Obecny protokół opisuje ultrasonografię nerwowo-mięśniową o wysokiej częstotliwości gałęzi palcowej i dłoniowej nerwu środkowego i łokciowego, która może pomóc w lokalizacji chorób nerwów obwodowych i być dostosowana do oceny uszkodzeń nerwu palcowego.
Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.
Artykuł metodologiczny
Ultrasonografia wysokiej częstotliwości gałęzi nerwu palcowego i dłoniowego ręki w chorobach nerwów obwodowych
* These authors contributed equally
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Ultrasonografia nerwów obwodowych jest sprawdzoną techniką obrazowania do oceny pewnych patologii nerwów obwodowych. Istnieje jednak słaba korelacja między nieprawidłowościami ultrasonograficznymi nerwów obwodowych a elektrodiagnostycznymi lub klinicznymi dowodami utraty aksonów. Jest to znaczące ograniczenie ultrasonografii nerwów obwodowych, ponieważ wiele chorób nerwów obwodowych spotykanych w warunkach klinicznych jest związanych z utratą aksonów. Co więcej, kliniczne i elektrodiagnostyczne dowody utraty aksonów bezpośrednio korelują z niepełnosprawnością we wszystkich chorobach nerwów obwodowych. Jednak ze względu na efekty podłogowe często spotykane w badaniach elektrodiagnostycznych, korelacje te, jak również ostateczne diagnozy, są często trudne. W związku z tym techniki obrazowania, które korelują z utratą aksonów, są niezbędne do rozszerzenia użyteczności ultrasonografii nerwów obwodowych jako potencjalnego biomarkera chorób nerwów obwodowych. Dzięki nowym osiągnięciom technologicznym i stale rosnącym możliwościom obrazowania ultrasonograficznego o wysokiej częstotliwości, gałęzie nerwu dłoniowego i palca ręki można obrazować z wyjątkowo wysoką rozdzielczością nawet przy użyciu przyłóżkowych urządzeń ultrasonograficznych. Ich powierzchowne i dystalne lokalizacje anatomiczne są idealne do oceny polineuropatii, ponieważ gałęzie te degenerują się najwcześniej podczas utraty aksonów. Jednak żadne badania nie oceniały systematycznie tych gałęzi nerwowych, aby ustalić, czy można je odtwarzalnie zmierzyć za pomocą ultradźwięków. Obecny protokół został dostosowany do systematycznej oceny obszarów przekroju poprzecznego nerwu pośrodkowego i łokciowego na powierzchni dłoniowej i palcach dłoni. Protokół ten dostarcza danych referencyjnych dla podzbioru nerwów, które wykazują wysokie współczynniki korelacji wewnątrzklasowej między trzema oddzielnymi ultrasonografami. Wreszcie, jako dowód słuszności koncepcji i zademonstrowanie klinicznych zastosowań tego protokołu, reprezentatywne dane od osób z genetycznie potwierdzonymi dziedzicznymi polineuropatiami są porównywane z ustalonymi danymi normatywnymi w celu zbadania różnic w obszarze przekroju.
Wprowadzenie
Rozszerzenie klinicznych ultrasonografii do oceny obwodowych nerwów i mięśni znacznie poprawiło zdolność diagnozowania zaburzeń nerwowo-mięśniowych1. W ciągu ostatnich 2 dekad ultrasonografia stała się narzędziem do bezpośredniego obrazowania zmian anatomicznych w układzie nerwowo-mięśniowym, które korelują z procesami patologicznymi. Ultrasonografia jest najczęściej łączona z wywiadem klinicznym i badaniem w celu dostarczenia dalszych szczegółów lub wsparcia badań elektrodiagnostycznych, które są uważane za złoty standard w diagnozowaniu choroby nerwów obwodowych2. W niektórych przypadkach neuropatii ogniskowych, takich jak zespół cieśni nadgarstka, ultradźwięki mogą być stosowane zamiast wyników elektrodiagnostyki o wysokiej czułości i swoistości3. Ze względu na niski koszt, możliwość wykonywania przy łóżku pacjenta i nieinwazyjne właściwości, ultradźwięki są preferowaną metodą obrazowania układu nerwowo-mięśniowego dla wielu klinicystów4,5.
Ultrasonografia nerwów obwodowych okazała się nieoceniona w lokalizacji chorób nerwów obwodowych spowodowanych nieprawidłowościami w mielinie, takich jak przewlekłe immunologiczne polineuropatie demielinizacyjne (CIDP)6,7 i choroba Charcota-Marie-Tootha typu 1A (CMT1A)7,8. W tych chorobach dobrze opisane są ogniskowe lub rozlane powiększenia nerwów w kończynach górnych i dolnych. Jednak powiększenie obszaru przekroju poprzecznego nie jest specyficzne dla chorób demielinizacyjnych, ponieważ zostało również opisane w polineuropatiach aksonalnych, choć rzadko8. Jednak powiększenie przekroju poprzecznego w chorobach aksonów jest znacznie mniej silne i nie jest jednolite w całym nerwie. Ze względu na te wyzwania użyteczność ultradźwięków w neuropatiach aksonalnych jest ograniczona.
Większość badań ultrasonograficznych nerwów obwodowych skupia się na obrazowaniu względnie proksymalnych lokalizacji nerwów, głównie ze względu na większy rozmiar nerwu, co ułatwia identyfikację. Jednak najbardziej dystalne gałęzie nerwów obwodowych degenerują się najwcześniej w sposób podobny do Wallera podczas utraty aksonów w polineuropatiach9,10. Ze względu na ich mniejsze średnice, rozdzielczość obrazowania była czynnikiem ograniczającym odtwarzalność obrazowania tych gałęzi nerwowych. W ostatnim czasie rozdzielczość przetworników uległa trwałej poprawie dzięki szybszym i bardziej płynnym technikom łączenia obrazów. Obecnie struktury o wielkości około 500 μm mogą być rutynowo obrazowane za pomocą ultradźwięków przyłóżkowych, a struktury o rozmiarach tak małych jak 30 μm mogą być obrazowane za pomocą systemów o ultrawysokiej częstotliwości11. W związku z tym można sobie wyobrazić, że dystalne gałęzie nerwowe w stopach i dłoniach można wiarygodnie ocenić za pomocą ultrasonografii przyłóżkowej.
Gałęzie nerwu dłoniowego i palcowego ręki są najbardziej dystalnymi gałęziami nerwu środkowego, promieniowego i łokciowego. Gałęzie dłoniowe przenoszą nerwy ruchowe (tylko pośrodkowe i łokciowe) do mięśni międzykostnych, oprócz nerwów czuciowych palców palców12. W badaniach zwłok gałązki dłoniowe i palcowe mają średnicę od 0,8 mm do 2,1 mm13, co mieści się w zakresie wykrywania dla przetworników ultradźwiękowych o wysokiej częstotliwości. Ponadto ich powierzchowne umiejscowienie pozwala na obrazowanie wysokich i ultrawysokich częstotliwości ze względu na minimalną utratę częstotliwości przez tkanki łączne lub mięśnie. Jednak żadne badania nie ustaliły normatywnych obszarów przekroju poprzecznego gałęzi nerwu palcowego lub dłoniowego ręki za pomocą ultradźwięków, które są niezbędne, aby umożliwić badania kliniczne i naukowe. Dlatego niniejszy protokół ocenia gałąź nerwu dłoniowego i palcowego w dłoni.
Uwagi techniczne
Zasady ultrasonografii skoncentrowanej na mięśniach nerwowych muszą być przejrzane jako podstawa przed rozpoczęciem tego protokołu14. Ponadto w odniesieniu do obecnego protokołu uwzględniono kilka szczegółowych kwestii. Zalecany jest przetwornik o niewielkich rozmiarach i częstotliwości powyżej 15 MHz, biorąc pod uwagę naturalne kontury dłoni. Głowica 10-22 MHz o wymiarach 8 mm x 13 mm (patrz tabela materiałów) została użyta z kompatybilnym cyfrowym systemem ultrasonograficznym.
Następne kwestie to głębokość obrazowania i strefy ogniskowania. We wszystkich prezentowanych badaniach obrazowych nerw dłoniowy i palcowy miały głębokość mniejszą niż 0,35 cm. Dlatego w celu zapewnienia powtarzalności zaleca się stosowanie stałej głębokości 1 cm. Co więcej, lepsze obrazowanie można uzyskać na tej głębokości, umieszczając dwie strefy ogniskowe na maksymalnych wysokościach urządzenia.
Konsekwentne dostosowywanie obrazu (częstotliwość, wzmocnienie i mapy szarości) są zdecydowanie zalecane. Przy minimalnej ilości tkanek powierzchownych pokrywających i otaczających nerwy, korekty tych parametrów podczas obrazowania nie poprawią rozdzielczości ani jakości obrazowania. Biorąc pod uwagę małe średnice tych nerwów, do pomiarów pola przekroju poprzecznego zaleca się korzystanie z dodatkowego oprogramowania do analizy obrazu, takiego jak ImageJ15,16 do pomiarów pola przekroju poprzecznego.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Protokół
Wszystkie eksperymenty w tym badaniu zostały przeprowadzone zgodnie z Instytucjonalnymi Komisjami Rewizyjnymi Uniwersytetu Stanowego Wayne i Detroit Medical Center (IRB) zgodnie z zatwierdzonym protokołem dla historii naturalnej osób z neuropatiami obwodowymi. Uzyskano świadomą zgodę od wszystkich uczestników.
1. Ustawienie instrumentalne
- Wprowadź imię i nazwisko pacjenta lub inne identyfikatory zgodnie z potrzebami, aby uporządkować przechwycone obrazy.
- Zdezynfekuj sondę ultradźwiękową (patrz Tabela materiałów) i nałóż dużą ilość żelu ultradźwiękowego na głowicę przetwornika przed obrazowaniem.
- Ustaw częstotliwość przechwytywania na najwyższą częstotliwość dozwoloną przez aparat ultrasonograficzny, która nie wymaga dalszego łączenia obrazu ani kontrastu.
UWAGA: W niniejszym badaniu użyto częstotliwości 20 MHz. - Ustaw całkowitą głębię obrazowania lub ekranu na 1 cm, przy czym dwie pozycje ogniskowej powinny być jak najbardziej powierzchowne.
UWAGA: Ta głębokość i ogniska umożliwiają obrazowanie wszystkich podziałów dłoniowych i palcowych nerwu pośrodkowego i łokciowego w dłoni. Po ustaleniu preferencji przez egzaminatora, zalecana jest spójna mapa wzmocnienia i szarości w celu zapewnienia powtarzalności pomiarów.
2. Przygotowanie pacjenta
UWAGA: Kryterium włączenia pacjenta do dziedzicznej neuropatii obwodowej była potwierdzona mutacja w genie, o którym wiadomo, że powoduje dziedziczną neuropatię obwodową (proszę zobaczyć sekcję z reprezentatywnymi wynikami), bez kryteriów wykluczenia. W przypadku grupy kontrolnej kryterium włączenia był prawidłowy wynik badań elektrodiagnostycznych kończyn górnych. Kryteria wykluczenia kontrolnego obejmowały historię lub obecną diagnozę cukrzycy, dysfunkcję tarczycy, wszelkie znane nieprawidłowości witaminowe, przebytą operację bariatryczną, zespół metaboliczny, wskaźnik masy ciała większy niż 29, historię urazowego uszkodzenia nerwów lub historię obwodowej neuropatii dużych lub małych włókien.
- Ułóż pacjenta w pozycji leżącej na plecach z wyprostowanym łokciem i nadgarstkiem supinowanym tak, aby grzbietowa powierzchnia przedramienia wygodnie spoczywała na stole.
UWAGA: Przed ustawieniem należy zbadać dłoń i ramię, które będą oceniane, ponieważ wszelkie rany, wysypki lub podrażnienia skóry w pobliżu lub nad obszarami, które mają być obrazowane, są względnymi przeciwwskazaniami i mogą wykluczać obrazowanie ultrasonograficzne. - Przedłuż nadgarstek i śródręcze pacjenta tak, aby paznokcie stykały się z powierzchnią stołu. Pozwól, aby kciuk był lekko przywiedziony i zgięty dla wygody.
3. Badanie ultrasonograficzne
UWAGA: Istnieją cztery wspólne gałęzie nerwu pośrodkowego dłoniowego i dwie wspólne gałęzie nerwu dłoniowego 13. Każda cyfra ma przyśrodkową i boczną gałąź cyfrową, przy czym cyfry 1-3 są czysto unerwione medianie, a cyfra 5 jest unerwiona wyłącznie łokciowa. Cyfra 4 jest podwójnie unerwiona przez nerw pośrodkowy na powierzchni bocznej i nerw łokciowy na powierzchni przyśrodkowej. Protokół ten koncentruje się na obrazowaniu środkowego wspólnego nerwu dłoniowego do cyfry 2, bocznej gałęzi palczastej do cyfry 2, gałęzi łokciowej wspólnej dłoniowej do cyfry 5 i gałęzi przyśrodkowej do cyfry 5.
- Zacznij od zidentyfikowania środkowej gałęzi dłoniowej wspólnej do cyfry 2 za pomocą bocznego zgięcia zginacza dłoniowego poprzecznego jako punktu orientacyjnego (Rysunek 1).
UWAGA: Mediana wspólnej gałęzi dłoniowej do cyfry 2 i gałąź łokciowa dłoniowa wspólna do cyfry 5 są znacznie większe niż towarzyszące naczynia krwionośne w porównaniu z nerwami palcowymi. Tak więc identyfikacja tych nerwów w pierwszej kolejności może pomóc w identyfikacji w bardziej dystalnych gałęziach, które są bardziej podobne w obszarze przekroju poprzecznego do naczyń krwionośnych. - Umieść przetwornik proksymalnie do zgięcia dłoniowego zginacza promieniowego (Rysunek 1).
UWAGA: W niniejszym badaniu nie napotkano osób bez promieniowego zgięcia dłoniowego. Jednak w przypadku braku fałdy dłoniowej należy umieścić przetwornik 2 cm proksymalnie do podstawy drugiej kości śródręcza. - Trzymaj przetwornik prostopadle do oczekiwanego przebiegu nerwu z jak najmniejszym naciskiem, zapewniając jednocześnie pełny kontakt z przetwornikiem i skórą.
UWAGA: Biorąc pod uwagę powierzchowne położenie gałęzi dłoniowej i cyfrowej, są one podatne na zniekształcenia ciśnienia z przetwornika. - Dostosuj kąt przetwornika tak, aby zidentyfikowano najmniejszy obszar przekroju poprzecznego z jednolitym epineurium. Ta technika zmniejsza prawdopodobieństwo obrazowania poza płaszczyzną, co może zmienić wyniki.
- Zoptymalizuj obraz, wykonując delikatne ruchy głowicy w przód i w tył, aby zminimalizować anizotropię nerwu.
UWAGA: Anistrofia odnosi się do wariancji odbitych przebiegów ultradźwiękowych w oparciu o kąt przetwornika17. Regulacja kąta przesyłanej fali tworzy przebiegi odblaskowe, które są poza płaszczyzną i nie są odbierane przez przetwornik ultradźwiękowy, co prowadzi do hipoechogeniczności (lub wzrostu czarnego sygnału) struktury. Nerwy mają stosunkowo niską anizotropię, co oznacza, że do wytworzenia hipoechogeniczności nerwu wymagane są znaczne zmiany kąta. Dla porównania, mięśnie i ścięgna mają stosunkowo wysoką anizotropię. Wykonując małe ruchy w przód i w tył za pomocą przetwornika, granice kątowe, w których powstaje anizotropia, mogą pomóc w określeniu właściwej płaszczyzny do obrazowania nerwów18. - Jeśli to możliwe, wykorzystaj obrazowanie Power Doppler (PDI, patrz tabela materiałów), aby zidentyfikować wszelkie naczynia krwionośne w pobliżu (wykonaj we wszystkich lokalizacjach).
- Po zoptymalizowaniu uchwyć obraz w tej lokalizacji. Zaznacz nerw w systemie ultrasonograficznym przed zapisaniem, aby można było zlokalizować nerw do dalszych pomiarów. Oznacz obraz nazwą nerwu, lokalizacją i stroną.
- Następnie zobrazuj boczną cyfrową gałąź cyfry 2 w stawie śródręczno-paliczkowym, przesuwając przetwornik dystalnie w kierunku końca cyfry 2. Następnie zatrzymaj przetwornik tuż dystalnie i bocznie do środka zgięcia zginacza drugiego stawu śródręczno-paliczkowego.
- Po zoptymalizowaniu uchwyć obraz w tej lokalizacji. Zaznacz nerw w systemie ultrasonograficznym przed zapisaniem, aby można było zlokalizować nerw do dalszych pomiarów. Oznacz obraz nazwą nerwu, lokalizacją i stroną.
- Aby ocenić patologie ogniskowe lub niejednorodne powiększenia przekroju poprzecznego gałęzi dłoniowej lub palcowej do cyfry 2, przesuń przetwornik dystalnie w kierunku końca cyfry 2.
UWAGA: Nerwy palcowe można odpowiednio uwidocznić w odległości 1,5-2 cm proksymalnie do dystalnego stawu międzypaliczkowego (DIP). - Następnie, od najbardziej dystalnego punktu, z którego można uwidocznić gałąź, podążaj za nerwem proksymalnie do wspólnego nerwu pośrodkowego tuż dystalnie do kanału nadgarstka.
- Następnie zobrazuj gałąź dłoniową łokciową zwykłą do cyfry 5, identyfikując poprzeczne fałdowanie dłoniowe łokciowe (Ryc. 1).
- Ustawić przetwornik prostopadle do oczekiwanego przebiegu nerwu i wyregulować obrazowanie zgodnie z opisem w krokach 3.3.-3.6.
- Po zoptymalizowaniu uchwyć obraz w tej lokalizacji. Zaznacz nerw w systemie ultrasonograficznym przed zapisaniem, aby można było zlokalizować nerw do dalszych pomiarów. Oznacz obraz nazwą nerwu, lokalizacją i stroną.
- Następnie zobrazuj gałąź przyśrodkową w stawie śródręczno-paliczkowym (MCP), przesuwając przetwornik w kierunku końca cyfry 5, zatrzymując się tuż dystalnie do zgięcia zginacza MCP.
- Zoptymalizuj obraz, jak wspomniano wcześniej w krokach 3.3.-3.6.
- Po zoptymalizowaniu uchwyć obraz w tej lokalizacji. Zaznacz nerw w systemie ultrasonograficznym przed zapisaniem, aby można było zlokalizować nerw do dalszych pomiarów. Oznacz obraz nazwą nerwu, lokalizacją i stroną.
- Oceń pod kątem ogniskowych lub segmentowych nieprawidłowości przekroju poprzecznego wzdłuż cyfry 5. Identyfikując najbardziej dystalną lokalizację, zwizualizuj nerw i skanuj proksymalnie z powrotem do kanału Guyona.
UWAGA: Kanał Guyona, znany również jako kanał łokciowy lub tunel, znajduje się w przyśrodkowej części dłoni / nadgarstka, gdzie przechodzi nerw łokciowy i tętnica. Granice kanału Guyona obejmują więzadło nadgarstka powierzchowne powyżej, siatkówkę zginacza i mięśnie podbrzuszne niżej, więzadło piszczelowe i piersiowe przyśrodkowo oraz hak hamate bocznie19. - Wykonaj wszystkie pomiary po obu stronach.
UWAGA: W niniejszym badaniu, u osób z BMI poniżej 33, obrazowanie całego przebiegu nerwu pośrodkowego i łokciowego z powrotem do splotu ramiennego było możliwe za pomocą zastosowanego tutaj przetwornika. Chociaż protokół ten koncentruje się tylko na ograniczonej liczbie nerwów, w przypadku neuropatii ogniskowych lub urazowych (dla których ocena nerwów nie jest pokazana w tym protokole) zaleca się użycie dystalnych głów śródręcza jako punktu wyjścia do śledzenia i oceny innych nerwów palcowych i dłoniowych. - Zapisz wszystkie obrazy i wyeksportuj je na urządzenie pamięci masowej. Jeśli używasz ImageJ, wyeksportuj obrazy jako pliki .jpg.
4. Pomiar pola przekroju poprzecznego
UWAGA: ImageJ, oprogramowanie do przetwarzania obrazów o otwartym kodzie źródłowym (patrz Spis materiałów), zostało wykorzystane w niniejszym badaniu, a poniższe kroki są dostosowane do tego oprogramowania.
- Otwórz oprogramowanie ImageJ.
- Wybierz Plik w interfejsie programu i kliknij Otwórz. Przejdź do katalogu, w którym przechowywane są obrazy ultrasonograficzne.
- Wybierz .jpg związane z nerwem, który ma być mierzony.
- Ustaw skalę obrazu, wybierając narzędzie linii i używając paska skali na oryginalnym obrazie ultrasonograficznym, aby narysować linię prostą o długości 1 cm. Kliknij Analizuj i wybierz Ustaw skalę.
UWAGA: Odległość w pikselach jest automatycznie obliczana na podstawie linii 1 cm i jest automatycznie wypełniana w pierwszym polu. Aby wyprowadzać pomiary w milimetrach do kwadratu (mm2), zmień znaną odległość na 10. Zamknij pole ustawiania skali. - Użyj narzędzia do zaznaczania odręcznego, aby obrysować nerw na granicy epineurium i otaczających tkanek (Rysunek 2, żółta linia).
UWAGA: Funkcja zoomu może być używana w ImageJ do określenia dokładnych pikseli oddzielających epineurium od otaczających struktur w celu uzyskania bardziej precyzyjnych pomiarów. - Zmierz pole przekroju poprzecznego, klikając Analizuj i wybierając Zmierz.
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Wyniki
W celu uzyskania danych normatywnych wybrano 20 osób z prawidłowymi wynikami elektrofizjologicznymi, bez skarg neurologicznych, bez cukrzycy w wywiadzie lub obecnie, bez dysfunkcji tarczycy, nieprawidłowości w poziomie witamin, zespołu metabolicznego, zespołu kanału nadgarstka lub łokcia, bez ekspozycji na chemioterapeutyki oraz bez ciężkich urazów rąk, które ponadto nie były w ciąży w ciągu ostatniego roku (Tabela 1). Ze względu na niewielką liczebność podgrupy, nie dokonano stratyfikacji danych według ...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Dyskusja
Niniejszy protokół opisuje ultrasonografię o wysokiej częstotliwości gałęzi nerwu palcowego i dłoniowego ręki. Badanie to miało na celu przetestowanie hipotezy, że powiększenie obszaru przekroju poprzecznego w dystalnych gałęziach nerwów koreluje z utratą aksonów. Aby rozwiać tę hipotezę, potrzebne będą szeroko zakrojone, wieloośrodkowe badania historii naturalnej osób z różnymi podzbiorami chorób aksonalnych. Oprócz potencjalnych korzyści badawczych, protokół ten może być również stosowany klinicznie w celu lokalizacji ...
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Oświadczenia
Autorzy nie mają nic do ujawnienia.
Podziękowania
Ta praca była wspierana przez Wydziały Neurologii oraz Medycyny Fizycznej i Rehabilitacji Wayne State University
School of Medicine.Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Przetwornik 10-22 mHz | General Electric Health Care | H48062AB | Mały przetwornik odcisku stopy |
| ImageJ | NIH | N/A | |
| Logiq eR8 Wiązka ultradźwiękowa Former | General Electric Health Care | H48522AS | Jest to procesor do formowania wiązki i obrazu, który obejmuje Power Doppler |
| Imaging Ultrasound Gel | Parker Labratories | 44873 | Standardowy żel ultradźwiękowy, niesterylny |
Bibliografia
- Gonzalez, N. L., Hobson-Webb, L. D. Neuromuscular ultrasound in clinical practice: A review. Clinical Neurophysiology Practice. 4, 148-163 (2019).
- Watson, J. C., Dyck, P. J. B. Peripheral neuropathy: A practical approach to diagnosis and symptom management. Mayo Clinic Proceedings. 90 (7), 940-951 (2015).
- Elnady, B., et al. Diagnostic potential of ultrasound in carpal tunnel syndrome with different etiologies: correlation of sonographic median nerve measures with electrodiagnostic severity. BMC Musculoskeletal Disorders. 20 (1), 634(2019).
- Walker, F. O., et al. Indications for neuromuscular ultrasound: Expert opinion and review of the literature. Clinical Neurophysiology. 129 (12), 2658-2679 (2018).
- Hommel, A. L., Cartwright, M. S., Walker, F. O. The use of ultrasound in neuromuscular diagnoses. Neurology: Clinical Practice. 7 (3), 266-273 (2017).
- Merola, A., Rosso, M., Romagnolo, A., Peci, E., Cocito, D. Peripheral nerve ultrasonography in chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy and multifocal motor neuropathy: Correlations with clinical and neurophysiological data. Neurology Research International. 2016, 9478593(2016).
- Zanette, G., et al. Nerve ultrasound findings differentiate Charcot-Marie-Tooth disease (CMT) 1A from other demyelinating CMTs. Clinical Neurophysiology. 129 (11), 2259-2267 (2018).
- Schreiber, S., et al. Sonography of the median nerve in CMT1A, CMT2A, CMTX, and HNPP. Muscle & Nerve. 47 (3), 385-395 (2013).
- Prior, R., Van Helleputte, L., Benoy, V., Van Den Bosch, L. Defective axonal transport: A common pathological mechanism in inherited and acquired peripheral neuropathies. Neurobiology of Disease. 105, 300-320 (2017).
- Cashman, C. R., Höke, A. Mechanisms of distal axonal degeneration in peripheral neuropathies. Neuroscience Letters. 596, 33-50 (2015).
- Cartwright, M. S., Baute, V., Caress, J. B., Walker, F. O. Ultrahigh-frequency ultrasound of fascicles in the median nerve at the wrist. Muscle & Nerve. 56 (4), 819-822 (2017).
- Mitchell, C. H., Fayad, L. M., Ahlawat, S. Magnetic resonance imaging of the digital nerves of the hand: Anatomy and spectrum of pathology. Current Problems in Diagnostic Radiology. 47 (1), 42-50 (2018).
- Ortiz, R., et al. Nerve diameter in the hand: A cadaveric study. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 7 (3), 2155(2019).
- Fisse, A. L., Pitarokoili, K., Gold, R. Nerve ultrasound protocol to detect dysimmune neuropathies. Journal of Visualized Experiments. (176), e62900(2021).
- Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
- Sternberg, S. R. Biomedical image processing. Computer. 16 (1), 22-34 (1983).
- Connolly, D. J., Berman, L., McNally, E. G. The use of beam angulation to overcome anisotropy when viewing human tendon with high frequency linear array ultrasound. The British Journal of Radiology. 74 (878), 183-185 (2001).
- Suk, J. I., Walker, F. O., Cartwright, M. S. Ultrasonography of peripheral nerves. Current Neurology and Neuroscience Reports. 13 (2), 328(2013).
- Depukat, P., et al. Anatomy of Guyon's canal - A systematic review. Folia Medica Cracoviensia. 54 (2), 81-86 (2014).
- Grimm, A. -S., et al. Normative observational nerve ultrasound values in school-age children and adolescents and their application to hereditary neuropathies. Frontiers in Neurology. 11, 303(2020).
- Shen, J., Cartwright, M. S. Neuromuscular ultrasound in the assessment of polyneuropathies and motor neuron disease. Journal of Clinical Neurophysiology. 33 (2), 86-93 (2016).
- Cartwright, M. S., et al. Diagnostic nerve ultrasound in Charcot-Marie-Tooth disease type 1B. Muscle & Nerve. 40 (1), 98-102 (2009).
- Noto, Y., et al. Nerve ultrasound depicts peripheral nerve enlargement in patients with genetically distinct Charcot-Marie-Tooth disease. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 86 (4), 378-384 (2015).
- Carroll, A. S., Simon, N. G. Current and future applications of ultrasound imaging in peripheral nerve disorders. World Journal of Radiology. 12 (6), 101-129 (2020).
- Attarian, S., Fatehi, F., Rajabally, Y. A., Pareyson, D. Hereditary neuropathy with liability to pressure palsies. Journal of Neurology. 267 (8), 2198-2206 (2020).
- Li, J. Inherited neuropathies. Seminars in neurology. 32 (3), 204-214 (2012).
- Kramarz, C., Rossor, A. M. Neurological update: Hereditary neuropathies. Journal of Neurology. , (2022).
- Niu, J., Cui, L., Liu, M. Multiple sites ultrasonography of peripheral nerves in differentiating Charcot-Marie-Tooth type 1A from chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy. Frontiers in Neurology. 8, 181(2017).
- Donlevy, G. A., et al. Association between body mass index and disability in children with Charcot-Marie-Tooth disease. Neurology. 97 (17), 1727-1736 (2021).
- Bayrak, A. O., et al. Ultrasonographic findings in hereditary neuropathy with liability to pressure palsies. Neurological Research. 37 (2), 106-111 (2015).
- Cacciavillani, M., Padua, L., Gasparotti, R., Briani, C. HNPP: Not only entrapment sites. Ultrasound digital nerve abnormalities in a guitar player. Neurological Sciences. 37 (6), 999-1000 (2016).
- Joo, S. Y., et al. Foot deformity in Charcot Marie Tooth disease according to disease severity. Annals of Rehabilitation Medicine. 35 (4), 499-506 (2011).
- Smith, J. L., Siddiqui, S. A., Ebraheim, N. A. Comprehensive summary of anastomoses between the median and ulnar nerves in the forearm and hand. Journal of Hand and Microsurgery. 11 (1), 1-5 (2019).
- Afework, M. Prevalence of the different types of palmar creases among medical and dental students in Addis Ababa, Ethiopia. Ethiopian Journal of Health Sciences. 29 (3), 391-400 (2019).
- Sunilkumar, M. N. The enigma of the simian crease: Case series with the literature review. International Journal of Contemporary Pediatrics. 1 (3), 175-177 (2017).
Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.
Przedruki i uprawnienia
