Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Oszczędna technika obrazowania przepływu kapilarnego przez trójwymiarowe polimerowe proszki drukarskie

1.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63494

⸱

4 października 2022

 ,  ,  ,  , 
1Materials and Metallurgical Engineering Department, South Dakota School of Mines & Technology, 2HP Labs, HP Inc, 3Chemical and Biological Engineering Department, South Dakota School of Mines & Technology, 4School of Chemical, Biological, and Environmental Engineering, Oregon State University

W tym artykule

Podsumowanie

Proponowana technika zapewni nowatorskie, wydajne, oszczędne i nieinwazyjne podejście do obrazowania przepływu płynów przez upakowane złoże proszkowe, co zapewni wysoką rozdzielczość przestrzenną i czasową.

Streszczenie

Rozwój nowatorskich technik obrazowania transportu molekularnego i koloidalnego, w tym nanocząstek, jest obszarem aktywnych badań w badaniach mikroprzepływowych i milifluidycznych. Wraz z pojawieniem się druku trójwymiarowego (3D) pojawiła się nowa dziedzina materiałów, zwiększając tym samym zapotrzebowanie na nowatorskie polimery. W szczególności proszki polimerowe, o średnich rozmiarach cząstek rzędu mikrona, cieszą się rosnącym zainteresowaniem ze strony środowisk akademickich i przemysłowych. Kontrolowanie przestrajania materiału w mezoskopowych i mikroskopijnych skalach długości stwarza możliwości opracowywania innowacyjnych materiałów, takich jak materiały gradientowe. W ostatnim czasie rośnie zapotrzebowanie na proszki polimerowe o rozmiarach mikronów, ponieważ rozwijają się wyraźne zastosowania tego materiału. Druk trójwymiarowy zapewnia proces o wysokiej przepustowości z bezpośrednim połączeniem z nowymi zastosowaniami, napędzając badania nad interakcjami fizykochemicznymi i transportowymi w mezoskali. Protokół omówiony w tym artykule zapewnia nieinwazyjną technikę obrazowania przepływu płynów w upakowanych złożach proszku, zapewniając wysoką rozdzielczość czasową i przestrzenną przy jednoczesnym wykorzystaniu technologii mobilnej, która jest łatwo dostępna z urządzeń mobilnych, takich jak smartfony. Dzięki wykorzystaniu zwykłego urządzenia mobilnego wyeliminowano koszty obrazowania, które normalnie byłyby związane z mikroskopem optycznym, co skutkuje oszczędnym podejściem naukowym. Proponowany protokół z powodzeniem scharakteryzował różnorodne kombinacje płynów i proszków, tworząc platformę diagnostyczną do szybkiego obrazowania i identyfikacji optymalnej kombinacji płynu i proszku.

Wprowadzenie

Natryskiwanie spoiwa na bazie atramentu do mediów proszkowych stanowi ważną technologię w produkcji addytywnej (druk 3D). Proces natryskiwania spoiwa rozpoczyna się od osadzenia płynów funkcjonalnych w mediach proszkowych za pomocą skanującego procesu druku atramentowego. W szczególności atramentowa głowica drukująca przesuwa się po powierzchni proszku, osadzając płynny środek wiążący na powierzchni proszku, a tym samym tworząc stałą część w sposób warstwa po warstwie1. Technologie natryskiwania spoiwa na bazie atramentów zazwyczaj obejmują piasek, proszki metali i proszki polimerowe. Jednak, aby rozszerzyć przestrzeń materiałów w natryskiwaniu spoiwa, wymagane jest podstawowe podejście do badania interakcji płyn-proszek i proszek-proszek, trybologii, gęstości upakowania proszku i agregacji cząstek. W szczególności w przypadku interakcji płyn-proszek istnieje krytyczna potrzeba możliwości obrazowania przepływu płynu przez złoża proszku w czasie rzeczywistym. Zapowiada się, że będzie to potężne narzędzie dla badaczy, które można wykorzystać jako technikę charakterystyki i potencjalnie jako metodę przesiewową dla różnych kombinacji płynów i proszków2,3,4, a także bardziej złożone systemy, takie jak systemy druku 3D z betonu, które wykorzystują metody oparte na złożu cząstek.

