$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Zgodnie z protokołem, pięciowarstwowy U-Net został przeszkolony na jednym tomogramie (Rysunek 2A) w celu zidentyfikowania pięciu klas: Membrana, Mikrotubule, Aktyna, Markery Fiducial i Tło. Sieć została iteracyjnie przeszkolona w sumie trzy razy, a następnie zastosowana do tomogramu, aby w pełni go segmentować i opisywać (Rysunek 2B, C). Minimalne czyszczenie zostało wykonane przy użyciu kroków 7.1 i 7.2. Kolejne trzy interesujące nas tomogramy (Rysunek 2D,G,J) zostały załadowane do oprogramowania w celu wstępnego przetworzenia. Przed importem obrazu jeden z tomogramów (Ryc. 2J) wymagał regulacji rozmiaru piksela z 17,22 A/px do 13,3 A/px, ponieważ został zebrany pod innym mikroskopem w nieco innym powiększeniu. Program IMOD squeezevol został użyty do zmiany rozmiaru za pomocą następującego polecenia:
'squeezevol -f 0.772 plik_wejściowy.mrc plik_wyjściowy.mrc'
W tym poleceniu, -f odnosi się do czynnika, za pomocą którego należy zmienić rozmiar piksela (w tym przypadku: 13,3/17,22). Po zaimportowaniu wszystkie trzy cele wnioskowania zostały wstępnie przetworzone zgodnie z krokami 3.2 i 3.3, a następnie zastosowano pięciowarstwową sieć U-Net. Ponownie przeprowadzono minimalne czyszczenie. Końcowe segmentacje są wyświetlane w Rysunek 2.
Segmentacje mikrotubul z każdego tomogramu zostały wyeksportowane jako binarne (krok 7.4) pliki TIF, przekonwertowane na MRC (program IMOD tif2mrc), a następnie użyte do korelacji cylindrów i śledzenia filamentów. Binarne segmentacje włókien skutkują znacznie bardziej niezawodnym śledzeniem włókien niż śledzenie na tomogramach. Mapy współrzędnych ze śledzenia włókien (Rysunek 3) zostaną wykorzystane do dalszych analiz, takich jak pomiary najbliższego sąsiedztwa (upakowanie filamentu) i spiralne uśrednianie subtomogramu wzdłuż pojedynczych włókien w celu określenia orientacji mikrotubul.
Nieudane lub nieodpowiednio wyszkolone sieci są łatwe do określenia. Uszkodzona sieć nie będzie w stanie w ogóle segmentować żadnych struktur, podczas gdy nieodpowiednio przeszkolona sieć zazwyczaj będzie prawidłowo segmentować niektóre struktury i będzie miała znaczną liczbę wyników fałszywie dodatnich i fałszywie ujemnych. Sieci te można korygować i iteracyjnie trenować w celu poprawy ich wydajności. Kreator segmentacji automatycznie oblicza współczynnik podobieństwa kości modelu (nazywany wynikiem w SegWiz) po jego wytrenowaniu. Ta statystyka daje oszacowanie podobieństwa między danymi treningowymi a segmentacją U-Net. Dragonfly 2022.1 ma również wbudowane narzędzie do oceny wydajności modelu, do którego można uzyskać dostęp w zakładce Sztuczna inteligencja u góry interfejsu (zobacz dokumentację dotyczącą użytkowania).

Rysunek 2: Wnioskowanie. (A-C) Oryginalny tomogram treningowy neuronu szczura hipokampa DIV 5, zebrany w 2019 roku na Titan Krios. Jest to rekonstrukcja wstecznie rzutowana z korektą CTF w IMOD. (A) Żółte pole reprezentuje region, w którym przeprowadzono segmentację dłoni w celu uzyskania danych wejściowych do treningu. (B) Segmentacja 2D z sieci U-Net po zakończeniu szkolenia. (C) Renderowanie 3D segmentowanych obszarów pokazujących błonę (niebieski), mikrotubule (zielony) i aktynę (czerwony). (D-F) DIV 5 neuron szczura hipokampa z tej samej sesji co tomogram treningowy. (E) Segmentacja 2D z U-Net bez dodatkowego szkolenia i szybkiego czyszczenia. Błona (niebieska), mikrotubule (zielona), aktyna (czerwona), fiducials (różowa). (F) Renderowanie 3D podzielonych na segmenty regionów. (G-I) DIV 5 neuron szczura hipokampa z sesji z 2019 roku. (H) Segmentacja 2D z U-Net z szybkim czyszczeniem i (I) renderowanie 3D. (J-L) DIV 5 neuron szczura hipokampa, pobrany w 2021 roku na innym Titan Krios w innym powiększeniu. Rozmiar piksela został zmieniony za pomocą programu IMOD squeezevol, aby pasował do tomogramu treningowego. (K) Segmentacja 2D z U-Net z szybkim czyszczeniem, demonstrująca solidne wnioskowanie w zestawach danych z odpowiednim przetwarzaniem wstępnym i (L) renderowanie segmentacji 3D. Podziałka liniowa = 100 nm. Skróty: DIV = dni in vitro; CTF = funkcja transferu kontrastu. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 3: Poprawa śledzenia filamentu. (A) Tomogram neuronu hipokampa szczura DIV 4, zebrany na Titan Krios. (B) Mapa korelacji wygenerowana na podstawie korelacji cylindrów nad filamentami aktyny. (C) Śledzenie włókien aktyny z wykorzystaniem intensywności włókien aktynowych na mapie korelacji w celu zdefiniowania parametrów. Śledzenie wychwytuje błonę i mikrotubule, a także szum, próbując jednocześnie śledzić samą aktynę. (D) Segmentacja tomogramu metodą U-Net. Błona podświetlona na niebiesko, mikrotubule na czerwono, rybosomy na pomarańczowo, triC na fioletowo, a aktyna na zielono. (E) Segmentacja aktyny ekstrahowana jako maska binarna do śledzenia włókien. (F) Mapa korelacji wygenerowana z korelacji cylindra o tych samych parametrach z (B). (G) Znacznie ulepszone śledzenie samych filamentów aktynowych z tomogramu. Skrót: DIV = dni in vitro. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.
Plik uzupełniający 1: Tomogram używany w tym protokole oraz multi-ROI, który został wygenerowany jako dane wejściowe treningu, są dołączone jako zestaw danych (Training.ORSObject). Zobacz https://datadryad.org/stash/dataset/doi:10.5061/dryad.rxwdbrvct.