Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Odkrywanie ukrytej dynamiki naturalnych struktur fotonicznych za pomocą obrazowania holograficznego

2.2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63676

⸱

31 marca 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Institute of Physics, Photonics Center, University of Belgrade, 2Faculty of Mechanical Engineering, University of Belgrade, 3Institute of Chemistry, Technology and Metallurgy, University of Belgrade, 4School of Physics, University of Exeter, 5Department of Physics & Namur Institute of Structured Matter (NISM), University of Namur, 6Chemistry Department, Laboratory of Molecular Imaging and Photonics, KULeuven, 7Université de Mons

W tym artykule

Podsumowanie

Artykuł skupia się przede wszystkim na połączonej mocy metod optycznych (liniowych i nieliniowych) oraz holograficznych używanych do ujawniania zjawisk w nanoskali. Wyniki uzyskane z badań biofotonicznych i oscylacyjnych reakcji chemicznych są podane jako reprezentatywne przykłady, podkreślające zdolność holografii do ujawniania dynamiki w nanoskali.

Streszczenie

W tej metodzie wykorzystuje się potencjał optyki i holografii do odkrywania ukrytych szczegółów dynamicznej reakcji naturalnego systemu w nanoskali. W pierwszej części przedstawiono badania optyczne i holograficzne naturalnych struktur fotonicznych oraz warunki występowania efektu fotoforetycznego, czyli przemieszczenia lub odkształcenia nanostruktury na skutek gradientu termicznego wywołanego światłem, w nanoskali. Efekt ten ujawnia cyfrowa interferometria holograficzna w czasie rzeczywistym monitorująca deformację łusek pokrywających skrzydła owadów wywołaną temperaturą. Związek między geometrią a nanopofałdowaniem, który prowadzi do pojawienia się efektu fotoforetycznego, został eksperymentalnie wykazany i potwierdzony. W drugiej części pokazano, w jaki sposób holografia może być potencjalnie wykorzystana do odkrywania ukrytych szczegółów w układzie chemicznym o dynamice nieliniowej, takich jak zjawisko przejścia fazowego, które zachodzi w złożonej oscylacyjnej reakcji Briggsa-Rauschera (BR). Zaprezentowany potencjał holografii w nanoskali może otworzyć ogromne możliwości kontrolowania i kształtowania efektu fotoforetycznego i tworzenia wzorów dla różnych zastosowań, takich jak wychwytywanie cząstek i lewitacja, w tym ruch niespalonych węglowodorów w atmosferze i separacja różnych aerozoli, rozkład mikroplastiku i frakcjonowanie cząstek w ogóle oraz ocena temperatury i przewodności cieplnej mikronowych cząstek paliwa.

Wprowadzenie

Aby w pełni zrozumieć i dostrzec wszystkie unikalne zjawiska w nanoświecie, kluczowe jest zastosowanie technik, które są w stanie ujawnić wszystkie szczegóły dotyczące struktur i dynamiki w nanoskali. W związku z tym przedstawiono unikalne połączenie metod liniowych i nieliniowych w połączeniu z mocą holografii w celu ujawnienia dynamiki systemu w nanoskali.

Opisana technika holograficzna może być postrzegana jako metoda potrójnego nagrywania (rec to skrót od recording), ponieważ w danym momencie sygnał jest jednocześnie rejestrowany przez kamerę fotograficzną, kamerę termowizyjną i interferometr. Liniowa i nieliniowa spektroskopia optyczna oraz holografia to dobrze znane techniki, których podstawowe zasady są obszernie opisane w literaturze1,2.

