kątownika wywierć otwory, a następnie użyj i nakrętek M4 z podkładkami (Rysunek 1, poz. 6a), aby przymocować dach do przegrody.
  6. Przytnij wylewkę lejka do długości ~30 mm za pomocą piły do metalu, aby upewnić się, że tace na próbki automatycznego podajnika dla zwierząt będą się obracać bez przeszkód w zaprogramowanych odstępach czasu.
  7. Umieść automatyczny dozownik dla zwierząt domowych (Rysunek 1, pozycja 8) w plastikowej misce o pojemności 9 litrów (średnica 38 mm) (Rysunek 1, pozycja 7), aby chronić próbki przed warunkami atmosferycznymi.
  8. Wywierć otwór o średnicy 20 mm w górnej części zbiornika o pojemności 9 litrów i umieść wylewkę lejka w otworze, aby umieścić ją bezpośrednio nad tacą na próbki.
  9. Za pomocą wiertarki z końcówką wkrętaka z sześciokątnym przymocuj plastikową miskę przykrywającą karmnik dla zwierząt do 500-milimetrowego kawałka impregnowanego ogrodzenia sosnowego (Rysunek 1, poz. 9) za pomocą ocynkowanych z sześciokątnym (Rysunek 1, pozycja 14).
  10. Aby ustabilizować całą pułapkę do podnoszenia w powietrze za pomocą lin, przymocuj drewniany kołek (17 x 17 x 1200 mm, Rysunek 1, poz. 10) do kawałka impregnowanego ogrodzenia sosnowego (Rysunek 1, poz. 9) za pomocą kątownika i drutu wiążącego (Rysunek 1, pozycje 13, 15 i 16).

figure-protocol-1
Rysunek 1: Schemat ideowy budowy pułapki. (1 i 2) arkusze poliwęglanu 610 mm x 230 mm x 8 mm; (3) arkusz poliwęglanu o wymiarach 230 mm x 305 mm x 8 mm; (4) Lejek z tworzywa sztucznego o średnicy 24 cm; (5a-b) kątowniki 20 mm; (6a-b) , podkładki i nakrętki M4 x 15 mm; (7) Plastikowa miska o średnicy 38 cm i pojemności 9 l; (8) automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych; (9) Paleta sosnowa o wymiarach 150 mm x 12 mm; (10) Kołek drewniany 17 mm x 17 mm x 1200 mm; (11) kątownik 125 mm x 150 mm; (12) z sześciokątnym 16 mm x 16 mm; (13) nawias kątowy; (14) z sześciokątnym 16 mm x 16 mm; (15 i 16) stabilizator drutu; (17) Karabinek, służący do opuszczania i podnoszenia na miejsce. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Rozmieszczenie pułapki

UWAGA: Pułapki były przymocowane do drzew na wysokości 6 m nad ziemią (bezpośrednio pod światłami eksperymentalnymi lub kontrolnymi) w celu schwytania owadów latających (Rysunek 2). Opróżnianie i zbieranie pułapek było wykonywane przez trzy osoby w ciągu jednego dnia. W razie potrzeby można pobrać próbki z kolejnych dni, opuszczając pułapkę w celu usunięcia pobranych próbek, resetując dozowniki karmy dla zwierząt domowych i umieszczając pułapkę z powrotem na miejscu co trzy dni w oparciu o reżim pobierania próbek.

figure-protocol-2
Rysunek 2: Tania automatyczna pułapka przechwytująca lot do pobierania próbek owadów w zdefiniowanych przez użytkownika punktach czasowych. (A) Skrzyżowane przegrody z poliwęglanu służą jako obszar przechwytywania lotu, który pozwala na zbieranie owadów ze wszystkich czterech stron. Dach z poliwęglanu służy do kierowania owadów w dół i ochrony pobranych próbek przed warunkami atmosferycznymi. Lej pod lotem przechwytuje barierę do kierowania owadów, które zderzyły się z barierami z poliwęglanu, do tac zbiorczych umieszczonych w okrągłym basenie. (B) Pułapka zawieszona pod światłem doświadczalnym i przymocowana do drzewa za pomocą drewnianego kołka i kątownika. Skrzynka ze sklejki pod pułapką przechwytującą zawiera detektor nietoperzy służący do pasywnego rejestrowania nawoływań echolokacyjnych wytwarzanych przez wolno żyjące owadożerne nietoperze. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

  1. Po dotarciu do miejsca pobierania próbek wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych (Rysunek 1, pozycja 8) spod plastikowej miski.
  2. Otwórz automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych (Rysunek 3A) i umieść foliowe naczynia zawierające wodę z mydłem lub wybrany środek konserwujący w każdej tacce na żywność (Rysunek 3B, tutaj jako środek konserwujący użyto 20 ml glikolu propylenowego).
  3. Postępuj zgodnie ze wskazówkami dołączonymi do automatycznego dozownika karmy dla zwierząt, aby ustawić czasy obrotu tacki na żywność. Najpierw ustaw czas zegara, a następnie zaprogramuj każdą tacę dozownika karmy dla zwierząt.
    UWAGA: Automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych obraca tacki na żywność (1-6) w zaprogramowanych godzinach. Misy na 6 posiłków można ustawić tak, aby otwierały się o każdej porze dnia i nocy, a tace obracają się w kolejności sekwencyjnej. Celem tego badania było pobranie próbek owadów prowadzących nocny i dzienny tryb życia oddzielnie. Próbka z tacy 1 pobrano o godz. 20:00 pierwszej nocy, a następnie przeniesiono do podajnika 2 o godz. 7:00 następnego ranka, a następnie do podajnika 3 o godz. 20:00, podajnika 4 o godz. 7:00, podajnika 5 o godz. 20:00 i podajnika 6 o godz. 7:00. Funkcja opóźnienia pozwoliła na jednodniowe opóźnienie w pobieraniu próbek, ponieważ ustawienie wszystkich miejsc zajęło 2 dni, zapewniając w ten sposób, że pobieranie próbek rozpoczęło się tego samego dnia/godziny we wszystkich miejscach.

figure-protocol-3
Rysunek 3: Automatyczna miska na karmę dla zwierząt. (A) Zasilana bateryjnie miska na 6 posiłków dla zwierząt domowych, używana do pobierania próbek owadów w określonych przez użytkownika odstępach czasu. Miski z jedzeniem zostały zaprogramowane zgodnie z naprzemiennymi harmonogramami, aby pobierać próbki owadów prowadzących nocny i dzienny tryb życia. Na przykład taca 1 została otwarta o godzinie 20:00 (1. dzień nocny), taca 2 została otwarta o godz. 7 rano (1. dzień dobowy), taca 3 została otwarta o godz. 20:00 (2. dzień nocny), taca 4 została otwarta o godz. 7:00 (2. dzień dobowy), podajnik 5 został otwarty o godz. 20:00 (3. dzień nocny), a podajnik 6 został otwarty o godz. 7:00 (3. dzień dobowy). (B) Zdjąć pokrywę z automatycznej miski na karmę dla zwierząt domowych, aby pokazać sześć tac zbiorczych. Naczynia foliowe zawierające glikol propylenowy jako środek konserwujący pozwoliły na łatwe usunięcie zebranych owadów. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

  1. Umieść automatyczny dozownik karmy dla zwierząt domowych z powrotem pod plastikową umywalką i przymocuj miskę do drewnianego elementu ogrodzenia za pomocą ocynkowanych z sześciokątnym (Rysunek 1, poz. 14).
  2. Przymocuj linę do górnej części pułapki za pomocą karabinka (Rysunek 1, poz. 17). Za pomocą drabiny należy ustawić pułapkę na miejscu i przymocować ją pod eksperymentalnymi światłami przy karabinku.
  3. Przymocuj drugi drewniany kołek (17 mm x 17 mm x 1200 mm, Rysunek 2B) do drzewa (lub latarni) za pomocą kątownika, aby ustabilizować pułapkę przy silnym wietrze.
  4. Pułapka znajduje się na szczycie palika; zabezpiecz ją dwoma dużymi opaskami kablowymi (Rysunek 2B).
  5. Aby zebrać próbki owadów, opuść pułapki za pomocą liny. Wyjmij automatyczny dozownik karmy dla zwierząt spod plastikowej miski.
  6. Zdejmij pokrywę dozownika karmy dla zwierząt domowych ( Rysunek 3A) i wyjmij aluminiowe tace, aby wlać zawartość do wstępnie oznaczonych fiolek z próbkami ( Rysunek 3B).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pułapki zostały przetestowane w ankiecie owadów latających zwabionych przez eksperymentalne oświetlenie w czterech rezerwatach buszu w Melbourne w Australii. Stanowiska składały się z resztkowego lub porośniętego roślinnością buszu otoczonego zabudową mieszkalną i były oddalone od siebie średnio o 15 km (zasięg 3-24 km) i powierzchnię 45 ha (zasięg 30-59 ha). W sumie zainstalowano szesnaście pułapek, po cztery w każdym miejscu, z oświetleniem eksperymentalnym i bez niego (3 światła i 1 kontrolna na miejsce) i badano je p...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pomimo tego, że zautomatyzowana pułapka przechwytywania lotu opisana przez Bolligera i in. (2020)8 jest dobrze zaprojektowana i bardzo skuteczna w próbkowaniu w określonych przez użytkownika okresach, prawdopodobnie będzie ona zbyt kosztowna dla wielu badaczy. Badanie to pokazuje, że pasywne badania odłowu z wykorzystaniem zautomatyzowanych pułapek do pobierania podpróbek owadów latających w określonych przez użytkownika okresach mogą być przeprowadzane przy skromnym budżecie. Pułapki zostały zbud...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badania zostały sfinansowane przez La Trobe University Net Zero Fund, sponsorowany przez Sonepar. Badania prowadzono na podstawie pozwolenia naukowego nr 10009741 Wydziału Środowiska, Gruntów, Wody i Planowania Przestrzennego. Dziękujemy Martinowi Steinbauerowi za komentarze do wczesnego szkicu i dwóm anonimowym recenzentom.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Baterie (ogniwo C) – 10 sztukDuracellMN1400B10https://www.duracell.com.au/product/alkaline-c-batteries/
Zasilana bateryjnie automatyczna miska na 6 posiłków dla zwierząt domowych – każdyOEM ChinyXR-P006-002Zautomatyzowane 6-posiłkowe miski na karmę dla zwierząt domowych różnią się ceną w zależności od dostawcy, na przykład w Wielkiej Brytanii można je kupić za &funt; 19 GBP (36 AUD).
Ocynkowane z sześciokątnym (10-16 x 16 mm) – 100 sztukBunnings Warehouse1-311-9151-CTPMEBunnings Warehouse to australijska sieć sklepów z artykułami w Australii i Nowej Zelandii. Przedmioty zakupione w Bunnings Warehouse można znaleźć w większości sklepów z narzędziami. https://www.bunnings.com.au/
Kątownik ze stali ocynkowanej (125 x 150 mm) – sztBunnings WarehouseAZ11https://www.bunnings.com.au/
Drut wiązałkowy ocynkowany (0,70 mm x 75 m) – na rolkęBunnings Warehouse50218https://www.bunnings.com.au/
Umywalka plastikowa (38 cm, 9 L okrągła) – każdyFBA31541Ezy Storagehttps://www.ezystorage.com/product/laundry/basic-accessories/9l-round-basin/
Lejek plastikowy (24 cm) – sztSandlefordPf24https://www.sandleford.com.au/plastic-funnel-24cm
Kątownik ze stali nierdzewnej (20 mm) – 16 sztukBunnings WarehouseWEB2020https://www.bunnings.com.au/
i nakrętki ze stali nierdzewnej (M4 x 15 mm) – 18 sztukBunnings WarehouseSFA394https://www.bunnings.com.au/
Podkładki ze stali nierdzewnej (3/16" i M5) – 50 sztukBunnings WarehouseEBM5005https://www.bunnings.com.au/
Blacha dachowa z poliwęglanu Sunlite (8 mm x 610 mm x 2,4 m) – sztSuntuf (Palram Industries Ltd)SL8CL2.4https://www.palram.com/au/product/sunlite-polycarbonate-multi-wall/
Impregnowana folia sosnowa (150 x 12 mm) – każdaSTS Timber Hurtownia P/Ln/Ahttps://www.ststimber.com.au/sts-timber-wholesale-products/fencing
Drewniane kołki (1200 x 17 x 17 mm) – 10 sztukKratownikarkinie dotyczyhttps://latticemakers.com/product/tomato-stakes-17x17mm-pack-of-10/
. . .

