Opisana jest prosta konstrukcja wózka, zbudowana do wykonywania badań echokardiograficznych u stojących w stanie czuwania miniświnek, wraz z rozważaniami dotyczącymi budowania, technikami treningowymi i reprezentatywnymi obrazami ultrasonograficznymi.
Artykuł metodologiczny
Zapis echokardiograficzny u obudzonych miniaturowych świń
W tym artykule
Podsumowanie
Streszczenie
Echokardiografia wykorzystuje fale ultradźwiękowe do nieinwazyjnej oceny struktury i funkcji serca i jest standardem opieki nad oceną i monitorowaniem serca. Miniaturowa świnia lub miniświnka jest coraz częściej wykorzystywana jako model choroby serca w badaniach medycznych. Świnie są notorycznie trudne do krępowania i bezpiecznego obchodzenia się z nimi, dlatego badania echokardiograficzne u tego gatunku są prawie zawsze wykonywane w znieczuleniu lub ciężkiej sedacji. Środki znieczulające i uspokajające powszechnie wpływają na funkcjonowanie układu sercowo-naczyniowego i mogą powodować obniżenie rzutu serca i ciśnienia krwi, zwiększenie lub zmniejszenie częstości akcji serca i ogólnoustrojowego oporu naczyniowego, zmiany rytmu elektrycznego i zmieniony przepływ krwi wieńcowej. W związku z tym echokardiografia w sedacji lub znieczuleniu może nie odzwierciedlać dokładnie postępu choroby serca w dużych modelach zwierzęcych, ograniczając w ten sposób wartość translacyjną tych ważnych badań. W artykule opisano nowatorskie urządzenie, które pozwala na echokardiografię w stanie czuwania u świnek miniaturowych. Ponadto opisano techniki treningowe stosowane w celu nauczenia świń tolerowania tej bezbolesnej i nieinwazyjnej procedury bez konieczności stosowania znieczuleń zmieniających hemodynamikę. Echokardiografia w pozycji stojącej stanowi bezpieczny i wykonalny sposób wykonywania najczęstszego testu monitorowania serca u świnek miniaturowych do badań sercowo-naczyniowych.
Wprowadzenie
Niewydolność serca jest rosnącym obciążeniem dla instytucji medycznych w Stanach Zjednoczonych i za granicą, z ogólnoświatowym rozpowszechnieniem 38 milionów pacjentów1. Około 19 milionów zgonów na całym świecie przypisano chorobom sercowo-naczyniowym w 2020 r., co stanowi wzrost o 18,7% w stosunku do 20102. Rozwój nowych terapii powoli nadąża za tym niepokojącym trendem. Niewydolność serca jest zatem krytycznym obszarem badań, a znaczenie narzędzi o wysokiej wierności w rejestrowaniu rozwoju i postępu choroby jest nie do przecenienia.
Echokardiografia jest obecnie najważniejszym klinicznie narzędziem do nieinwazyjnego pomiaru postępu choroby serca, ale w dużych modelach badawczych na zwierzętach może być trudne do wdrożenia3. Echokardiografia wykorzystuje fale ultradźwiękowe do oceny struktury i funkcji serca i jest standardem opieki w warunkach klinicznych w zakresie oceny i monitorowania serca4. Przedkliniczne duże modele zwierzęce chorób serca, takie jak świnie, odgrywają kluczową rolę w przekładaniu nauk podstawowych na rozwój terapii sercowo-naczyniowych5. Wynika z tego, że przełożenie echokardiografii na duże modele zwierzęce w celu opracowania tych terapii jest ważną częścią tego krytycznego przedsięwzięcia.
Świnie są jednym z kilku gatunków powszechnie używanych jako duże modele zwierzęce symulacji niedokrwiennych, przeciążeniowych i szybkiego tempa niewydolności serca5,6. Świnie są szczególnie ważne w badaniach przedklinicznych, ponieważ neurohormonalne mechanizmy kompensacyjne i przebudowa serca ściśle odzwierciedlają ludzką patofizjologię6,7. Ostatnio miniaturowe świnie lub miniświnie okazały się obiecujące jako model chorób serca z wieloma chorobami współistniejącymi, z otyłością, nadciśnieniem, hipercholesterolemią i cukrzycą niezawodnie skutkującymi dysfunkcją serca i przebudową8,9.
Bezpieczne wykonanie echokardiografii u większości dużych zwierząt wymaga silnej sedacji lub znieczulenia ogólnego. Jednak wszystkie leki znieczulające i uspokajające obniżają czynność serca w sposób zależny od dawki10,11. Środki znieczulające i uspokajające mogą powodować obniżenie rzutu serca i ciśnienia krwi, zwiększenie lub zmniejszenie częstości akcji serca i ogólnoustrojowego oporu naczyniowego, zmiany rytmu elektrycznego i zmieniony przepływ krwi w naczyniach wieńcowych12. W większości przypadków środki znieczulające zmniejszają napięcie współczulne, zmniejszając powrót żylny i obniżając ciśnienie krwi13. Co ważne, środki znieczulające wpływają również na parametry echokardiograficzne, co komplikuje interpretację tego badania w monitorowaniu chorób serca w modelach zwierzęcych14. Echokardiografia na jawie jest najbliższą reprezentacją natywnej funkcji serca.
Urządzenie do krępowania świń, łatwo akceptowane przez obudzone miniświnie, jest tutaj opisane, które może być używane do podstawowego monitorowania echokardiograficznego bez konieczności podawania środków znieczulających zmieniających hemodynamikę.
Protokół
Budowa i użytkowanie wózka do echokardiografii zostały przeprowadzone zgodnie ze standardami postępowania ze zwierzętami i szkolenia Instytucjonalnego Komitetu ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Utah.
1. Uwagi dotyczące budowy wózka do echokardiografii
- Zbuduj urządzenie, które umożliwia dostęp do bocznych i brzusznych okien obrazowania echokardiografii stojącej.
- Użyj wózka z wysokimi bokami, przodem i tyłem, aby zapobiec wspinaniu się lub wyskakiwaniu świń podczas echokardiografii.
- Użyj wózka o regulowanej długości i szerokości, aby pomieścić świnie o różnych rozmiarach i wieku, jednak w badaniach naukowych, w których wszystkie świnie są tej samej wielkości, rasy i wieku, może to nie być konieczne.
- Zaopatrz się w antypoślizgową rampę do montażu i demontażu wózka. Świnie wolą chodzić do przodu, więc zsiadanie do tyłu jest niepożądane. W tym przykładzie wykorzystano odłączaną rampę, dzięki czemu można ją było odłączyć od jednego końca po zamontowaniu wózka, a następnie przesunąć na drugi koniec wózka w celu zdemontowania.
- Użyj wózka na kółkach z kółkami blokującymi, ponieważ pozwala to na przeniesienie urządzenia z magazynu do pomieszczenia dla zwierząt.
- Aby zachować zgodność ze standardami czyszczenia i dezynfekcji wiwariów, należy używać materiałów plastikowych, metalowych i gumowych.
- Na koniec dołącz odłączane koryto do karmienia z przodu wózka, aby zapewnić świniom rozproszenie uwagi podczas echokardiografii.
2. Specyfikacja budowy wózka
UWAGA: Świnie wykorzystane w naszym badaniu to miniaturowe świnie z Jukatanu i Getyngi w wieku 5-10 miesięcy, dlatego nasz wózek został skonstruowany z myślą o tym rozmiarze.
- Podczas gdy podobną konstrukcję można zbudować od podstaw, aby zmniejszyć część prac budowlanych, zacznij od gotowego ciężkiego wózka użytkowego (Rysunek 1). Zalecane są kółka blokujące.
- Odetnij i usuń przód i tył wózka narzędziowego i zastąp je bramami wykonanymi z rury PVC i ogniwa łańcucha. Użyj materiału ogniwa łańcucha do zawieszenia koryta z jedzeniem za pomocą haczyków lub karabińczyków ( Rysunek 2). Wraz z usunięciem przodu i tyłu integralność i siła trzymania tworzywa sztucznego ulegają zmniejszeniu, dlatego w przypadku większych i cięższych świń należy wzmocnić metalowymi prętami na spodniej stronie półek wózka.
- Stwórz otwór na najwyższym piętrze wózka, który jest wystarczająco duży, aby przejść przez rękę trzymającą sondę ultradźwiękową. Zachowaj plastikową osłonę zamontowaną w górnej części otworu, którą można zdjąć w celu uzyskania dostępu do echokardiografii podmieczykowatej, gdy świnie bezpiecznie staną w wózku (Rysunek 3).
