Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Analiza sygnalizacji lipidowej w fotoreceptorach Drosophila przy użyciu spektrometrii mas

1.8K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63516

⸱

7 marca 2022

 ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Rękopis prezentuje wszechstronne, solidne i czułe protokoły spektrometrii mas do identyfikacji i ilościowego określenia kilku klas lipidów z fotoreceptorów Drosophila.

Streszczenie

Aktywacja fosfolipazy Cβ (PLCβ) jest niezbędnym krokiem podczas transdukcji sensorycznej w fotoreceptorach Drosophila. Aktywność PLCβ powoduje hydrolizę błonowego lipidu fosfatydyloinozytolu 4,5 bisfosforanu [PI(4,5)P2], co ostatecznie prowadzi do aktywacji przejściowych kanałów potencjału receptorowego (TRP) i TRP (TRPL). Aktywność PLCβ prowadzi również do powstawania wielu gatunków lipidów, z których kilka zaproponowano jako odgrywające rolę w aktywacji TRP i TRPL. Ponadto zaproponowano kilka klas lipidów, które odgrywają kluczową rolę w organizowaniu biologii komórki fotoreceptorów w celu optymalizacji reakcji sygnałowych w celu optymalnej transdukcji czuciowej. Historycznie rzecz biorąc, odkrycia te były napędzane zdolnością do izolowania mutantów Drosophila dla enzymów, które kontrolują poziomy określonych lipidów i przeprowadzają analizę fizjologii fotoreceptorów u tych mutantów. Niedawno opracowano potężne metody spektrometrii mas do izolacji i analizy ilościowej lipidów o wysokiej czułości i swoistości. Są one szczególnie przydatne do stosowania u Drosophila, gdzie analiza lipidów jest teraz możliwa z fotoreceptorów bez konieczności znakowania radionuklidów. W tym artykule omówiono koncepcyjne i praktyczne rozważania dotyczące stosowania lipidowej spektrometrii mas do solidnej, czułej i dokładnej oceny ilościowej różnych lipidów sygnałowych w fotoreceptorach Drosophila. Wraz z istniejącymi metodami genetyki molekularnej i analizy fizjologicznej, takie lipidy prawdopodobnie zwiększą moc fotoreceptorów jako systemu modelowego dla odkryć w biologii.

Wprowadzenie

Fototransdukcja u Drosophila odbywa się za pośrednictwem kaskady PLCβ sprzężonej z białkiem G, co prowadzi do aktywacji kanałów aktywowanych światłem TRP i TRPL1. PLCβ hydrolizuje związany z błoną fosfolipid, bisfosforan 4,5 fosfatydyloinozytolu [PI(4,5)P2] i wytwarza diacyloglicerol (DAG) i trifosforan inozytolu 1,4,5 (IP3). DAG jest następnie fosforylowany przez kinazę DAG w celu wytworzenia kwasu fosfatydowego (PA). Następnie, poprzez szereg reakcji, które obejmują wytwarzanie półproduktów lipidowych, PI(4,5)P2 jest regenerowany2. Kilka składników tego cyklu PI(4,5)P2

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Hodowla much i przygotowanie chemikaliów

