Artykuł metodologiczny

Oznaczanie absorpcji, translokacji i dystrybucji imidakloprydu w pszenicy

DOI:

10.3791/64741

⸱

28 kwietnia 2023

 ,  ,  , 
1Key Laboratory of Agricultural Environment in Universities of Shandong, College of Resources and Environment, Shandong Agricultural University, 2College of Water Conservancy and Civil Engineering, Shandong Agricultural University

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Prezentowany tutaj jest protokół do określania absorpcji, translokacji i dystrybucji imidakloprydu w pszenicy w warunkach hydroponicznych przy użyciu chromatografii cieczowej z tandemową spektrometrią mas (LC-MS-MS). Wyniki pokazały, że imidaklopryd może być wchłaniany przez pszenicę, a imidaklopryd wykryto zarówno w korzeniach, jak i liściach pszenicy.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Neonikotynoidy, klasa insektycydów, są szeroko stosowane ze względu na ich nowatorskie sposoby działania, wysoką aktywność owadobójczą i silne pobieranie przez korzenie. Imidachlopryd, najczęściej stosowany środek owadobójczy na świecie, jest reprezentatywnym neonikotynoidem pierwszej generacji i jest stosowany w zwalczaniu szkodników upraw, warzyw i drzew owocowych. Przy tak szerokim zastosowaniu imidachloprydu, jego pozostałości w uprawach przyciągają coraz większą kontrolę. W niniejszym badaniu 15 siewek pszenicy umieszczono w pożywce zawierającej 0,5 mg/l lub 5 mg/l imidakloprydu do hydrohodowli. Zawartość imidakloprydu w korzeniach i liściach pszenicy oznaczono po 1 dniu, 2 dniach i 3 dniach hydrokultury w celu zbadania migracji i rozmieszczenia imidakloprydu w pszenicy. Wyniki wykazały, że imidachlopryd wykryto zarówno w korzeniach, jak i liściach rośliny pszenicy, a zawartość imidakloprydu w korzeniach była wyższa niż w liściach. Ponadto stężenie imidakloprydu w pszenicy wzrastało wraz ze wzrostem czasu ekspozycji. Po 3 dniach ekspozycji korzenie i liście pszenicy w grupie otrzymującej dawkę 0,5 mg/l zawierały odpowiednio 4,55 mg/kg ± 1,45 mg/kg i 1,30 mg/kg ± 0,08 mg/kg imidachloprydu, podczas gdy korzenie i liście w grupie poddanej działaniu 5 mg/l zawierały odpowiednio 42,5 mg/kg ± 0,62 mg/kg i 8,71 mg/kg ± 0,14 mg/kg imidachloprydu, odpowiednio. Wyniki niniejszego badania pozwalają na lepsze zrozumienie pozostałości pestycydów w uprawach i stanowią odniesienie do danych do oceny ryzyka środowiskowego związanego z pestycydami.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W dzisiejszej agronomii, stosowanie pestycydów jest niezbędne do zwiększenia plonów. Neonikotynoidowe środki owadobójcze zmieniają równowagę potencjału błonowego poprzez kontrolowanie nikotynowych receptorów acetylocholiny w układzie nerwowym owadów, hamując w ten sposób normalne przewodnictwo ośrodkowego układu nerwowego owadów, prowadząc do paraliżu i śmierci owadów1. W porównaniu z tradycyjnymi insektycydami, neonikotynoidy mają takie zalety, jak nowatorskie sposoby działania, wysoka aktywność owadobójcza i silna absorpcja korzeni, dzięki czemu odnoszą duże sukcesy na rynku pestycydów2,3. Wielkość sprzedaży neonikotynoidów stanowiła 27% światowego rynku pestycydów w 2014 r. Średnia roczna stopa wzrostu neonikotynoidów wyniosła 11,4% od 2005 do 2010 roku, z czego około 7% zarejestrowano w Chinach4,5,6. Od końca 2016 r. do pierwszej połowy 2017 r. sprzedaż pestycydów w Chinach zaczęła odbijać się po spadku, a ceny pestycydów nadal rosły, wśród których znaczny wzrost cen wykazały insektycydy neonikotynoidowe7. Do tej pory opracowano trzy generacje insektycydów neonikotynoidowych, z których każda zawiera odpowiednio grupy nikotyny chlorku pirydyny, tiazolylu i tetrahydrofuranu8.

Imidaklopryd reprezentuje pierwszą generację insektycydów neonikotynoidowych, których wzór cząsteczkowy to C9H10ClN5O2 i jest bezbarwnym kryształem. Imidaklopryd jest używany głównie do zwalczania szkodników, takich jak mszyce, skoczki, larwy mącznika i wciornastki9 i może być stosowany do upraw takich jak ryż, pszenica, kukurydza, bawełna i warzywa, takie jak ziemniaki, a także drzewa owocowe. Ze względu na długotrwałe, znaczne i ciągłe stosowanie pestycydów, zarówno pożyteczne owady, jak i naturalni wrogowie szkodników zostały szybko zredukowane, a niektóre szkodniki rolnicze stały się odporne na pestycydy, co spowodowało błędne koło stosowania ciągłych i rosnących ilości pestycydów10. Ponadto szerokie stosowanie pestycydów doprowadziło do pogorszenia jakości gleby, trwałych pozostałości pestycydów w produktach rolnych i innych problemów ekologicznych, które nie tylko powodują znaczne szkody w rolniczym środowisku ekologicznym11, ale także stanowią poważne zagrożenie dla zdrowia ludzkiego12. Opryskiwanie pestycydami ma poważny wpływ na wzrost i jakość mikroorganizmów glebowych i zwierząt glebowych13. Nieuzasadnione lub nadmierne stosowanie pestycydów spowodowało poważne zagrożenia dla bezpieczeństwa gleby i środowiska wodnego, zwierząt i roślin, a nawet życia ludzkiego14. W ostatnich latach problem nadmiernych pozostałości pestycydów w uprawach stał się bardziej dotkliwy w związku z intensywnym stosowaniem pestycydów. Gdy imidaklopryd był stosowany w celu zwiększenia plonów warzyw, szybkość wchłaniania imidakloprydu w warzywach wzrastała wraz ze wzrostem ilości i reszty imidakloprydu15. Ponieważ pszenica jest główną uprawą żywności, zarówno produkcja, jak i bezpieczeństwo pszenicy mają kluczowe znaczenie. W związku z tym należy wyjaśnić politykę w zakresie pozostałości i dystrybucji pestycydów stosowanych w uprawie pszenicy.

W ostatnich latach opracowano wiele metod ekstrakcji pozostałości imidakloprydu z wody, gleby i roślin. Metoda QuEChERS (szybka, łatwa, tania, skuteczna, wytrzymała i bezpieczna) to nowa metoda, która łączy technologię mikroekstrakcji do fazy stałej i technologię rozproszonej ekstrakcji do fazy stałej i polega na użyciu acetonitrylu jako rozpuszczalnika ekstrakcyjnego oraz usunięciu zmieszanych zanieczyszczeń i wody w próbce za pomocą odpowiednio NaCl i bezwodnego MgSO416. Metoda QuEChERS wymaga minimalnej ilości szkła i składa się z prostych etapów eksperymentalnych, co czyni ją jedną z najpopularniejszych metod ekstrakcji pestycydów17. Dla wykrywania imidakloprydu granicę wykrywalności wynoszącą zaledwie 1 × 10−9 g18 osiągnięto za pomocą chromatografii cieczowej (LC), a za pomocą chromatografii gazowej (GC) osiągnięto granicę wykrywalności 1 × 10−11 g19. Ze względu na wysoką rozdzielczość i czułość, LC-MS i GC-MS wykazały jeszcze niższe granice wykrywalności imidakloprydu wynoszące 1 × 10-13 do 1 × 10-14 g20,21; Techniki te są zatem dobrze przystosowane do analizy śladowych reszt imidakloprydu.

