Artykuł metodologiczny

Prowadzenie oscylometrii oddechowej w warunkach ambulatoryjnych

10.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63243

⸱

8 kwietnia 2022

 ,  ,  ,  ,  , 
1Division of Respirology, Department of Medicine, University Health Network, University of Toronto

W tym artykule

Podsumowanie

Demonstrujemy standardowy protokół operacyjny do prowadzenia oscylometrii oddechowej, podkreślając kluczowe procedury kontroli i zapewnienia jakości.

Streszczenie

Oscylometria oddechowa to inna metoda badania funkcji płuc, która jest coraz częściej stosowana w warunkach klinicznych i badawczych w celu dostarczenia informacji dotyczących mechaniki płuc. Oscylometria oddechowa jest przeprowadzana za pomocą trzech dopuszczalnych pomiarów oddychania oddechowego i może być wykonywana przy minimalnych przeciwwskazaniach. Małe dzieci i pacjenci, którzy nie mogą wykonać spirometrii z powodu upośledzenia funkcji poznawczych lub fizycznych, zwykle mogą wykonać oscylometrię. Głównymi zaletami oscylometrii oddechowej jest to, że wymaga minimalnej współpracy pacjenta i jest bardziej czuła w wykrywaniu zmian w małych drogach oddechowych niż konwencjonalne testy czynnościowe płuc. Urządzenia komercyjne są już dostępne. Niedawno opublikowano zaktualizowane wytyczne techniczne, standardowe protokoły operacyjne oraz wytyczne dotyczące kontroli/zapewnienia jakości. Dostępne są również wartości referencyjne.

Przeprowadziliśmy audyty testów oscylometrii przed i po wdrożeniu formalnego programu szkoleniowego z oscylometrii oddechowej i standardowego protokołu operacyjnego. Zaobserwowaliśmy poprawę jakości wykonywanych testów, przy znaczącym wzroście liczby akceptowalnych i powtarzalnych pomiarów.

Obecny artykuł przedstawia i demonstruje standardowy protokół operacyjny do prowadzenia oscylometrii oddechowej w warunkach ambulatoryjnych. Zwracamy uwagę na kluczowe kroki w celu zapewnienia akceptowalnych i odtwarzalnych pomiarów jakości zgodnie z zalecanymi wytycznymi Europejskiego Towarzystwa Chorób Układu Oddechowego (ERS), ponieważ kontrola jakości ma kluczowe znaczenie dla dokładności pomiarów. Omówiono również potencjalne problemy i pułapki wraz z sugestiami rozwiązania błędów technicznych.

Wprowadzenie

Oscylometria oddechowa mierzy impedancję płuc i jest niezwykle czuła na zmiany w mechanice oddechu1, szczególnie na obwodowe płuca i małe drogi oddechowe, obszary płuc, które nie są dobrze oceniane przez tradycyjne testy czynnościowe płuc.

W ciągu ostatnich kilku lat, dostępność komercyjnych urządzeń oraz zaktualizowane standardy techniczne i kontroli jakości/zapewnienia 2,3 doprowadziły do zwiększenia wykorzystania oscylometrii do celów klinicznych i badawczych. Jednak do tej pory nie jest to rutynowe badanie w repertuarze modalności funkcji płuc, ale przewiduje się, że technika ta stanie się szerzej stosowana wraz z rosnącym uznaniem jej użyteczności klinicznej. Ogólnym celem oscylometrii oddechowej jest pomiar mechaniki oddechowej podczas normalnego oddychania oraz ocena czynności płuc, która nie jest dostrzegalna za pomocą obecnych metod spirometrii i pletyzmografii. Oscylometria ma inne zalety w porównaniu z tradycyjnymi testami czynnościowymi płuc, ponieważ można ją wykonywać u bardzo młodych, starszych lub u pacjentów z zaburzeniami poznawczymi, u których niemożliwe są wymuszone manewry wydechowe potrzebne do spirometrii. Co więcej, oscylometrię można przeprowadzić u każdego, kto może oddychać spontanicznie, nosząc klips na nos. W przeciwieństwie do standardowych testów czynnościowych płuc, nie jest przeciwwskazany po operacji zaćmy, operacji wewnątrzbrzusznej lub kardio-torakochirurgicznej, ani po ostrym zawale mięśnia sercowego i niewydolności serca. Wreszcie, kilka obecnie dostępnych urządzeń oscylometrycznych jest przenośnych i może być używanych w warunkach poza laboratorium diagnostycznym, w tym w warunkach klinicznych i biurowych, przy łóżku pacjenta lub w miejscach pracy.

Oscylometria mierzy całkowitą impedancję oddechową (Zrs) do wieloczęstotliwościowych oscylacyjnych fal ciśnienia1,2,4,5,6. Impedancja składa się ze złożonej sumy oporu oddechowego (Rrs) i reaktancji (Xrs). Rrs odzwierciedla opór dróg oddechowych i jest w dużej mierze niezależny od częstotliwości w health4,7,8. W chorobach małych dróg oddechowych Rrs staje się zależny od częstotliwości i wzrasta bardziej w niższych częstotliwościach5,9,10, tak że różnica w Rrs przy częstotliwościach od 5 do 19 Hz (R5-19) lub 5 i 20 Hz (R5-20) wskazuje na małą niedrożność dróg oddechowych i niejednorodność wentylacji w różnych obszarach płuc 10,11,12. Xrs mierzy równowagę impedancji sprężystej i inercyjnej układu oddechowego. Przy niższych częstotliwościach (np. od 5 do 11 Hz) Xrs odzwierciedla sztywność lub elastancję tkanek płuc i ściany klatki piersiowej13,14. Przy wyższych częstotliwościach Xrs jest zdominowany przez bezwładność kolumny powietrza w przewodzących drogach oddechowych. Częstotliwość rezonansowa (Fres) to punkt, w którym wielkości reaktancji sprężystej i inercyjnej są równe. AX jest indeksem całkującym Xrs i jest obliczany jako obszar pod wykresem Xrs w funkcji częstotliwości między 5 Hz a Fres. AX ma jednostki elastancji i jest odwrotnie proporcjonalny do objętości płuc w komunikacji z wentylacją. AX wzrasta wraz z procesami restrykcyjnymi i niejednorodnością obwodową. X5 staje się coraz bardziej ujemny, podczas gdy AX i Fres są zwiększone zarówno w obturacyjnych, jak i restrykcyjnych chorobach płuc4,5. Zobacz Rysunek 1, aby zobaczyć te wskaźniki.

Chociaż początkowo skupiała się na pomiarze czynności płuc u dzieci, pojawiające się dane pokazują, że oscylometria dostarcza użytecznych informacji klinicznych również u dorosłych. Jest coraz częściej stosowany w warunkach klinicznych15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32,33,34,35,36,37,38,39,40,41,42,43,44,45. Oscylometria została najszerzej zbadana w obturacyjnych chorobach płuc, gdzie stwierdzono, że oferuje lepsze informacje diagnostyczne niż spirometria w odniesieniu do kontroli astmy31,32,33,34,35, lepsza korelacja z objawami23,34 i wcześniejsze wykrycie36,37,38 przewlekłej obturacyjnej choroby płuc (POChP). Nasza grupa wykazała, że oscylometria jest bardziej czuła niż spirometria w śledzeniu uszkodzeń przeszczepu po przeszczepie płuc46. Kilka badań wykazało, że Xrs, a konkretnie różnica w średniej reaktancji wdechowej i wydechowej przy 5 Hz, może odróżniać restrykcyjne defekty śródmiąższowej choroby płuc (ILD) od astmy i POChP47 i może różnicować połączone zwłóknienie płuc i rozedmę płuc od ILD-only48,49. Rysunek 2 pokazuje typowe wzorce oscylometrii dla normalnych, restrykcyjnych i obturacyjnych chorób płuc. Rośnie zainteresowanie wdrożeniem oscylometrii jako kolejnej rutynowej metody badania funkcji płuc w celu uzupełnienia i potencjalnego zastąpienia niektórych obecnych metod testowania do monitorowania czynności płuc50,51.

Sugerujemy, że oscylometria jest przydatna do badań przesiewowych chorób płuc, w obserwacji pacjentów ze znanymi obturacyjnymi i restrykcyjnymi chorobami płuc oraz po przeszczepie płuc. Komercyjne urządzenia nadają się do użytku u dzieci w wieku 2 lat. Trwają badania z jeszcze młodszymi populacjami52, a wraz z rozwojem tej dziedziny może być możliwa ocena niemowląt i noworodków.

Celem obecnego manuskryptu jest dostarczenie podręcznika szkoleniowego dla klinicystów, technologów i personelu badawczego na temat właściwego prowadzenia oscylometrii, zgodnie z międzynarodowymi standardowymi protokołami operacyjnymi i wytycznymi kontroli jakości. Ze względu na niewielkie rozmiary większości komercyjnych oscylometrów, oscylometria może być realizowana w wielu ustawieniach. Przedstawiony protokół jest odpowiedni dla laboratoriów czynności płuc, gabinetów lekarskich, klinik i innych placówek ambulatoryjnych, takich jak jednostki medycyny pracy w miejscu pracy.

Protokół

Badania oscylometrii oddechowej zostały zatwierdzone przez Radę Etyki Badań Uniwersyteckiej Sieci Zdrowia (REB# 17-5373, 17-5652 i 19-5582). Pisemna świadoma zgoda została uzyskana od uczestników przed testem oscylometrycznym.

UWAGA: Ten film przedstawia standardową procedurę operacyjną dla oscylometrii. Nasze laboratorium korzysta z urządzenia wyprodukowanego przez Thorasys Thoracic Medical Systems Inc., ale technika jest taka sama niezależnie od producenta. Programy są różne dla każdego producenta, w taki sam sposób, w jaki różne komercyjne spirometry mają unikalne, zastrzeżone oprogramowanie do zbierania i wyświetlania danych. Poniższy protokół ma zastosowanie do wszystkich urządzeń do oscylometrii oddechowej. Czytelnicy są kierowani do instrukcji obsługi swoich urządzeń komercyjnych i odsyłają do szczegółowych instrukcji dotyczących oprogramowania ich urządzenia.

1. Badanie przesiewowe/przygotowanie pacjenta przed badaniem

  1. Upewnij się, że pacjent jest wolny od jakiejkolwiek aktywnej lub podejrzewanej zakaźnej infekcji dróg oddechowych, takiej jak koronawirus lub gruźlica.
  2. Upewnij się, że pacjent nie przeszedł żadnych ostatnich operacji dentystycznych lub twarzy, takich jak ekstrakcje zębów, i może stworzyć odpowiednie szczelne uszczelnienie wokół ustnika.
  3. Upewnij się, że pacjent jest tak zrelaksowany, jak to tylko możliwe, nie nosi obcisłych ubrań i nie pali tytoniu i nie ćwiczy co najmniej 1 godzinę przed badaniem.
  4. Wykonaj oscylometrię przed konwencjonalnymi PFT, takimi jak spirometria, jeśli zażąda tego lekarz kierujący.
    UWAGA: Patrz Tabela uzupełniająca 1 w celu uzyskania informacji o przeciwwskazaniach do spirometrii/PFT.
  5. Upewnij się, że pacjent odstawi leki rozszerzające oskrzela przed badaniem, chyba że lekarz kierujący zaleci kontynuowanie leczenia rozszerzającego oskrzela.
    UWAGA: Patrz Tabela Uzupełniająca 2 dla czasów wstrzymania działania leku rozszerzającego oskrzela dla PFT oraz Tabela Uzupełniająca 3 dla czasu wstrzymania podania leku rozszerzającego oskrzela dla testu prowokacyjnego metacholiny.

2. Przygotowanie sprzętu/materiałów

  1. Przygotowanie sprzętu
    1. Sprawdź obciążenie rezystancją urządzenia oscylometrycznego przy użyciu ważnego fabrycznie skalibrowanego obciążenia mechanicznego przed badaniem pacjenta.
    2. Zdejmij nasadki przeciwpyłowe na obu końcach mechanicznego obciążenia testowego i przymocuj do urządzenia oscylometrycznego.
    3. Wybierz kalibrację z menu oprogramowania oscylometrycznego i kontynuuj weryfikację obciążenia testu impedancji.
      UWAGA: Zalecana tolerancja dla weryfikacji wynosi ≤ ±10% lub ±0,1 cmH2O·s/L, w zależności od tego, która z nich zostanie spełniona wcześniej.
    4. Po pomyślnej weryfikacji zapisz i kontynuuj testowanie.
  2. Przygotowanie materiałów
    1. Miej pod ręką wiele filtrów bakteryjnych/wirusowych do użytku przez jednego pacjenta i kliss na nos.
    2. Miej pod ręką środki ochrony osobistej (PPE), takie jak rękawiczki i maski oraz chusteczki dezynfekujące.
      UWAGA: Zapoznaj się z zasadami laboratoryjnymi dotyczącymi zakładania i zdejmowania środków ochrony osobistej oraz wytycznymi dotyczącymi kontroli zakażeń.

3. Przygotowanie pacjenta

  1. Antropometria
    1. Zweryfikuj informacje o pacjencie: imię i nazwisko, datę urodzenia, płeć urodzenia, wzrost, wagę i tożsamość płciową, jeśli dotyczy.
    2. Zmierz wzrost pacjenta bez butów, ze złączonymi stopami, stojąc jak najwyżej, z oczami na poziomie i patrząc prosto przed siebie, a plecami przylegającymi do ściany lub płaskiej powierzchni.
      UWAGA: W przypadku pacjentów, którzy nie są w stanie stać w pozycji wyprostowanej, wzrost można oszacować na podstawie rozpiętości ramion. W przypadku pacjentów w wieku 25 lat lub starszych, u których pomiar wzrostu został wcześniej wykonany w tym samym laboratorium, ponowny pomiar wzrostu podczas kolejnych wizyt w ciągu 1 roku może nie być konieczny.
    3. Aktualizuj pomiar masy ciała przy każdej wizycie.
    4. Rejestruj stosowanie przez pacjenta leków rozszerzających oskrzela, dawkowanie, godzinę/datę ostatniego podania oraz wszelkie alergie na leki, takie jak salbutamol.
  2. Przygotowanie do testu oscylometrycznego
    1. Poproś pacjenta o zdezynfekowanie rąk przed wejściem do stanowiska testowego.
    2. Przedstaw czas trwania testu wynoszący 30 sekund i minimalny wymóg trzech prób.
    3. Wyjaśnij odczucia generowane przez oscylacje, takie jak "wibracje" lub "trzepotanie".
    4. Upewnij się, że pacjent siedzi prawidłowo w lekkiej pozycji "podciągającej" z obiema stopami na podłodze. Unikaj garbienia się o oparcie krzesła lub krzyżowania nóg.
    5. Poinstruuj pacjenta, aby oddychał normalnie, trzymając się za policzki dłonią i palcami oraz używając kciuków do podparcia tkanki miękkiej szczęki podczas pomiarów.
      UWAGA: Podparcie policzków i dna jamy ustnej jest wzmocnione, aby uniknąć zastawki górnych dróg oddechowych. Jeśli policzki i tkanki miękkie jamy ustnej nie są podparte, przepływ mierzony w jamie ustnej jest tracony w ruchu ściany górnych dróg oddechowych.
    6. Wyjaśnij pacjentowi, że podczas badania należy unikać połykania, a język musi znajdować się poniżej ustnika.
      UWAGA: Powyższe instrukcje dotyczą zarówno dzieci, jak i dorosłych. W zależności od wieku dziecka, trzymanie przed dzieckiem obrazu lub innych form rozpraszania wzroku może pomóc w utrzymaniu postawy głowy w okresie rejestracji oscylometrii. W przypadku osób dorosłych z zaburzeniami poznawczymi należy rozważyć umieszczenie w pobliżu osoby towarzyszącej, która będzie trenować i uspokajać pacjenta, aby mógł normalnie oddychać. W przypadku pacjentów z niepełnosprawnością fizyczną niektóre urządzenia oscylometryczne są przenośne i można je zabrać ze sobą do łóżka pacjenta lub wózka inwalidzkiego. Rozważ również poproszenie osoby towarzyszącej lub innej osoby o zapewnienie wsparcia policzków i szczęki podczas testów.

4. Konfiguracja oprogramowania

UWAGA: Proszę zapoznać się z instrukcją producenta w celu uzyskania indywidualnych instrukcji.

  1. Konfiguracja nowego pacjenta
    1. Wybierz opcję Nowy pacjent i wprowadź informacje o pacjencie, takie jak imię i nazwisko, data urodzenia, płeć urodzenia, wzrost, waga, pochodzenie etniczne (jeśli dotyczy) i historię palenia.
    2. Sprawdź, czy wszystkie wprowadzone informacje są poprawne przed wybraniem testu standardowego.
    3. Upewnij się, że wybrano prawidłową konfigurację długości fali. W tej demonstracji wybierz opcję Oscylometria fal powietrznych z menu rozwijanego Szablon. Wybór konkretnych długości fal i kombinacji długości fal będzie różny w zależności od producenta. Postępuj zgodnie z instrukcją obsługi oprogramowania dla konkretnego urządzenia.
    4. Upewnij się, że wybrano odpowiedni zestaw wartości referencyjnych: Oostveen et al.56 lub Brown et al.57 dla dorosłych oraz Nowowiejska et al.58 dla dzieci w wieku od 3 do 17 lat.
      UWAGA: Preferowane i dostępne wartości referencyjne mogą się różnić w zależności od polityki każdego laboratorium i producenta urządzenia oscylometrycznego.
  2. Konfiguracja istniejącego pacjenta
    1. Kliknij Wybierz pacjenta i wybierz właściwą kartotekę pacjenta, weryfikując jego dane, takie jak imię i nazwisko oraz datę urodzenia.
    2. Upewnij się, że waga i wzrost pacjenta (jeśli dotyczy) są zaktualizowane przed rozpoczęciem testów.
    3. Wybierz Test standardowy i wybierz Oscylometria fal powietrznych z menu rozwijanego Szablon. Patrz również sekcja 4.1.3.

5. Procedura testowa

  1. Konfiguracja urządzenia oscylometrycznego
    1. Podłącz filtr bakteryjny/wirusowy do użytku przez jednego pacjenta do urządzenia oscylometrycznego.
    2. Upewnij się, że urządzenie oscylometryczne jest gotowe w trybie testowania.
  2. Pomiar spektralny
    UWAGA: Oscylometria fal powietrznych 5-37 Hz w urządzeniu pokazanym na filmie.
    1. Przypomnij pacjentowi o czasie trwania testu wynoszącym 30 sekund i minimalnym wymogu trzech pomiarów.
    2. Poinstruuj pacjenta, aby założył klips na nos i przekaż instrukcje opisane w krokach 3.2.4 i 3.2.5.
    3. Dostosuj urządzenie oscylometryczne do poziomu głowy pacjenta.
    4. Poinstruuj pacjenta, aby zwilżył usta przed owinięciem ich wokół ustnika, aby uzyskać odpowiednie, szczelne uszczelnienie. Poinstruuj pacjenta, aby zaczął normalnie oddychać.
      UWAGA: Sprawdź, czy wokół ustnika i zacisku na nos nie ma potencjalnych wycieków powietrza. Dodatkowy tlen musi być wyłączony podczas pomiarów, aby uniknąć dryftu do urządzenia oscylometrycznego.
    5. Obserwuj wzorzec oddychania pacjenta i rozpocznij nagrywanie po wykonaniu co najmniej trzech stabilnych oddechów oddechowych.
      UWAGA: (Opcjonalnie): Podczas badania poinformuj pacjenta o czasie pozostałym do wykonania każdego pomiaru.
    6. Zapewnij odpowiedni czas odpoczynku między każdym pomiarem i odpowiednio dostosuj, w zależności od pacjenta.
      UWAGA: Pacjenci przyjmujący dodatkowy tlen mogą wymagać dłuższych przerw na odpoczynek. W razie potrzeby zapewnij dodatkowy tlen w przerwach na odpoczynek.
    7. Po wykonaniu co najmniej trzech pomiarów przejdź do kroku 6, aby ocenić akceptowalność i odtwarzalność.
  3. Odpowiedź po rozszerzeniu oskrzeli - opcjonalnie
    1. Podawać lek rozszerzający oskrzela (salbutamol lub bromek ipratropium) przez przekładkę.
    2. Należy zanotować sposób i liczbę podanych dawek.
    3. Odczekaj 10 minut po podaniu salbutamolu/albuterolu i 20 minut po inhalacji bromku ipratropium.
    4. Powtórz krok 5.2, aby ocenić odpowiedź po rozszerzeniu oskrzeli
  4. Pomiar 10 Hz (intrabreath) - opcjonalnie
    1. Przypomnij pacjentowi, że czas trwania każdego testu wynosi 30 s i zostaną wykonane co najmniej trzy pomiary.
    2. Upewnij się, że wybrano prawidłową konfigurację długości fali do pomiaru w wydychanym powietrzu.
    3. Powtórz kroki od 5.2.2 do 5.2.6.

6. Dopuszczalność dostępu i odtwarzalność

  1. Dopuszczalności
    1. Upewnij się, że miarodajność pomiarów jest większa niż 70%.
    2. Sprawdź, czy symbol obok pomiarów został oznaczony znacznikiem wyboru.
      UWAGA: Jeśli obecny jest symbol "Uwaga", pomiar jest niedopuszczalny.
    3. Sprawdź każdy pomiar pod kątem anomalii lub artefaktów, które mogą być spowodowane kaszlem, niedrożnością języka, zamknięciem głośni, wyciekiem powietrza wokół ustnika, próbą mówienia, połykaniem i głębokim oddechem.
      UWAGA: Jeśli zaobserwuje się, że pacjent bierze głęboki oddech, zresetuj urządzenie oscylometryczne, ponieważ silne oddechy zakłócają pracę silników i jakość kolejnych pomiarów. Aby zresetować, przerwij testowanie, a następnie kliknij opcję Zero kanałów.
    4. Pomiary przeglądowe są automatycznie wykluczane przez oprogramowanie; obejmują one anomalie lub artefakty, takie jak kaszel lub zamknięcie głośni.
    5. Wyklucz wszelkie niedopuszczalne pomiary z anomaliami opisanymi w kroku 6.1.3 i powtórz krok 5.2, aby uzyskać dodatkowe pomiary.
  2. Odtwarzalności
    1. Upewnij się, że zarejestrowane są co najmniej trzy dopuszczalne pomiary.
    2. Upewnij się, że współczynnik wariancji (CoV) Rrs (oporności układu oddechowego) wynosi ≤10% u dorosłych i ≤15% u dzieci.
    3. Powtórz krok 5.2, aby uzyskać dodatkowe pomiary, jeśli 3 dopuszczalne pomiary mają CoV >10% u dorosłych i >15% u dzieci.
    4. Powtórz 6.1, aby określić akceptowalność i podać trzy dopuszczalne pomiary z CoV ≤10% u dorosłych i ≤15% u dzieci.

7. Dezynfekcja

  1. Wyrzuć ustnik pacjenta i klips na nos do kosza na śmieci.
  2. Do czyszczenia urządzenia oscylometrycznego i fotela pacjenta używaj chusteczek dezynfekujących.
  3. Zdejmij rękawiczki i zdezynfekuj ręce.
  4. Umieść czerwoną nasadkę przeciwpyłową z powrotem na urządzeniu oscylometrycznym, aby uniknąć zanieczyszczenia.
    UWAGA: Zasady kontroli zakażeń w każdym laboratorium mogą się różnić.

8. Raportowanie wyników

UWAGA: Szczegóły można znaleźć w Rysunek 3.

  1. Uwzględnij imię i nazwisko pacjenta, wzrost, wagę, wiek, płeć urodzeniową, BMI i historię palenia.
  2. Podaj nazwę urządzenia, model, wersję oprogramowania i producenta.
  3. Uwzględnij częstotliwości sygnału wejściowego i czas trwania poszczególnych nagrań.
  4. Należy podać średnią dopuszczalnych i odtwarzalnych pomiarów oraz CoV dla tych zgłoszonych pomiarów.
    UWAGA: Jeśli CoV jest wyższy niż określona górna granica, wyniki powinny być oznaczone, aby lekarz interpretujący mógł interpretować wyniki z ostrożnością.
  5. Wybierz równania odniesienia.
  6. Dołącz wykres impedancji przedstawiający Rrs i Xrs w funkcji częstotliwości oscylacji.
  7. Uwzględnij odpowiedź po podaniu leku rozszerzającego oskrzela wraz z dawkowaniem i metodą podawania, w tym wskaźnikami Z i bezwzględną zmianą procentową - opcjonalnie

9. Kontrola jakości/zapewnienie jakości

  1. Wykonuj regularne audyty (co tydzień lub co miesiąc) w zależności od ilości testów oscylometrycznych w laboratorium.
  2. Oceń każdego operatora za pomocą ustandaryzowanej listy kontrolnej, aby upewnić się, że testy oscylometryczne są przeprowadzane dokładnie i profesjonalnie.
  3. Regularne przekazywanie informacji zwrotnych operatorom i organizowanie kwartalnych spotkań dotyczących zapewnienia jakości w celu omówienia kwestii laboratoryjnych.
  4. Upewnij się, że biologiczne kontrole jakości są przeprowadzane co tydzień z co najmniej dwoma zdrowymi osobami niepalącymi, a pomiary mieszczą się w zakresie ±2SD od ich średniej wartości wyjściowej.
    UWAGA: Jest to niezwykle ważne dla walidacji sprzętu i procedur testujących, gdy w laboratorium znajduje się wiele urządzeń oscylometrycznych.
  5. Przeprowadzaj kwartalną samokontrolę i coroczną konserwację fabryczną urządzeń oscylometrycznych w celu kalibracji i kontroli jakości.

Wyniki

W okresie od 17 października 2017 do 6 kwietnia 2018 roku przeprowadziliśmy pierwszy audyt zapewnienia jakości/kontroli jakości (QA/QC) 197 testów oscylometrii3. Mimo że wszyscy operatorzy zostali przeszkoleni przed badaniem pacjentów podczas godzinnego seminarium oraz testów w miejscu badania, zidentyfikowano 10 (5,08%) pomiarów nieakceptowalnych i/lub niepowtarzalnych. Pomiary te wykluczono ze względu na kaszel, blokadę języka oraz CoV przekraczający 15%, zgodnie z pierwotnymi zaleceniami wytycznych ERS52. Kontrola jakości biologicznej (BioQC) nie była przeprowadzana regularnie. Personel badawczy przeszedł dodatkowe szkolenie z oscylometrii i opracowano standardowy protokół operacyjny, aby zapewnić stosowanie odpowiednich wytycznych ERS oraz profesjonalizm medyczny. Personelowi badawczemu podkreślono znaczenie BioQC jako narzędzia do walidacji sprzętu i procedur testowych, przypominając o konieczności regularnego przeprowadzania testów BioQC.3 W kolejnych audytach QA/QC odnotowano poprawę. Z łącznej liczby 1930 testów oscylometrii przeprowadzonych od 9 kwietnia 2018 do 30 czerwca 2019 roku tylko trzy (0,0016%) testy stanowiły nieważne pomiary; w ich przypadku CoV przekraczało 15%. Między 2 lipca 2019 a 12 marca 2020 roku wykonano 1779 testów oscylometrii, z czego dziewięć (0,005%) uznano za nieakceptowalne, w tym pomiary z zamknięciem głośni, wyciekiem powietrza oraz CoV przekraczającym 15%. Dodatkowe informacje znajdują się w Tabeli 1.

Od czasu wzmocnienia procedur BioQC w kwietniu 2018 roku, personel badawczy regularnie przeprowadzał BioQC. W naszym ośrodku cztery zdrowe osoby niepalące wykonywały oscylometrię codziennie przez pierwsze 2 tygodnie, aby zebrać minimum 10 pomiarów, wyznaczając średnią wraz z górną i dolną granicą (±2SD lub odchylenie standardowe) przy współczynniku zmienności ≤10% dla Rrs pomiędzy dwoma urządzeniami do oscylometrii w naszym laboratorium. 30 sierpnia 2021 roku zaobserwowaliśmy pomiar BioQC, który wykraczał poza zakres średniej ±2SD danej osoby. Zaobserwowana wartość R5 dla tej osoby wyniosła 3,36 cmH2O·s/L (otwarte koło), podczas gdy średnia R5 z 20 ostatnich pomiarów wynosiła 4,95 cmH2O.s/L ±2SD (linia kropkowana z dolną granicą 4,03 i górną granicą 5,86; Rycina 4). Druga osoba przeprowadziła oscylometrię BioQC tego samego dnia przy użyciu tego samego urządzenia, a zaobserwowany pomiar R5 również znajdował się poza zakresem średniej ±2SD. Wyniki te wskazują na problemy związane z instrumentem, a nie z procedurą. Następnie skontaktowano się z producentem i urządzenie zostało wysłane do naprawy. Po zwrocie urządzenia 15 października 2021 roku powtórzono BioQC, aby upewnić się, że pomiar mieści się w zakresie R5 danej osoby przed ponownym wprowadzeniem urządzenia do użytku w naszym laboratorium.

Wykres impedancji w funkcji częstotliwości; opór dróg oddechowych, R5-19, AX, analiza częstotliwości rezonansowej (Fres).
Rycina 1: Przedstawiono oscylogram impedancji w funkcji częstotliwości z krzywą oporu (linia ciągła) oraz krzywymi reaktancji (linia przerywana), a także częstotliwości, dla których wykonano pomiary (pełne i puste kółka na każdej krzywej). Zilustrowano obszar reaktancji (AX, obszar kreskowany), częstotliwość rezonansową (Fres. X) oraz opór w zakresie od 5 Hz do 19 Hz (R5-19; strzałka dwustronna). Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

Wykres impedancji płuc w zależności od częstotliwości; porównanie stanu prawidłowego, restrykcyjnego i obturacyjnego.
Rycina 2: Typowe różnice w obrazach oscylometrycznych pomiędzy prawidłowym stanem płuc (A), chorobami restrykcyjnymi (B) a obturacyjnymi (C). Zwróć uwagę na przesunięcie krzywej reaktancji w prawo (otwarte kółka, linia przerywana) w chorobie restrykcyjnej (B) oraz na obraz w kształcie trąbki w oscylogramie obturacyjnym (C) z przesunięciem krzywej oporu w górę (pełne kółka i linia), zwiększoną wartością R5-19 oraz przesunięciem krzywej oporu w dół i w prawo (linia przerywana; otwarte kółka). Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Wykres funkcji płuc, impedancja względem częstotliwości, analiza oddechowa, wykres danych klinicznych.
Rycina 3: Standardowy szablon raportowania oscylometrii w naszej instytucji. Wyświetlamy oscylogram przy użyciu znormalizowanej osi X-Y i wyróżniamy odpowiednie pomiary przed i po podaniu leku rozszerzającego oskrzela różnymi kolorami, aby ułatwić interpretację wyników. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Wykres Blanda-Altmana, parametr oddechowy R5, numer BioQC, średnia=4,95, zakres SD=4,03-5,86.
Rysunek 4: Podsumowanie biologicznej kontroli jakości (BioQC) pomiarów R5 u jednej osoby od maja 2020 do listopada 2021 roku. Pomiar, który znalazł się poza (otwarty okrąg) średnią dla danej osoby (ciągła szara linia) ±2SD (linia przerywana), odnotowano 30 sierpnia 2021 roku. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Pierwszy audytDrugi audytTrzeci audyt
17 października 2017 do 6 kwietnia 20189 kwietnia 2018 r. do 30 czerwca 2019 r.od 2 lipca 2019 do 12 marca 2020
Ważny18719271770
Nieprawidłowy1039

Tabela 1: Porównanie akceptowalności testów oscylometrii w trzech punktach czasowych

Po pierwszym audycie personel przeszedł szkolenie odświeżające w zakresie przeprowadzania oscylometrii. Wprowadzono również standardową procedurę operacyjną dotyczącą wykonywania oscylometrii w laboratorium funkcji płuc. Odnotowano i utrzymano w czasie znaczną poprawę odsetka badań spełniających kryteria kontroli jakości. Wyniki te potwierdzają skuteczność opracowania i przestrzegania standardowych procedur operacyjnych oraz wytycznych dotyczących kontroli jakości.

Tabela uzupełniająca 1. Przeciwwskazania do spirometrii53,54 Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.

Tabela uzupełniająca 2. Czas odstawienia leków rozszerzających oskrzela przed badaniami czynnościowymi płuc53,54 Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.

Tabela uzupełniająca 3. Czasy odstawienia leków rozszerzających oskrzela przed testem prowokacyjnym oskrzeli53,55 Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.

Dyskusja

Krytyczne etapy wysokiej jakości pomiaru oscylometrycznego można podzielić na domeny pacjenta, sprzętu i operatora. Kluczowe znaczenie ma zapewnienie, że pacjent jest zrelaksowany i komfortowy, tak aby pobrane pomiary były w spoczynkowej funkcjonalnej objętości resztkowej. Postawa pacjenta jest bardzo ważna; Upewnij się, że pacjent siedzi prosto z obiema stopami na ziemi, bez krzyżowania nóg. Wzmocnienie podparcia policzków i żuchwy, dobre umieszczenie klipsa na nos i upewnienie się, że usta są uszczelnione wokół ustnika, wyeliminują przetaczanie i przecieki powietrza 1,2,3. Sprzęt musi zostać skalibrowany i zweryfikowany przed użyciem. Operator musi być w stanie rozpoznać dopuszczalne i niedopuszczalne nagrania oraz być w stanie rozwiązać problem z podstawową przyczyną niedopuszczalnych odczytów lub artefaktów, aby upewnić się, że zgłoszone pomiary mają CoV ≤10%1,2,3. Należy utrzymać kontrolę i zapewnienie jakości, aby nie tylko zapewnić walidację urządzenia oscylometrycznego, ale także jakość testów.

Szkolenie operatora w zakresie rozpoznawania wzorców wytwarzanych przez typowe artefakty, takie jak połykanie, wycieki i manewrowanie, pozwoli na terminowe powtarzanie pomiarów w celu uzyskania testów jakości. Zdarzają się przypadki, gdy oscylometria jest wykonywana przy różnych objętościach płuc (np. w pozycji leżącej). W takich okolicznościach wszystkie kroki opisane w protokole mogą być nadal stosowane.

Podczas gdy oscylometria jest łatwiejszą i szybszą metodą badania funkcji płuc, błędy w pomiarach, a tym samym interpretacji, wystąpią, jeśli wystąpią odchylenia od standardowego protokołu i etapów kontroli jakości. Nasz protokół opiera się na urządzeniu używanym w naszym centrum. Przebieg oscylometrii będzie taki sam we wszystkich urządzeniach. Pojawią się jednak różnice w technicznym aspekcie kalibracji i aplikacji programowych. Zaleca się, aby czytelnicy postępowali zgodnie z instrukcją obsługi dla różnych instrumentów.

Oscylometria jest szybsza i łatwiejsza do wykonania niż spirometria. Co więcej, małe dzieci i dorośli z upośledzeniem językowym, fizycznym i/lub poznawczym, które utrudniają wykonywanie wymuszonych manewrów wydechowych potrzebnych do spirometrii, mogą nadal wykonywać oscylometrię, tak jak jest ona przeprowadzana podczas normalnego oddychania. W niektórych ośrodkach oscylometria wyparła spirometrię jako początkowe narzędzie przesiewowe w kierunku chorób płuc. Udoskonalenie szkoleń w zakresie prowadzenia oscylometrii ułatwi jej szersze zastosowanie jako narzędzia diagnostycznego i zapewni kontrolę jakości przeprowadzanych testów.

Chociaż oscylometria jest szybką i łatwą techniką, potrzebne są kontrole jakości, aby zapewnić dokładne i powtarzalne pomiary. Postępując zgodnie z międzynarodowymi wytycznymi, dane z badań i oscylometrii klinicznej mogą być odpowiednio interpretowane, tak aby wyniki można było zastosować w różnych populacjach pacjentów.

Oświadczenia

CWC otrzymało honoraria za wystąpienia na webinariach wspieranych przez Thorasys Thoracic Medical Systems Inc. oraz opłaty za konsultacje od Theravance Biopharma, Inc.

Podziękowania

Badanie zostało sfinansowane przez CIHR-NSERC Collaborative Health Research Projects (CWC), Pettit Block Term grant (CWC), The Lung Health Foundation oraz Canadian Lung Association - Breathing as One: Allied Health Grant (JW). Dziękujemy wielu uczestnikom naszych badań naukowych z zakresu oscylometrii, którzy pozwolili nam rozwinąć wiedzę specjalistyczną w zakresie prowadzenia oscylometrii.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Chusteczki dezynfekujące Accel Prevention - 160/kanisterDiversey Care100906721https://diversey.com/en/
clearFlo F-100 - 100 filtrów do oscylometrii AirwaveThorasys101635https://www.thorasys.com/
Klips do nosa z poduszkami, "Snuffer", bx/1000McArthur Medical Sales Inc.785-1008BULKhttps://mcarthurmedical.com/
Tremoflo C-100 System oscylacji fal powietrznychThorasys101969https://www.thorasys.com/
Wersja oprogramowania: 1.0.43 build 43
Typ sygnału: Pseudolosowe, względne liczby pierwsze
Częstotliwości (Hz): 5, 10, 11, 14, 17, 19, 23, 29, 31, 37
Tremoflo C-100 Kalibrowane obciążenie odniesienia 15 cm H2O. s/LThorasys101059https://www.thorasys.com/

Bibliografia

  1. Bates, J. H., Irvin, C. G., Farre, R., Hanto, sZ. Oscillation mechanics of the respiratory system. Comprehensive Physiology. 1 (3), 1233-1272 (2011).
  2. King, G. G., et al. Technical standards for respiratory oscillometry. European Respiratory Journal. 55 (2), 1900753(2020).
  3. Wu, J., et al. Development of quality assurance and quality control guidelines for respiratory oscillometry in clinical studies. Respiratory Care. 65 (11), 1687-1693 (2020).
  4. Pride, N. B. Forced oscillation techniques for measuring mechanical properties of the respiratory system. Thorax. 47 (4), 317-320 (1920).
  5. Clement, J., Landser, F. J., Van de Woestijne, K. P. Total resistance and reactance in patients with respiratory complaints with and without airways obstruction. Chest. 83 (2), 215-220 (1983).
  6. Leary, D., Bhatawadekar, S. A., Parraga, G., Maksym, G. N. Modeling stochastic and spatial heterogeneity in a human airway tree to determine variation in respiratory system resistance. Journal of Applied Physiology. 112 (1), 167-175 (2012).
  7. Landser, F. J., Clement, J., Van de Woestijne, K. P. Normal values of total respiratory resistance and reactance determined by forced oscillations: influence of smoking. Chest. 81 (5), 586-591 (1982).
  8. Wouters, E. F., Polko, A. H., Schouten, H. J., Visser, B. F. Contribution of impedance measurement of the respiratory system to bronchial challenge tests. Journal of Asthma. 25 (5), 259-267 (1988).
  9. Wouters, E. F., Landser, F. J., Polko, A. H., Visser, B. F. Impedance measurement during air and helium-oxygen breathing before and after salbutamol in COPD patients. Clinical and Experimental Pharmacology & Physiology. 19 (2), 95-101 (1992).
  10. Grimby, G., Takishima, T., Graham, W., Macklem, P., Mead, J. Frequency dependence of flow resistance in patients with obstructive lung disease. The Journal of Clinical Investigation. 47 (6), 1455-1465 (1968).
  11. Cavalcanti, J. V., Lopes, A. J., Jansen, J. M., de Melo, P. L. Using the forced oscillation technique to evaluate bronchodilator response in healthy volunteers and in asthma patients presenting a verified positive response. Journal Brasileiro de Pneumologia. 32 (2), 91-98 (2006).
  12. Cavalcanti, J. V., Lopes, A. J., Jansen, J. M., Melo, P. L. Detection of changes in respiratory mechanics due to increasing degrees of airway obstruction in asthma by the forced oscillation technique. Respiratory Medicine. 100 (12), 2207-2219 (2006).
  13. Bates, J. H., Maksym, G. N. Mechanical determinants of airways hyperresponsiveness. Critical Reviews in Biomedical Engineering. 39 (4), 281-296 (2011).
  14. Dellaca, R. L., Aliverti, A., Lutchen, K. R., Pedotti, A. Spatial distribution of human respiratory system transfer impedance. Annals of Biomedical Engineering. 31 (2), 121-131 (2003).
  15. Dandurand, R., Li, P., Mancino, P., Bourbeau, J. Oscillometry from the CanCOLD Cohort: correlation with spirometry and patient reported outcomes. European Respiratory Society International Congress. , Paris. (2018).
  16. Jabbal, S., Manoharan, A., Lipworth, J., Lipworth, B. Utility of impulse oscillometry in patients with moderate to severe persistent asthma. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 138 (2), 601-603 (2016).
  17. Lipworth, B. J., Jabbal, S. What can we learn about COPD from impulse oscillometry. Respiratory Medicine. 139, 106-109 (2018).
  18. Manoharan, A., Anderson, W. J., Lipworth, J., Lipworth, B. J. Assessment of spirometry and impulse oscillometry in relation to asthma control. Lung. 193 (1), 47-51 (2015).
  19. Manoharan, A., Morrison, A. E., Lipworth, B. J. Effects of adding tiotropium or aclidinium as triple therapy using impulse oscillometry in COPD. Lung. 194 (2), 259-266 (2016).
  20. Manoharan, A., von Wilamowitz-Moellendorff, A., Morrison, A., Lipworth, B. J. Effects of formoterol or salmeterol on impulse oscillometry in patients with persistent asthma. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 137 (3), 727-733 (2016).
  21. Wei, X., et al. Impulse oscillometry system as an alternative diagnostic method for chronic obstructive pulmonary disease. Medicine. 96 (46), 8543(2017).
  22. Tse, H. N., Tseng, C. Z., Wong, K. Y., Yee, K. S., Ng, L. Y. Accuracy of forced oscillation technique to assess lung function in geriatric COPD population. International Journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 11, 1105-1118 (2016).
  23. Eddy, R. L., Westcott, A., Maksym, G. N., Parraga, G., Dandurand, R. J. Oscillometry and pulmonary magnetic resonance imaging in asthma and COPD. Physiological Reports. 7 (1), 13955(2019).
  24. Yamagami, H., et al. Association between respiratory impedance measured by forced oscillation technique and exacerbations in patients with COPD. International Journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 13, 79-89 (2018).
  25. Kitaguchi, Y., Yasuo, M., Hanaoka, M. Comparison of pulmonary function in patients with COPD, asthma-COPD overlap syndrome, and asthma with airflow limitation. International Journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 11, 991-997 (2016).
  26. Jetmalani, K., et al. Peripheral airway dysfunction and relationship with symptoms in smokers with preserved spirometry. Respirology. 23 (5), 512-518 (2018).
  27. Robinson, P. D., King, G. G., Sears, M. R., Hong, C. Y., Hancox, R. J. Determinants of peripheral airway function in adults with and without asthma. Respirology. 22 (6), 1110-1117 (2017).
  28. Short, P. M., Anderson, W. J., Manoharan, A., Lipworth, B. J. Usefulness of impulse oscillometry for the assessment of airway hyperresponsiveness in mild-to-moderate adult asthma. Annals of Allergy, Asthma & Immunology. 115 (1), 17-20 (2015).
  29. Zimmermann, S. C., Tonga, K. O., Thamrin, C. Dismantling airway disease with the use of new pulmonary function indices. European Respiratory Review. 28 (151), (2019).
  30. Lundblad, L. K. A., Siddiqui, S., Bossé, Y., Dandurand, R. J. Applications of oscillometry in clinical research and practice. Canadian Journal of Respiratory, Critical Care, and Sleep Medicine. 5 (1), 1-15 (2019).
  31. Shi, Y., et al. Relating small airways to asthma control by using impulse oscillometry in children. Journal of Allergy and Clinical Immunology. 129 (3), 671-678 (2012).
  32. Pisi, R., et al. Small airway dysfunction by impulse oscillometry in asthmatic patients with normal forced expiratory volume in the 1st second values. Allergy & Asthma Proceedings. 34 (1), 14-20 (2013).
  33. Saadeh, C., Saadeh, C., Cross, B., Gaylor, M., Griffith, M. Advantage of impulse oscillometry over spirometry to diagnose chronic obstructive pulmonary disease and monitor pulmonary responses to bronchodilators: An observational study. SAGE Open Medicine. 3, (2015).
  34. Foy, B. H., et al. Lung computational models and the role of the small airways in asthma. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 200 (8), 982-991 (2019).
  35. Tang, F. S. M., et al. Ventilation heterogeneity and oscillometry predict asthma control improvement following step-up inhaled therapy in uncontrolled asthma. Respirology. 25 (8), 827-835 (2020).
  36. Frantz, S., et al. Impulse oscillometry may be of value in detecting early manifestations of COPD. Respiratory Medicine. 106 (8), 1116-1123 (2012).
  37. Aarli, B. B., et al. Variability of within-breath reactance in COPD patients and its association with dyspnoea. European Respiratory Journal. 45 (3), 625-634 (2015).
  38. Dean, J., Kolsum, U., Hitchen, P., Gupta, V., Singh, D. Clinical characteristics of COPD patients with tidal expiratory flow limitation. International journal of Chronic Obstructive Pulmonary Disease. 12, 1503-1506 (2017).
  39. Kotoulas, S. C., et al. Acute effects of e-cigarette vaping on pulmonary function and airway inflammation in healthy individuals and in patients with asthma. Respirology. 25 (10), 1037-1045 (2020).
  40. Berger, K. I., Goldring, R. M., Oppenheimer, B. W. POINT: Should oscillometry be used to screen for airway disease? Yes. Chest. 148 (5), 1131-1135 (2015).
  41. Berger, K. I., et al. Distal airway dysfunction identifies pulmonary inflammation in asymptomatic smokers. ERJ Open Research. 2 (4), (2016).
  42. Oppenheimer, B. W., et al. Distal airway function in symptomatic subjects with normal spirometry following World Trade Center dust exposure. Chest. 132 (4), 1275-1282 (2007).
  43. Lappas, A. S., et al. Short-term respiratory effects of e-cigarettes in healthy individuals and smokers with asthma. Respirology. 23 (3), 291-297 (2018).
  44. Vardavas, C. I., et al. Short-term pulmonary effects of using an electronic cigarette: impact on respiratory flow resistance, impedance, and exhaled nitric oxide. Chest. 141 (6), 1400-1406 (2012).
  45. Antoniewicz, L., Brynedal, A., Hedman, L., Lundback, M., Bosson, J. A. Acute effects of electronic cigarette inhalation on the vasculature and the conducting airways. Cardiovascular Toxicology. 19 (5), 441-450 (2019).
  46. Cho, E., et al. Airway oscillometry detects spirometric-silent episodes of acute cellular rejection. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 201 (12), 1536-1544 (2020).
  47. Sugiyama, A., et al. Characteristics of inspiratory and expiratory reactance in interstitial lung disease. Respiratory Medicine. 107 (6), 875-882 (2013).
  48. Mori, K., et al. Respiratory mechanics measured by forced oscillation technique in combined pulmonary fibrosis and emphysema. Respiratory Physiology & Neurobiology. 185 (2), 235-240 (2013).
  49. Mori, Y., et al. Respiratory reactance in forced oscillation technique reflects disease stage and predicts lung physiology deterioration in idiopathic pulmonary fibrosis. Respiratory Physiology and Neurobiology. 275, 103386(2020).
  50. Usmani, O. S. Calling time on spirometry: unlocking the silent zone in acute rejection after lung transplantation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 201 (12), 1468-1470 (2020).
  51. Calverley, P. M. A., Farré, R. Oscillometry: old physiology with a bright future. European Respiratory Journal. 56 (3), 2001815(2020).
  52. Radics, B. L., et al. Effect of nasal airway nonlinearities on oscillometric resistance measurements in infants. Journal of Applied Physiology. 129 (3), 591-598 (2020).
  53. Toronto General Pulmonary Function Laboratory. Toronto General Pulmonary Function Laboratory Policies and Procedures Manual. , (2022).
  54. Graham, B. L., et al. Standardization of Spirometry 2019 Update. American Journal of Respiratory and Critica Care Medicine. 200, 70-88 (2019).
  55. Coates, A. L., et al. ERS technical standard on bronchial challenge testing: general considerations and performance of methacholine challenge tests. European Respiratory Journal. 49, 1601526(2017).
  56. Oostveen, E., et al. Respiratory impedance in healthy subjects: baseline values and bronchodilator response. European Respiratory Journal. 42 (6), 1513-1523 (2013).
  57. Brown, N. J., et al. Reference equations for respiratory system resistance and reactance in adults. Respiratory Physiology and Neurobiology. 172 (3), 162-168 (2010).
  58. Nowowiejska, B., et al. Transient reference values for impulse oscillometry for children aged 3-18 years. Pediatric Pulmonology. 43 (12), 1193-1197 (2008).

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Badanie funkcji p ucmechanika p ucoddychanie spokojnema e drogi oddechowestandardowa procedura operacyjnakontrola jako ciodpowied na bronchodylatatorEuropejskie Towarzystwo ds Bada nad Chorobami P uc

Powiązane artykuły