Ten protokół opisuje szybką i skuteczną metodę izolacji pierwotnych hepatocytów myszy, a następnie za pośrednictwem elektroporacji dostarczania CRISPR-Cas9 w postaci rybonukleoprotein (RNP) i mRNA. Pierwotne hepatocyty myszy wyizolowano przy użyciu trzystopniowej metody perfuzji wstecznej, co dało wysoką wydajność do 50 × 106 komórek na wątrobę i żywotność komórek na poziomie >85%. Protokół ten zawiera szczegółowe instrukcje dotyczące posiewu, barwienia i hodowli hepatocytów. Wyniki wskazują, że elektroporacja zapewnia wysoką skuteczność transfekcji wynoszącą 89%, mierzoną procentem komórek dodatnich pod względem zielonego białka fluorescencyjnego (GFP) i skromną żywotnością komórek wynoszącą >35% w hepatocytach myszy.
Aby zademonstrować użyteczność tego podejścia, CRISPR-Cas9 ukierunkowany na gen dioksygenazy hydroksyfenylopirogronianowej został elektroporowany do pierwotnych hepatocytów myszy jako dowód słuszności edycji genów w celu zakłócenia terapeutycznego genu związanego z dziedziczną chorobą metaboliczną (IMD) wątroby. W przypadku RNP zaobserwowano wyższą edycję on-target wynoszącą 78% w porównaniu z 47% wydajnością edycji z mRNA. Funkcjonalność hepatocytów oceniono in vitro przy użyciu testu albuminowego, który wykazał, że dostarczanie CRISPR-Cas9 w postaci RNP i mRNA skutkuje porównywalną żywotnością komórek w pierwotnych hepatocytach myszy. Obiecującym zastosowaniem tego protokołu jest generowanie mysich modeli chorób genetycznych człowieka wpływających na wątrobę.