Krótko mówiąc, interferometria holograficzna pozwala na porównanie czoła fal zarejestrowanych w różnych momentach w czasie, aby scharakteryzować dynamikę systemu. Wcześniej był używany do pomiaru dynamiki drgań3,4. Siła holografii jako najprostszej metody interferometrii opiera się na jej zdolności do wykrywania najmniejszych przemieszczeń w systemie. Po pierwsze, wykorzystaliśmy holografię, aby zaobserwować i ujawnić efekt fotoforetyczny 5 (tj. przemieszczenie deformacji nanostruktury spowodowane gradientem termicznym wywołanym światłem) w różnych strukturach biologicznych. Aby zapewnić wierne zaprezentowanie metody, reprezentatywne próbki zostały wybrane z pewnej liczby badanych próbek biologicznych6. Skrzydła motyla frytlarnego królowej Hiszpanii, Issoria lathonia (Linneusz, 1758; I. lathonia), zostały wykorzystane w ramach tego badania.

Po pomyślnym zademonstrowaniu występowania fotoforezy w nanoskali w tkankach biologicznych, podobny protokół został zastosowany do monitorowania procesu spontanicznego łamania symetrii7 spowodowanego przemianą fazową w oscylacyjnej reakcji chemicznej. W tej części badano przejście fazowe od niskiego stężenia jodku i jodu (zwanego stanem I) do wysokiego stężenia jodu i jodu z tworzeniem jodu w postaci stałej (zdefiniowanej jako stan II), które zachodzi w chemicznie nieliniowej reakcji BR8,9. Tutaj po raz pierwszy przedstawiliśmy podejście holograficzne, które pozwala na badanie takiej dynamiki przemiany fazowej i spontanicznego łamania symetrii w nanoskali zachodzącej w układach skondensowanych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Wstępna charakterystyka

  1. Przeprowadź pełną wstępną charakterystykę próbki.
    1. Wszystkie eksperymenty wykonaj na suchych okazach zakupionych z komercyjnego źródła. Próbki przechowuj w laboratorium, w suchym i ciemnym miejscu, w temperaturze pokojowej.
    2. Przed pomiarami holograficznymi przeprowadź pełną charakterystykę próbki za pomocą skaningowego mikroskopu elektronowego (SEM), liniowej spektroskopii optycznej oraz nieliniowej mikroskopii optycznej (NOM)10 (Rycina 1).
    3. Oprócz właściwości optycznych próbek zmierzonych technikami liniowymi, zbierz dodatkowe informacje przy użyciu wiązek laserowych o wyższej intensywności, które pozwalają na charakterystykę ich nieliniowych właściwości optycznych.
    4. Wykorzystaj odpowiadające im nieliniowe podatności optyczne do ilościowego określenia nieliniowej odpowiedzi optycznej, co stanowi podstawę technik nieliniowej optyki, takich jak nieniszcząca fluorescencja z wielofotonowym wzbudzeniem oraz generacja drugiej harmonicznej (SHG), które są stosowane do charakterystyki różnych próbek biologicznych.
    5. W celu zbadania nieliniowych zjawisk chemicznych występujących w oscylującej reakcji BR, przeprowadź badanie interferometrycznego monitorowania przejścia fazowego in situ ze stanu I do stanu II przy następujących stężeniach substratów: [CH2(COOH)2]0 = 0.0789 mol dm-3, [MnSO4]0 = 0.0075 mol dm-3, [HClO4]0 = 0.03 mol dm-3, [KIO3]0 = 0.0752 mol dm-3 oraz [H2O2]0 = 1.269 mol dm-3 (indeks 0 po nawiasie oznacza stężenie początkowe na początku procesu). Przyjmij całkowitą objętość użytej do reakcji BR równą 2.5 mL.
      UWAGA: Wartości stężeń użyte w tym przypadku są zgodne z wartościami z badania Pagnacco i wsp.8, lecz z objętością reakcji zmniejszoną dziesięciokrotnie.
  2. Przygotuj próbkę do eksperymentu.
    1. W tym eksperymencie wykorzystaj skrzydła motyla z rodzaju przędliki, I. lathonia. Połóż skrzydło na twardej powierzchni i wykonaj wycinek za pomocą wycinaka o średnicy 10 mm. Umieść próbkę w pojemniku na próbki, którym może być dowolny pojemnik z pokrywką.

Analiza w skali nano w mikroskopii; obraz SEM, 1 µm, szczegół nanostruktury, badanie wzoru powierzchni.
Rycina 1: Falisty przekrój poprzeczny łuski skrzydła motyla. Przekrój poprzeczny zarejestrowano za pomocą nieliniowego optycznego mikroskopu skanującego (A,B). Wykonano również obserwację SEM (C) skrzydła motyla z gatunku I. lathonia. Rycina ta została zmodyfikowana na podstawie źródła14. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

2. Układ eksperymentalny

  1. Układ holograficzny
    UWAGA: Pomiary interferometrii holograficznej przeprowadzono przy użyciu specjalnie zaprojektowanego układu optycznego (Rysunek 2).
    1. Ustaw temperaturę w laboratorium na 23 °C ± 0.2 °C. Włącz laser. Do obserwacji holograficznych należy użyć lasera (szczegóły podano w Tabeli materiałów) o długości fali wzbudzenia 532 nm.
    2. Sprawdź osiowanie elementów optycznych (Rysunek 2). Najpierw upewnij się, że układ został zbudowany zgodnie ze schematem na Rysunku 2.
    3. Precyzyjnie wyrównaj wiązkę lasera z lustrem wklęsłym M. Sprawdź i skoryguj pozycję optycznego rozszerzacza wiązki (L).
    4. Wyznacz część wiązki padającą na próbkę S i upewnij się, że tworzy ona wiązkę odbitą O. Sprawdź, czy pozostała część wiązki jest zbierana przez lustro sferyczne CM, służące do generowania wiązki odniesienia R. Sprawdź, czy detektor C znajduje się w strefie interferencji dwóch określonych wiązek.
      UWAGA: Jako detektora użyto czujnika CMOS (complementary metal oxide semiconductor).
    5. Skonfiguruj kamery zgodnie z instrukcjami do użytego modelu. Ustaw kamerę optyczną/fotograficzną do eksperymentu holograficznego, jak pokazano na Rysunku 2 (C to kamera; szczegóły podano w Tabeli materiałów). Ustaw drugą kamerę optyczną/fotograficzną do obserwacji widocznych zmian w reakcji BR oraz kamerę termowizyjną o rozdzielczości termicznej 50 mK i ogniskowej 13 mm nad stołem optycznym.
      UWAGA: Kamera użyta w eksperymencie holograficznym nie posiada obiektywu; światło pada bezpośrednio na matrycę.
  2. Przygotowanie próbki w układzie holograficznym.
    1. Przygotuj próbkę skrzydła zgodnie z krokiem 1.2.1. Umieść przygotowaną próbkę na okrągłym metalowym wsporniku o średnicy 15 mm. Wspornik posiada trzy otwory na śruby, do których przymocowany jest metalowy pierścień trzymający próbkę.
    2. Przymocuj pierścień do wspornika. Umieść zamocowaną próbkę w części uchwytu próbki znajdującej się na stole optycznym.
    3. Przygotuj próbkę do monitorowania reakcji chemicznej. Na stole optycznym, w wyznaczonym miejscu, umieść wspornik z płaską powierzchnią klejącą, na której zostanie ustawiona kuweta/naczynie.
    4. Przygotuj odczynnik służący do inicjacji reakcji zgodnie z krokiem 1.1.5. Wlej substraty do kuwety i wymieszaj je w kuwecie w następującej kolejności objętości i stężeń: 0.7 mL 0.2817 mol dm-3 CH2(COOH)2; 0.5 mL 0.0375 mol dm-3 MnSO4; 0.5 mL 0.15 mol dm-3 HClO4; 0.5 mL 0.376 mol dm-3 KIO3 oraz 0.3 mL 10.575 mol dm-3 H2O2.
    5. Upewnij się, że całkowita objętość w kuwecie wynosi 2.5 mL, i umieść ją na wsporniku w układzie.
    6. Jeśli to konieczne, skonfiguruj dodatkowe instrumenty. Do monitorowania efektu fotoforetycznego użyj dodatkowego lasera (szczegóły podano w Tabeli materiałów) do lokalnego grzania.

