Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Platforma open source do obliczania masy cząsteczek terapeutycznych opartych na przeciwciałach

2.8K wyświetleń

DOI:

10.3791/65298

16 czerwca 2023

W tym artykule

Podsumowanie

Ten artykuł opisuje użycie aplikacji mAbScale do obliczania mas dla terapii białkowych opartych na przeciwciałach monoklonalnych.

Streszczenie

Masy bioterapeutyczne są sposobem weryfikacji tożsamości i integralności strukturalnej. Spektrometria mas (MS) nienaruszonych białek lub podjednostek białkowych stanowi łatwe narzędzie analityczne dla różnych etapów rozwoju biofarmaceutyków. Tożsamość białka jest potwierdzona, gdy masa doświadczalna z MS mieści się w predefiniowanym zakresie błędu masy masy teoretycznej. Chociaż istnieje kilka narzędzi obliczeniowych do obliczania mas cząsteczkowych białek i peptydów, albo nie zostały one zaprojektowane do bezpośredniego zastosowania w jednostkach bioterapeutycznych, mają ograniczenia dostępu ze względu na płatne licencje, albo wymagają przesyłania sekwencji białek na serwery hosta.

Opracowaliśmy modułową procedurę obliczania masy, która umożliwia łatwe określenie średnich lub monoizotopowych mas i składu pierwiastkowego terapeutycznych glikoprotein, w tym przeciwciał monoklonalnych (mAb), przeciwciał bispecyficznych (bsAb) i koniugatów przeciwciało-lek (ADC). Modułowy charakter tej ramy obliczeniowej opartej na Pythonie pozwoli w przyszłości na rozszerzenie tej platformy na inne modalności, takie jak szczepionki, białka fuzyjne i oligonukleotydy, a struktura ta może być również przydatna do badania danych spektrometrii mas z góry na dół. Tworząc samodzielną aplikację komputerową typu open source z graficznym interfejsem użytkownika (GUI), mamy nadzieję przezwyciężyć ograniczenia związane z użytkowaniem w środowiskach, w których zastrzeżone informacje nie mogą być przesyłane do narzędzi internetowych. W tym artykule opisano algorytmy i zastosowanie tego narzędzia, mAbScale, do różnych metod terapeutycznych opartych na przeciwciałach.

Wprowadzenie

W ciągu ostatnich dwóch dekad bioterapeutyki ewoluowały, stając się filarem nowoczesnego przemysłu farmaceutycznego. Pandemia SARS-CoV2 oraz inne zagrażające życiu schorzenia dodatkowo zwiększyły zapotrzebowanie na szybszy i szerszy rozwój cząsteczek biofarmaceutycznych1,2,3.

Masa cząsteczkowa preparatu bioterapeutycznego jest kluczowa dla identyfikacji cząsteczki w połączeniu z innymi analizami analitycznymi. Masy nienaruszonej oraz zredukowanych podjednostek są wykorzystywane w całym cyklu odkrywania i rozwoju leku jako część strategii kontrolnych mających na celu utrzymanie jakości, zgodnie z opisem w QTPP (Quality Target Product Profile)4.

Rozwój analityczny w przemyśle biofarmaceutycznym w dużym stopniu opiera się na pomiarach masy w celu analizy masy nienaruszonych cząsteczek oraz szczegółowej charakterystyki z wykorzystaniem mapowania peptydowego lub monitorowania metodą wieloatrybutową (MAM). W centrum tych technik, wykorzystujących nowoczesne platformy spektrometrii mas (MS), znajduje się możliwość dostarczania pomiarów masy o wysokiej rozdzielczości i wysokiej dokładności (HR/AM). Większość instrumentów HR/AM zapewnia dokładność pomiaru masy w zakresie 0,5-5 ppm, co skaluje się wraz z zakresem masy. Zdolność do dokładnego pomiaru mas dużych, nienaruszonych cząsteczek umożliwia szybką i pewną identyfikację terapeutyków wielkocząsteczkowych. Ponieważ w typowych warunkach eksperymentalnych dla dużych cząsteczek (>10 kDa) nie można uzyskać rozdzielczości izotopowej, do porównania i identyfikacji należy obliczyć masy średnie5,6.