- Jako niestandardowe dopasowanie, użyj aluminiowej kolby (np. kwadratowej rury, pręta i blachy), aby zbudować metalową rampę do montażu/demontażu ze wzmocnieniami, które można przymocować do zmodyfikowanego wózka w określonych punktach mocowania. Dodaj zdejmowaną gumową wyściółkę do chwytania za pomocą i przelotek (Rysunek 4).
- Stwórz mechanizm zawiasowy dla bocznych bramek, z prostymi kołkami służącymi do zwężenia obszaru postoju świni w celu poprawy unieruchomienia (Rysunek 5). Zapewnia to dokładne dopasowanie świni w wózku i zapewnia, że świnie są unieruchomione w kierunku przodem do kierunku bez możliwości odwrócenia się.
3. Szkolenie miniaturowych świnek do stania w wózku
- Świnie muszą być szkolone do jedzenia z koryta przez dłuższy czas, wchodzenia na rampę i schodzenia po rampie.
- Wypełnienie koryta mrożonym smakołykiem wydłuża czas stania świń. Używaj kombinacji, takich jak sok, napój zastępujący posiłek lub jogurt z płatkami zbożowymi i standardową karmą, herbatnikami i/lub batonami owocowymi. Zamroź te kombinacje razem, aby stworzyć trwałe zamrożone koryta na smakołyki (Rysunek 6). Inną opcją do rozważenia jest wstrzymanie się z normalnym posiłkiem zwierzęcia i zamiast tego karmienie go w korycie w wózku podczas okresu echokardiografii.
- Przed nauczeniem świń jedzenia mrożonych smakołyków w urządzeniu, wprowadź zamrożone koryta na smakołyki na ziemi, zachęcając do uznania koryta za smakołyk o wysokiej wartości.
- Trenuj świnie, aby akceptowały echokardiogramy stojące przez 5-7 dni, z jedną sesją treningową dziennie. Aby to zrobić, wykonaj następujące kroki.
- Wprowadź świnie do wózka, otaczając go wartościowymi smakołykami (herbatnikami lub płatkami zbożowymi) przez 1-2 dni.
- Wprowadź świnie na rampę na 1-2 dni, umieszczając wzdłuż rampy wartościowe smakołyki i zapewniając dodatkowe nagrody, gdy świnie wejdą na rampę.
- Pozwól świniom stać na wózku bez włączania bocznych pasów bezpieczeństwa lub bramek (które mogą wywoływać strach) i zapewnij zamrożone koryta na smakołyki przy bramie frontowej przez 2-3 dni. W ciągu ostatnich 1-2 dni, gdy świnie jedzą z koryt, umieść na świniach sondę ultradźwiękową z żelem ultradźwiękowym, aby przyzwyczaić je do uczucia kontaktu z sondą.
- Po tym schemacie treningowym świnie z łatwością pozwolą na zamknięcie ograniczeń i bram oraz na wykonanie badania ultrasonograficznego w celu uzyskania obrazowania echokardiograficznego.
4. Akwizycja obrazu
- Uzyskaj obrazy w wózku echokardiograficznym, który umożliwia ustawienie sondy w następujących pozycjach, zgodnie z opisem poniżej.
- Rób zdjęcia przez boki wózka do prawej i lewej pachy. Pozycje te służą do uzyskania prawej i lewej płaszczyzny obrazowania przymostkowego.
- Rób zdjęcia przez podłogę wózka do obszaru podmieczykowatego, aby uzyskać widoki wierzchołkowe.
- Rób zdjęcia zarówno w trybie B, jak i M, z tych pozycji stojących.
- Aby zapoznać się z procedurą symulowanego nagrywania echa w stanie czuwania, zobacz Film 1. Na filmie zwierzę jest reprezentowane przez lalkę miniświnkę naturalnej wielkości, ograniczoną jak prawdziwa miniświnka z ograniczoną przestrzenią do poruszania się w wózku. Pokazane jest również najlepsze okno dostępu i umiejscowienie rejestrującej sondy echokardiograficznej.
Wyniki
Tutaj przedstawiono reprezentatywne obrazy uzyskane u miniswiń rasy Yucatan w wieku około 8 miesięcy. Zwierzę nie było sedowane i podczas akwizycji obrazów spożywało paszę lub mrożone przysmaki z koryt.
Wózek do echokardiografii jest przede wszystkim przydatny do uzyskiwania prostych obrazów służących do obliczania objętości komory lewej oraz frakcji wyrzutowej (EF) na podstawie obrazów i filmów w trybie B lub M. Bardziej czułe techniki obrazowania, takie jak obrazowanie naczyniowe lub Doppler tkankowy, mogą okazać się zbyt trudne do zastosowania przy użyciu tej metody, ponieważ budzące się świnie zachowują ograniczoną mobilność, a ramy czasowe obrazowania są ograniczone czasem karmienia.
Laboratorium wykorzystuje przyłóżkowy aparat do USG bez możliwości analizy obrazu post hoc. W związku z tym filmy i obrazy statyczne wymagają obróbki za pomocą oprogramowania do edycji oraz pomiarów z wykorzystaniem naukowego oprogramowania do analizy obrazu.
Obrazy w trybie M w przekroju poprzecznym w osi krótkiej (Rycina 7) uzyskano przez boki wózka; posłużyły one do analizy wewnętrznej średnicy lewej komory w skurczu i rozkurczu (odpowiednio LVIDs i LVIDd) oraz do późniejszego obliczenia frakcji wyrzutowej (EF), gdzie EF = (EDV - ESV)/EDV × 100% (EDV: objętość końcoworozkurczowa; ESV: objętość końcowoskurczowa) na podstawie objętości obliczonych zgodnie z wzorem Teichholza (objętość = 7D3/[2.4 + D]) (D: liniowa średnica LV)15. W Tabeli 1 przedstawiono reprezentatywne dane uzyskane z czterech skanów w trybie M od dwóch miniswini oraz dane z skanów w trybie M zarejestrowanych u tych samych zwierząt podczas sesji echokardiograficznych w sedacji. Zgodnie z oczekiwaniami, EF uzyskana podczas sesji w sedacji miała tendencję do bycia niższą niż EF z sesji u zwierząt przytomnych.
Z boków wózka uzyskano również obrazy w trybie B w widoku długiej osi przywiekowej (Rysunek 8). Do obliczenia EF w oparciu o te obrazy w trybie B wykorzystano metodę pola i długości16. Najpierw obliczono EDV lewej komory na podstawie długości głównej osi lewej komory i pola powierzchni komory w końcowej rozkurczowej, stosując wzór EDV = (0,85 × area2)/length. ESV lewej komory obliczono w ten sam sposób, wykorzystując pomiary skurczowe. Następnie frakcję wyrzutową obliczono jako EF = (EDV - ESV)/EDV × 100%. W Tabeli 2 przedstawiono reprezentatywne dane uzyskane z ośmiu skanów w trybie B przeprowadzonych u dwóch minipigów. Dla porównania dołączono również dane z obrazowania w trybie B zarejestrowane u tych samych zwierząt podczas sesji echo w sedacji. Na podstawie obrazów w trybie B stwierdzono, że wartości EF uzyskane podczas sesji echo u zwierząt w sedacji i świadomych były ze sobą ściśle zgodne (Tabela 2).
Rycina 1: Widok z boku wózka do echokardiografii. Wózek do echokardiografii został zbudowany w oparciu o gotowy, wytrzymały wózek narzędziowy. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny.
Rysunek 2: Widok z przodu wózka do echokardiografii. Przednia i tylna część gotowego wózka zostały zastąpione zawiasowymi bramkami wykonanymi z rur PVC i siatki ogniwowej (A), w których zamontowano również wiszącą korytko z paszą (B). Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.
Rysunek 3: Widok z góry wózka do echokardiografii. W górnym blacie wózka wykonano otwór umożliwiający wprowadzenie dłoni trzymającej głowicę ultradźwiękową. Do bezpiecznego montażu i demontażu wózka dopasowano plastikową nakładkę. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku.
Rycina 4: Aluminiowa rampa. Aluminiowa rampa jest przymocowana do przodu lub tyłu wózka, a w celu zwiększenia przyczepności za pomocą śrub i przelotek dodano demontowalne gumowe wyściółki. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
Rysunek 5: Bramka boczna. Do bramek bocznych wykonano zawiasy z bolcami, aby umożliwić dokładniejsze dopasowanie rozmiaru i ograniczenie ruchu. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.
Rycina 6: Przekąski do sesji świadomego echa. Kombinacje soku, napoju zastępującego posiłek lub jogurtu połączone z płatkami, standardową karmą, herbatnikami i/lub batonami owocowymi są mrożone w celu utworzenia trwałych mrożonych korytek z przekąskami. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.
Rysunek 7: Reprezentatywny skan w trybie M uzyskany od świadomego zwierzęcia. Przykładowa analiza obrazu do obliczenia frakcji wyrzutowej lewej komory na podstawie obrazowania w trybie M. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.
Rycina 8: Reprezentatywny obraz z badania w trybie B uzyskany od zwierzęcia w stanie świadomym. Przykładowa analiza obrazu do obliczenia frakcji wyrzutowej lewej komory na podstawie obrazowania w trybie B. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.
| Średnia ± SD | LVIDd (cm) | LVIDs (cm) | EF (%) |
| Świadome Echo (N=4/2) | 3.8 ± 0.5 | 2.5 ± 0.5 | 64.3 ± 5.4 |
| Echokardiografia w sedacji (N=4/2) | 3.9 ± 0.2 | 3.0 ± 0.0 | 48.5 ± 7.9 |
| EF, frakcja wyrzutowa; SD, odchylenie standardowe. | |||
| N = 4 skanów echo uzyskanych od dwóch zwierząt | |||
Tabela 1: Porównanie parametrów uzyskanych z obrazów w trybie M zarejestrowanych u zsedowanych minitrusi w porównaniu do świadomych minitrusi unieruchomionych w wózku.
| LV-MALd (cm) | LV-MALs (cm) | LV-CAd (cm2) | LV-CAs (cm2) | EF (%) | |
| Echo w stanie świadomości (N=8/2) | 5.8 ± 0.8 | 4.5 ± 0.6 | 18.6 ± 5.0 | 10.7 ± 2.8 | 57.3 ± 5.2 |
| Echo w stanie sedacji (N=8/2) | 5.9 ± 0.5 | 4.8 ± 0.4 | 21.8 ± 2.7 | 13.1 ± 2.4 | 55.3 ± 9.0 |
| LV-MAL, długość głównej osi lewej komory; LV-CA, powierzchnia jamy lewej komory; | |||||
| EF, frakcja wyrzutowa; SD, odchylenie standardowe. N=8 skanów echo uzyskanych od 2 zwierząt | |||||
Tabela 2: Porównanie parametrów uzyskanych z obrazów w trybie B zarejestrowanych u zsedowanych minishorysów w porównaniu do minishorysów przytomnych unieruchomionych w wózku.
Wideo 1: Próbna procedura zapisu echokardiograficznego u budzonego zwierzęcia, przeprowadzona na lalkach minipig w rzeczywistej wielkości z wykorzystaniem wózka echokardiograficznego. Kliknij tutaj, aby pobrać to wideo.
Dyskusja
Wózek echokardiograficzny stanowi łatwą do odtworzenia metodę monitorowania struktury i funkcji serca w ważnym modelu badań kardiologicznych, miniśwince. Nowatorstwo wózka polega na możliwości rejestrowania obrazów echokardiograficznych bez największego zastrzeżenia: konieczności stosowania środków znieczulających lub uspokajających, które zmieniają czynność serca zwierząt i zmieniają same pomiary używane do oceny efektów terapii kardiologicznej. Co więcej, wózek jest bezpieczny, niedrogi i łatwy do szkolenia dla świń.
Autorzy najpierw zidentyfikowali pożądane cechy wózka, a następnie ściśle współpracowali ze stolarzem w celu zaprojektowania produktu. Standardowe techniki treningu pozytywnego wzmocnienia były łatwe i szybkie, aby nauczyć świnie nieustraszenie akceptować wózek i używać go. Dzięki praktyce ultrasonograficznej autorzy byli w stanie szybko znaleźć i zarejestrować standardowe dwuwymiarowe płaszczyzny obrazowania echokardiografii do późniejszego przetwarzania. Podczas tych echokardiogramów stojących nigdy nie podawano środków uspokajających ani znieczulających, a zatem filmy i obrazy były reprezentatywne dla funkcji serca w stanie czuwania.
Budowa wózka do echokardiografii jest stosunkowo prosta dla doświadczonego stolarza lub majsterkowicza po zidentyfikowaniu kluczowych cech ważnych dla grupy badawczej (np. regulacji rozmiaru, wysokości czy punktów dostępu do sondy ultradźwiękowej). W trakcie procesu budowy funkcje wózka mogą być zmieniane w celu dostosowania do potrzeb poszczególnych laboratoriów. Materiały są w dużej mierze niedrogie, a zbudowanie wózka może zaoszczędzić na kosztach wykonywania echokardiogramów z zwykle stosowanymi środkami uspokajającymi i znieczulającymi.
