Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Izolacja mitochondriów z mięśni szkieletowych myszy do testów respirometrycznych

5.8K wyświetleń

DOI:

10.3791/63336

10 lutego 2022

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj opisujemy szczegółową metodę izolacji mitochondriów z mięśni szkieletowych myszy i późniejszą analizę oddychania za pomocą wskaźnika zużycia tlenu (OCR) za pomocą testów respirometrycznych opartych na mikropłytkach. Rurociąg ten można zastosować do badania wpływu wielu interwencji środowiskowych lub genetycznych na metabolizm mitochondriów.

Streszczenie

Większość energii komórki jest uzyskiwana poprzez degradację glukozy, kwasów tłuszczowych i aminokwasów różnymi szlakami, które zbiegają się w mitochondrialnym systemie fosforylacji oksydacyjnej (OXPHOS), który jest regulowany w odpowiedzi na zapotrzebowanie komórki. Cząsteczka lipidu Koenzym Q (CoQ) jest niezbędna w tym procesie, przenosząc elektrony do kompleksu III w łańcuchu transportu elektronów (ETC) poprzez ciągłe cykle utleniania/redukcji. Stan mitochondriów i ostatecznie zdrowie komórek można ocenić, mierząc zużycie tlenu przez ETC za pomocą testów respirometrycznych. Badania te są zwykle wykonywane w ustalonych lub pierwotnych liniach komórkowych, które były hodowane przez kilka dni. W obu przypadkach uzyskane parametry oddychania mogły odbiegać od normalnych warunków fizjologicznych w danym narządzie lub tkance.

Dodatkowo, wewnętrzne cechy hodowanych pojedynczych włókien izolowanych z mięśni szkieletowych utrudniają tego typu analizę. W pracy przedstawiono zaktualizowany i szczegółowy protokół analizy oddychania w świeżo wyizolowanych mitochondriach z mięśni szkieletowych myszy. Dostarczamy również rozwiązania potencjalnych problemów, które mogą pojawić się na każdym etapie procesu. Przedstawiona tutaj metoda może być zastosowana do porównania wskaźników zużycia tlenu w różnych transgenicznych modelach myszy i zbadania odpowiedzi mitochondriów na leczenie farmakologiczne lub inne czynniki, takie jak starzenie się lub płeć. Jest to realna metoda odpowiedzi na kluczowe pytania dotyczące bioenergetyki mitochondrialnej, metabolizmu i regulacji.

Wprowadzenie

Mitochondria są głównymi organellami metabolicznymi w komórce1. Te wyspecjalizowane organelle otoczone błoną wykorzystują cząsteczki składników odżywczych do wytwarzania energii w postaci adenozynotrójfosforanu (ATP) firmy OXPHOS. Proces ten opiera się na przenoszeniu elektronów z cząsteczek donorowych w serii reakcji redoks w klasie ETC2. CoQ jest jedynym lipidem aktywnym redoks, który jest endogennie wytwarzany we wszystkich błonach komórkowych i krążących lipoproteinach, który wykazuje funkcję przeciwutleniającą3. Jest niezbędnym składnikiem ETC, przenoszącym elektrony z zależnego od NADH kompleksu I....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Hodowla myszy i pobieranie tkanek zostały przeprowadzone przy użyciu protokołów zatwierdzonych przez Komitet Etyki Universidad Pablo de Olavide (Sewilla, Hiszpania; protokoły 24/04/2018/056 i 12/03/2021/033) zgodnie z hiszpańskim dekretem królewskim 53/2013, dyrektywą europejską 2010/63/UE i innymi odpowiednimi wytycznymi.

1. Przygotowanie zapasów, i odczynników do testów oddechowych

  1. Przygotuj następujące roztwory podstawowe, które można przechowywać we wskazanej temperaturze przez miesiące. We wszystkich przypadkach należy stosować ultraczystyH2O.
    1. Rozpuścić tabletki soli fizjologicznej bu....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Protokół przedstawiony w niniejszej pracy umożliwia analizę oddychania mitochondrialnego in vivo poprzez izolację mitochondriów z mięśni szkieletowych myszy. Schemat metody przedstawiono na Rysunku 1. Po wycięciu mięśni szkieletowych z kończyn tylnych (Rysunek 2), tkanki są homogenizowane, a mitochondria oczyszczane w warunkach izotonicznych poprzez seryjne wirowanie. Czystość poszczególnych frakcji otrzymanych w procesie izolacji można analizować metod.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Wszystkie metody stosowane do badania oddychania mitochondrialnego mają swoje ograniczenia; Dlatego tak ważne jest, aby wybrać metodę, która najlepiej pasuje do konkretnego pytania eksperymentalnego. Praca ta zapewnia zaktualizowany i szczegółowy protokół izolacji mitochondriów od mięśni szkieletowych myszy w celu wykonania różnych testów oddechowych w celu zbadania funkcji mitochondriów. Rzeczywiście, badanie bioenergetyki mitochondriów w izolowanych mitochondriach przy użyciu technologii opartych na mikropłytkach jest .......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają żadnych konfliktów interesów, które mogliby ujawnić.