Typowe widmo masy białka w całości lub jego podjednostek reprezentuje ogólny profil proteoform, który zawiera złożone informacje na temat różnych form molekularnych wynikających z modyfikacji potranslacyjnych (PTM) oraz wszelkich różnic w strukturze pierwotnej, takich jak cięcia lub warianty sekwencji. Stosunkowo łatwy i wysokoprzepustowy charakter tych pomiarów sprawia, że są one atrakcyjne w celach charakterystyki oraz jako kontrole monitorowania procesu w toku7,8. Analiza danych dla tych eksperymentów zazwyczaj wymaga od użytkownika zdefiniowania przestrzeni poszukiwań dla form molekularnych (zakresu PTM lub innych form molekularnych). W przypadku białek glikozylowanych przestrzeń ta jest w dużej mierze determinowana przez heterogenność glikoform. Kombinacje wielu PTM, konfiguracje mostków dwusiarczkowych i inne warianty w obrębie struktury pierwotnej sprawiają, że obliczanie wszystkich możliwych form molekularnych jest żmudnym zadaniem. W związku z tym manualne obliczanie możliwych form molekularnych jest procesem czasochłonnym i zasobochłonnym, obarczonym dużym ryzykiem błędów ludzkich.

W niniejszej pracy przedstawiamy narzędzie do obliczeń masy, które opracowano z uwzględnieniem najważniejszych cech cząsteczek bioterapeutycznych, takich jak przeciwciała monoklonalne (mAbs), przeciwciała bispecyficzne (bsAbs), konjugaty przeciwciało-lek (ADCs) i inne. Narzędzie to umożliwia łatwe wprowadzenie zmiennych przestrzeni poszukiwań w celu spójnego obliczania mas i składu elementarnego. Modułowa budowa narzędzia pozwoli na jego dalszy rozwój oraz zastosowanie do obliczeń masy i dopasowywania mas dla innych modalności.

Moduł GUI umożliwia użytkownikowi określenie danych wejściowych do obliczeń masy, jak pokazano na Rysunku 1; w szczególności użytkownik wprowadza sekwencje aminokwasów zapisane jednoliterowo dla lekkich i ciężkich łańcuchów przeciwciał. Powszechne modyfikacje, takie jak cyklizacja N-końca i odcinanie lizyny z C-końca łańcucha ciężkiego, są dostępne jako pola wyboru. Ponadto, wzór chemiczny/skład pierwiastkowy może zostać dodany lub odjęty od tych łańcuchów białkowych za pomocą odpowiedniego pola tekstowego Chem Mod. Daje to użytkownikowi możliwość dodania składu pierwiastkowego obejmującego wiele modyfikacji potranslacyjnych lub ładunek w postaci małej cząsteczki w przypadku ADC. Ponieważ większość terapeutycznych przeciwciał monoklonalnych (mAbs) jest projektowana w celu usunięcia miejsc glikozylacji w łańcuchu lekkim, glikozylacja łańcucha lekkiego pozostaje opcjonalna i może zostać określona za pomocą pola wyboru w GUI.

Typową modyfikacją analizy masy nienaruszonej przeciwciał jest analiza masy zredukowanych podjednostek, w której łańcuch lekki zostaje oddzielony od łańcucha ciężkiego poprzez redukcję międzyłańcuchowych mostków disiarczkowych. W zależności od siły zastosowanego środka redukującego, wewnątrzłańcuchowe mostki disiarczkowe mogą zostać rozcięte lub nie. Użytkownicy mają możliwość wprowadzenia całkowitej liczby mostków disiarczkowych w zależności od podtypu IgG lub w przypadku ADC sprzężonego z cysteiną9.

