Artykuł metodologiczny

Analiza wpływu stresu soli złożonej na kiełkowanie nasion i analiza tolerancji soli pieprzu (Capsicum annuum L.)

DOI:

10.3791/64702

⸱

30 listopada 2022

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Life Sciences College, Gannan Normal University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Poniższy artykuł przedstawia protokół pomiaru kiełkowania nasion, wzrostu siewek i wskaźników fizjologicznych dwóch odmian papryki z różnicami tolerancji zasolenia w odpowiedzi na sześć mieszanych stężeń soli. Protokół ten można wykorzystać do oceny tolerancji na sól odmian pieprzu.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Aby określić tolerancję na sól i fizjologiczny mechanizm pieprzu (Capsicum annuum L.) w fazie kiełkowania, jako materiał do badań wykorzystano odmiany Hongtianhu 101 i Xinxiang 8, które mają duże różnice w tolerancji na sól. Stosuje się sześć mieszanych stężeń soli 0, 3, 5, 10, 15 i 20 g/l, uzyskanych przy użyciu równych stosunków molowych Na2CO3, NaHCO3, NaCl, CaCl2, MgCl2,MgSO4 i Na2SO4. Aby określić ich skutki, mierzone są powiązane wskaźniki kiełkowania nasion, wzrostu siewek i fizjologii, a tolerancja soli jest kompleksowo oceniana za pomocą analizy funkcji członkostwa. Wyniki pokazują, że wraz ze wzrostem stężenia soli mieszanej, potencjał kiełkowania, wskaźnik kiełkowania, szybkość kiełkowania, wskaźnik wigoru kiełkowania nasion, długość korzeni i masa świeża korzeni obu odmian znacznie się zmniejszają, podczas gdy względna zawartość soli stopniowo rośnie. Długość hipokotylu i świeża masa nad ziemią najpierw rosną, a następnie maleją, podczas gdy aktywność dialdehydu malonowego (MDA), proliny (Pro), katalazy (CAT), peroksydazy (POD) i dysmutazy ponadtlenkowej (SOD) maleje, a następnie wzrasta. Potencjał kiełkowania, wskaźnik kiełkowania, szybkość kiełkowania, wskaźnik wigoru kiełkowania nasion, długość korzeni, świeża masa korzeni, zawartość MDA i Pro oraz aktywność CAT nasion Hongtianhu 101 są wyższe niż w przypadku Xinxiang 8 dla wszystkich zastosowanych tutaj stężeń soli. Jednak długość hipokotylu, świeża masa nad ziemią i względna zawartość soli są niższe w Hongtianhu 101 niż w Xinxiang 8. Kompleksowa ocena tolerancji soli ujawnia, że całkowite ważone wartości dwóch indeksów funkcji członkostwa rosną najpierw, a następnie maleją wraz ze wzrostem stężenia mieszanej soli. W porównaniu z 5 g/L, który ma najwyższą wartość funkcji członkostwa, indeks przy stężeniach soli wynoszących 3 g/L, 10 g/L i 15 g/L spada odpowiednio o 4,7%-11,1%, 25,3%-28,3% i 41,4%-45,1%. Badanie to dostarcza teoretycznych wskazówek dotyczących hodowli odmian pieprzu tolerujących sól oraz analizy mechanizmów fizjologicznych związanych z tolerancją soli i uprawą tolerancyjną na sól.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zasolenie jest głównym czynnikiem ograniczającym produktywność upraw na całym świecie1. Obecnie prawie 19,5% nawadnianych gruntów na świecie i 2,1% gruntów suchych jest dotkniętych zasoleniem, a około 1% gruntów rolnych co roku przekształca się w tereny zasolone i alkaliczne. Oczekuje się, że do 2050 roku 50% gruntów ornych zostanie dotkniętych zasoleniem2,3. Oprócz czynników naturalnych, takich jak naturalne wietrzenie skał i słona woda deszczowa w pobliżu lub wokół wybrzeża, szybkie parowanie powierzchniowe, niskie opady deszczu i nierozsądne metody zarządzania rolnictwem zaostrzyły proces zasolenia gleby. Zasolenie gleby hamuje wzrost korzeni roślin oraz zmniejsza wchłanianie i transport wody i składników odżywczych z korzeni roślin do liści. To zahamowanie powoduje fizjologiczne niedobory wody, brak równowagi żywieniowej i toksyczność jonów, co prowadzi do zmniejszenia wydajności upraw i całkowitej utraty plonów. Zasolenie gruntów uprawnych stopniowo staje się jednym z najbardziej krytycznych abiotycznych czynników stresowych wpływających na światową produkcję żywności rolnej4. Stres solny zmniejsza powierzchnię gruntów ornych dostępnych dla rolnictwa, co może skutkować znaczną nierównowagą między podażą a popytem na przyszłe produkty rolne. Dlatego badanie wpływu zasolenia gleby na wzrost roślin oraz mechanizmy fizjologiczne i biochemiczne sprzyja hodowli odmian tolerujących sól, zrównoważonemu wykorzystaniu zasolonej gleby oraz bezpieczeństwu produktów rolnych.

Papryka (Capsicum annuum L.) jest uprawiana na całym świecie ze względu na swoją wysoką wartość odżywczą i leczniczą. Na przykład kapsaicyna jest alkaloidem odpowiedzialnym za pikantny smak pieprzu. Kapsaicyna może być stosowana w łagodzeniu bólu, odchudzaniu, poprawie układu sercowo-naczyniowego, pokarmowego i oddechowego oraz w kilku innych zastosowaniach5. Papryka jest również bogata w substancje bioaktywne, zwłaszcza różne związki przeciwutleniające (karotenoidy, fenole i flawonoidy) oraz witaminę C6. Obecnie uważa się, że papryka jest uprawą warzyw o największej powierzchni uprawy w Chinach, z roczną powierzchnią sadzenia ponad 1,5 x 106 ha, co stanowi 8%-10% całkowitej powierzchni sadzenia warzyw w Chinach. Przemysł pieprzowy stał się jednym z największych przemysłów warzywnych w Chinach i ma najwyższą wartość wyjściową7. Jednak uprawa papryki jest często poddawana różnorodnym stresom biologicznym (szkodniki i grzyby) i abiotycznym, zwłaszcza stresowi solnemu, który ma bezpośredni negatywny wpływ na kiełkowanie, wzrost i rozwój nasion, powodując zmniejszenie plonu i jakości owoców papryki8.

Kiełkowanie nasion jest pierwszym etapem interakcji między roślinami a środowiskiem. Kiełkowanie nasion jest bardzo wrażliwe na wahania w otaczających podłożach, zwłaszcza stres solny w glebie, który może wywierać odwrotny wpływ na fizjologię i metabolizm, a ostatecznie zakłócić normalny wzrost, rozwój i morfogenezę roślin uprawnych9. W poprzednich badaniach szeroko badano kiełkowanie nasion pieprzu i wzrost sadzonek pod wpływem stresu solnego; jednak w większości badań używano NaCl jako jedynej soli do indukcji stresu10,11,12. Jednak uszkodzenia soli glebowej są spowodowane głównie toksycznością jonów Na+, Ca2+, Mg2+, Cl-, CO32 i SO42- generowaną przez dysocjację soli sodu, wapnia i magnezu. Ze względu na synergię i antagonizm między jonami, wpływ soli mieszanej i soli pojedynczej na wzrost i rozwój roślin może być zupełnie inny. Jednak odpowiednie cechy kiełkowania i wzrostu nasion pieprzu w mieszance soli są nadal niejasne. Dlatego jako materiały w tym badaniu wykorzystano dwie odmiany papryki o znacznych różnicach w tolerancji soli. Analiza wpływu różnych stężeń soli na kiełkowanie, wzrost oraz wskaźniki fizjologiczne i biochemiczne nasion pieprzu po równomolowym zmieszaniu siedmiu soli może ujawnić mechanizm odpowiedzi kiełkowania nasion pieprzu na stres zasolenia. Może również stanowić teoretyczną podstawę do uprawy silnych sadzonek papryki, a także wysokiej wydajności i wysokiej jakości uprawy na zasolonych gruntach uprawnych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

UWAGA: Tutaj prezentujemy protokół oceny charakterystyki odpowiedzi i wewnętrznych mechanizmów kiełkowania nasion pieprzu i wzrostu siewek pod różnymi mieszanymi stresami soli, który może służyć jako metoda referencyjna do oceny tolerancji soli siewnej.

1. Przygotowanie eksperymentalne

  1. Przygotuj nasiona roślin uprawnych dla odmian - Hongtianhu 101 o silnej tolerancji na sól i Xinxiang 8 o niskiej tolerancji.
  2. Przygotować 0,2% roztwór KMnO4 jako odczynnik do dezynfekcji nasion. Najpierw odważ 4,0 g KMnO4, a następnie dodaj 2 000 ml wody destylowanej.
    UWAGA: Nadmanganian potasu jest zwykle niestabilny ze względu na silne utlenianie; W związku z tym przygotowuje się go bezpośrednio przed użyciem.
  3. Przygotuj zmieszane sole, używając siedmiu soli, w tym węglanu sodu, wodorowęglanu sodu, chlorku sodu, chlorku wapnia, chlorku magnezu, siarczanu magnezu i siarczanu sodu13. Dodaj tę samą ilość molową każdego z nich, które stanowią odpowiednio 14,8%, 11,7%, 8,2%, 15,5%, 13,3%, 16,7% i 19,8% całkowitego stosunku masowego zmieszanych soli.
  4. Przygotować szalki Petriego (jednorazowego użytku) i bibułę filtracyjną (jakościowa bibuła filtracyjna o średniej prędkości), obie o średnicy 9 cm.
    UWAGA: Materiał szalki Petriego można zmienić; jednak średnica szalki Petriego i bibuły filtracyjnej musi być taka sama.

2. Moczenie nasion i przygotowanie do kiełkowania

  1. W celu optymalizacji nasion wybierz nasiona papryki o stałej wielkości i pełnych cząstkach z każdej odmiany, o średniej średnicy 4,2 mm i 3,7 mm odpowiednio dla nasion Hongtianhu 101 i Xinxiang 8. Oblicz łączną liczbę nasion wybranych zgodnie z obciążeniem testu.
  2. W celu dezynfekcji nasion namocz wybrane nasiona papryki w 0,2% roztworze KMnO4 przez 15 minut, a następnie spłucz pięciokrotnie wodą destylowaną.
  3. W celu namoczenia nasion przenieś wysterylizowane nasiona do wody destylowanej i pozwól im moczyć się przez 24 godziny. Nasiona opłucz kilkakrotnie wodą destylowaną i wysusz do dalszego użycia.
    UWAGA: Czas namaczania nasion dla różnych upraw może się różnić.

3. Kiełkowanie nasion i wzrost sadzonek

  1. Przygotować sześć stężeń mieszaniny soli: 0 (kontrola), 3, 5, 10, 15 i 20 g/l. Zmierzyć przewodność roztworu soli za pomocą miernika przewodności; wartości przewodności roztworu EC wynoszą odpowiednio 0,092, 3,05, 4,73, 8,33, 11,53 i 15,22 ms/cm.
  2. Aby przygotować nasiona, równomiernie umieść 40 nasion pieprzu na szalce Petriego z dwiema warstwami bibuły filtracyjnej. Przygotuj nasiona do sześciu eksperymentalnych zabiegów i powtórz każdy zabieg pięć razy.
  3. W celu kiełkowania nasion dodaj odpowiednią ilość sześciu zmieszanych stężeń soli do szalki Petriego, aby upewnić się, że bibuła filtracyjna jest wilgotna. Umieść nasiona w inkubatorze w temperaturze 28 °C i wilgotności powietrza 80%, aby kiełkować w ciemności.
  4. Po wykiełkowaniu nasion pozwól sadzonkom kontynuować wzrost w świetle (natężenie światła około 450 luksów; cykl świetlny 12/12 godzin) w inkubatorze przez 14 dni po siewie. Temperatura i wilgotność na etapie wzrostu siewki muszą być takie same, jak te stosowane na etapie kiełkowania.
  5. Roztwór należy uzupełniać w naczyniu hodowlanym co 12 godzin, aby zachować wilgotną bibułę filtracyjną, a następnie całkowicie myć bibułę filtracyjną co 24 godziny odpowiednim stężeniem zmieszanego roztworu soli, aby utrzymać stałe stężenie zmieszanej soli na szalce Petriego.
    UWAGA: Ilość roztworu soli dodawanego do mokrych nasion można dostosować w zależności od etapów kiełkowania i wzrostu nasion. Dostępnych jest wiele metod utrzymywania stałego stężenia roztworów soli w naczyniach hodowlanych. Oprócz metod opisanych w tym eksperymencie można zastosować strategię dodawania wagowo wody destylowanej.

4. Pomiar i obliczanie wskaźników

  1. Oznaczanie wskaźników kiełkowania nasion
    1. Codziennie po wysianiu należy określić zdolność kiełkowania, przy czym korzonek łamiący okrywę nasienną osiąga połowę długości średnicy nasion jako znacznik kiełkowania.
    2. Oblicz szybkość kiełkowania, potencjał kiełkowania, względną szybkość soli, wskaźnik kiełkowania i wskaźnik wigoru kiełkowania nasion, korzystając z następujących wzorów:
      Zdolność kiełkowania (%) = (liczba normalnych kiełkujących nasion w 7 dniu po siewie/liczba badanych nasion) × 100
      Potencjał kiełkowania (%) = (liczba normalnie kiełkujących nasion w 3 dniu po siewie/liczba badanych nasion) × 100
      Względna szybkość kiełkowania (%) = (kontrolna szybkość kiełkowania - zdolność kiełkowania po zabiegu)/kontrolna szybkość kiełkowania × 100
      Obliczone na podstawie zdolności kiełkowania nasion w 7 dniu po siewie
      Wskaźnik kiełkowania (GI) = ∑ [Gt/Dt]
      gdzie Gt odnosi się do liczby kiełkowania nasion w okresie (t) po wysiewie, a Dt odnosi się do odpowiednich dni kiełkowania
      Wskaźnik wigoru kiełkowania nasion (VI) = GI x S
      gdzie S jest długością pierwiastka
  2. Oznaczanie wskaźnika wzrostu sadzonek
    1. W 14 dniu po wysiewie losowo wybierz 10 reprezentatywnych siewek z każdej szalki Petriego i zmierz długość korzeni i długość hipokotylu.
    2. Za pomocą noża podziel sadzonki papryki na dwie części: korzonek i część nadziemną. Usuń wodę z sadzonek przez wycieranie i zważ sadzonki osobno, aby określić świeżą wagę.
  3. Określ aktywność enzymu przeciwutleniającego, poziom dialdehydu malonowego (MDA) i zawartość proliny (Pro) w pieprzu w następujący sposób.
    1. W celu zachowania sadzonek papryki należy wybrać reprezentatywne całe sadzonki papryki (około 24,0 g) z każdego zabiegu w 14 dniu po siewie. Po usunięciu wody powierzchniowej należy natychmiast zamrozić sadzonki w ciekłym azocie na 1 minutę i przechowywać je w lodówce w bardzo niskiej temperaturze (-80 °C).
      UWAGA: Liczba próbek sadzonek papryki przechowywanych w lodówce o bardzo niskiej temperaturze powinna być wystarczająca, na wypadek, gdyby niektóre wskaźniki musiały zostać ponownie przetestowane.
    2. Pobrać około 1,0 g próbki sadzonki z każdego zabiegu pobranej w trzech egzemplarzach. Umieść próbkę sadzonki w probówce wirówkowej, dodaj ciekły azot i zmiel próbkę za pomocą pręta szlifierskiego, aby określić wskaźniki fizjologiczne sadzonek. Wyznaczone wskaźniki i schemat pomiaru przedstawiono poniżej.
    3. Określ aktywność enzymu ochronnego siewki (peroksydaza [POD], katalaza [CAT], dysmutaza ponadtlenkowa [SOD]), dialdehyd malonowy (MDA) i zawartość proliny (Pro) za pomocą dostępnego na rynku zestawu (opartego na spektrofotometrii) dla każdego czynnika14.
      UWAGA: Wcześniejsze obserwacje nie wykazały różnicy w stresie solnym między stężeniami mieszanej soli 15 i 20 g/l. W rezultacie mierzonych jest tylko pięć stężeń soli (0, 3, 5, 10 i 15 g/l).
  4. Kompleksowa ocena tolerancji soli przy użyciu metody funkcji członkostwa
    UWAGA: Funkcja członkostwa wykorzystuje metodę matematyki rozmytej, która przekształca ocenę jakościową w ocenę ilościową15, w celu oceny różnych wskaźników fizjologicznych, na które wpływ ma wpływ sól uszkodzona.
    1. Oblicz wartość funkcji członkostwa, korzystając z następującego wzoru autorstwa Zhoubin Liu i wsp.15:
      Ri = (Xi - Xmin)/(Xmax - Xmin)
      Jeśli cecha jest ujemnie skorelowana z tolerancją soli, oblicz odwrotną funkcję członkostwa za pomocą:
      Ri = 1 - (Xi - Xmin)/(Xmax - Xmin)
      Zsumuj wartości członkostwa każdego indeksu fizjologicznego, gdzie Xi jest zmierzoną wartością określonej cechy, Xmax i Xmin są odpowiednio maksymalnymi i minimalnymi wartościami Xi, a Ri jest wartością członkostwa tej cechy.
    2. Uwzględnij następujące istotne wskaźniki: charakterystykę kiełkowania nasion (potencjał kiełkowania, szybkość kiełkowania, wskaźnik kiełkowania i wskaźnik wigoru kiełkowania nasion), charakterystykę wzrostu siewek na etapie kiełkowania (długość korzenia, długość hipokotylu, świeża masa korzenia i świeża masa nadziemia), MDA, Pro i ochronną aktywność enzymów (CAT, POD, SOD) do obliczania wartości funkcji członkostwa. Wartości funkcji członkostwa są uzyskiwane z każdego wskaźnika.
  5. Użyj arkusza kalkulacyjnego i oprogramowania SPSS (wersja 22.0) do analizy i przetwarzania danych testowych oraz zastosuj metodę najmniejszej znaczącej różnicy (LSD) do wielokrotnych porównań w celu zidentyfikowania istotnych różnic. Skorzystaj z analizy korelacji Pearsona, aby zbadać korelację między kiełkowaniem nasion a wskaźnikami fizjologicznymi siewek pieprzu w warunkach stresu soli złożonej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Charakterystyka kiełkowania nasion
Wraz ze wzrostem stężenia soli mieszanej potencjał kiełkowania i wskaźnik kiełkowania Hongtianhu 101 i Xinxiang 8 znacznie spada. Obie odmiany charakteryzują się gwałtownym spadkiem stężenia soli od 0-3 g/L oraz powolnym i stałym spadkiem stężenia soli od 3 do 20 g/L (Rysunek 1A,B). Zdolność kiełkowania obu odmian stopniowo maleje wraz ze wzrostem stężenia soli mieszanej, a względna szybkość soli dla odmian stopniowo rośnie. Nie ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta metoda badawcza składa się z czterech kluczowych etapów, które wpływają na dokładność wyników eksperymentu. Po pierwsze, ze względu na słabe rozpuszczanie mieszanych soli spowodowane zwiększoną zawartością substancji rozpuszczonych w roztworach o wysokim stężeniu soli oraz niską rozpuszczalność odczynników, takich jak chlorek wapnia, które są trudniejsze do rozpuszczenia w wodzie, ważone odczynniki muszą być całkowicie zmielone w moździerzu. Ponadto odczynniki muszą zostać rozpuszczone za pomocą fal ultradźwi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Departament Nauki i Technologii prowincji Jiangxi (20203BBFL63065) oraz Ogólny Projekt Badań nad Nauką i Technologią Departamentu Edukacji Jiangxi (GJJ211430). Serdecznie dziękujemy firmie Editage (www.editage.cn) za redakcję w języku angielskim.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Chlorek wapniaShanghai Experiment Reagent Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Maszyna odśrodkowaShanghai Luxianyi Centrifuge Instrument Co., Ltd., ChinyTGL-16M
Probówka wirówkowaBrakBrak
Miernik przewodnościShanghai Instrument & Electronics Science Instrument Co., Ltd., ChinyDDSJ-308F
Skrzynka o stałej temperaturze i wilgotnościNingbo Laifu Technology Co., Ltd., ChinyPSX-280H
Suwmiarka z noniuszem cyfrowymDeli Group Co., Ltd., ChinyDL90150
Waga elektronicznaMettler Toledo Instruments (Shanghai) Co., Ltd., ChinyME802E/02
BibułafiltracyjnaHangzhou Fuyang North Wood Pulp and Paper Co., Ltd., ChinyGB/T1914-2017
Pręt szlifierskiBrakBrak
Hongtianhu  101Seminis Seed (Beijing) Co., Ltd., Chiny11933955/100147K1-137
Maszyna do loduShanghai Kehuai Instrument Co., Ltd., ChinyIM150G
Ciekły azotBrakBrak
Chlorek magnezuTianjin Kermel Chemical Reagent Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Siarczan magnezuTianjin Kermel Chemical Reagent Co., Ltd., ChinyOdczynnik
szalka PetriegoJiangsu Yizhe Teaching Instrument Co., Ltd., ChinyI-000163
ScyzorykBrakBrak
Nadmanganian potasu (KMnO4< / sub>Xilong Scientific Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Sprzęt do czystej wodySichuan Youpu Ultrapure Technology Co., Ltd., ChinyUPT-I-20T
Wodorowęglan soduXilong Scientific Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Węglan soduXilong Scientific Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Sód chlorekXilong Scientific Co., Ltd., ChinyOdczynnik
Siarczan sodu Xilong Scientific Co., Ltd., ChinyZestaw testowy odczynnika
Suzhou Keming, Biotechnology Co., Ltd, Suzhou., Chinyspektrofotometru
Zamrażarka ultraniskotemperaturowaSANYO Techno Solution TottoriCo., Ltd.MDF-382
Spektrofotometr ultrafioletowy w świetle widzialnymShanghai Precision Scientific Instrument Co., Ltd., Chiny  760CRT
Xinxiang 8Jiangxi Nongwang High Tech Co., Ltd., ChinyGPD Pepper 2017(360013)
analitycznyanalitycznyanalitycznyanalitycznyanalitycznyanalitycznyanalitycznyanalitycznego Metoda

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Szabolcs, I. Soils sand salinisation. Handbook of Plant and Crop Stress. , Marcel Dekker. New York. 3-11 (1994).
  2. Global network on integrated soil management for sustainable use of salt effected soils. FAO. , Available from: http://www.fao.org/ag/AGL/agll/spush/intro.htm (2005).
  3. Lakhdar, A., et al. Effectiveness of compost use in salt-affected soil. Journal of Hazardous Materials. 171 (1-3), 29-37 (2009).
  4. Cheng, Z., Chen, Y., Zhang, F. Effect of cropping systems after abandoned salinized farmland reclamation on soil bacterial communities in arid northwest China. Soil and Tillage Research. 187, 204-213 (2019).
  5. Shrivastava, P., Kumar, R. Soil salinity: A serious environmental issue and plant growth promoting bacteria as one of the tools for its alleviation. Saudi Journal of Biological Sciences. 22 (2), 123-131 (2015).
  6. Fattori, V., Hohmann, M. S., Rossaneis, A. C., Pinho-Ribeiro, F. A., Verri, W. A. Capsaicin: Current understanding of its mechanisms and therapy of pain and other pre-clinical and clinical uses. Molecules. 21 (7), 844-878 (2016).
  7. Zhao, Z., et al. Investigation, collection and identification of pepper germplasm resources in Guangxi. Journal of Plant Genetic .Resources. 21 (4), 908-913 (2020).
  8. Zhang, J., et al. Biochar alleviated the salt stress of induced saline paddy soil and improved the biochemical characteristics of rice seedlings differing in salt tolerance. Soil and Tillage Research. 195, 104372-104381 (2019).
  9. Ashraf, M., Foolad, M. R. Pre-sowing seed treatment-A shotgun approach to improve germination, plant growth, and crop yield under saline and non-saline conditions. Advances in Agronomy. 88, 223-271 (2005).
  10. Esra, K. O. Ç, Üstün, A. S., İşlek, C., Arici, Y. K. Effect of exogenously applied spermine and putrescine on germination and in vitro growth of pepper (Capsicum annuum l.) seeds under salt stress. Anadolu University Journal of Science and Technology C-Life Sciences and Biotechnology. 3 (2), 63-71 (2014).
  11. Demir, I., Mavi, K. Effect of salt and osmotic stresses on the germination of pepper seeds of different maturation stages. Brazilian Archives of Biology and Technology. 51 (5), 897-902 (2008).
  12. Khan, H. A., et al. Effect of seed priming with NaCl on salinity tolerance of hot pepper (Capsicum annuum L.) at seedling stage. Soil and Environment. 28 (1), 81-87 (2009).
  13. Zhou, L. L. Effects of salinity stress on cotton (Gossypium hirsutum L.) root growth and cotton field soil micro-ecology. Nanjing Agricultural University. , (2010).
  14. Ding, D. X., et al. Exogenous zeaxanthin alleviates low temperature combined with low light induced photosynthesis inhibition and oxidative stress in pepper (Capsicum annuum L.) plants. Current Issues in Molecular Biology. 44 (6), 2453-2471 (2022).
  15. Liu, Z. B., Yang, B. Z., Ou, L. J., Zou, X. X. The impact of different Ca2+ spraying period on alleviating pepper injury under the waterlogging stress. Acta Horticulturae Sinica. 42 (8), 1487-1494 (2015).
  16. Aloui, H., Souguir, M., Latique, S., Hannachi, C. Germination and growth in control and primed seeds of pepper as affected by salt stress. Cercetări agronomice în Moldova. 47 (3), 83-95 (2014).
  17. Zhani, K., Elouer, M. A., Aloui, H., Hannachi, C. Selection of a salt tolerant Tunisian cultivar of chili pepper (Capsicum frutescens). EurAsian Journal of Biosciences. 6, 47-59 (2012).
  18. Patanè, C., Saita, A., Sortino, O. Comparative effects of salt and water stress on seed germination and early embryo growth in two cultivars of sweet sorghum. Journal of Agronomy and Crop Science. 199 (1), 30-37 (2013).
  19. Smith, P. T., Cobb, B. G. Accelerated germination of pepper seed by priming with salt solutions and water. Hortscience. 26 (4), 417-419 (2019).
  20. Mirosavljević, M., et al. Maize germination parameters and early seedlings growth under different levels of salt stress. Ratarstvo i Povrtarstvo. 50 (1), 49-53 (2013).
  21. Khan, H. A., et al. Hormonal priming alleviates salt stress in hot pepper (Capsicum annuum L.). Soil and Environment. 28 (2), 130-135 (2009).
  22. Zhang, B. B., et al. Effects of simulated salinization on seed germination and physiological characteristics of muskmelon seedlings. Chinese Journal of Tropical Crops. 41 (5), 912-920 (2020).
  23. Guzmán-Murillo, M. A., Ascencio, F., Larrinaga-Mayoral, J. A. Germination and ROS detoxification in bell pepper (Capsicum annuum L.) under NaCl stress and treatment with microalgae extracts. Protoplasma. 250 (1), 33-42 (2013).
  24. Slama, I., Abdelly, C., Bouchereau, A., Flowers, T., Savoure, A. Diversity, distribution and roles of osmoprotective compounds accumulated in halophytes under abiotic stress. Annals of Botany. 115 (3), 433-447 (2015).
  25. Muchate, N. S., Nikalje, G. C., Rajurkar, N. S., Suprasanna, P., Nikamd, T. D. Physiological responses of the halophyte Sesuvium portulacastrum to salt stress and their relevance for saline soil bio-reclamation. Flora. 224, 96-105 (2016).
  26. Javed, S. A., et al. Can different salt formulations revert the depressing effect of salinity on maize by modulating plant biochemical attributes and activating stress regulators through improved N supply. Sustainability. 13 (14), 8022-8037 (2021).
  27. Chen, J., et al. Effects of salt stress on form of polyamine and antioxidation in germinating tomato seed. Acta Pedologica Sinica. 58 (6), 1598-1609 (2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Odmiany paprykimieszany roztw r soliwska nik kie kowaniad ugo korzeniazawarto prolinyaktywno katalazywzrost siewek

Powiązane artykuły