Podziękowania

Pragniemy podziękować Juanowi J. Tena za korzystanie z homogenizatora oraz obiektom CABD Proteomics and Animal Husbandry za wsparcie techniczne. Praca ta była wspierana przez hiszpańskie Ministerstwo Edukacji, Kultury i Sportu poprzez stypendium FPU16/03264 dla J.D.H.C., Association Française contre les Myopathies (AFM) poprzez grant stypendialny #22450 dla C.V.-G., grant instytucjonalny MDM-2016-0687 (Maria de Maeztu Excellence Unit, Departament Regulacji Genów i Morfogenezy w CABD) oraz BFU2017-83150-P dla J.J.C. Junta de Andalucía przyznała P18-RT-4572, Program Finansowania FEDER z Unii Europejskiej oraz hiszpańskie Ministerstwo Nauki, Innowacji i Uniwersytetów prz....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
ADPSigmaA5285Stan magazynowy przy -20 ° Przeciwciało C
AKTTechnologia sygnalizacji komórkowejC67E7Królik (gatunek gospodarza)
anty-koza HRPSigma401504Królik (gatunek gospodarza)
anty-mysiakomórkowa# 7076Koń (gatunek gospodarza)
Antymycyna ASigmaA8674Stado przy -20 ° C
anty-króliczasygnalizacja komórkowa# 7074Koza (gatunek gospodarza)
Kwas askorbinowySigmaA5960Zapas w RT
Bactin przeciwciałoSigmaMBS4-48085Koza (gatunek gospodarza)
Bio-Rad Zestaw do oznaczania białek Bio-Rad IIBio-Rad5000002Zawiera 5x odczynnik Bradford i BSA o znanym stężeniu dla krzywej wzorcowej
BSA, frakcja V, Calbiochem bez kwasów tłuszczowych126575zapas w 4 stopniach; Rurka CC
Miltenyi Biotec130-093-237Fioletowa pokrywka
Przeciwciało CalnexinThermoFisherMA3-027Mysz (gatunek gospodarza)
D-mannitolSigmaM4125Zapas w RT
EDTABDH280254DStan w 4 & stopni; C
EGTASigmaE-4378Stan magazynowy w RT
FCCPSigmaC2920Stan magazynowy -20 ° C
gentleMACS DysocjatorMiltenyi Biotec130-093-235Homogenizator
HEPESSigmaH3375Zapas w RT
Przeciwciało HSP70Proteintech10995-1-APKrólik (gatunek gospodarza)
Przeciwciało LDH-ASanta Cruz BiotechnologySC27230Koza (gatunek gospodarza)
Chlorek magnezuChemCruzsc-255260AMagazyn w RT
Kwas jabłkowySigmaP1645Zapas w RT
Spektrofotometr mikropłytkowyBMG LABTECH GmbHPOLARstar OMEGA S/N 415-0292Zapas w RT
Milli-Q wodaSystem MilliporeF7HA17757AUltraczysta woda
Przeciwciało mtTFASanta Cruz BiotechnologySC23588Koza (gatunek gospodarza)
Na+/K+-ATPaza i alfa; 1 przeciwciałoNovus BiologicalsNB300-14755Mysz (gatunek gospodarza)
OligomycynaSigmaO4876Stado przy -20 ° C
Palmitoilo-L-karnitynaSigmaP1645Zapas przy -20 ° C
PBS tabletkiSigmaP4417-100TAB1x zapas w RT
Diwodorofosforan potasuChemCruzsc-203211Zapas w RT
Wodorotlenek potasuSigma60377Zapas w RT
Kwas pirogronowySigma107360Zapas w 4 ° C
RotenoneSigmaR8875Stan magazynowy przy -20 ° C
Analizator strumienia mitochondrialnego Seahorse XF24Agilent Technologies420179Model XFe24
Seahorse XFe24 FluxPak miniAgilent Technologies102342-100Zestaw zawiera wkłady, mikropłytki i roztwór kalibru
BursztynianSigmaS7626Zapas w RT
SacharozaSigmaS9378Zapas przeciwciała RT
TIMM23Abcamab230253Królik (gatunek żywiciela)
TMPDSigmaT7394Stado przy -20 ° C
Przeciwciało TOMM20Abcamab56783Mysz (gatunek gospodarza)
Przeciwciało VDACAbcamab15895Królik (gatunek gospodarza)
sygnalizacja HRP HRP

Bibliografia

  1. Spinelli, J. B., Haigis, M. C. The multifaceted contributions of mitochondria to cellular metabolism. Nature Cell Biology. 20 (7), 745-754 (2018).
  2. Alberts, B., et al. The mitochondrion. Molecular Biology of the Cell, 4th edition. , Garland Science. New York. (2002).
  3. Turunen, M.....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Izolacja mitochondri wzu ycie tlenua cuch transportu elektron woddychanie mitochondrialnecentryfugacja seryjnakwantyfikacja bia ekelektroforeza Blue Nativemarkery b on mitochondrialnych