W obecnym badaniu, imidaklopryd został wybrany jako docelowe zanieczyszczenie, a pszenica została wybrana jako uprawa testowa do zbadania rozkładu pozostałości imidakloprydu w pszenicy. Protokół ten szczegółowo opisuje metodę kompleksowej analizy wzbogacania i przenoszenia pestycydu imidachloprydu w pszenicy poprzez badanie wchłaniania i przechowywania imidakloprydu w różnych częściach roślin pszenicy uprawianych w warunkach hydroponicznych. Niniejsze badania mają na celu zapewnienie teoretycznych podstaw do oceny ryzyka pozostałości pestycydów w pszenicy, ukierunkowanie racjonalnego stosowania pestycydów w działalności rolniczej w celu zmniejszenia pozostałości pestycydów oraz poprawy bezpieczeństwa produkcji roślinnej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Kiełkowanie nasion pszenicy

  1. Wybierz 1,000 nasion pszenicy (Jimai 20) z kompletnymi granulkami, nienaruszonymi zarodkami i jednolitym rozmiarem (długość: 6 mm ± 0,5 mm).
  2. Przenieść 333,3 ml 30% roztworuH2O2do kolby miarowej o pojemności 1 l i rozcieńczyć wodą dejonizowaną, aby przygotować 1 l 10% roztworu H2O2. Zanurz nasiona pszenicy w 10% roztworze H2O2 2 na 15 minut, aby zdezynfekować powierzchnię nasion (Rysunek 1).
  3. Za każdym razem płucz nasiona pszenicy 5x pod bieżącą sterylną wodą przez 10 sekund.
  4. Rozłóż nasiona pszenicy równomiernie, z zarodkami skierowanymi do góry, na szklanej szalce Petriego zawierającej wilgotną sterylną bibułę filtracyjną (Rysunek 2). Umieścić szalkę Petriego w inkubatorze ze sztucznym klimatem w temperaturze 30 °C i wilgotności względnej 80%. Hoduj nasiona pszenicy w ciemności przez 3 dni, aż wykiełkują i zakorzenią się.

figure-protocol-1
Rysunek 1: Dezynfekcja nasion pszenicy. Nasiona pszenicy moczono w 10% roztworze H2O2 (w zlewce) przez 15 minut w celu dezynfekcji powierzchni nasion. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-protocol-2
Rysunek 2: Kiełkowanie nasion pszenicy. Nasiona pszenicy rozprowadzono równomiernie na szklanej szalce Petriego zawierającej wilgotną sterylną bibułę filtracyjną. Szalka Petriego została umieszczona w sztucznym inkubatorze klimatycznym w celu wykiełkowania nasion pszenicy. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Uprawa sadzonek pszenicy

  1. Rozpuścić 551 mg mieszaniny soli podstawowej Hoaglanda w 1 l wody dejonizowanej, aby przygotować 1/2 pożywki Hoaglanda (zawierającej 0,75 mmol/L K2SO4, 0,1 mmol/L KCl, 0,6 mmol/LMgSO4, 4,0 × 10−2 mmol/L FeEDTA, 1,0 × 10−3 mmol/L H3BO3, 1,0 × 10−3 mmol/L MnSO4, 1,0 × 10−3 mmol/L ZnSO4, 1,0 × 10−4 mmol/L CuSO4 i 5,0 × 10−6 mmol/L Na2 MoO4).
  2. Po wykiełkowaniu nasion pszenicy (krok 1.4) umieść 15 sadzonek pszenicy w sprzęcie hydroponicznym (patrz Tabela materiałów) zawierającym 100 ml 1/2 pożywki Hoagland do hydroponiki (Rysunek 3). Umieść cały aparat hydroponiczny w inkubatorze ze sztucznym klimatem (patrz Tabela Materiałów) i inkubuj przez 7 dni w temperaturze 25 °C i wilgotności względnej 80% przy 16 godzinach światła/8 godzin ciemnego fotoperiodu.

figure-protocol-3
Rysunek 3: Hydroponiczna uprawa siewek pszenicy. Siewki pszenicy uprawiano hydroponicznie przez 0 dni, 3 dni i 7 dni w 100 ml 1/2 pożywki Hoagland. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

3. Eksperyment z wystawieniem roślin pszenicy na działanie roztworu imidakloprydu

  1. Po 7-dniowym okresie hydroponicznym przesadzić rośliny pszenicy do 1/2 pożywki Hoagland zawierającej 0,5 mg/L lub 5 mg/L imidakloprydu, aby przeprowadzić eksperymenty z ekspozycją na imidaklopryd. Wyhoduj 15 roślin pszenicy w każdym urządzeniu hydroponicznym. Ustawić 15 urządzeń hydroponicznych dla każdej grupy stężeń imidakloprydu, aby zapewnić pobieranie odpowiednich próbek podczas pobierania próbek.
  2. Umieść cały sprzęt hydroponiczny w inkubatorze ze sztucznym klimatem na 3 dni w temperaturze 25 °C i wilgotności względnej 80% przy 16 godzinach światła / 8 godzin ciemnego fotoperiodu.
  3. Przez cały okres ekspozycji należy codziennie zbierać korzenie pszenicy (0,2 g na roślinę pszenicy) i liście (0,5 g na roślinę pszenicy). Zintegrować próbki pszenicy z co piątego urządzenia hydroponicznego jako grupę równoległą i określić zawartość imidakloprydu w próbkach.

4. Procedura ekstrakcji imidakloprydu z pszenicy

  1. Ekstrakcja imidakloprydu z korzeni pszenicy
    1. Aby uniknąć błędów eksperymentalnych, za każdym razem myj korzenie pszenicy 4x pod bieżącą sterylną wodą przez 10 sekund, aby usunąć imidaklopryd zaadsorbowany na powierzchni korzenia.
    2. Rozdrobnij korzenie pszenicy na około 1 cm kawałki nożyczkami (Rysunek 4). Odważyć 10,00 g rozdrobnionych korzeni pszenicy i umieścić w probówce wirówkowej o pojemności 50 ml.
    3. Dodać 10 ml acetonitrylu do probówki wirówkowej i wirować probówkę na wirowniku przez 1 minutę. Następnie dodać 4 g bezwodnegoMgSO4 i 1,5 g NaCl do probówki wirówkowej i natychmiast wirować probówkę przez 30 s. Odwirowywać probówkę przez 5 minut przy 6 000 x g.
    4. Odessać supernatant za pomocą jednorazowej strzykawki i przepuścić go przez filtr strzykawkowy (wielkość porów 0,22 μm) w celu uzyskania próbki.
  2. Ekstrakcja imidakloprydu z liści pszenicy (Rysunek 5)
    1. Rozdrobnij świeże liście pszenicy na około 1 cm kawałki nożyczkami (Rysunek 4). Odważyć 10,00 g rozdrobnionych liści pszenicy i umieścić w probówce wirówkowej o pojemności 50 ml.
    2. Dodać 10 ml acetonitrylu do probówki wirówkowej i wirować probówkę na wirowniku przez 1 minutę.
    3. Dodać 4 g bezwodnegoMgSO4 i 1,5 g NaCl do probówki wirówkowej i natychmiast wirować probówkę przez 30 s.
    4. Odwirowywać probówkę przez 5 minut przy 6 000 x g.
    5. Po odwirowaniu dodać 2 ml supernatantu do probówki wirówkowej o pojemności 5 ml zawierającej 50 mg grafityzowanej sadzy (GCB) i 150 mg bezwodnegoMgSO4 (w celu usunięcia pigmentu i wilgoci z próbki) i wirować probówkę wirówkową przez 30 s (Rysunek 6). Odwirowywać probówkę przez 5 minut przy 6 000 x g.
    6. Odessać supernatant za pomocą jednorazowej strzykawki i przepuścić go przez filtr strzykawkowy (wielkość porów 0,22 μm) w celu uzyskania próbki.

figure-protocol-4
Rysunek 4: Rozdrobnione korzenie i liście pszenicy. Świeże korzenie i liście pszenicy rozdrobniono nożyczkami na około 1 cm kawałki. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-protocol-5
Rysunek 5: Ekstrakcja imidakloprydu w liściach pszenicy. Imidaklopryd w próbkach ekstrahowano metodą QuEChERS (kroki 4.2.1-4.2.4 protokołu). Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-protocol-6
Rysunek 6: Oczyszczanie imidakloprydu w liściach pszenicy. Odkażanie wynosiło 50 mg GCB + 150 mgMgSO4. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

5. Kwantyfikacja imidachloprydu

  1. Oznaczyć ilościowo imidaklopryd w próbce za pomocą chromatografii cieczowej ze spektrometrią mas w tandemie (LC-MS-MS) w oparciu o krzywą wzorcową (y = 696,61x + 56,411, R=1) otrzymaną ze stężeń imidakloprydu 0,2-250 μg/l. (Rysunek 7). Spektrometr mas został wyposażony w kolumnę C18 (100 mm x 2,1 mm, 3 μm) oraz źródło jonizacji elektronrozpylania (ESI+). Program elucji i parametry źródła jonów przedstawiono w tabeli 1.

figure-protocol-7
Rysunek 7: Chromatogram i spektrogram masowy imidakloprydu w liściach pszenicy. Górny panel przedstawia chromatogram imidakloprydu (czas retencji = 0,93 min). Dolny panel pokazuje spektrogram masowy imidakloprydu po 0,93 min, pokazując intensywność reakcji produkcji (m/z = 208,8) imidachloprydu. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

szt. szt. szt. szt.
Temperatura kolumny40 °C
Rozpuszczalnik A99,9% woda/0,1% kwas mrówkowy (v/v)
Rozpuszczalnik BAcetonitrylu
Program elucji0–0,5 min, A = 20%
0,5–2 min, A = 20%–50%
2–3 min, A = 50%
3–3,1 min, A = 50%–20%
3,1–5 min, A=20%
Natężenie przepływu (ml/min)0,3
Objętość wtrysku (μL)5
Temperatura kapilary (°C)330
Temperatura parownika (°C)350
Natężenie przepływu gazu w osłonie (Arb)Rozdział 40
Natężenie przepływu gazu pomocniczego (Arb)20
Napięcie natryskiwania (V)3900
Ciśnienie gazu kolizyjnego (mTorr)1,5
Jon prekursorowy256,1
Jon iloczynowy/energia zderzenia (eV)208,8/16

Tabela 1: Program elucji i parametry źródła jonów w metodzie chromatografii cieczowej i spektrometrii mas.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Granica wykrywalności (LOD) imidakloprydu wynosiła 5,76 × 10−14 g, a poziom wykrywalności imidakloprydu w korzeniu lub liściu pszenicy wynosił 0,01 μg/kg; nie zaobserwowano efektu matrycy. Plony odzysku imidakloprydu w pszenicy przedstawiono w tabeli 2. Plony odzysku imidakloprydu z korzeni pszenicy narażonych na stężenia imidakloprydu wynoszące 0,5 mg/l i 5 mg/l wynosiły odpowiednio 94,0%-97,6% i 98,8%-99,2%; Współczynniki zmienności wynosiły odpowiednio 1,92% i 0,20%. Plony odzysku imidaklop...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W ostatnich latach często zgłaszano metody obróbki wstępnej i wykrywania pozostałości pestycydu imidachloprydu. Badawy i wsp.23 zastosowali wysokosprawną chromatografię cieczową do określenia zawartości imidakloprydu w owocach pomidorów uprawianych w warunkach szklarniowych i stwierdzili dobrą liniowość dla imidakloprydu w zakresie 0,0125-0,15 μg/ml. Zhai i wsp.24 użyli LC-MS-MS do zbadania pozostałości imidakloprydu w chińskim szczypiorku. W niniejszej pracy wykorzystano m...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy oświadczają, że nie pozostają w konflikcie interesów. Wszyscy autorzy przeczytali i zatwierdzili manuskrypt. Praca ta nie była wcześniej publikowana, ani nie jest rozpatrywana przez żadne inne recenzowane czasopismo.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca była wspierana przez Narodową Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (nr 42277039).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
AcetonitrylSigma-Aldrich (Szanghaj) Trading Co., Ltd.01-06-1995Nadaje się do HPLC, klasa gradientowa, >99,9%
Waga analitycznaSartorius Lab Instruments Co.Ltd.GL124-1SCN
Inkubator sztucznego klimatu   Szanghaj Badian Instrument Equipment Co., Ltd.Wirówka HK320
Eppendorf China Co., Ltd.Wirówka5804
Jednorazowa strzykawkaSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co., Ltd.Z116866Pojemność 5 mL, z podziałką 0,2 mL, niesterylny
Kwas mrówkowySigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co., Ltd.Y0001970Norma referencyjna Farmakopei Europejskiej
Sadza grafityzowana (GCB)Sigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co., Ltd.V90005845 μ m
H2O2Sigma-Aldrich (Szanghaj) Co.Ltd handlowe.3164230% (w/w)
Hoagland' s Podstawowa mieszanina soliShanghai Yu Bo Biotech Co., Ltd.NS1011Bezwodny, odczynnikowy
sprzęt hydroponicznyJiangsu Rongcheng Rozwój Nauk i Technologii Rolniczych Co.Ltd.
Kolumna Hypersil BDS C18Thermo Fisher Scientific (China) Co., Ltd.28103-102130
ImidakloprydSigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co., Ltd.Y0002028Norma referencyjna Farmakopei Europejskiej
MgSO4Sigma-Aldrich (Shanghai) Trading Co. Ltd.208094Bezwodny, odczynnik, >97%
NaClSigma-Aldrich (Szanghaj) Trading Co.Ltd.S9888Klasa odczynnika, 99%
miernik pHShanghai Thunder Magnetic Instrument FactoryPHSJ-3F
Pudełko fitotronoweHarbin Donglian Electronic Technology Co., Ltd.Pipety HPG-280B
Eppendorf China Co., Ltd.Badania plus
filtr strzykawkowySigma-Aldrich (Szanghaj) Trading Co.Ltd.SLGV033NNylon, 0,22 i mikro; m wielkość porów, 33 mm, niesterylna
Ultrasprawna chromatografia cieczowa tandemowa potrójna kwadrupolowa spektrometria masThermo Fisher Scientific (China) Co., Ltd.Mikser UltiMate 3000
TSQ Quantum Access MAX
VortexShanghai Yetuo Technology Co., Ltd.Vortex-2
Nasiona pszenicyLuKe przemysłJimai 20
SDZ04BD nasienny

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Lin, P. C., Lin, H. J., Liao, Y. Y., Guo, H. R., Chen, K. T. Acute poisoning with neonicotinoid insecticides: A case report and literature review. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. 112 (4), 282-286 (2013).
  2. North, J. H., et al. Value of neonicotinoid insecticide seed treatments in Mid-South corn (Zea mays) production systems. Journal of Economic Entomology. 111 (1), 187-192 (2018).
  3. Simon-Delso, N., et al. Systemic insecticides (neonicotinoids and fipronil): Trends, uses, mode of action and metabolites. Environmental Science and Pollution Research. 22 (1), 5-34 (2015).
  4. Bass, C., Denholm, I., Williamson, M. S., Nauen, R. The global status of insect resistance to neonicotinoid insecticides. Pesticide Biochemistry and Physiology. 121, 78-87 (2015).
  5. Craddock, H. A., Huang, D., Turner, P. C., Quiros-Alcala, L., Payne-Sturges, D. C. Trends in neonicotinoid pesticide residues in food and water in the United States, 1999-2015. Environmental Health. 18 (1), 7(2019).
  6. Shao, X. S., Liu, Z. W., Xu, X. Y., Li, Z., Qian, X. H. Overall status of neonicotinoid insecticides in China: Production, application and innovation. Journal of Pesticide Science. 38 (1-2), 1-9 (2013).
  7. Zhao, Y., et al. Urinary neonicotinoid insecticides in children from South China: Concentrations, profiles and influencing factors. Chemosphere. 291, 132937(2022).
  8. Kurwadkar, S., Evans, A. Neonicotinoids: Systemic insecticides and systematic failure. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 97 (6), 745-748 (2016).
  9. Sadaria, A. M., et al. Passage of fiproles and imidacloprid from urban pest control uses through wastewater treatment plants in northern California, USA. Environmental Toxicology and Chemistry. 36 (6), 1473-1482 (2017).
  10. Damalas, C. A., Eleftherohorinos, I. G. Pesticide exposure, safety issues, and risk assessment indicators. International Journal of Environmental Research and Public Health. 8 (5), 1402-1419 (2011).
  11. Hayes, T. B., et al. Demasculinization and feminization of male gonads by atrazine: Consistent effects across vertebrate classes. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 127 (1-2), 64-73 (2011).
  12. Rani, L., et al. An extensive review on the consequences of chemical pesticides on human health and environment. Journal of Cleaner Production. 283, 124657(2021).
  13. Xu, Y. Q., et al. Ecotoxicity evaluation of azoxystrobin on Eisenia fetida in different soils. Environmental Research. 194, 110705(2021).
  14. Yavari, S., Malakahmad, A., Sapari, N. B. Biochar efficiency in pesticides sorption as a function of production variables-A review. Environmental Science and Pollution Research. 22 (18), 13824-13841 (2015).
  15. Delcour, I., Spanoghe, P., Uyttendaele, M. Literature review: Impact of climate change on pesticide use. Food Research International. 68, 7-15 (2015).
  16. Zhang, C. Y., et al. The application of the QuEChERS methodology in the determination of antibiotics in food: A review. TrAC-Trends in Analytical Chemistry. 118, 517-537 (2019).
  17. Wiilkowska, A., Biziuk, M. Determination of pesticide residues in food matrices using the QuEChERS methodology. Food Chemistry. 125 (3), 803-812 (2011).
  18. Ishii, Y., et al. HPLC determination of the new insecticide imidacloprid and its behavior in rice and cucumber. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 42 (12), 2917-2921 (1994).
  19. Ko, A. Y., et al. Development of a simple extraction and oxidation procedure for the residue analysis of imidacloprid and its metabolites in lettuce using gas chromatography. Food Chemistry. 148, 402-409 (2014).
  20. Yuan, W. L., et al. Application of imidacloprid controlled-release granules to enhance the utilization rate and control wheat aphid on winter wheat. Journal of Integrative Agriculture. 19 (12), 3045-3053 (2020).
  21. Phugare, S. S., Kalyani, D. C., Gaikwad, Y. B., Jadhav, J. P. Microbial degradation of imidacloprid and toxicological analysis of its biodegradation metabolites in silkworm (Bombyx mori). Chemical Engineering Journal. 230, 27-35 (2013).
  22. Li, Y., et al. Uptake, translocation and accumulation of imidacloprid in six leafy vegetables at three growth stages. Ecotoxicology and Environmental Safety. 164, 690-695 (2018).
  23. Badawy, M. E. I., Ismail, A. M. E., Ibrahim, A. I. H. Quantitative analysis of acetamiprid and imidacloprid residues in tomato fruits under greenhouse conditions. Journal of Environmental Science and Health Part B-Pesticides Food Contaminants and Agricultural Wastes. 54 (11), 898-905 (2019).
  24. Zhai, R. Q., et al. Residue, dissipation pattern, and dietary risk assessment of imidacloprid in Chinese chives. Frontiers in Nutrition. 9, 846333(2022).
  25. Aria, M. M., et al. Uptake and translocation monitoring of imidacloprid to chili and tomato plants by molecularly imprinting extraction - ion mobility spectrometry. Microchemical Journal. 144, 195-202 (2019).
  26. Chen, Y., et al. Translocation and metabolism of imidacloprid in cabbage: Application of C-14-labelling and LC-QTOF-MS. Chemosphere. 263, 127928(2021).
  27. Wild, S., Jones, K. Organic chemicals entering agricultural soils in sewage sludges: Screening for their potential to transfer to crop plants and livestock. Science of the Total Environment. 119, 85-119 (1992).
  28. Gong, W. W., et al. Uptake and dissipation of metalaxyl-M, fludioxonil, cyantraniliprole and thiamethoxam in greenhouse chrysanthemum. Environmental Pollution. 257, 113499(2020).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Imidacloprid AbsorptionImidacloprid TranslocationImidacloprid DistributionWheat SeedlingsNeonicotinoid InsecticidesPesticide ResiduesHydroponic CultureLiquid ChromatographyMass SpectrometryRoot Uptake

Powiązane artykuły