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Epsky, N. D., Morrill, W. L., Mankin, R. W. Traps for Capturing Insects. Encyclopedia of Entomology. Capinera, J. L. , Springer. Dordrecht. (2008).
  2. Catanach, T. A. Invertebrate sampling methods for use in wildlife studies. The Wildlife Techniques Manual. Silvy, N. J. 1, The Johns Hopkins University Press. Baltimore, Maryland. 336-348 (2012).
  3. Montgomery, G. A., Belitz, M. W., Guralnick, R. P., Tingley, M. W. Standards and best practices for monitoring and benchmarking insects. Frontiers in Ecology and Evolution. 8, 579193(2021).
  4. Haddock, J. K., Threlfall, C. G., Law, B., Hochuli, D. F. Light pollution at the urban forest edge negatively impacts insectivorous bats. Biological Conservation. 236, 17-28 (2019).
  5. Steinbauer, M. J. Using ultra-violet traps to monitor autumn gum moth, Mnesampela private (Lepidoptera: Geometridae), in south-eastern Australia. Australian Forestry. 66 (4), 279-286 (2003).
  6. Wakefield, A., Broyles, M., Stone, E. L., Harris, S., Jones, G. Quantifying the attractiveness of broad-spectrum street lights to aerial nocturnal insects. Journal of Applied Ecology. 55, 714-722 (2017).
  7. Williams, C. B. The time of activity of certain nocturnal insects, chiefly Lepidoptera, as indicated by a light-trap. Transactions of the Entomological Society of London. 83 (4), 523-555 (1935).
  8. Bolliger, J., Collet, M., Hohl, M., Obrist, M. K. Automated flight-interception traps for interval sampling of insects. PLoS ONE. 15 (7), 0229476(2020).
  9. Grubisic, M., van Grunsven, R. H. A., Kyba, C. C. M., Manfrin, A., Hölker, F. Insect declines and agroecosystems: does light pollution matter. Annals of Applied Biology. 173, 180-189 (2018).
  10. Owens, A. C. S., Lewis, S. M. The impact of artificial light at night on nocturnal insects: a review and synthesis. Ecology and Evolution. 8 (22), 11337-11358 (2018).
  11. Rydell, J. Exploitation of insects around streetlamps by bats in Sweden. Functional Ecology. 6, 744-750 (1992).
  12. Bolliger, J., Hennet, T., Wermelinger, B., Blum, S., Haller, J., Obrist, M. K. Low impact of two LED colors on nocturnal insect abundance and bat activity in a peri-urban environment. Journal of Insect Conservation. 24, 625-635 (2020).
  13. Rodríguez, A., Orozco-Valor, P. M., Sarasola, J. H. Artificial light at night as a driver of urban colonization by an avian predator. Landscape Ecology. 36, 17-27 (2021).
  14. Hienton, T. E. Summary of investigations of electric insect traps. United States Department of Agriculture. , Washington D.C. Technical bulletin No. 1498. Agricultural Research Service (1974).
  15. Johnson, C. G. A suction trap for small airborne insects which automatically segregates the catch into successive hourly samples. Annals of Applied Biology. 37 (1), 80-91 (1950).
  16. Hutchins, R. E. Insect activity at a light trap during various periods of the night. Journal of Economic Entomology. 33 (4), 654-657 (1940).
  17. Nagel, R. H., Granovsky, A. A. A turn-table light trap for taking insects over regulated periods. Journal of Economic Entomology. 40 (4), 583-586 (1947).
  18. Hill, C. J., Cemak, M. A new design and some preliminary results for a flight intercept trap to sample forest canopy arthropods. Australian Journal of Entomology. 36, 51-55 (1997).
  19. Lamarre, G. P. A., Molto, Q., Fine, P. V. A., Baraloto, C. A comparison of two common flight interception traps to survey tropical arthropods. ZooKeys. 216, 43-55 (2012).
  20. Wilkening, A. J., Foltz, J. L., Atkinson, T. H., Connor, M. D. An omnidirectional flight trap for ascending and descending insects. The Canadian Entomologist. 113, 453-455 (1981).
  21. Frost, S. W. Insects captured in light traps with and without baffles. The Canadian Entomologist. 90 (9), 566-567 (1958).
  22. Muirhead-Thompson, R. Trap responses of flying insects: The influence of trap design on capture efficiency. , Academic Press. London. 287(1991).
  23. Carrel, J. E. A novel aerial-interception trap for arthropod sampling. Florida Entomologist. 85 (4), 656-657 (2002).
  24. Steinbauer, M. J., Haslem, A., Edwards, E. Using meteorological and lunar information to explain catch variability of Orthoptera and Lepidoptera from 250 W Farrow light traps. Insect Conservation and Diversity. 5, 367-380 (2012).
  25. Recher, H. F., Majer, J. D., Ganesh, S. Seasonality of canopy invertebrate communities in eucalypt forests of eastern and western Australia. Australian Journal of Ecology. 21, 64-80 (1996).
  26. van Klink, R., et al. Meta-analysis reveals declines in terrestrial but increases in freshwater insect abundances. Science. 368, 417-420 (2020).
  27. Wagner, D. L. Insect declines in the Anthropocene. Annual Review of Entomology. 65, 457-480 (2020).
  28. Cardoso, P., et al. Scientists' warning to humanity on insect extinctions. Biological Conservation. 242, 108426(2020).
  29. Saunders, M. E., Janes, J. K., O'Hanlon, J. C. Moving on from the insect apocalypse narrative: Engaging with evidence-based insect conservation. BioScience. 70 (1), 80-89 (2020).
  30. Cardoso, P., Leather, S. R. Predicting a global insect apocalypse. Insect Conservation and Diversity. 12, 263-267 (2019).
  31. Owens, A. C. S., Cochard, P., Durrant, J., Perkin, E., Seymoure, B. Light pollution is a driver of insect declines. Biological Conservation. 241, 108259(2020).
  32. Chapman, J. A., Kinghorn, J. M. Window traps for insects. The Canadian Entomologist. 87 (1), 46-47 (1955).
  33. Canaday, C. L. Comparison of insect fauna captured in six different trap types in a Douglas-fir forest. The Canadian Entomologist. 119, 1101-1108 (2012).
  34. Burns, M., Hancock, G., Robinson, J., Cornforth, I., Blake, S. Two novel flight-interception trap designs for low-cost forest insect surveys. British Journal of Entomology and Natural History. 27, 155-162 (2014).
  35. Basset, Y. A composite interception trap for sampling arthropods in tree canopies. Journal of the Australian Entomological Society. 27, 213-219 (1988).
  36. Russo, L., Stehouwer, R., Heberling, J. M., Shea, K. The composite insect trap: An innovative combination trap for biologically diverse sampling. PLoS ONE. 6 (6), 21079(2011).
  37. Knuff, A. K., Winiger, N., Klein, A. -M., Segelbacher, G., Staab, M. Optimizing sampling of flying insects using a modified window trap. Methods in Ecology & Evolution. 10 (10), 1820-1825 (2019).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Flight Intercept TrapAutomated Insect SamplingArtificial Light At NightTemporal Sub SamplingFlying InsectsLight PollutionEcological MonitoringTrap EfficiencyBaffle TrapNocturnal Insect Sampling

Powiązane artykuły