Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Sekcja całego ośrodkowego i obwodowego układu nerwowego myszy

10.8K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/64974

⸱

24 lutego 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj prezentujemy protokół do zakończenia sekcji centralnego i obwodowego układu nerwowego myszy. Wypreparowane tkanki są dalej analizowane w dalszych zastosowaniach, takich jak robienie zdjęć ogólnych lub histologia.

Streszczenie

Modele zwierzęce reprezentują konia pociągowego w dziedzinie neuronauki. Mimo to nadal nie ma protokołu krok po kroku, który pozwoliłby przeanalizować cały układ nerwowy gryzoni, ani nie ma kompletnego schematu przedstawiającego go, który byłby swobodnie dostępny. Dostępne są tylko metody pobierania mózgu, rdzenia kręgowego, określonego zwoju korzenia grzbietowego i nerwu kulszowego (osobno). Tutaj przedstawiamy szczegółowe zdjęcia i schemat ośrodkowego i obwodowego mysiego układu nerwowego. Co ważniejsze, przedstawiamy solidną procedurę przeprowadzania jego sekcji. 30-minutowy etap presekcji pozwala na odizolowanie nienaruszonego układu nerwowego w obrębie kręgu z mięśniami wolnymi od wnętrzności i skóry. Po 2-4 godzinnej sekcji pod mikroskopem mikropreparacyjnym odsłania się rdzeń kręgowy i nerwy piersiowe, a na koniec odkleja się cały ośrodkowy i obwodowy układ nerwowy od tuszy. Protokół ten stanowi znaczący krok naprzód w badaniu anatomii i patofizjologii układu nerwowego na całym świecie. Na przykład wypreparowane gangliony korzenia grzbietowego z modelu myszy z nerwiakowłókniakowatością typu I mogą być dalej przetwarzane do badań histologicznych w celu wyjaśnienia zmian w progresji guza.

Wprowadzenie

Ogólnym celem tej metody jest odizolowanie centralnego i obwodowego układu nerwowego myszy w jednym kawałku. Obecnie nie ma protokołu pozwalającego na przeanalizowanie całego układu nerwowego gryzonia w celu zbadania go na poziomie globalnym. Neurobiolodzy zazwyczaj używają nerwu kulszowego jako substytutu dla dowolnego nerwu obwodowego1, a ganglionów od L3 do L52 jako substytutu dla dowolnych ganglionów. Korzystając z tych metod, nie można stwierdzić, czy wyniki są specyficzne dla konkretnego nerwu/zwoju. Ponieważ wiadomo, że przynajmniej niektóre patologie nerwowe nie wpływają jednakowo na wszystkie nerwy i zwoje

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Protokoły użyte w tym badaniu zostały zatwierdzone przez Comité Institutionnel des Animaux de l'Université de Sherbrooke, kanadyjską instytucję posiadającą certyfikat opieki nad zwierzętami.

1. Przygotowanie do mikropreparacji (prepreparacja)

  1. Wykonaj znieczulenie 5% izofluranem, a następnie eutanazję 2% izofluranu i 10 psi CO2 do momentu, gdy nie pojawią się żadne parametry życiowe.
    UWAGA: Nie należy wykonywać zwichnięcia szyjki macicy, ponieważ powoduje to uszkodzenie rdzenia kręgowego i ganglionów szyjnych.
  2. Umieść uśpioną mysz przodem do góry (widok z przodu) na podkładce preparacyj....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Gryzonie odegrały kluczową rolę w naszym zrozumieniu biologii i patofizjologii układu nerwowego10. Co ciekawe, nie istnieją metody prezentujące pełną sekcję ośrodkowego i obwodowego układu nerwowego gryzonia w celu oceny anatomii i zmienności patologicznej w modelu czasu rzeczywistego1,2,11. Rysunek 1 przedstawia przegląd od etapu 1 do etapu 4 (przygotowanie do mikrosekcji, o.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Aby zapobiec wysuszeniu mięśni i nerwów, tuszę należy moczyć w PBS co 10 minut. Podczas zwichnięcia kończyn dolnych (krok 1.12.6) ważne jest, aby zawsze mieć splot nerwu kulszowego i L2 w zasięgu wzroku, aby uniknąć jego uszkodzenia/rozerwania. Podczas preparacji mózgu (krok 1.14.4) bardzo ważne jest, aby nie wchodzić zbyt głęboko, aby nie uszkodzić mózgu. Podczas preparowania ganglionów korzenia grzbietowego i ogólnie nerwów obwodowych bardzo ważne jest, aby używać wysokiej jakości (nieuszkodzonych) minikleszczy Dumonta.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy zadeklarowali brak konfliktu interesów.

Podziękowania

JPB jest stypendystą FRSQ J1 i laureatem nagrody Early Investigator Research Award przyznawanej przez Departament Obrony USA. LQL posiada nagrodę Career Award for Medical Scientists przyznaną przez Burroughs Wellcome Fund oraz profesurę dermatologii im. Thomasa L. Shieldsa.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Mini-kleszcze DumontNarzędzia Fine Science #11200-10
Dodatkowe nożyczki BonnNarzędzia Fine Science #14084-08
Formalin 10%Fischer Scientific#22-046-361
PBS 1xBioShopCanada#PBS404.500
Standardowe kleszcze anatomiczneFine Science Tools#91100-12
Nożyczki chirurgiczneFine Science Tools#140001-12
Nożyczki sprężynowe VannasKent Scientific#INS600124

Bibliografia

  1. Bala, U., Tan, K. L., Ling, K. H., Cheah, P. S. Harvesting the maximum length of sciatic nerve from adult mice: a step-by-step approach. BMC Reserach Notes. 7, 714(2014).
  2. Sleigh, J. N., Weir, G. A., Schiavo, G. A simple....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Disekcja układu nerwowegoośrodkowy układ nerwowydisekcja myszyizolacja rdzenia kręgowegozwoje korzeni grzbietowychdisekcja nerwu kulszowegomikroskop do mikrodisekcjimodel mysi neurofibromatozyanatomia układu nerwowego

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny