$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zdolność komórek do reagowania na sygnały zewnętrzne jest niezbędna dla rozwoju, wzrostu i przetrwania komórek. Aby zareagować na sygnał z otoczenia, komórka musi być w stanie go rozpoznać i przetworzyć. Zadanie to opiera się głównie na funkcji receptorów błonowych, których rolą jest przekształcanie sygnałów w język biochemiczny komórki. Receptory sprzężone z białkiem G (GPCR) stanowią największą rodzinę białek receptorów błonowych u ludzi. Wśród GPCR metabotropowe receptory glutaminianu (mGluR) są unikalną podklasą, która działa jako obligatoryjne dimery i posiada dużą domenę zewnątrzkomórkową, która zawiera miejsce wiązania ligandu. Niedawne postępy w badaniach strukturalnych mGluR pozwoliły lepiej zrozumieć proces ich aktywacji. Jednak propagacja wielkoskalowych zmian konformacyjnych przez mGluRs podczas aktywacji i modulacji jest słabo poznana. Transfer energii rezonansu fluorescencji pojedynczej cząsteczki (smFRET) jest potężną techniką wizualizacji i ilościowego określania dynamiki strukturalnej biomolekuł na poziomie pojedynczego białka. Aby zobrazować dynamiczny proces aktywacji mGluR2, opracowano fluorescencyjne czujniki konformacyjne oparte na inkorporacji nienaturalnych aminokwasów (UAA), które umożliwiły znakowanie białek specyficznych dla miejsca bez zaburzeń natywnej struktury receptorów. Opisany tutaj protokół wyjaśnia, jak przeprowadzać te eksperymenty, w tym nowatorskie podejście do etykietowania UAA, przygotowanie próbki oraz pozyskiwanie i analizę danych smFRET. Strategie te można uogólnić i rozszerzyć w celu zbadania dynamiki konformacyjnej różnych białek błonowych.