  1. Muchy tylne (Drosophila melanogaster) na standardowym pokarmie dla much w inkubatorze o wilgotności względnej 50% w temperaturze 25 °C bez wewnętrznego oświetlenia. Pokarm na muchy należy przygotować, dodając 80 g/l mąki kukurydzianej, 20 g/l D-glukozy, 40 g/l sacharozy, 8 g/l agaru, 15 g/l ekstraktu drożdżowego, 4 ml kwasu propionowego, 0,7 g/l TEGO (metaparahydroksybenzoesan) i 0,6 ml kwasu ortofosforowego, zgodnie z opisem w34 i są również dostępne w https:// bangalorefly.ncbs.res.in/drosophila-media-preparation. Wyhoduj jedną grupę much, po eklozjach, w chłodz....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Wyznaczanie liniowości pomiaru w MS. Liniowość to zdolność metody MS do dostarczania wyników bezpośrednio proporcjonalnych do stężenia analizowanego lipidu. Liniowość zależy od (a) wydajności jonizacji analizowanego lipidu oraz (b) zachowania jonizacji analizowanego lipidu przy różnych stężeniach, co zależy od zastosowanego źródła jonów. W jonizacji przez rozpylanie elektryczne (ESI), stosowanej w niniejszym badaniu, liniowość jest zachowana przy niższych stężeniach w zależności od (a) transportu jonów z.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Wiele linii dowodowych zbiega się w wielu rolach lipidów sygnałowych w regulacji organizacji i funkcji fotoreceptorów Drosophila. Oprócz dobrze zbadanej roli lipidów w regulacji fototransdukcji3, lipidy sygnalizacyjne są również zaangażowane w transport białek i organizację subkomórkową 23,30,39,40,41. Badania te były możliwe d.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Praca opisana w tym manuskrypcie była wspierana przez Departament Energii Atomowej, Rząd Indii (Numer identyfikacyjny projektu. RTI 4006), Departament Biotechnologii, Rząd Indii (BT/PR4833/MED/30/744/2012) oraz India Alliance Senior Fellowship (IA/S/14/2/501540) do PR. Dziękujemy Zakładowi Spektrometrii Mas NCBS, a w szczególności dr Dhananjay Shinde oraz członkom laboratorium PR za ich wkład w rozwój tych metod.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,1 N metanolowy HCLDo całkowitej izolacji lipidów
0,88% KClSigma AldrichP9541Do całkowitej izolacji lipidów
1,5 ml / 2ml LoBind Probówki EppendorfEppendorf,022431081/022431102Do całkowitej izolacji lipidów
2.3.18 16:0/18:1 Diether PEAvanti polarne lipidy999974Lipidowy wzorzec wewnętrzny 37
% czysty HClSigma Aldrich320331Do całkowitej izolacji lipidów
96-dołkowa płytkaTest całkowitego fosforanu organicznego
AcetonFisher Scientific32005Do sekcji
Molibdenian amonu Całkowity fosforanorganiczny Test
kwasuOgólny fosforan organiczny
Test Sonikatordo kąpieli
Kolumna BEH300 C18 [1,0 mm x 100 mm x 1,7 mm]Waters India Pvt. Ltd.186002352LC
Uchwyt ostrzaFine Scientific Tools10052-11Do preparacji
InkubatorTest całkowitego fosforanu organicznego
Łamliwe ostrzaFine Narzędzia naukowe10050-00Do rozwarstwień
Papier maślanyGE healthcare10347671Do rozwarstwień
C4, 300 A0, [1.7 μ m x1 mm x 100 mm] kolumnaWaters India Pvt. Ltd.Fiolki ze szkła w
kolorze bursztynowymMerck27083-U
d18:1/17:0)Lipidy polarne Avanti860517Wewnętrzny wzorzec lipidowy
d5-fosfatydyloinozytolu 3,5-bisfosforan [PI(3,5)P2]-16:0/16:0Lipidy polarne Avanti850172Wewnętrzny wzorzec lipidów
MikroskopypreparacyjneOlympusSZ51Do preparacji
Sucha kąpiel cieplna.
Eluent AHeksan: Alkohol izopropylowy: 100 mM wodny octan amonu (68:30:2), dla
LC Eluent BHeksan: Alkohol izopropylowy: 100 mM wodny octan amonu (70:20:10), do LC
Bibuła filtracyjnaIndica-HM274039Do rozwarstwiania
KolbyBorosilDo sekcji
MuchyNANARaghu Padinjat lab
Pokarm dla muchNANA NCBS lab kitchen, skład: mąka kukurydziana 80 g/L, D-glukoza 20 g/L, sacharoza 40 g/L, agar 8 g/L, ekstrakt drożdżowy 15 g/L, kwas propionowy 4 mL, TEGO (metapara hydroksybenzoesan) 0,7 g/L, kwas ortofosforowy 0,6 mL)
KleszczeFine Scientific Tools11254-20Do sekcji