Ograniczenia tej techniki obejmowały ruch i ograniczony czas potrzebny na uzyskanie obrazów. Podczas gdy wóz można było dostosować do różnych rozmiarów, aby unieruchomić świnie, i chociaż zwierzęta nie mogły się obrócić i mogły poruszać się tylko o kilka cali w każdym kierunku, zwierzęta nadal były zdolne do poruszania się w granicach wozu. Klapa czołowa, rynna zsypowa lub kłonica, takie jak te używane ze zwierzętami gospodarskimi, mogą potencjalnie zapewnić lepsze unieruchomienie po dodatkowym szkoleniu. Podobnie, udane obrazowanie polegało na tym, że zwierzęta były rozpraszane przez paszę lub mrożone smakołyki podczas echokardiogramów. Zazwyczaj pozwalało to na około 15 minut obrazowania, co nie zawsze wystarczało do uzyskania wszystkich pożądanych obrazów. Możliwość łatwego zastąpienia koryta z pokarmem lub dodania paszy, gdy zwierzę pozostawało unieruchomione, mogła wydłużyć czas obrazowania. Wreszcie, ze względu na oba powyższe ograniczenia, bardziej czułe techniki obrazowania, takie jak Doppler tkankowy, okazały się trudne do wykonania w stojącym wózku echokardiograficznym.
Inne eksperymentalne modele świń często wykorzystują techniki obchodzenia się bez znieczulenia, takie jak dostępna na rynku chusta Panepinto17. Jednak autorzy stwierdzili, że technika chusty jest bardziej kłopotliwa w treningu świń, a chusta nie zapewnia ultrasonografowi dostępu do płaszczyzn obrazowania wymaganych do echokardiografii. Inne potencjalne zastosowania wózka echokardiograficznego mogą obejmować inne niebolesne procedury, takie jak ultrasonografia jamy brzusznej, obserwacja zmian skórnych lub pobieranie próbek krwi z portu dostępu naczyniowego. Autorzy często wykorzystują wózek do łatwego przytrzymywania świń do wykonywania elektrokardiogramów i programowania rozruszników serca.
Podsumowując, opisana technika echokardiografii w stanie czuwania jest łatwa do wykonania i cenna dla uzyskania podstawowego obrazowania ultrasonograficznego serca bez depresji sercowo-naczyniowej typowej dla stosowania środków znieczulających lub uspokajających. Technika ta może być wykorzystana do porównywania znieczulonych obrazów z obrazami wybudzenia u dużych zwierząt lub do codziennego monitorowania postępu choroby serca w cennym przedklinicznym modelu translacyjnym choroby i niewydolności serca u świń.
Oświadczenia
Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych finansowych konfliktów interesów.
Podziękowania
Finansowanie tych badań obejmuje NIH-T32 (T.H.), R01HL133286 (TT.H.), R01HL094414 (R.M.S.), R01HL138577 (R.M.S.), R01HL159983 i R21AG074593 (R.M.S. i TT.H.). Wyrażamy naszą wdzięczność wszystkim członkom grupy badawczej, adiunktom i personelowi Instytutu Badań i Szkoleń Sercowo-Naczyniowych Nora Eccles Harrison oraz Medycyny Porównawczej na Uniwersytecie Utah. Chcielibyśmy również wyrazić nasze uznanie dla dr Josepha Palatinusa, doktora nauk medycznych, za jego cenne szkolenie i pomoc w zakresie echokardiografii.
