Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Echokardiografia przezklatkowa w celu oceny dysfunkcji lewej komory po resuscytacji po ostrym zawale mięśnia sercowego i zatrzymaniu krążenia u świń

3.7K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/63888

⸱

12 lipca 2022

W tym artykule

Podsumowanie

Echokardiografia przezklatkowa jest testem diagnostycznym pierwszego rzutu dla dysfunkcji lewej komory po resuscytacji i zmian strukturalnych w świńskim modelu zatrzymania krążenia.

Streszczenie

Jedną z głównych przyczyn pozaszpitalnego zatrzymania krążenia jest ostry zawał mięśnia sercowego (AMI). Po udanej resuscytacji z powodu zatrzymania krążenia około 70% pacjentów umiera przed wypisem ze szpitala z powodu dysfunkcji mięśnia sercowego i mózgu po resuscytacji. W modelach eksperymentalnych dysfunkcja mięśnia sercowego po zatrzymaniu krążenia, charakteryzująca się upośledzeniem zarówno skurczowej, jak i rozkurczowej funkcji lewej komory (LV), została opisana jako odwracalna, ale dostępnych jest bardzo niewiele danych w modelach zatrzymania krążenia związanych z AMI u świń. Echokardiografia przezklatkowa jest testem diagnostycznym pierwszego rzutu do oceny dysfunkcji mięśnia sercowego, zmian strukturalnych i/lub rozszerzenia AMI. W tym świńskim modelu niedokrwiennego zatrzymania krążenia echokardiografię wykonano na początku badania oraz 2-4 i 96 godzin po resuscytacji. W ostrej fazie badania wykonuje się u znieczulonych, wentylowanych mechanicznie świń (waga 39,8 ± 0,6 kg), a EKG rejestrowane jest w sposób ciągły. Pozyskiwane są zapisy mono- i dwuwymiarowe, dopplerowskie i dopplerowskie. Mierzy się średnicę aorty i lewego przedsionka, końcowoskurczową i końcoworozkurczową grubość ściany lewej komory, średnicę końcoworozkurczową i końcowoskurczową oraz frakcję skracającą (SF). Pozyskiwane są widoki wierzchołkowe 2-, 3-, 4- i 5-komorowe, obliczane są objętości nn i frakcja wyrzutowa. Segmentalna analiza ruchu ściany jest wykonywana w celu wykrycia lokalizacji i oszacowania zakresu zawału mięśnia sercowego. Echokardiografia dopplerowska z falą pulsacyjną służy do rejestrowania prędkości przepływu przezmitralnego z widoku 4-komorowej i przepływu przezaortalnego z widoku 5-komorowego w celu obliczenia rzutu serca LV (CO) i objętości wyrzutowej (SV). Rejestruje się obrazowanie dopplerowskie tkanek (TDI) pierścienia mitralnego bocznego i przegrody lewej wysokości (prędkości TDI przegrody i boczne s', e', a'). Wszystkie zapisy i pomiary wykonywane są zgodnie z zaleceniami Amerykańskiego i Europejskiego Towarzystwa Badań Echokardiograficznych.

Wprowadzenie

Zatrzymanie akcji serca często występuje kilka minut po wystąpieniu typowego bólu w klatce piersiowej, a w niektórych przypadkach jest to pierwsza manifestacja choroby wieńcowej1. W rzeczywistości 48% osób, które przeżyły pozaszpitalne zatrzymanie krążenia, ma niedrożność tętnicy wieńcowej na angiografii2. Ponadto u pacjentów, którzy powracają do krążenia spontanicznego (ROSC) po zatrzymaniu krążenia, dysfunkcja serca jest jednym z najważniejszych czynników determinujących zachorowalność i śmiertelność3.

Echokardiografia przezklatkowa (TTE) jest nieinwazyjnym narzędziem diagnostycznym i prognostycznym stosowanym u pacjentów do oceny dysfunkcji mięśnia sercowego po resuscytacji, zmian strukturalnych i/lub rozszerzenia AMI po ROSC i w następnych dniach. W eksperymentalnych niedokrwiennych i nieniedokrwiennych modelach zatrzymania krążenia u świń TTE jest często stosowany do nieinwazyjnej seryjnej oceny skurczowej czynności serca, hemodynamiki i odpowiedzi na leczenie. W 2008 roku opisano zmiany dysfunkcji rozkurczowej pod względem wzrostu prędkości E w mitralnej i stosunku prędkości e' dopplera tkankowego (TDI) (E/e') oraz spadku prędkości mitralnej E i stosunku prędkości A (E/A) wkrótce po resuscytacji w nieniedokrwiennym modelu zatrzymania krążenia u świni4.