dygestoriów
LejekBorosilDo rozwarstwiania
Lodowaty kwas octowyFisher ScientificA35-500Do derywatyzacji
Butelki szklane: przezroczysty i bursztynowy Docałkowitej izolacji lipidów
Odporne na wysokie temperatury szklane rurki bez fosforanów.Test całkowitego fosforanu organicznego
Probówki homogenizacyjne z kulkami tlenku cyrkonuDo całkowitej izolacji lipidów
HomogenizatorPrecellys
Nawilżany CO2 podłączony do muchówek
Inkubatory sterowane oświetleniemPanasonic SanyoMIR-553Dla muchy hodowla
Początkowa mieszaninametanol:chloroform (2:1), Do całkowitej izolacji lipidów
Chloroform klasy LC-MSSigma Aldrich650498Do całkowitej izolacji lipidów
Metanol klasy LC-MSSigma Aldrich34860Do całkowitej izolacji lipidów
Woda klasy LC-MSSigma Aldrich34877Do całkowitej izolacji lipidów
Lekki miernikInstrumenty HTCLX-103
Końcówki o niskiej retencjiEppendorf0030072006/72014/72022/72030Do całkowitej izolacji lipidów
Instrument LTQ Orbitrap XLThermo Fisher Scientific, Brema, Niemcy
Kwas lizofosfatydowy (LPA)- 13:0Lipidy polarne AvantiLM-1700Wewnętrzny wzorzec lipidowy
Kwas lizofosfatydowy (LPA)- 17:1Lipidy polarne AvantiLM 1701Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Lizofosfatydylocholina (LPC) -13:0Lipidy polarne AvantiLM-1600Lipidowy wzorzec wewnętrzny
lizofosfatydylocholina (LPC) -17:1Lipidy polarne Avanti855677Lipidy wewnętrzne
Lizofosfatydylocholina (LPC)- 19:0Lipidy polarne Avanti855776Lipidy wewnętrzne
Kwas nadchlorowy.Ogólny test fosforanu organicznego
Fosforan wzorcowy diwodorofosforanTest całkowitego fosforanu organicznego
Solanka buforowana fosforanami (PBS)NANASkład: 137mMNaCl, 2,7mM KCl, 10 mM Na2HPO4 i 1,8 mM KH2PO4, pH 7,4
Kwas fosfatydowy (PA)- 12:0/13:0Lipidy polarne Avanti, LM-1400  Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Kwas fosfatydowy (PA)-17:0/14:1Lipidy polarne AvantiLM-1404Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Kwas fosfatydowy (PA)-(17:0/17:0)Lipidy polarne Avanti830856Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Kwas fosfatydowy (PA)-16:0-D31/18:1Lipidy polarne Avanti860453Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Fosfatydylocholina (PC) -12:0/13:0Avanti polar lipidsLM-1000Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Fosfatydylocholina (PC)- 17:0/14:1Avanti polar lipidsLM-1004Lipidowy wzorzec wewnętrzny
fosfatydyloetanoloaminy (PE) - 17:0/14:1Lipidy polarne AvantiLM-110Lipidowy wzorzec wewnętrzny
Fosfatydyloinozytol (PI) - 17:0/14:1Lipidy polarne AvantiLM-1504Wewnętrzny wzorzec lipidów
4,5-bisfosforan fosfatydyloinozytolu [PI(4,5)P2)]-17:0/20:4Lipidy polarne AvantiLM-1904Wewnętrzny wzorzec lipidów
4-fosforan fosfatydyloinozytolu (PI4P) - 17:0/20:4Lipidy polarne AvantiLM-1901Wewnętrzny wzorzec lipidów
Zrobotyzowane źródło jonów nanoprzepływowychTriVersa NanoMate (Advion BioSciences, Ithaca, NY, USA)
Rotospin instrumentTarsons3090X
Podkładki silikonoweDo rozwarstwiania
rozpuszczalnik A0,1% kwas mrówkowy w wodzie, do
rozpuszczalnika LC B0,1% kwas mrówkowy w acetonitrylu, do
LC Wirówka
Termomikser
TMS-diazometanAcrosAC385330050Do derywatyzacji
Potrójny kwadrupolowy spektrometr masowyAB SciexQTRAP 6500
System UPLCWoda Acquity
Próżniowy koncentrator odśrodkowyScanvac,
Vortex
askorbinowego BZT 186004623 LC z wkładkami organiczna potasu stołowa maszyna Labogene

Bibliografia

  1. Hardie, R. C. C., Raghu, P. Visual transduction in Drosophila. Nature. 413 (6852), 186-193 (2001).
  2. Raghu, P., Yadav, S., Mallampati, N. B. N. Lipid signaling in Drosophila photoreceptors. Biochimica et Biophysica Acta. 1821 (8), 1154-1165 (2012).
  3. Hardie, R. C.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Fosfolipaza C betahydroliza PI(45)P2kanały TRPkanały TRPLkwantyfikacja lipidówgenetyka molekularnatransdukcja sensoryczna

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny