Artykuł metodologiczny

Wspomagająca laseroterapia diodowa i probiotyczna terapia Lactobacillus w leczeniu paradontozy i chorób okołoimplantologicznych

DOI:

10.3791/63893

⸱

9 maja 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Key Laboratory of Shaanxi Province for Craniofacial Precision Medicine Research, College of Stomatology, Xi’an Jiaotong University, 2Department of Periodontology, College of Stomatology, Xi’an Jiaotong University, 3Department of Prosthodontics, College of Stomatology, Xi’an Jiaotong University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten artykuł opisuje dwa protokoły: 1) wspomagającą terapię laserem diodowym w leczeniu zapalenia przyzębia i 2) probiotyczną terapię Lactobacillus w leczeniu choroby okołoimplantowej, z naciskiem na tryb użycia lasera (wewnętrzna lub zewnętrzna kieszeń), schemat aplikacji lasera (pojedyncze lub wielokrotne sesje) oraz protokół probiotyczny do profesjonalnego i domowego podawania.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroby przyzębia i okołoimplantacyjne to infekcje wywołane przez płytkę nazębną o dużej częstości występowania, poważnie pogarszające jakość życia ludzi. Laser diodowy od dawna jest zalecany jako terapia wspomagająca w leczeniu zapalenia przyzębia. Jednak optymalna kombinacja trybu użytkowania (wewnętrzna lub zewnętrzna kieszonka przyzębna) i schematu aplikacji (jedna lub wielokrotna sesja wizyty) nie została szczegółowo opisana. Tymczasem probiotyk Lactobacillus jest uważany za potencjalny adiuwant w leczeniu choroby okołoimplantowej. Niemniej jednak brakuje szczegółowego protokołu skutecznego stosowania probiotyków. Niniejszy artykuł ma na celu podsumowanie dwóch protokołów klinicznych. W przypadku zapalenia przyzębia zidentyfikowano optymalną współpracę między trybem użycia lasera a schematem aplikacji. Jeśli chodzi o zapalenie błony śluzowej wokół implantu, ustalono terapię skojarzoną obejmującą profesjonalne stosowanie miejscowe i domowe podawanie probiotyku Lactobacillus. Ten zaktualizowany protokół laserowy wyjaśnia związek między trybem leczenia (wewnątrz lub na zewnątrz kieszonki przyzębnej) a liczbą wizyt laserowych, jeszcze bardziej udoskonalając istniejącą terapię laserem diodowym. W przypadku naświetlania kieszeni wewnętrznej sugeruje się pojedynczą sesję leczenia laserowego, podczas gdy w przypadku naświetlania kieszeni zewnętrznej lepsze efekty zapewnia wielokrotne sesje leczenia laserowego. Ulepszona terapia probiotykami Lactobacillus spowodowała zniknięcie obrzęku błony śluzowej wokół implantu, zmniejszenie krwawienia przy sondowaniu (BOP) oraz oczywiste zmniejszenie i dobrą kontrolę płytki nazębnej i pigmentacji; jednak głębokość kieszeni sondowania (PPD) uległa ograniczonej poprawie. Obecny protokół należy traktować jako wstępny i można go jeszcze udoskonalić.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroba przyzębia to przewlekła, wieloczynnikowa infekcja powodująca postępujące niszczenie przyzębia1. Jego ciężka postać, zapalenie przyzębia, dotyka do 50% populacji na całym świecie2 i jest uważana za główną przyczynę utraty zębów u dorosłych3. Zastępowanie brakujących zębów implantami dentystycznymi jest szeroko faworyzowane w porównaniu z tradycyjnymi opcjami4. Implanty wykazują wybitne parametry funkcjonalne i estetyczne, a długoterminowy wskaźnik przeżycia wynosi 96,1% po 10 latach5,6. Implanty mogą jednak cierpieć na chorobę okołoimplantacyjną prowadzącą do zapalenia błony śluzowej (zapalenie błony śluzowej wokół implantu) lub utraty kości wokół implantu (peri-implantitis)7, co może spowodować awarię implantu8. Dlatego tak ważne jest, aby skutecznie radzić sobie z chorobami przyzębia i okolic implantów, aby zachować naturalne zęby lub poprawić przeżywalność implantów dentystycznych.

Choroby przyzębia i okołoimplantowe mają podobną etiologię9, tzn. oba są inicjowane przez ekspozycję na płytkę nazębną, składającą się głównie z bakterii beztlenowych i mikroaerofilnych10. Mechaniczne oczyszczanie jest uważane za niezawodną metodę skutecznego rozbijania patogennych złogów na powierzchni korzeni lub implantów11. Niemniej jednak ma ograniczony dostęp do narzędzi w przypadku złożonej anatomii zęba (tj. furkacji korzenia i rowka), co prowadzi do niewystarczającej dekontaminacji12. W tym kontekście pojawiło się zastosowanie laserów i probiotyków w celu uzupełnienia mechanicznego oczyszczania13,14.

Zaproponowano różne lasery do leczenia periodontologicznego, takie jak Nd:YAG; emisji CO2 ; Er:YAG; Er,Cr:YSGG; oraz diode laser15. Wśród nich laser diodowy jest najpopularniejszym wyborem do leczenia klinicznego ze względu na jego przenośność i niski koszt16. Laser diodowy jest zalecany jako idealny środek wspomagający w niszczeniu biofilmów, eliminowaniu stanów zapalnych i ułatwianiu gojenia się ran dzięki swojej fotobiomodulacji i efektom fototermicznym12,13. Różnorodność zastosowań lasera prowadzi jednak do znacznej niejednorodności klinicznej między obecnymi badaniami. Dlatego w naszej ostatniej publikacji oceniliśmy 30 badań klinicznych i podsumowaliśmy optymalną kombinację trybu użytkowania lasera i schematu aplikacji12. Jednak niewiele badań przedstawia szczegółową procedurę protokołu skojarzonego. Z drugiej strony, probiotyk Lactobacillus przyciąga coraz większą uwagę jako potencjalny adiuwant w leczeniu chorób okołoimplantacyjnych, ze względu na jego działanie przeciwbakteryjne i przeciwzapalne17,18. Korzyści kliniczne nie osiągnęły jednak zadowalającego konsensusu. Jedna z kluczowych relacji odnosiła się do różnorodności protokołów podawania probiotyków17.

Na podstawie aktualnych dowodów, ten artykuł opisuje dwa zmodyfikowane protokoły kliniczne: istniejący protokół użycia wspomagającego lasera diodowego w leczeniu zapalenia przyzębia jest ulepszony w oparciu o dwa tryby użycia lasera (wewnętrzna lub zewnętrzna kieszeń) i dwa schematy aplikacji (jedna lub wielokrotna sesja wizyty)12. Dla wspomagającej terapii probiotykowej Lactobacillus w leczeniu choroby okołoimplantalnej opisano kombinację profesjonalnego stosowania miejscowego i domowego podawania probiotyku17.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

To badanie zostało zatwierdzone przez Institutional Review Board of the College of Stomatology, Xi'an Jiaotong University (xjkqll[2022]NO.034). Pacjenci biorący udział w tym badaniu uzyskali świadomą zgodę.

1. Wspomagająca laseroterapia diodowa w niechirurgicznym leczeniu paradontozy

  1. Kryteria kwalifikowalności
    1. Należy zastosować następujące kryteria włączenia: wiek ≥ 18 lat, głębokość kieszonki sondującej (PPD) ≥ 5 mm, wykrywalny kliniczny ubytek przyczepu (CAL) i radiologiczny ubytek kości (RBL).
    2. Stosuj następujące kryteria wykluczenia: pacjenci z chorobami systemowymi lub przyjmujący leki, które mogą wpływać na stan zapalny i proces gojenia; pacjenci, którzy otrzymali leczenie periodontologiczne w ciągu 6 miesięcy; palacze tytoniu lub alkoholicy; pacjenci w ciąży lub karmiący piersią; zmiany złożone przyzębia i endodontyczne; ruchomość zębów klasy III.
  2. Badanie kliniczne
    1. Zmierz PPD w całej jamie ustnej, krwawienie przy sondowaniu (BOP) w sześciu miejscach na ząb (tj. mezjopoliczkowe, policzkowe, dystalno-policzkowe, dystalne językowe, lingwalne i mezjojęzykowe) oraz ruchomość każdego zęba, z wyjątkiem trzecich zębów trzonowych. Zmierz CAL dla zębów z PPD ≥ 5 mm. Wykryj połączenie cementowo-szkliwiowe, sondując, aby obliczyć CAL.
    2. Zapisz parametry wyjściowe na karcie periodontologicznej (plik uzupełniający 1).
  3. Dezynfekcja i znieczulenie
    1. Płucz gardło 3% wodą utlenioną przez 1 minutę, a następnie czystą wodą. Zdezynfekuj obszar operacyjny 1% jodoforem. Podać miejscowy zastrzyk adrenaliny prykainy do znieczulenia.
  4. Mechaniczne oczyszczanie metodą skalingu i strugania korzeni (SRP)
    UWAGA: SRP jest niezbędny w leczeniu zapalenia przyzębia, w tym w czyszczeniu ultradźwiękowym lub ręcznym. Skaling dentystyczny usuwa płytkę nazębną i kamień nazębny z powierzchni zęba powyżej i poniżej linii dziąseł. Struganie korzeni zwykle następuje po skalingu zębów i próbuje wygładzić szorstką powierzchnię korzenia i pomaga dziąsłom ponownie przymocować się do zębów.
    1. Po pierwsze, użyj urządzenia ultradźwiękowego, aby wykonać SRP dla zębów z PPD > 3 mm. Po drugie, użyj ręcznych narzędzi (kirety Gracey 5/6, 7/8, 11/12 i 13/14), aby wykonać SRP dla zębów z PPD > 3 mm (Rysunek 1). Po trzecie, użyj urządzenia ultradźwiękowego, aby wykonać SRP dla tych zębów po raz drugi.
      UWAGA: Sam laser diodowy nie jest skuteczny w eliminowaniu rachunku różniczkowego, więc nie można pominąć dokładnego SRP. Jeśli pacjent ma dużą liczbę dotkniętych zębów, podczas każdej wizyty można leczyć tylko jeden kwadrant. Ultradźwiękowy i manualny SRP można wykonać w ciągu 1-4 wizyt.
    2. Opłucz kieszonki przyzębne 3% wodą utlenioną i płucz gardło czystą wodą.
    3. Nałóż pastę polerską na powierzchnię zębów, wypoleruj pełne powierzchnie zębów za pomocą wolnoobrotowej rękojeści z gumową nasadką, a następnie przepłucz gardło czystą wodą.
  5. Wspomagająca laseroterapia diodowa
    UWAGA: Do leczenia laserowego wybierz zęby o PPD ≥ 5 mm. Wybierz jeden z następujących dwóch trybów użytkowania (tj. kroki 1.5.1 lub 1.5.2).
    1. Wewnętrzne naświetlanie laserem kieszonkowym (sugeruje się tylko jedną sesję zabiegu laserowego na ząb) (Rysunek 2A).
      1. Upewnij się, że zarówno operator, jak i pacjent noszą okulary ochronne, aby chronić oczy przed uszkodzeniem lasera.
      2. Przygotuj urządzenie z laserem diodowym (długość fali = 980 nm, moc wyjściowa = 1 W, gęstość mocy = 1414,7 W/cm2, fala ciągła, światłowodowy system dostarczania 300 μm).
        UWAGA: Niewłaściwe zwiększenie mocy może spowodować uszkodzenia termiczne; Przed użyciem skonsultuj się z producentem lasera i postępuj zgodnie z instrukcjami producenta.
      3. Skalibruj długość końcówki światłowodu odsłoniętej o 1 mm mniejszą niż zmierzona PPD ( Rysunek 2B).
        UWAGA: Aby zapobiec krwawieniu z powodu zbyt głębokiego włożenia końcówki z włókna do kieszonki przyzębnej, ogólnie zaleca się, aby długość odsłoniętej końcówki z włókna była o 1 mm mniejsza niż zmierzona głębokość kieszonki przyzębnej.
      4. Delikatnie włóż końcówkę z włókna do kieszonki przyzębnej o 1 mm mniej niż zmierzona PPD i powoli przesuwaj końcówkę zarówno w kierunku mezjalno-dystalnym, jak i wierzchołkowo-koronalnym przez 30 s na ząb (Rysunek 2B, C).
        UWAGA: Podczas tego procesu zbyt głębokie wprowadzenie włókna do kieszonki przyzębnej może podrażnić krwawienie z przyzębia, a tym samym uniemożliwić działanie lasera. Usuń granulację przymocowaną do końcówki z włókna za pomocą wacika zawierającego 75% alkoholu, aby uniknąć zagrożenia skuteczności lasera.
    2. Zewnętrzne naświetlanie laserem kieszonkowym (sugerowane jest łącznie 3-5 sesji wizyt laserowych na ząb) (Rysunek 3A).
      1. Upewnij się, że zarówno operator, jak i pacjent noszą okulary ochronne, aby chronić oczy przed uszkodzeniem lasera.
      2. Przygotuj urządzenie z laserem diodowym (długość fali = 980 nm, moc wyjściowa = 0,4 W, gęstość mocy = 566,2 W/cm2, fala ciągła, światłowodowy system dostarczania 300 μm).
      3. Naświetlić powierzchnię dziąsła kieszonki przez około 15 s na kieszeń, przy czym końcówka lasera z włókna laserowego znajduje się w odległości 5 mm (2-10 mm) od powierzchni dziąsła i jest skierowana pod kątem 90° (Rysunek 3B, C).
      4. Powtórz ten sam zabieg laserem kieszonkowym po 1, 3, 5 i 7 dniach.
  6. Przekaż każdemu pacjentowi instrukcję higieny jamy ustnej (OHI), w tym technikę szczotkowania Bass, nić międzyzębową i brush19.
  7. Badanie kliniczne
    1. Zmierz PPD, CAL i BOP dla każdego zęba 4-6 tygodni, 3 miesiące i 6 miesięcy po leczeniu periodontologicznym. Zapisz parametry pooperacyjne na nowej karcie periodontologicznej (plik uzupełniający 1).
    2. Porównaj parametry wyjściowe i pooperacyjne.

2. Wspomagająca probiotykoterapia w niechirurgicznym leczeniu zapalenia błony śluzowej wokół implantu (Rysunek 4A)

  1. Kryteria kwalifikowalności
    1. Należy zastosować następujące kryteria włączenia: wiek ≥ 18 lat; co najmniej jeden implant z rumieniem, obrzękiem, ropieniem lub BOP w błonie śluzowej wokół implantu; radiologiczny ubytek kości (RBL) < 2 mm.
    2. Należy zastosować następujące kryteria wykluczenia: peri-implantitis (RBL ≥ 2 mm); implanty z ruchomością; pacjenci z chorobami systematycznymi lub przyjmującymi leki, które mogą wpływać na stan zapalny i proces gojenia; pacjenci, którzy otrzymali leczenie periodontologiczne w ciągu 6 miesięcy; palacze lub alkoholicy; pacjenci w ciąży lub karmiący piersią.
  2. Badanie kliniczne
    1. Zmierz parametry kliniczne PPD, BOP w sześciu miejscach na implant (tj. mezjopoliczkowe, policzkowe, dystalne, dystalne językowe, językowe i mezjojęzykowe) oraz wskaźnik płytki nazębnej (PI) w czterech miejscach na implant (tj. mezjalny, policzkowy, dystalny i językowy).
    2. Zapisz parametry wyjściowe na karcie periodontologicznej (plik uzupełniający 1).
  3. W celu dezynfekcji płucz gardło 3% nadtlenkiem wodoru przez 1 minutę, a następnie czystą wodą.
  4. Mechaniczne oczyszczanie za pomocą skalingu naddziąsłowego
    1. Użyj tytanowej końcówki ultradźwiękowej, aby wykonać skaling naddziąsłowy dla implantów zapalenia błony śluzowej, dostosowując tryb do średniej mocy (Rysunek 4B). Opłucz kieszenie 3% wodą utlenioną, a następnie płucz gardło czystą wodą.
      UWAGA: Skaling naddziąsłowy usuwa płytkę nazębną i kamień nazębny z powierzchni protezy implantu powyżej linii dziąseł.
  5. Profesjonalne podawanie probiotyku
    1. Zmiel tabletkę probiotyczną na proszek za pomocą wysterylizowanego moździerza (Rysunek 4C).
      UWAGA: Jeśli w proszku znajdują się grudkowate cząstki, mogą one łatwo zatkać strzykawkę.
    2. Przygotuj roztwór probiotyku w proszku i sterylnej soli fizjologicznej w stosunku 1:3 (Rysunek 4D). Dostarczyć roztwór probiotyczny do bruzdy wokół implantu za pomocą strzykawki o pojemności 5 ml z i miękką końcówką (Rysunek 4E).
  6. Domowe podawanie probiotyków
    1. Poinstruuj pacjentów, aby rozpuścili jedną tabletkę przez około 10 minut w jamie ustnej co 12 godzin, dwa razy dziennie przez 1 miesiąc (Rysunek 4A).
  7. Każdemu pacjentowi podaj OHI, w tym technikę szczotkowania Bass, nić międzyzębową i brush19.
  8. Badanie kliniczne
    1. Zmierz PPD, PI i BOP dla każdego implantu 4-6 tygodni, 3 miesiące i 6 miesięcy po leczeniu. Zapisz parametry pooperacyjne na nowej karcie periodontologicznej (plik uzupełniający 1).
    2. Porównaj parametry wyjściowe i pooperacyjne.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kieszonki przyzębne z PPD ≥ 5 mm wymagają naświetlania laserowego po SRP, ponieważ trudno jest uzyskać całkowite oczyszczenie za pomocą samego SRP (Rysunek 1A,B). Po SRP, jeśli kieszonki przyzębne obficie krwawią i zakrzepną na powierzchni zęba, operator musi zatrzymać krwawienie i usunąć skrzep poprzez kilkukrotne płukanie i płukanie gardła. Dzieje się tak, ponieważ duża ilość krwi uniemożliwi działanie lasera (Rysunek 1C,D).

<...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Chociaż laser diodowy jest szeroko stosowany w terapii periodontologicznej, jego skuteczność kliniczna pozostaje kontrowersyjna wśród obecnych badań klinicznych15,20. Jak wykazano, tryb użytkowania lasera i schemat jego stosowania mają znaczący wpływ na skuteczność laseroterapii periodontologicznej12. Większość badaczy ignoruje jednak potencjalną rolę, uzyskując wyniki, które są trudne do wyjaśnienia. W różnych trybach użytkowania nadmiern...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie pozostają w konflikcie interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (granty o numerach 82071078, 81870798 i 82170927).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1% jodoforuADF, Chiny21031051100 ml
3% nadtlenek wodoruHebei Jianning, Chiny210910500 ml
75% alkoholuShandong Anjie, Chiny2021100227500 ml
Laser diodowy (FOX 980)A.R.C, NiemcyPS01013300-μ m końcówka z włókna
Łyżeczki GraceyHu-Friedy, USA5/6, 7/8, 11/12, 13/14
Rękojeść wolnoobrotowaNSK, Japonia0BB81855
Sonda periodontologicznaSzanghaj Fabryka instrumentów dentystycznych Kangqiao, Chiny44759.00
Ultradźwiękowe urządzenie periodontologiczne (PT3)Guilin zhuomuniao Instrument medyczny, ChinyP2090028PT3
polerowanie pastaDatsing, Chiny21010701
Primacaine adrenalineProduits Dentaires Pierre Rolland, FrancjaS-521,7 ml
ProbioticBiogaia, SzwecjaProdentis30 tabletek probiotycznych (24 g)
Tytanowa końcówka ultrasonograficzna (P59)Guilin Zhuomuniao Medical Instrument, Chiny200805

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Papapanou, P. N., et al. Periodontitis: consensus report of workgroup 2 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. Journal of Clinical Periodontology. 45, Suppl 20 162-170 (2018).
  2. Peres, M. A., et al. Oral diseases: a global public health challenge. Lancet. 394 (10194), 249-260 (2019).
  3. Nazir, M. A. Prevalence of periodontal disease, its association with systemic diseases and prevention. International Journal of Health Sciences (Qassim). 11 (2), 72-80 (2017).
  4. Khoury-Ribas, L., Ayuso-Montero, R., Willaert, E., Peraire, M., Martinez-Gomis, J. Do implant-supported fixed partial prostheses improve masticatory performance in patients with unilateral posterior missing teeth. Clinical Oral Implants Research. 30 (5), 420-428 (2019).
  5. Bohner, L., Hanisch, M., Kleinheinz, J., Jung, S. Dental implants in growing patients: a systematic review. The British Journal of Oral & Maxillofacial Surgery. 57 (5), 397-406 (2019).
  6. Jemt, T. Implant survival in the edentulous jaw: 30 years of experience. Part ii: a retro-prospective multivariate regression analysis related to treated arch and implant surface roughness. The International Journal of Prosthodontics. 31 (6), 531-539 (2018).
  7. Muñoz, V., Duque, A., Giraldo, A., Manrique, R. Prevalence of peri-implant disease according to periodontal probing depth and bleeding on probing: a systematic review and meta-analysis. The International Journal of Oral & Maxillofacial Implants. 33 (4), 89-105 (2018).
  8. Larsson, L., et al. Regenerative medicine for periodontal and peri-implant diseases. Journal of Dental Research. 95 (3), 255-266 (2016).
  9. Salvi, G. E., Cosgarea, R., Sculean, A. Prevalence and mechanisms of peri-implant diseases. Journal of Dental Research. 96 (1), 31-37 (2017).
  10. Asa'ad, F., Garaicoa-Pazmiño, C., Dahlin, C., Larsson, L. Expression of micrornas in periodontal and peri-implant diseases: a systematic review and meta-analysis. International Journal of Molecular Sciences. 21 (11), 4147(2020).
  11. Sculean, A., et al. Effectiveness of photodynamic therapy in the treatment of periodontal and peri-implant diseases. Monographs in Oral Science. 29, 133-143 (2021).
  12. Yu, S., et al. Clinical effectiveness of adjunctive diode laser on scaling and root planing in the treatment of periodontitis: is there an optimal combination of usage mode and application regimen? A systematic review and meta-analysis. Lasers in Medical Science. 37 (2), 759-769 (2022).
  13. Cobb, C. M., Low, S. B., Coluzzi, D. J. Lasers and the treatment of chronic periodontitis. Dental Clinics of North America. 54 (1), 35-53 (2010).
  14. Mongardini, C., Pilloni, A., Farina, R., Di Tanna, G., Zeza, B. Adjunctive efficacy of probiotics in the treatment of experimental peri-implant mucositis with mechanical and photodynamic therapy: a randomized, cross-over clinical trial. Journal of Clinical Periodontology. 44 (4), 410-417 (2017).
  15. Cobb, C. M. Lasers and the treatment of periodontitis: the essence and the noise. Periodontology 2000. 75 (1), 205-295 (2017).
  16. Slot, D. E., Jorritsma, K. H., Cobb, C. M., Vander Weijden, F. A. The effect of the thermal diode laser (wavelength 808-980 nm) in non-surgical periodontal therapy: a systematic review and meta-analysis. Journal of Clinical Periodontology. 41 (7), 681-692 (2014).
  17. Gao, J., et al. Does probiotic lactobacillus have an adjunctive effect in the nonsurgical treatment of peri-implant diseases? A systematic review and meta-analysis. Journal of Evidence Based Dental Practice. 20 (1), 101398(2020).
  18. Staab, B., Eick, S., Knöfler, G., Jentsch, H. The influence of a probiotic milk drink on the development of gingivitis: a pilot study. Journal of Clinical Periodontology. 36 (10), 850-856 (2009).
  19. Oral hygiene instruction online. , Available from: https://www.oralhygiene-instruction.com/en/ (2022).
  20. Zhao, P., et al. Effect of adjunctive diode laser in the non-surgical periodontal treatment in patients with diabetes mellitus: a systematic review and meta-analysis. Lasers in Medical Science. 36 (5), 939-950 (2021).
  21. Huang, Y. Y., Sharma, S. K., Carroll, J., Hamblin, M. R. Biphasic dose response in low level light therapy-an update. Dose-Response. 9 (4), 602-618 (2011).
  22. Passanezi, E., Damante, C. A., de Rezende, M. L., Greghi, S. L. Lasers in periodontal therapy. Periodontology 2000. 67 (1), 268-291 (2015).
  23. Qadri, T., Javed, F., Johannsen, G., Gustafsson, A. Role of diode lasers (800-980 nm) as adjuncts to scaling and root planing in the treatment of chronic periodontitis: a systematic review. Photomedicine and Laser Surgery. 33 (11), 568-575 (2015).
  24. Ren, C., McGrath, C., Jin, L., Zhang, C., Yang, Y. Effect of diode low-level lasers on fibroblasts derived from human periodontal tissue: a systematic review of in vitro studies. Lasers in Medical Science. 31 (7), 1493-1510 (2016).
  25. Angiero, F., Parma, L., Crippa, R., Benedicenti, S. Diode laser (808 nm) applied to oral soft tissue lesions: a retrospective study to assess histopathological diagnosis and evaluate physical damage. Lasers in Medical Science. 27 (2), 383-388 (2012).
  26. Gutiérrez-Corrales, A., et al. Comparison of diode laser - Oral tissue interaction to different wavelengths. In vitro study of porcine periodontal pockets and oral mucosa. Medicina Oral, Patología Oral y Cirugía Bucal. 25 (2), 224-232 (2020).
  27. Zhao, R., Hu, H., Wang, Y., Lai, W., Jian, F. Efficacy of probiotics as adjunctive therapy to nonsurgical treatment of peri-implant mucositis: a systematic review and meta-analysis. Frontiers in Pharmacology. 11, 541752(2020).
  28. Galofré, M., Palao, D., Vicario, M., Nart, J., Violant, D. Clinical and microbiological evaluation of the effect of Lactobacillus reuteri in the treatment of mucositis and peri-implantitis: A triple-blind randomized clinical trial. Journal of Periodontal Research. 53 (3), 378-390 (2018).
  29. Tada, H., et al. The effects of Lactobacillus reuteri probiotics combined with azithromycin on peri-implantitis: A randomized placebo-controlled study. Journal of Prosthodontic Research. 62 (1), 89-96 (2018).
  30. Kwon, S. J., et al. Thermal irritation of teeth during dental treatment procedures. Restorative Dentistry and Endodontics. 38 (3), 105-112 (2013).
  31. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. Journal of Clinical Periodontology. 45, Suppl 20 286-291 (2018).
  32. Hallström, H., Lindgren, S., Widén, C., Renvert, S., Twetman, S. Probiotic supplements and debridement of peri-implant mucositis: a randomized controlled trial. Acta Odontologica Scandinavica. 74 (1), 60-66 (2016).
  33. Peña, M., et al. Evaluation of the effect of probiotics in the treatment of peri-implant mucositis: a triple-blind randomized clinical trial. Clinical Oral Investigations. 23 (4), 1673-1683 (2019).
  34. Alzoman, H. A., Diab, H. M. Effect of gallium aluminium arsenide diode laser therapy on Porphyromonas gingivalis in chronic periodontitis: a randomized controlled trial. International Journal of Dental Hygiene. 14 (4), 261-266 (2016).
  35. Angiero, F., et al. Evaluation of bradykinin, VEGF, and EGF biomarkers in gingival crevicular fluid and comparison of photobiomodulation with conventional techniques in periodontitis: a split-mouth randomized clinical trial. Lasers in Medical Science. 35 (4), 965-970 (2019).
  36. Balasubramaniam, A. S., Thomas, L. J., Ramakrishnanan, T., Ambalavanan, N. Short-term effects of nonsurgical periodontal treatment with and without use of diode laser (980 nm) on serum levels of reactive oxygen metabolites and clinical periodontal parameters in patients with chronic periodontitis: a randomized controlled trial. Quintessence International. 45 (3), 193-201 (2014).
  37. De Micheli, G., et al. Efficacy of high intensity diode laser as an adjunct to non-surgical periodontal treatment: a randomized controlled trial. Lasers in Medical Science. 26 (1), 43-48 (2011).
  38. Dukić, W., Bago, I., Aurer, A., Roguljić, M. Clinical effectiveness of diode laser therapy as an adjunct to non-surgical periodontal treatment: A randomized clinical study. Journal of Periodontology. 84 (8), 1111-1117 (2013).
  39. Euzebio Alves, V. T., et al. Clinical and microbiological evaluation of high intensity diode laser adjutant to non-surgical periodontal treatment: A 6-month clinical trial. Clinical Oral Investigations. 17 (1), 87-95 (2013).
  40. Gündoğar, H., Şenyurt, S. Z., Erciyas, K., Yalım, M., Üstün, K. The effect of low-level laser therapy on non-surgical periodontal treatment: a randomized controlled, single-blind, split-mouth clinical trial. Lasers in Medical Science. 31 (9), 1767-1773 (2016).
  41. Jose, K. A., et al. Management of chronic periodontitis using chlorhexidine chip and diode laser-a clinical study. Journal of Clinical and Diagnostic Research. 10 (4), (2016).
  42. Lin, J., Bi, L., Song, Y., Ma, W., Wang, N. Gingival curettage with diode laser: clinical study. Zhong Guo Ji Guang Yi Xue Za Zhi/Chinese Journal of Laser Medicine & Surgery (in Chinese. 18 (06), 353-357 (2009).
  43. Makhlouf, M., Dahaba, M. M., Tuner, J., Eissa, S. A., Harhash, T. A. Effect of adjunctive low level laser therapy (LLLT) on nonsurgical treatment of chronic periodontitis. Photomedicine and Laser Surgery. 30 (3), 160-166 (2012).
  44. Manjunath, S., Singla, D., Singh, R. Clinical and microbiological evaluation of the synergistic effects of diode laser with nonsurgical periodontal therapy: A randomized clinical trial. Journal of Indian Society of Periodontology. 24 (2), 145-149 (2020).
  45. Matarese, G., Ramaglia, L., Cicciù, M., Cordasco, G., Isola, G. The effects of diode laser therapy as an adjunct to scaling and root planing in the treatment of aggressive periodontitis: a 1-year randomized controlled clinical trial. Photomedicine and Laser Surgery. 35 (12), 702-709 (2017).
  46. Pamuk, F., et al. The effect of low-level laser therapy as an adjunct to non-surgical periodontal treatment on gingival crevicular fluid levels of transforming growth factor-beta 1, tissue plasminogen activator and plasminogen activator inhibitor 1 in smoking and non-smoking chronic periodontitis patients: a split-mouth, randomized control study. Journal of Periodontal Research. 52 (5), 872-882 (2017).
  47. Pejcic, A., Mirkovic, D. Anti-inflammatory effect of low level laser treatment on chronic periodontitis. Medical Laser Application. 26 (1), 27-34 (2011).
  48. Saglam, M., Kantarci, A., Dundar, N., Hakki, S. S. Clinical and biochemical effects of diode laser as an adjunct to nonsurgical treatment of chronic periodontitis: a randomized, controlled clinical trial. Lasers in Medical Science. 29 (1), 37-46 (2014).
  49. Shi, Z., Jiang, C., Xu, Y., Sun, Y. Effects of diode laser on the treatment for moderate to severe chronic periodontitis. Kou Qiang Yi Xue/Stomatology. 34 (4), in Chinese 245-248 (2014).
  50. Üstün, K., et al. Clinical and biochemical effects of 810 nm diode laser as an adjunct to periodontal therapy: a randomized split-mouth clinical trial). Photomedicine and Laser Surgery. 32 (2), 61-66 (2014).
  51. Zhang, L., Shi, J., Guo, J., Zhang, N. Clinical evaluation of diode laser assisted treatment of chronic periodontitis. Shi Yong Kou Qiang Yi Xue Za Zhi/Journal of Practical Stomatology. 34 (3), in Chinese 404-406 (2018).
  52. Alqahtani, F., et al. Efficacy of mechanical debridement with adjunctive probiotic therapy in the treatment of peri-implant mucositis in cigarette-smokers and never-smokers. Clinical Implant Dentistry and Related Research. 21 (4), 734-740 (2019).
  53. Flichy-Fernández, A. J., et al. The effect of orally administered probiotic Lactobacillus reuteri-containing tablets in peri-implant mucositis: a double-blind randomized controlled trial. Journal of Periodontal Research. 50 (6), 775-785 (2015).
  54. Calderín, S., García-Núñez, J. A., Gómez, C. Short-term clinical and osteoimmunological effects of scaling and root planing complemented by simple or repeated laser phototherapy in chronic periodontitis. Lasers in Medical Science. 28 (1), 157-166 (2013).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Leczenie paradontozypomocnicza terapia laserowanapromienianie kieszonek dzi s owychskaling i root planingkrwawienie podczas sondowaniaaplikacja probiotyk wkontrola p ytki bakteryjnej

Powiązane artykuły