Schemat układu optycznego do spektroskopii, przedstawiający drogi wiązek do analizy emisji i wzbudzenia.
Rysunek 2: Układ holograficzny. Rysunek przedstawia rozmieszczenie poszczególnych komponentów w eksperymencie holograficznym. Skróty: L1 = laser o długości fali 532 nm, L = soczewka dwuwypukła, A = apertura, M = płaskie lustro służące do odchylenia wiązki laserowej, CM = lustro wklęsłe, C = kamera CMOS, S = fragment skrzydła motyla, R = wiązka odniesienia, O = wiązka obiektu. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

3. Konfiguracja użytego oprogramowania

UWAGA: Do analizy danych z eksperymentów holograficznych wykorzystano autorskie oprogramowanie w języku C++ oparte na przybliżeniu Fresnela11. Oprogramowanie opracowane na potrzeby przedstawionego badania jest dostępne pod adresem .12 Szczegóły dotyczące oprogramowania nie mogą zostać obecnie opublikowane, jednak dodatkowe informacje zostaną przekazane na zapytanie. Przybliżenie Fresnela jest niezwykle użyteczne w holografii cyfrowej, ponieważ pozwala na ogniskowanie na różnych powierzchniach oraz powiększanie obszaru pierwszego rzędu dyfrakcji, który zawiera pełne informacje o zarejestrowanej scenie.

  1. Włącz komputer i uruchom oprogramowanie.
    UWAGA: Sposób uruchomienia oprogramowania zależy od konkretnej aplikacji. Do tego celu nie istnieje oprogramowanie komercyjne.

4. Przeprowadzenie eksperymentu

  1. Wyłączyć oświetlenie zewnętrzne. Cały eksperyment należy przeprowadzić w ciemni.
  2. Zsynchronizować kamery, stosując wybrany odstęp czasu. W tym eksperymencie uruchomić kamerę holograficzną po 60 s, a dwie pozostałe kamery bezpośrednio po niej, korzystając z oprogramowania lub ręcznie.
  3. Nacisnąć przyciski nagrywania i zdefiniować w oprogramowaniu moment rozpoczęcia rejestracji.
  4. Wywołać zmiany dynamiczne w badanym układzie. Metoda inicjacji zależy od rodzaju próbki; w przypadku efektu fotoforetycznego należy podgrzać próbkę zewnętrznie za pomocą dostępnych laserów: 450 nm, 532 nm, 660 nm, 980 nm. W przypadku reakcji BR reakcję należy rozpocząć poprzez zmieszanie reagentów chemicznych. Obserwować przebieg eksperymentu holograficznego.
  5. Ustawić kamerę fotograficzną i termowizyjną tak, aby monitorowały cały eksperyment, a następnie określić moment zakończenia zapisu holograficznego na podstawie pomiarów optycznych i termicznych.
  6. Ogłosić zakończenie procesu. Moment zakończenia nagrywania jest zaprogramowany zgodnie z szacowanym czasem trwania procesu. W przypadku reakcji BR za koniec reakcji uznaje się moment zestalenia. W przypadku efektu fotoforetycznego nie istnieje taki konkretny moment. W każdym przypadku krok ten podkreśla znaczenie potrójnej rejestracji.

5. Pozyskiwanie wyników12

  1. Zapisz wyniki. Precyzyjnie posortuj pliki w funkcji czasu w celu rekonstrukcji hologramów i pogłębionej analizy danych.
    UWAGA: Na tym etapie dane są przenoszone z kamery użytej do holografii na komputer (dysk twardy) do folderów nazwanych zgodnie z datami wykonania zdjęć. Użyj funkcji kopiuj/wklej oraz przycisków zmiany nazwy.
  2. Sprawdź hologram próbny w celu ustalenia odpowiednich ustawień. W ten sposób na podstawie analizy wizualnej pierwszego hologramu wybierane są optymalne ustawienia, które następnie stosuje się do rekonstrukcji wszystkich hologramów.
    1. Wybierz jeden hologram, klikając go w folderze utworzonym wcześniej (krok 5.1), i wykonaj rekonstrukcję, klikając przycisk Reconstruct.
    2. Zmień ustawienia, aby uzyskać najlepszy obraz, i ponownie wykonaj rekonstrukcję. Na ekranie (w menu oprogramowania) pojawią się opcje regulacji parametrów, takich jak próbkowanie (sampling), offset i odległość Fresnela. Powtarzaj te kroki, aż zostaną zdefiniowane optymalne ustawienia.
    3. Wykonaj rekonstrukcje. Wybierz wszystkie hologramy, klikając przycisk Open File i zaznaczając wszystkie pliki. Zastosuj żądane parametry do numerycznej rekonstrukcji hologramów; pozostają one niezmienione po kroku 5.2.1, więc tym razem nie wykonuj żadnej operacji.
    4. Przeprowadź rekonstrukcje za pomocą przycisku Reconstruct, a interferogramy uzyskaj, wpisując nazwy plików w polach „start with/end with”, a następnie klikając przycisk Batch. Interferogramy pojawią się w folderze utworzonym wcześniej (w kroku 5.1).
      UWAGA: Po zarejestrowaniu serii hologramów w czasie, pierwszy hologram reprezentuje stan niezakłócony, natomiast kolejne hologramy są wynikiem działania siły zewnętrznej. Konieczne jest zrekonstruowanie hologramów przy użyciu przesuniętej transformaty Fresnela13.
    5. Uzyskaj interferogramy poprzez odejmowanie (w ujęciu liczb zespolonych) konkretnego hologramu w czasie od pierwszego uzyskanego hologramu.
      UWAGA: Niniejszy protokół pozwala na obserwację wpływu siły na obiekt. Zmiana wzoru interferencyjnego w funkcji czasu jest konsekwencją odkształcenia lub przemieszczenia, które zachodzi w układzie podczas pomiaru. Zmiany te są wykorzystywane do monitorowania dynamiki układu w nanoskali.

6. Analiza wyników

  1. Przeprowadź analizę wizualną jako pierwszy krok kontroli jakości procesu. Na tym etapie poszukaj widocznych zmian w obrazie interferencyjnym i spróbuj powiązać te zmiany z wynikami uzyskanymi z pomiarów optycznych i termicznych.
  2. Przeprowadź wzajemną weryfikację wszystkich zapisów. W tej drugiej fazie analizy dokładnie przeanalizuj wizualnie obrazy z kamer optycznych i termicznych wraz z rekonstrukcjami holograficznymi, aby ujawnić dynamikę w skali nanometrycznej. W ten sposób moment reakcji jest widoczny jednocześnie na obrazach holograficznych, termicznych i fotograficznych.
  3. Przygotuj graficzną reprezentację wyników na podstawie analizy numerycznej/programowej i przedstaw je w formie wykresów (1D, 2D lub 3D), diagramów, histogramów itp. Po pełnej analizie wyników wyciągnij wnioski i zaplanuj na ich podstawie dalsze badania.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

W pierwszym doświadczeniu wywołano i monitorowano efekt fotoforetyczny na skrzydle motyla Morpho menelaus5. Efekt ten został zainicjowany za pomocą laserów LED o różnych długościach fal (450 nm, 532 nm, 660 nm oraz 980 nm). W tym przypadku wykorzystano skrzydła motyla I. lathonia14. Po zakończeniu procedury rejestracji zrekonstruowano obraz hologramu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W prezentowanym badaniu biofotonicznym wykazano, że nowatorska metoda holograficzna może być wykorzystana do wykrywania minimalnych przemieszczeń morfologicznych lub deformacji spowodowanych promieniowaniem cieplnym o niskim poziomie.

Najbardziej krytycznym krokiem w pomiarach holograficznych z próbkami biologicznymi jest etap przygotowania. Przygotowanie próbki (cięcie/klejenie w celu dopasowania do rozmiaru uchwytu) zależy od właściwości mechanicznych próbki i nie jest możliwe posiadanie sta...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Podziękowania

M. S. P., D. G., D. V. i B. K. potwierdzają wsparcie dla projektu Biologiczne i inspirowane biologicznie struktury do nadzoru wielospektralnego, finansowanego przez NATO SPS (NATO Science for Peace and Security) 2019-2022. B. K., D. V., B. B., D. G. i M. S. P. potwierdzają finansowanie zapewnione przez Instytut Fizyki w Belgradzie, poprzez finansowanie instytucjonalne przez Ministerstwo Edukacji, Nauka i rozwój technologiczny Republiki Serbii. Dodatkowo B. K. dziękuje za wsparcie ze strony F R S - FNRS. M. P. przyjmuje do wiadomości wsparcie ze strony Ministerstwa Edukacji, Nauki i Rozwoju Technologicznego Republiki Serbii, numer umowy 451-03-9/2021-14/200026. S. R. M. był wspierany przez stypendium BEWARE Regionu Walonii (Konwencja n°2110034), jako badacz podoktorski. T. V. dziękuje za wsparcie finansowe ze strony Fundacji Hercules. D.V., M.S.P., D.G., M.P., B.B. i B.K. dziękują za wsparcie Office of Naval Research Global poprzez grant badawczy N62902-22-1-2024. Badanie to zostało przeprowadzone w ramach częściowego spełnienia wymagań dotyczących stopnia doktora Mariny Simović Pavlović na Wydziale Inżynierii Mechanicznej Uniwersytetu w Belgradzie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Aktywna izolacja drgań, cztery wsporniki stołu optycznegoThorlabsPTR502Wysoka nośność: 2,500 kg, wysokość 600 mm
KuwetaStandardowa szklana kuweta
Kamera holograficzna (kamera optyczna do holografii)CannonEOS 50DRozmiar czujnika 22,3 x 14,9 mm; Rozstaw pikseli 4,69 i mikro; m; Max. rozdzielczość 4752 x 3168; Format pliku JPEG
Nadtlenek wodoru, H2O2Merck (Darmstadt, Niemcy)
Laserlaserowy Laser QuantumTorus 532Długość fali 532 nm; Moc 390 mW; Długość koherencji 10 m
Lasery LED Kwas
malonowy, C3H4O4Acrfigure-materials-1s Organics (Geel, Belgia)
Siarczan manganu,  MnSO4Fluka (Buchs, Szwajcaria)
Nieliniowy mikroskop optycznyIPB
Akcesoria optyczneThorlab
Spektroskop
optyczny Stół optycznyThorlabsTOP450II PTR52509 wymiary 2000*1250*310 mm
Kwas nadchlorowy, HClO4Merck (Darmstadt, Niemcy)
Jodan potasu, KIO3Merck (Darmstadt, Niemcy)
OprogramowanieOprogramowanie do budowy domowej wykonane przez jednego z autorów: Dusana Grujica. To oprogramowanie zostało wykonane w częściowym spełnieniu wymagań dotyczących doktoratu doktora nauk humanistycznych D.G.
Kamera termowizyjnaFlirA65640x512 pikseli; Rozdzielczość termowizyjna 50 mK
Kamera wideoNikon1v318,4 Mpixel; 60 fps

Bibliografia

  1. Pietrzyk, D. J., Frank, C. W. Development of an analytical method. Analytical Chemistry. , 10-19 (1979).
  2. Ostrovsky, Y. I., Shchepinov, V. P., Yakovlev, V. V. Holographic Interferometry in Experimental Mechanics. 60, Springer. (2013).
  3. Pedrini, G., Osten, W., Gusev, M. E. High-speed digital holographic interferometry for vibration measurement. Applied Optics. 45 (15), 3456-3462 (2006).
  4. Pantelić, D. V., Grujić, D. Ž, Vasiljević, D. M. S. ingle-beam dual-view digital holographic interferometry for biomechanical strain measurements of biological objects. Journal of Biomedical Optics. 19 (12), 127005(2014).
  5. Grujić, D., et al. Infrared camera on butterfly's wing. Optics Express. 26 (11), 14143-14158 (2018).
  6. Mouchet, S. R., Deparis, O. Natural Photonics and Bioinspiration. , Artech House. (2021).
  7. Pagnacco, M. C., et al. Spontaneous symmetry breaking: the case of crazy clock and beyond. Symmetry. 14, 413(2022).
  8. Pagnacco, M. C., Maksimovic, J. P., Potkonjak, N. I., Božić, B. Đ, Horvath, A. K. Transition from low to high iodide and iodine concentration states in the Briggs-Rauscher reaction: evidence on crazy clock behavior. The Journal of Physical Chemistry A. 122 (2), 482-491 (2018).
  9. Pagnacco, M. C., Maksimović, J. P., Janković, B. Ž Analysis of transition from low to high iodide and iodine state in the Briggs-Rauscher oscillatory reaction containing malonic acid using Kolmogorov-Johnson-Mehl-Avrami (KJMA) theory. Reaction Kinetics, Mechanisms and Catalysts. 123 (1), 61-80 (2018).
  10. Mouchet, S. R., et al. Unveiling the non-linear optical response of Trichtenotoma childreni longhorn bestle. Journal of Biophotonics. 12 (9), 201800470(2019).
  11. Shimobaba, T., et al. Computational wave optics library for C++: CWO++ library. Computer Physics Communications. 183 (5), 1124-1138 (2012).
  12. Grujic, D. Application of digital holography for detection of infrared radiation on biophotonic structures. , Faculty of Physics, University of Belgrade. Ph. D. Thesis (2022).
  13. Muffoletto, R. P., Tyler, J. M., Tohline, J. E. Shifted Fresnel diffraction for computational holography. Optical Express. 15 (9), 5631-5640 (2007).
  14. Pavlović, D., et al. Naturally safe: Cellular noise for document security. Journal of Biophotonics. 12 (12), 201900218(2019).
  15. Bray, W. C. A periodic reaction inhomogeneous solution and its relation to catalysis. Journal of the American Chemical Society. 43 (6), 1262-1267 (1921).
  16. Nicolis, G. Self-organization in nonequilibrium systems. Dissipative Structures to Order through Fluctuations. , 339-426 (1977).
  17. Prigogine, I., Hiebert, E. N. From being to becoming: Time and complexity in the physical sciences. Physics Today. 35 (1), 69(1982).
  18. Nikolova, L., Ramanujam, P. S. Polarization Holography. , Cambridge University Press. (2009).
  19. Haisch, C., Kykal, C., Niessner, R. Photophoretic velocimetry for the characterization of aerosols. Analytical Chemistry. 80 (5), 1546-1551 (2008).
  20. Kononenko, V. L., et al. Feasibility studies on photophoretic effects in field-flow fractionation of particles. Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies. 20 (16-17), 2907-2929 (1997).
  21. Zhang, X., Bar-Ziv, E. A novel approach to determine thermal conductivity of micron-sized fuel particles. Combustion Science and Technology. 130 (1-6), 79-95 (1997).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Cyfrowa interferometria holograficznaoptyka nieliniowaprzejście fazoweefekt fotoforetycznymikroskopia optycznaobrazowanie termicznereakcja Briggsa-Rauscheradynamika nanostruktur
Odkrywanie ukrytej dynamiki naturalnych struktur fotonicznych za pomocą obrazowania holograficznego
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.