Rozwój nowatorskich technik obrazowania transportu molekularnego i koloidalnego, w tym nanocząstek, jest aktywnym obszarem badań w badaniach mikroprzepływowych i milifluidowych. Sondowanie oddziaływań międzycząsteczkowych za pomocą technik obrazowania może być trudne, ponieważ wykonano niewiele pracy w celu zbadania tego typu oddziaływań w warunkach nienasyconego i niestabilnego przepływu płynu. Wiele badań, które są opisywane w literaturze, koncentrowało się na nasyconych, wstępnie zwilżonych, porowatych mediach, takich jak szklane koraliki5,6,7,8,9,10,11,12 i soils13,14,15,16,17,18. Ta technika zapewnia nieinwazyjne podejście, co skutkuje wysoką rozdzielczością czasową i przestrzenną2,3,4,19. Co więcej, opracowana technika zapewnia nowatorską metodę charakterystyki i ilościowego określania transportu cząstek w skali nano i mikronowej w różnych porowatych ośrodkach, koncentrując się na proszkach polimerowych.

Proponowana technika wykorzystuje urządzenie mobilne do rejestrowania nienasyconego, niestabilnego transportu płynów przez porowate media polimerowe o wymiarach cząstek, które są reprezentatywne dla proszków używanych w systemach druku 3D, które wykorzystują technologie fuzji fluidycznej w łożu proszkowym. Technika ta jest korzystna, ponieważ komory przepływowe są opłacalne, wielokrotnego użytku, małe i łatwe w obsłudze, co ilustruje dominujące aspekty oszczędnej nauki. Możliwość wdrożenia tych prostych eksperymentów do badania terenowego jest bardzo prosta, eliminując komplikacje, koszty i czas, które są wymagane w mikroskopii optycznej. Biorąc pod uwagę łatwość tworzenia konfiguracji, dostęp do szybkich wyników i minimalną liczbę wymagań dotyczących próbek, technika ta jest optymalną platformą do diagnostycznych badań przesiewowych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie mikrofluidycznej celi przepływowej

UWAGA: W tym protokole zostanie wykorzystana komercyjna mikrofluidyczna komora przepływowa. Zastosowanie komercyjnego produktu zaprojektowanego z myślą o przenikaniu światła z mikroskopu optycznego pozwoli zminimalizować problemy związane z oświetleniem poletka w polu jasnym.

  1. Rozpocznij przygotowywanie mikrofluidycznej celi przepływowej, zakrywając wylot parafilmem w celu uszczelnienia jednego końca kanału, aby pustą celę przepływową można było wypełnić proszkiem polimerowym. Przed rozpoczęciem eksperymentu upewnij się, że kanał mikrofluidyczny jest czysty i suchy.
    1. Przyklej papierową linijkę metryczną bezpośrednio pod kanałem przepływowym.
    2. Zważ celę mikrofluidyczną z przymocowanym parafilmem i linijką. Masa celi przepływowej stanowi masę niezapakowanej celi przepływowej (mu).

2. Pakowanie proszku do kanału

  1. Podczas pakowania proszku do przenoszenia substancji należy użyć plastikowej pipety. Należy pamiętać, że cząsteczki mogą przylegać do zewnętrznej strony końcówki pipety w wyniku ładowania tryboelektrycznego.
    1. Podczas wprowadzania proszku do kanału należy co najmniej pięć razy opukać celę przepływową, aby zagęścić proszek. Kontynuuj pakowanie, aż proszek osiągnie początek otworu kanału przepływowego.
      UWAGA: Opukiwanie zagęszcza proszek w kanale w celu zapewnienia powtarzalności narzędzia diagnostycznego. W zależności od zastosowania, stopień zagęszczenia uzyskany w ten sposób może być wyższy, niższy lub równoważny z zagęszczeniem obserwowanym w konkretnej aplikacji. W przypadku problemów z powtarzalnością opukiwania lub pakowania proszku w danej aplikacji, należy rozważyć przeprowadzenie procedury ASTM D7481-1820.
    2. Usuń proszek znajdujący się na zewnętrznej powierzchni celi przepływowej za pomocą chusteczki nasączonej alkoholem.
      UWAGA: Niektóre rodzaje cząsteczek mogą być hydrofobowe, dlatego woda może nie usuwać ich skutecznie.
  2. Po zapakowaniu proszków należy wizualnie sprawdzić, czy w celi przepływowej nie ma luźno upakowanego proszku. Jeśli proszek w celi przepływowej wydaje się luźno upakowany (Rycina 1), opukaj celę przepływową jeszcze pięć razy. Jeśli upakowanie proszku wydaje się spójne i zwarte, zważ celę przepływową, aby zmierzyć masę proszku polimerowego (mp - mu; patrz Równanie 1).
    1. Oblicz gęstość nasypową (ρ), wykorzystując różnicę między masą celi przepływowej nieupakowanej (mu) a upakowanej (mp) i dzieląc ją przez objętość celi przepływowej. Objętość celi przepływowej jest znana [długość (l): 50 mm, szerokość (w): 5 mm, głębokość kanału (h): 0.8 mm].
      Wzór na obliczanie gęstości, \( \rho = \frac{m_p - m_u}{hw\ell} \), koncepcja fizyczna.     Równ. 1
    2. Potwierdź, że gęstość upakowania mieści się w typowym zakresie od 0.45 g/mL do 0.55 g/mL dla proszków polimerowych2,3,4,21. Pozostaw cele przepływowe w dygestorium do czasu zakończenia kroków 3 i 4.
      OSTRZEŻENIE: Cząsteczki o średnicy mniejszej niż 10 µm mogą wnikać do płuc i potencjalnie przedostawać się do krwiobiegu, co może powodować problemy zdrowotne związane z układem oddechowym i sercowo-naczyniowym. Proszki polimerowe użyte w tym eksperymencie mają średnicę cząstek około 50 μm. W związku z tym wdychanie tych cząstek wiąże się z mniejszym ryzykiem problemów zdrowotnych, jednak nawet w wąskich rozkładach wielkości cząstek występują mniejsze frakcje. W celu zapewnienia maksymalnego bezpieczeństwa przygotowanie celi przepływowej należy przeprowadzić w dygestorium.