Niniejsze badanie opisuje różne kroki metodologiczne stosowane w celu oceny struktury lewej komory (LV) oraz funkcji skurczowej i rozkurczowej lewej komory za pomocą TTE w różnych punktach czasowych w niedokrwiennym modelu zatrzymania krążenia u świni.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt i opieki nad nimi były zgodne z krajowymi i międzynarodowymi prawami i politykami. Zgodę na badanie uzyskano od instytucjonalnej komisji rewizyjnej Uniwersytetu w Mediolanie i instytucji rządowej (zgoda Ministerstwa Zdrowia nr 84/2014-PR). Dane, które potwierdzają wyniki tego badania, są dostępne u autora korespondencyjnego na uzasadnione żądanie. Model eksperymentalny i diagramy protokołu echokardiograficznego są szczegółowo opisane w Rysunek 1 i Rysunek 2.

1. Przygotowanie zwierząt

  1. Szybkie samce świń domowych (waga 39,8 ± 0,6 kg) przez 8 godzin w nocy przed eksperymentem. Zapewnij swobodny dostęp do wody.

2. Indukcja znieczulenia i leczenie podtrzymujące, profilaktyka antybiotykowa

  1. Wywołać znieczulenie ogólne przez domięśniowe wstrzyknięcie ketaminy (20 mg/kg), a następnie dożylnie (iv) propofolu (2 mg/kg). Sprawdź, czy głębokość znieczulenia jest wystarczająca poprzez utratę tonu szczęki, utratę odruchu rogówkowego z rozluźnieniem mięśni i potrzebę wentylacji mechanicznej.
  2. Wprowadzić cewnik do prawej żyły szyjnej i wprowadzić go do żyły głównej górnej.
  3. Utrzymuj znieczulenie za pomocą ciągłego dożylnego wlewu propofolu (4-8 mg/kg/h).
  4. Wstrzyknąć sufentanyl (0,3 μg/kg), a następnie ampicylinę (1 g) przez dożylnie.

3. Wentylacja mechaniczna, monitorowanie elektrokardiograficzne i hemodynamiczne

  1. Umieścić rurkę dotchawiczą z mankietem tak, aby świnie były wentylowane mechanicznie o objętości oddechowej 15 ml/kg i FiO2 0,21.
  2. Dostosuj częstotliwość oddychania i utrzymuj końcowe ciśnienie parcjalne dwutlenku węgla (EtCO2) w zakresie 35-40 mmHg za pomocą kapnometru na podczerwień.
  3. Ogol świnię maszynką do golenia na całej klatce piersiowej i lewej nodze (gdzie chirurgicznie zostaną wprowadzone cewniki wewnątrznaczyniowe do pomiarów hemodynamicznych).
  4. Nałóż blaszki elektrokardiogramu w płaszczyźnie czołowej (EKG) na ogolone stopy i dolną część brzucha, używając trzech elektrod EKG. Umieść dwa z nich na przednich łapach, a trzeci po lewej stronie brzucha.
  5. Wprowadzić cewnik wypełniony płynem do prawej tętnicy udowej w celu pomiaru średniego ciśnienia tętniczego oraz pobierania próbek krwi tętniczej pod kątem ciśnienia tlenu we krwi tętniczej (PO2), ciśnienia dwutlenku węgla (PCO2) i pH.
  6. Przesuń cewnik termorozcieńczalny 7 F pentalumen z prawej żyły udowej do tętnicy płucnej, aby zmierzyć ciśnienie w prawym przedsionku, temperaturę rdzenia i pojemność minutową serca.
  7. Wprowadzić cewnik zakończony balonem 5 F z prawej tętnicy szyjnej wspólnej. Przesuń go do aorty, a następnie do lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej poza pierwszą odnogę ukośną za pomocą angiografii. Potwierdzić prawidłowe ułożenie poprzez wstrzyknięcie radiograficznego środka kontrastowego.
  8. Przesunąć cewnik stymulujący 5 F z prawej żyły podobojczykowej do prawej komory (RV), aby wywołać migotanie komór (VF).

4. Wyjściowa echokardiografia przezklatkowa

UWAGA: Średnio echokardiografia trwa 20-30 minut. W przypadku TTE używana jest wieloczęstotliwościowa sonda z matrycą fazowaną od 2,5 do 5 MHz, podczas gdy EKG jest rejestrowane w sposób ciągły. Zestawy klatek i pętli filmowych składających się z co najmniej trzech kolejnych cykli pracy serca są przechowywane do analizy off-line.

  1. Wykonaj monowymiarowe (tryb M) i dwuwymiarowe (2D) echokardiograficzne obrazy krótko- i długoosiowe na poziomie aorty i lewej komory, aby ocenić grubość ściany, wymiary aorty, przedsionka i lewej wysokości, funkcję lewej komory i ruch ściany segmentowej.
    1. Wykonaj widok 2D z krótkiej osi na poziomie aorty. Ten widok pokazuje lewy przedsionek (LA, dolny środek), zastawkę aortalną (środek), prawy przedsionek (lewy dolny róg), zastawkę trójdzielną (po lewej), drogę odpływu prawej komory (u góry) i zastawkę płucną (po prawej). Umieść kursor na środku aorty i LA, aby zarejestrować odpowiednie obrazy w trybie M.
    2. Wykonaj widok 2D przymostkowy o długiej osi. Widok ten umożliwia wizualizację korzenia aorty i płatków zastawki aortalnej, przegrody międzykomorowej, LV i LA. Aorta musi znajdować się w tej samej płaszczyźnie poziomej i w kontinuum z przegrodą międzykomorową; Płatki aorty muszą być wyraźnie widoczne. Umieść przetwornik w trzeciej lub czwartej lewej przestrzeni międzyżebrowej, ze wskaźnikiem skierowanym w stronę prawej flanki, dokonując niewielkich zmian w kątowaniu sondy, aby uzyskać ustandaryzowany widok.
      UWAGA: Widoki przymostkowe w krótkiej i długiej osi służą do pomiaru szerokości korzenia aorty i przednio-tylnego wymiaru LA. Obrazy w trybie M mogą być wykonywane z długiej lub krótkiej osi na poziomie zastawki aortalnej (patrz krok 4.1).
    3. Wykonaj widok 2D z krótkiej osi lewej kości na poziomie brodawkowatym. Użyj widoku krótkiej osi na poziomie brodawek lub cięciw do pomiarów wymiarów LV; W ten sposób u zwierzęcia wentylowanego łatwiej jest uzyskać ustandaryzowany obraz w porównaniu z obrazem w widoku długoosiowym.
      UWAGA: LV musi wyglądać na okrężny, a oba mięśnie brodawkowate muszą być wyraźnie widoczne. Mięśnie brodawkowate nazywane są umownie mięśniami przednio-bocznymi i tylno-przyśrodkowymi. Jeśli płatki mitralne są widoczne, a wolna ściana prawej komory nie jest kontinuum, obraz nie jest ustandaryzowany.
    4. Umieść kursor na środku LV i nagraj obraz LV w trybie M na poziomie brodawek.
    5. Powtórz kroki 4.1.3 i 4.1.4, szukając poziomu podbrodawkowatego i wierzchołkowego LV.
  2. Wykonaj widok wierzchołkowy 2D z 4 komorami (AP4CH). LV, LA, prawa komora (RV) i prawy przedsionek (RA) są widoczne razem z zastawkami mitralnymi i trójdzielnymi oraz przegrodą międzyprzedsionkową i międzykomorową. Umieść sondę na poziomie wierzchołka mięśnia sercowego (czwarta przestrzeń międzyżebrowa; znacznik na sondzie musi być zorientowany w lewo). Strukturą, która pomaga ujednolicić widok, jest przegroda międzykomorowa, która powinna być wyświetlana równolegle do wiązki ultrasonograficznej. Jest to możliwe dzięki przesuwaniu przetwornika przyśrodkowo lub na boki.
    UWAGA: Skrót perspektywiczny występuje, gdy płaszczyzna obrazowania nie przechodzi przez prawdziwy wierzchołek lewej wysokości, co skutkuje ukośnym widokiem wnęki lewej komory. Skrót perspektywiczny zaniża wolumeny LV i przeszacowuje LVEF. Skrócenia perspektywicznego unika się poprzez zmianę pozycji sondy i/lub przesunięcie jej do niższej przestrzeni międzyżebrowej i na boki. Długa oś LV musi być większa niż 4,8 cm u świń o masie ciała 33-35 kg.
  3. Spójrz na wierzchołkowy widok dwukomorowy (AP2CH). Z AP4CH obróć przetwornik o 45-60° w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara; widoczne muszą być tylko LA i LV, więc omijaj przegrodę międzykomorową i sprawdź, czy kursor przechodzi w środku LA i LV.
  4. Wykonaj widok wierzchołkowy trzykomorowy (AP3CH) lub wierzchołkową długą oś. Od AP4CH obróć przetwornik o 45-60° w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara. W AP3CH widoczny jest wierzchołek lewej komory wraz z przegrodą przednią i tylno-bocznymi segmentami LV. Inne widoczne struktury to LVOT, LA i zastawka aortalna.
  5. Spójrz na wierzchołkowy widok z pięciokomorową komorą (AP5CH). Zacznij od widoku AP4CH i ustaw sondę pod kątem brzusznym, a następnie bocznym, aby uwidocznić skośną przegrodę, aortę z LVOT, LV, RV i oba przedsionki.
  6. Pulsacyjna echokardiografia dopplerowska (PW)
    UWAGA: Metoda ta umożliwia: (1) pomiar prędkości przepływu przezpęcherzowego, rzutu serca i objętości wyrzutowej; (2) pomiar interwałów, np. czasu przyspieszenia tętnicy płucnej oraz (3) ocena funkcji rozkurczowej lewej komory rozkurczowej.
    UWAGA: Zjawiska aliasingu unika się poprzez obniżenie podstawowej częstotliwości powtarzania impulsów lub zwiększenie jej, gdy pojawiają się nowe niepokojące częstotliwości.
    1. Aby uzyskać ustandaryzowany widok AP4CH, użyj kolorowego Dopplera i nagraj pętlę cine-loop.
    2. Umieść objętość próbki PW na wierzchołku płatków mitralnych i użyj kolorowego Dopplera, aby umieścić kursor prostopadle do przepływu mitralnego i wyrównany do długiej osi lewej komory. Następnie przełącz się na PW i zapisz co najmniej trzy cykle pracy serca.
    3. Aby uzyskać ustandaryzowany widok AP5CH, użyj kolorowego Dopplera i nagraj pętlę filmową z co najmniej trzema cyklami pracy serca.
    4. Użyj kolorowego Dopplera, aby ustawić kursor prostopadle do przepływu aorty. Przesuń objętość próbki w kierunku zastawki aortalnej, aż prędkość przepływu przyspieszy. Zapisz co najmniej trzy cykle pracy serca.
  7. Zastosuj obrazowanie dopplerowskie (TDI): ze standaryzowanego 2D AP4CH, PW TDI mierzy szczytową podłużną prędkość mięśnia sercowego z pojedynczego segmentu.
    UWAGA: Głównym ograniczeniem TDI jest jego zależność od kąta. Jeśli kąt padania przekracza 15°, oznacza to około 4% niedoszacowania prędkości.

5. Indukcja zawału mięśnia sercowego

  1. Napompuj balon cewnika w lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej 0,7 ml powietrza. Potwierdź okluzję za pomocą szybkiego, postępującego uniesienia odcinka ST EKG5.

6. Zatrzymanie akcji serca

  1. Zatrzymanie akcji serca definiuje się w momencie wystąpienia migotania komór. Po 10 minutach od zgryzu migotanie komór może wystąpić samoistnie. W przeciwnym razie należy go wywołać za pomocą cewnika stymulującego z prądem przemiennym (AC) o natężeniu od 1 do 2 mA dostarczanym do wsierdzia prawej komory.
  2. Przerwać wentylację po wystąpieniu migotania komór i opróżnić cewnik zakończony balonem5.

7. Resuscytacja krążeniowo-oddechowa

  1. Po 12 minutach nieleczonego migotania komór rozpocznij manewry resuscytacji krążeniowo-oddechowej (RKO). Należą do nich uciskanie klatki piersiowej za pomocą mechanicznego kompresora klatki piersiowej oraz wentylacja mechaniczna tlenem (objętość oddechowa 500 ml, 10 oddechów na minutę).
  2. Po 2 minutach i co 5 minut resuscytacji krążeniowo-oddechowej wstrzyknąć epinefrynę (30 μg/kg) przez cewnik umieszczony w prawym przedsionku.
  3. Po 5 minutach resuscytacji podejdź próbę defibrylacji wstrząsem o sile 150 dżuli przy użyciu defibrylatora.
    UWAGA: Skuteczna resuscytacja jest definiowana jako przywrócenie prawidłowego rytmu serca przy średnim ciśnieniu tętniczym >60 mmHg5.

8. Opieka wspomagająca po zatrzymaniu krążenia

  1. Po udanej resuscytacji należy utrzymać znieczulenie i napompować balon w lewej przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej.
  2. Czterdzieści pięć minut po resuscytacji opróżnij balon i wycofaj lewy cewnik do przedniej zstępującej tętnicy wieńcowej5 (Rysunek 1).
  3. Jeśli resuscytacja nie zostanie natychmiast wykonana, wznów resuscytację krążeniowo-oddechową i kontynuuj ją przez 1 minutę przed kolejną defibrylacją.
  4. Jeśli migotanie komór nawróci, należy je leczyć natychmiastową defibrylacją.
  5. Nie stosuj żadnych środków wspomagających innych niż epinefryna.

9. Czterogodzinna (h) obserwacja

  1. Po udanej resuscytacji należy utrzymać znieczulenie.
  2. Monitorować zwierzęta hemodynamicznie podczas 4-godzinnego (krótkotrwałego) okresu obserwacji.
  3. Utrzymuj temperaturę zwierząt na poziomie 38 ± 0,5 °C.
  4. Po 2 i 4 godzinach od resuscytacji powtórzyć pełne badanie echokardiograficzne, postępując zgodnie z czynnościami opisanymi w punkcie 4.
    UWAGA: Złamane żebra mogą być konsekwencją ucisku klatki piersiowej. W takim przypadku ważne jest, aby przesuwać sondę, delikatnie dociskając ją do przestrzeni międzyżebrowych.
  5. Po 4-godzinnej obserwacji należy ekstubować świnie i umieścić je z powrotem w klatce.
  6. Podawać środek przeciwbólowy z butorfanolem (0,1 mg/kg) we wstrzyknięciu domięśniowym (IM) lub zgodnie z zaleceniami zawartymi w wytycznych dotyczących opieki nad zwierzętami.
  7. Następnie wstrzyknąć ampicylinę (1 g) domięśniowo.

10. 96-godzinna obserwacja i eutanazja

  1. Pod koniec 96 godzin po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC (w połowie terminu) ponownie znieczulić zwierzęta (krok 2) do badania echokardiograficznego (krok 4). Monitoruj EKG w sposób ciągły, jak opisano wcześniej (krok 3).

11. Pomiary echokardiograficzne

UWAGA: Wykonuj wszystkie zapisy i pomiary zgodnie z zaleceniami Wytycznych Amerykańskiego i Europejskiego Towarzystwa Echokardiografii6,7. Wyślij wszystkie nagrania echokardiograficzne za pomocą połączenia pulpitu zdalnego do przechowywania w lokalnej bazie danych w celu analizy. Kardiolog zaślepiony na badane grupy wykonuje średnio co najmniej trzy pomiary dla każdej zmiennej.

  1. Dla średnicy aorty i LA należy zmierzyć od postaci M widoków krótkiej osi na poziomie zatok aortalnych, stosując metodę od krawędzi natarcia do krawędzi natarcia.
  2. W przypadku średnicy drogi odpływu LV (LVOT) należy ją zmierzyć 0,5-1 cm poniżej guzka aorty (proksymalnego) z perspektywy przymostkowej w osi długiej.
  3. W przypadku końcoworozkurczowej grubości ściany przednio-przegrodowej i tylnej rozkurczowej na poziomie brodawkowatym, zmierz na końcu rozkurczu od granicy między ścianą mięśnia sercowego a jamą oraz granicy między ścianą mięśnia sercowego a osierdziem.
  4. Dla frakcji wyrzutowej LV (LVEF) obliczyć ją jako: (objętość końcoworozkurczowa LV (EDV)-objętość końcowoskurczowa LV (ESV)) / (LVEDV) * 100. Koniec rozkurczu należy zdefiniować jako pierwszą klatkę po zamknięciu zastawki mitralnej lub ramkę, w której wymiar LV jest najczęściej największy. Zdefiniuj skurcz końcowy jako ramkę po zamknięciu zastawki aortalnej lub ramkę, w której wymiary serca są najmniejsze. Postępuj zgodnie ze śladami pomiarów obszaru lewej komory na granicy mięśnia sercowego i jamy lewej komory. Mierz obszary LV i obliczaj objętości LV za pomocą zmodyfikowanej reguły pojedynczej płaszczyzny Simpsona z widoku AP4CH.
  5. Powtórz krok 11.4 w widoku AP2CH dla dwupłaszczyznowej metody Simpsona, która wykorzystuje widoki końcoworozkurczowe i końcowoskurczowe AP4CH i AP2CH do obliczania objętości NV i LVEF.
  6. Dla szczytowej prędkości napływu zastawki mitralnej PW (E vel) (cm/s), prędkości A (A vel) i czasu opóźnienia fali E (DT), zmierz je ze spektrum przepływu mitralnego (Rysunek 6).
  7. W przypadku skurczowych prędkości s TDI oraz rozkurczowych prędkości e' i a' zmierz je na podstawie obrazów widma TDI w widoku AP4CH z pierścienia przegrodowego lub bocznego i oblicz średnie na początku badania i 96 godzin po niedrożności naczyń wieńcowych.
    UWAGA: Stosunek prędkości e' wyprowadzony z E vel do TDI (cm/s) (E/e') jest wskaźnikiem funkcji rozkurczowej. Normalny stosunek E/e′ powinien wynosić 9 lub mniej lub więcej niż 15; Wartości z przedziału 8-14 mają nieokreślone znaczenie.
  8. Oblicz objętość wyrzutową (SV) jako objętość krwi wypompowywanej z lewej komory przy każdym skurczu. Wzór SV to: SV = π * [średnica LVOT/2]2 * LVOT VTI.
  9. Oblicz pojemność minutową serca (CO, ml/min) jako przepływ krwi przez drogę odpływu co minutę. Oblicza się go według wzoru: CO = SV * HR.
  10. W celu analizy ruchliwości regionalnej lewej komory należy podzielić ją na 16 segmentów (wizualizowanych w widokach krótkiej osi i/lub widokach wierzchołkowych 2, 3, 4 komór). Oceń każdy segment przy użyciu następujących kryteriów: normo-kinezja (1 punkt) dla normalnego pogrubienia i wychylenia ścian; hipokinezja (2 punkty) w celu zmniejszenia pogrubienia ścian i zmniejszenia wychylenia ścian; akinezja (3 punkty) brak pogrubienia ścian lub nachylenia ścian; dyskineza (4 punkty); Skurczowe ścieńczenie ścian na zewnątrz lub LV obejmuje ruch ściany tętniaka, z ekscentrycznymi wybrzuszeniami zarówno podczas skurczu, jak i rozkurczu. Oblicz wskaźnik punktacji ruchu ściany (WMSI) za pomocą wzoru: wynik całkowity/16. W komorze normo-kinetycznej WMSI wynosi 1.

12. Analiza statystyczna

  1. Wyraź dane jako średnią ± SEM. Użyj jednoczynnikowej ANOVA, do powtarzanych pomiarów i testu post-hoc Tukeya. *p < 0,05 w stosunku do wartości wyjściowej (BL); § p < 0,05 2 h po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC vs 96 h po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC; # p < 0,05 4 h po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC vs 96 h po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Dwunastu świniom wykonano okluzję tętnicy wieńcowej, po której nastąpiło 12 min migotania komór oraz 5 min RKO. Osiem świni udało się pomyślnie reanimować, a siedem przeżyło do 96 h po AMI-zatrzymaniu krążenia-ROSC. Wszystkie zmienne echokardiograficzne w różnych punktach czasowych podczas badania zostały podsumowane w Tabeli 1.

Zmiany częstości akcji serca (HR) i echokardiograficznych parametrów skurczowych
HR wzrosła istotnie w 2. i 4. godzinie po wystąp...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Pełne badanie echokardiograficzne w eksperymentalnym modelu AMI, zatrzymanie krążenia i resuscytacja u świni może dostarczyć różnych informacji na temat ewolucji funkcji lewej komory i zmian strukturalnych lewej komory, chociaż pewna ilość danych jest dostępna w literaturze 5,8. W "czystych" modelach eksperymentalnego zatrzymania krążenia (ograniczonego do indukowanego migotania komór) upośledzenie funkcji mięśnia sercowego odwraca się w pierwszych dniach po ROSC...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Jesteśmy wdzięczni Judith Bagott za redakcję języka.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
AquasonicParker-żelultradźwiękowy
Jednorazowe monitorowanie i testy wysiłkowe EKG w piance dla dorosłych, mokry żel, nieinwazyjny patienElektroda EKGPhilips40493E
Bellavista 1000MB230000 Bellavistakapnometrem na podczerwień
ComPACSMedimatic SRL-lokalna baza danych i oprogramowanie
CX50Aparat echokardiograficzny
Philips InTube Rurka tchawicaIntersurgical Ltd8040080rurka dotchawicza z mankietem
LUCAS2Phisio-Control Incmechanicznykompresor klatki piersiowej
Defibrylator MRxDefibrylator
Philips S5-1Sonda Philips-PhasedArray
Cewnik Swan-Ganz 2 lumeny 5frEdwards110F5do niedrożności tętnic wieńcowych
Cewnik Swan-Ganz 2 lumeny 7frEdwards111F7do pomiaru średniego ciśnienia tętniczego
Cewnik Swan-Ganz do termorozcieńczenia 7frEdwards131F7do pomiaru ciśnienia w prawym przedsionku, temperatury głębokiej i rzutu serca
Wentylator z

Bibliografia

  1. Kubota, T., et al. Out-of-hospital cardiac arrest does not affect post-discharge survival in patients with acute myocardial infarction. Circulation Reports. 3 (4), 249-255 (2021).
  2. Spaulding, C. M., et al. Immediate coronary angiography in survivors of out-of-hospital cardiac arrest. The New England Journal of Medicine. 336 (23), 1629-1633 (1997).
  3. Nolan, J. P., et al. European Resuscitation Council and European Society of Intensive Care Medicine guidelines 2021: post-resuscitation care. Intensive Care Medicine. 47 (4), 369-421 (2021).
  4. Xu, T., et al. Postresuscitation myocardial diastolic dysfunction following prolonged ventricular fibrillation and cardiopulmonary resuscitation. Critical Care Medicine. 36 (1), 188-192 (2008).
  5. Fumagalli, F., et al. Ventilation with argon improves survival with good neurological recovery after prolonged untreated cardiac arrest in pigs. Journal of the American Heart Association. 9 (24), 016494(2020).
  6. Nagueh, S. F., et al. et al Recommendations for the evaluation of left ventricular diastolic function by echocardiography: An update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging. Journal of the American Society of Echocardiography. 29 (4), 277-314 (2016).
  7. Lang, R. M., et al. et al Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging. Journal of the American Society of Echocardiography. 28 (1), 1-39 (2015).
  8. Yang, L., et al. Investigation of myocardial stunning after cardiopulmonary resuscitation in pigs. Biomed Environ Sci. 24 (2), 155-162 (2011).
  9. Vammen, L., et al. Cardiac arrest in pigs with 48 hours of post-resuscitation care induced by 2 methods of myocardial infarction: A methodological description. Journal of the American Heart Association. 10 (23), 022679(2021).
  10. Ristagno, G., et al. Postresuscitation treatment with argon improves early neurological recovery in a porcine model of cardiac arrest. Shock. 41 (1), 72-78 (2014).
  11. Rysz, S., et al. et al The effect of levosimendan on survival and cardiac performance in an ischemic cardiac arrest model - A blinded randomized placebo-controlled study in swine. Resuscitation. 150, 113-120 (2020).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Świnie po zatrzymaniu krążeniadysfunkcja mięśnia sercowego po reanimacjiwidoki komory w przekroju koniuszkowymobrazowanie dopplerowskie tkanekdoppler falowypomiar frakcji wyrzutowejsegmentowa kurczliwość ścian