Materiały
| Nazwa | Firma | Numer katalogowy | Komentarze |
|---|---|---|---|
| Rampa dostępowa | Nie dotyczy - zbudowany w sklepie | 58 "dł. x 18" szer. Wzniesienie 19 "nie przekracza kąta 22,5 stopnia. | Dowolna zdejmowana aluminiowa rampa o pojemności do utrzymania ciężaru świń |
| Podajnik ogrodzenia z klipsami | DuraFlex | E011772 | Koryto paszowe z klipsami do zawieszenia na ogniwie łańcucha, używane do mrożonych smakołyków lub paszy do odwracania uwagi świń podczas echokardiografii |
| Wózek narzędziowy o dużej wytrzymałości | Baxter Sprzęt medyczny i Wózek z zaopatrzeniem | # unk / 45x25x33"; Rury, sch 40 PVC | Wykonany z ciężkiego tworzywa sztucznego, z trzema półkami |
| Oprogramowanie do analizy obrazu | Image J FIJI | https://imagej.net/software/fiji/ | Darmowe oprogramowanie do naukowej analizy obrazu |
| Lumify Ultrasound z przetwornikiem Phased Array S4-1 | Philips | FUS6884 | Ręczne USG przyłóżkowe z sondą kardiologiczną, używane z tabletem i zastrzeżonym oprogramowaniem |
| Oprogramowanie do edycji wideo | Adobe Premiere Pro 2022 | https://www.adobe.com/products/premiere.html | Oprogramowanie Commen będące częścią Adobe Creative Cloud. |
Bibliografia
- Braunwald, E. The war against heart failure: The Lancet lecture. Lancet. 385, 812-824 (2015).
- Tsao, C. W., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. Heart disease and stroke statistics - 2022 Update: A report from the American Heart Association. Circulation. 145 (5), e153-e639 (2022).
- Billig, S., et al. Transesophageal echocardiography in swine: evaluation of left and right ventricular structure, function, and myocardial work. International Journal of Cardiovascular Imaging. 37 (3), 835-846 (2021).
- Boon, J. A. Veterinary Echocardiography., 2nd edition. , Wiley-Blackwell. West. Sussex, UK. (2011).
- Silva, K. A. S., Emter, C. A. Large animal models of heart failure: A translational bridge to clinical success. Journal of the American College of Cardiology: Basic to Translational Science. 5 (8), 840-856 (2020).
- Pilz, P. M., et al. Large and small animal models of heart failure with reduced ejection fraction. Circulation Research. 130 (12), 1888-1905 (2022).
- Paslawska, U., et al. Normal electrocardiographic and echocardiographic (M-mode and two-dimensional) values in Polish Landrace pigs. Acta Veterinaria Scandinavica. 56 (1), 54(2014).
- Sharp, T. E., et al. Novel Gottingen miniswine model of heart failure with preserved ejection fraction integrating multiple comorbidities. Journal of the American College of Cardiology: Basic to Translational Science. 6 (2), 154-170 (2021).
- Olver, T. D., et al. Western diet-fed, aortic-banded Ossabaw swine: A preclinical model of cardio-metabolic heart failure. Journal of the American College of Cardiology: Basic to Translational Science. 4 (3), 404-421 (2019).
- Merin, R. G. Effect of anesthetic drugs on myocardial performance in man. Annual Review of Medicine. 28, 75-83 (1977).
- El Mourad, M. B., Shaaban, A. E., El Sharkawy, S. I., Afandy, M. E. Effects of propofol, dexmedetomidine, or ketofol on respiratory and hemodynamic profiles in cardiac patients undergoing transesophageal echocardiography: A prospective randomized study. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 35 (9), 2743-2750 (2021).
- Stoelting, R. K., Hillier, S. C. Handbook of Pharmacology & Physiology in Anesthetic Practice., 2nd edition. , Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia, PA. (2006).
- Kristensen, S. D., et al. ESC/ESA Guidelines on non-cardiac surgery: Cardiovascular assessment and management: The Joint Task Force on non-cardiac surgery: Cardiovascular assessment and management of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Society of Anaesthesiology (ESA). European Heart Journal. 35 (35), 2383-2431 (2014).
- Roth, D. M., Swaney, J. S., Dalton, N. D., Gilpin, E. A., Ross Jr, J. Impact of anesthesia on cardiac function during echocardiography in mice. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 282 (6), H2134-H2140 (2002).
- Chengode, S. Left ventricular global systolic function assessment by echocardiography. Annals of Cardiac Anaesthesia. 19 (Suppl 1), S26-S34 (2016).
- Cacciapuoti, F. Echocardiographic evaluation of ejection fraction: 3DE versus 2DE and M-Mode. Heart Views. 9 (2), 71-79 (2008).
- Yang, H., Galang, K. G., Gallegos, A., Ma, B. W., Isseroff, R. R. Sling training with positive reinforcement to facilitate porcine wound studies. JID Innovations. 1 (2), 100016(2021).
Przedruki i uprawnienia