3. Przygotowanie rozpuszczalnika

  1. Przygotować 75% wagowy roztwór etanolu w wodzie. Należy pamiętać, że w dalszej części niniejszego opracowania rozpuszczalnik będzie określany jako ciecz.
    ​OSTRZEŻENIE: Należy upewnić się, że zlewka użyta do przygotowania roztworu jest wolna od wszelkich środków powierzchniowo czynnych, ponieważ mogą one wpłynąć na wyniki.

4. Przygotowanie stołu do światła białego

  1. Aby zapobiec prześwietleniu detektora (kamery), przykryj stół świetlny nieprzezroczystym materiałem, np. wydrukowaną w technologii 3D osłoną z czarnego filamentu polikwasu mlekowego (PLA) (Supplementary Figure 1). Upewnij się, że materiał posiada otwór o rozmiarach mikrokanału (5 mm x 55 mm), aby umożliwić oświetlenie proszku.
    UWAGA: Zbyt silne światło spowoduje, że ekran lub monitor kamery będzie biały, a mikrokanał nie będzie widoczny. W konsekwencji detektor nie będzie w stanie ustawić ostrości obiektywu na mikrokanale.
  2. Aby upewnić się, że kamera w urządzeniu mobilnym może zarejestrować kontrast między mokrym a suchym proszkiem, używaj stołu świetlnego przy niskim lub średnim natężeniu światła.
    UWAGA: Wysokie natężenie światła odpowiada wartości 100%. Pozostałe dwa ustawienia są relatywne względem wysokiego natężenia; ustawienie niskiego natężenia światła wynosi ~30%, a średniego natężenia światła ~65%.
  3. Ustaw kamerę w urządzeniu mobilnym bezpośrednio nad stołem świetlnym. Potwierdź, że kamera znajduje się prostopadle do górnej powierzchni stołu świetlnego (Figure 2).
  4. Zorientuj kamerę w urządzeniu mobilnym tak, aby długa oś urządzenia mobilnego była wyrównana z najdłuższą osią celi przepływowej.

5. Rozpoczęcie eksperymentu

  1. Umieść celę przepływową na stole świetlnym i ustaw ostrość kamery na urządzeniu mobilnym w kanale przepływowym.
    UWAGA: Aby uzyskać optymalne wyniki, przestrzeń do nagrywania o mniejszym natężeniu światła (zredukowane oświetlenie górne) zazwyczaj zapewnia lepszą rozdzielczość obrazu. Jeśli ciemna przestrzeń nie jest dostępna, zminimalizowanie zmian w oświetleniu górnym (włączanie, wyłączanie lub ściemnianie świateł) podczas nagrywania powinno poprawić sygnały graficzne i zminimalizować niepożądane zakłócenia w eksperymencie.
  2. Po ustawieniu ostrości kamery na urządzeniu mobilnym, naciśnij przycisk nagrywania. Za pomocą pipety dodaj 125 μL cieczy do otwartego wlotu mikrokanału.
  3. Nagrywaj przepływ przez 2 min lub do momentu, aż cały proszek zostanie widocznie zwilżony.

6. Analiza danych

  1. Przenieś plik wideo z urządzenia mobilnego na komputer, aby zapewnić łatwy dostęp. Należy pamiętać, że filmy trwające powyżej 2 min mogą obecnie nie ładować się w oprogramowaniu ze względu na nadmiernie duży rozmiar pliku.
  2. Pobierz Tracker, bezpłatne oprogramowanie ze strony Physlets22. Program ten umożliwia śledzenie pozycji, prędkości i przyspieszenia w następujących formatach plików wideo: .mov, .avi, .mp4, .flv, .wmv itp. W celu wykonania kolejnych kroków należy zapoznać się z Plikiem uzupełniającym.
    UWAGA: Użytkownicy systemu Mac powinni zainstalować najnowszą wersję oprogramowania, aby działało ono prawidłowo. Ponadto użytkownicy systemu Mac mogą wymagać silnika wideo (Xuggle), animowanych plików GIF (.gif) lub sekwencji obrazów składających się z jednego lub więcej obrazów cyfrowych (.jpg, .png lub wklejonych z schowka).
  3. Po zainstalowaniu programu otwórz oprogramowanie Tracker. Z menu File wybierz Open File, aby załadować na pulpit komputera plik wideo przeniesiony w kroku 6.1.
  4. Kliknij ikonę Clip Settings, która wygląda jak taśma filmowa, aby zdefiniować Starting Frame (klatkę początkową) oraz Step Size (wielkość kroku).
    UWAGA: Najechanie myszą na ikonę pozwoli zidentyfikować jej funkcję.
    1. Zdefiniuj Starting Frame. Starting Frame to klatka, w której zaobserwowano pierwszy kontrast (kontrast między proszkiem mokrym a suchym).
    2. Ustaw Step Size. Step Size odnosi się do wielkości kroku klatek, które oprogramowanie będzie analizować. Z poprzednich eksperymentów wynika, że optymalna wartość Step Size wynosi 10.
  5. Kliknij Calibration Tool (ikonę z niebieską linijką) znajdującą się po prawej stronie przycisku Clip Settings. Z opcji New wybierz Calibration Stick.
  6. Aby powiększyć widok linijki w wideo, kliknij prawym przyciskiem myszy w obszarze do powiększenia i wybierz z listy Zoom in. Po odpowiednim powiększeniu określ początek i koniec odcinka 1 mm na linijce przyklejonej do mikrokanału, a następnie wpisz 1 mm, aby zdefiniować odległość.
  7. Kliknij Coordinate Axis Tool (fioletową ikonę) znajdującą się po prawej stronie narzędzia Calibration Tool. Ustaw Origin (punkt początkowy) dla osi x i y, korzystając z klatki początkowej podczas wykonywania tego kroku.
  8. Aby zdefiniować początkowy punkt analizy, utwórz Point Mass. Kliknij Create, a następnie wybierz Point Mass. Użyj kombinacji Shift + Control, aby zmienić rozmiar prostokąta. Punktem początkowym jest miejsce połączenia wlotu z kanałem.
    UWAGA: Prostokąt wskazuje domenę zdefiniowaną przez użytkownika, którą oprogramowanie będzie skanować w celu znalezienia kontrastu między proszkiem mokrym a suchym. Granica pozwala użytkownikowi określić obszar, w którym zostanie zaobserwowany punkt początkowy.
    1. Kliknij kilka razy Search Next, aby zweryfikować, czy oprogramowanie analizuje prawidłowy obszar. Jeśli program działa poprawnie, kliknij Search i poczekaj, aż analiza wideo zostanie zakończona. Jeśli oprogramowanie nie będzie w stanie automatycznie znaleźć pasującej intensywności obrazu z poprzedniej klatki w klatce bieżącej, zatrzyma się i będzie oczekiwać na ponowne zdefiniowanie obszaru wyszukiwania przez użytkownika.
      UWAGA: W celu zapewnienia powtarzalności i możliwości porównania różnych wyników eksperymentalnych, dla każdej próbki wybierz najszybszy lub najwolniejszy punkt frontu przepływu cieczy (obszar kontrastu między proszkiem zwilżonym a suchym).
    2. Jeśli w danych wykresowych aktualizowanych na żywo po prawej stronie ekranu Trackera pojawi się błąd analizy, kliknij raz w Data Point (punkt danych) w kroku poprzedzającym błędny punkt. Na głównym ekranie zmień położenie czerwonego prostokątnego obszaru wyszukiwania, aby przeszukać interesujący region, i powtórz krok 6.8.1.
      UWAGA: W przypadku wystąpienia błędu kliknij prawym przyciskiem myszy na nieprawidłowy punkt danych i odznacz go, aby wykluczyć go z dalszej analizy.
  9. Po zakończeniu analizy skopiuj i wklej wyniki do arkusza kalkulacyjnego. Wyniki zapisane w arkuszu obejmują dane dotyczące odległości i czasu.
  10. Przedstaw skopiowane dane w arkuszu w formie wykresu odległości transportu cieczy przez złoże proszkowe w funkcji czasu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W sekcji dotyczącej analizy danych, dane dla obrazów w technice time-lapse w Rysunek 3 Przedstawiono proces infiltracji proszku poliwęglanu (PC) 75% wag. roztworem etanolu. W celu poprawy jakości obrazu na potrzeby niniejszej publikacji do roztworu dodano fluoresceinę. Na obrazach z lapse-time proces rozdzielony w czasie rozpoczyna się w momencie dodania cieczy do wlotu. Czas, t, rozpoczyna się w momencie, gdy ciecz zaczyna wnikać do kanału. Seria obrazów przedstawia progresję ciecz...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Dostarczony protokół jest w dużym stopniu zależny od właściwości materiałowych wybranych cząstek. Właściwości materiału wpływające na przepływ obejmują rozkład wielkości cząstek 2,3,4,5,11,21, chropowatość powierzchni cząstek11, właściwości chemiczne na powierzchni cząstek<...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
µ-Slide I Lueribidi80191Mikroprzepływowa
zlewkaprzepływowa Southern LabwareBG1000-800Szkło
CALIBRE 301-58 LT Naturalna żywica poliwęglanowaTRINSEO LLCCALIBRETM 301-58 LTNaturalna żywica poliwęglanowa
EtanolSigma Aldrich1.00983Wyciąg rozpuszczalnikowy
KewauneeOkapy wyciągowe Supreme Air LVużywane z 92 FPM przy 18-calowym otworze
iPhone 7 plusAppleCamera
Nieprzezroczysty materiałRysunek CAD znajduje się w pliku uzupełniającym
ORGASOL  2002 ES 6 NAT 3ARKEMAA12135Pipeta do proszków poliamidowych
VWR10754-268Jednorazowa pipeta
transferowaPipetaGlobe Scientific Inc.3301-200Pipeta, która może pomieścić 125 &mikro; L płynnego
polistyrenuAdvanced Laser Materials, LLC.PS200Polistyren do spiekania
TrackerNarzędzie do analizy i modelowania wideo
VariQuest 100 White Light Model 3-3700FOTODYNE&nbsp; 3-3700
Wodajasna Woda destylowana
drukowany 3D biała

Bibliografia

  1. Redwood, B., Schoffer, F., Garret, B. The 3D Printing Handbook. , 3D HUBS. Amsterdam, NL. (2018).
  2. Chaffins, S., Holden, A., Donovan, K. J., Hinch, G. Three dimensional printing, Patent ID: 20210087418. , Available from: https://uspto.report/patent/app/20210087418 (2021).
  3. Emamjomeh, A., et al. Three dimensional printing, Patent ID: 20210095152. , Available from: https://uspto.report/patent/app/2021009515.2 (2021).
  4. Chaffins, S., Holden, A., Donovan, K. J., Midrez, N., Hinch, G. Three dimensional printing, Patent ID: 20210107216. , Available from: https://uspto.report/patent/app/20210107216#C00011 (2021).
  5. Petosa, A. R., Brennan, S. J., Rajput, F., Tufenkji, N. Transport of two metal oxide nanoparticles in saturated granular porous media: Role of water chemistry and particle coating. Water Research. 46 (4), 1273-1285 (2012).
  6. Giordano, S. Effective medium theory for dispersions of dielectric ellipsoids. Journal of Electrostatics. 58 (1-2), 59-76 (2003).
  7. Toloni, I., Lehmann, F., Ackerer, P. Modeling the effects of water velocity on TiO2 nanoparticles transport in saturated porous media. Journal of Contaminant Hydrology. 171, 42-48 (2014).
  8. Dang-Vu, T., Hupka, J. Characterization of porous materials by capillary rise method. Physicochemical Problems of Mineral Processing. 39, 47-65 (2005).
  9. Huang, W. E., Smith, C. C., Lerner, D. N., Thornton, S. F., Oram, A. Physical modelling of solute transport in porous media: evaluation of an imaging technique using UV excited fluorescent dye. Water Research. 36 (7), 1843-1853 (2002).
  10. Zhao, J., Li, H., Cheng, G., Cai, Y. On predicting the effective elastic properties of polymer nanocomposites by novel numerical implementation of asymptotic homogenization method. Composite Structures. 135, 297-305 (2016).
  11. Seymour, M. B., Chen, G., Su, C., Li, Y. Transport and retention of colloids in porous media: Does shape really matter. Environmental Science and Technology. 47 (15), 8391-8398 (2013).
  12. Ochiai, N., Kraft, E. L., Selker, J. S. Methods for colloid transport visualization in pore networks. Water Resources Research. 42 (12), (2006).
  13. Rottman, J., Sierra-Alvarez, R., Shadman, F. Real-time monitoring of nanoparticle retention in porous media. Environmental Chemistry Letters. 11 (1), 71-76 (2013).
  14. Xing, Y., Chen, X., Chen, X., Zhuang, J. Colloid-mediated transport of pharmaceutical and personal care products through porous media. Scientific Reports. 6 (1), 1-10 (2016).
  15. Dathe, A., et al. Functional models for colloid retention in porous media at the triple line. Environmental Science and Pollution Research. 21 (15), 9067-9080 (2014).
  16. Zhang, T., et al. Investigation of nanoparticle adsorption during transport in porous media. SPE Journal. 20 (4), 667-677 (2015).
  17. Zhang, Q., Karadimitriou, N. K., Hassanizadeh, S. M., Kleingeld, P. J., Imhof, A. Study of colloids transport during two-phase flow using a novel polydimethylsiloxane micro-model. Journal of Colloid and Interface Science. 401, 141-147 (2013).
  18. Environmental Protection Agency. Health and environmental effects of particulate matter (PM). EPA. , Available from: https://www.epa.gov/pm-pollution/health-and-environmental-effects-particulate-matter-pm (2021).
  19. Bridge, J. W., Banwart, S. A., Heathwaite, A. L. Noninvasive quantitative measurement of colloid transport in mesoscale porous media using time lapse fluorescence imaging. Environmental Science & Technology. 40 (19), 5930-5936 (2006).
  20. ASTMInternational. Standard test methods for determining loose and tapped bulk densities of powders using a graduated cylinder. ASTMInternational. , (2018).
  21. Donovan, K. J. Microfluidic investigations of capillary flow and surface phenomena in porous polymeric media for 3D printing. , Oregon State University. (2019).
  22. Brown, D., et al. 34;Try Tracker Online." Tracker Video Analysis and Modeling Tool for Physics Education. , Available from: https://physlets.org/tracker/ (2022).
  23. Janssen, P. H. M., Depaifve, S., Neveu, A., Francqui, F., Dickhoff, B. H. J. Impact of powder properties on the rheological behavior of excipients. Pharmaceutics. 13 (8), 1198(2021).
  24. Boschini, F., Delaval, V., Traina, K., Vandewalle, N., Lumay, G. Linking flowability and granulometry of lactose powders. International Journal of Pharmaceutics. 494 (1), 312-320 (2015).
  25. Yablokova, G., et al. Rheological behavior of β-Ti and NiTi powders produced by atomization for SLM production of open porous orthopedic implants. Powder Technology. 283, 199-209 (2015).
  26. Lumay, G., Fiscina, J., Ludewig, F., Vandewalle, N. Influence of cohesive forces on the macroscopic properties of granular assemblies. AIP Conference Proceedings. 1542, 995(2013).
  27. Lumay, G., et al. Effect of relative air humidity on the flowability of lactose powders. Journal of Drug Delivery Science and Technology. 35, 207-212 (2016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Proszki polimerowedruk tr jwymiarowymikrofluidyczna komora przep ywowaobrazowanie transportu p yn wzag szczanie proszk wobrazowanie za pomoc urz dze mobilnychtransport nanocz steczekplatforma diagnostyczna
Oszczędna technika obrazowania przepływu kapilarnego przez trójwymiarowe polimerowe proszki drukarskie
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.