Aplikacja oblicza masy w sposób oddolny (bottom-up), w którym w pierwszej kolejności obliczane są składy pierwiastkowe dla poszczególnych ciężkich i lekkich łańcuchów. Następnie uwzględniana jest cyklizacja N-końca łańcucha ciężkiego (HC) poprzez odcięcie lizyny (Lys-clipping), co realizowane jest poprzez skorygowanie obliczonych składów pierwiastkowych. Następnie do łańcuchów ciężkich i/lub lekkich stosowane są wszelkie określone modyfikacje chemiczne. W zależności od rodzaju analizy i określonych przez użytkownika wzorów wiązań dwusiarczkowych, korygowana jest liczba atomów wodoru dla obu łańcuchów polipeptydowych. Masy glikozylowanego HC oraz łańcucha lekkiego (LC) (opcjonalnie) są obliczane na podstawie danych wprowadzonych przez użytkownika. Na koniec łączone są masy wielu HC i LC, a liczba wiązań dwusiarczkowych jest automatycznie aktualizowana w celu obliczenia masy nienaruszonej (intact mass).

W przypadku większych cząsteczek, takich jak nienaruszone białka, pomiary mas monoizotopowych są niemożliwe ze względu na addytywny deficyt masy podczas stosowania spektrometrów mas o typowej rozdzielczości. Zamiast tego mierzy się lub podaje masy nominalne lub średnie5,10,11,12,13. Średnie masy pierwiastków mogą się różnić w zależności od źródła wykorzystanego do opracowania mas kuratowanych14,15. Choć różnice w masach pierwiastków mogą być niewielkie, mogą one sumować się do znaczących wartości przy obliczeniach masy cząsteczkowej dużych cząsteczek. Średnie masy pierwiastków używane domyślnie w aplikacji programowej przedstawiono w Tabeli uzupełniającej 1. W środowiskach regulowanych, takich jak obszar badań i rozwoju (R&D) w biofarmaceutyce, ważne jest zachowanie spójności mas cząsteczkowych, ponieważ zmiany mas mogą sugerować zmiany w strukturze cząsteczkowej podczas zgłoszeń regulacyjnych. Aby zapewnić spójność w stosowaniu mas pierwiastków, do narzędzia programowego dołączono słownik mas pierwiastków w formie pliku tekstowego z wartościami rozdzielonymi przecinkami (csv): Element_Mass.csv (Uzupełniający plik kodu 1). Podobnie dołączono kuratowaną listę składów glikanów typowo występujących w przeciwciałach monoklonalnych (mAbs): Glycan.csv (Uzupełniający plik kodu 2). Oba pliki są zapisane w tym samym folderze co plik wykonywalny aplikacji i mogą być modyfikowane przez użytkownika w celu zastosowania konkretnej listy mas pierwiastków lub biblioteki glikanów.

Interfejs modyfikacji białek; analiza sekwencji, liczba mostków dwusiarczkowych; schemat modyfikacji chemicznych.
Rycina 1: Interfejs GUI aplikacji mAbScale. Moduł GUI umożliwia użytkownikowi określenie danych wejściowych do obliczeń masy. Użytkownik wprowadza jednoliterowe sekwencje aminokwasowe dla lekkich i ciężkich łańcuchów przeciwciała. Powszechne modyfikacje, takie jak cyklizacja N-końca łańcucha ciężkiego oraz odcinanie lizyny z C-końca, zostały uwzględnione w formie pól wyboru. Wzory chemiczne/składy pierwiastkowe można dodawać lub odejmować za pomocą odpowiedniego pola tekstowego Chem Mod. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ogólny schemat procesu dla mAbScale przedstawiono na Rysunku 2. Każdy krok zawiera bardziej złożone wewnętrzne rozgałęzienia decyzyjne, pętle i kombinatorykę. Szczegółowy schemat algorytmiczny opisujący proces obliczeniowy przedstawiono na Rysunku uzupełniającym 1. Wyniki aplikacji są zapisywane w formacie arkusza kalkulacyjnego w wybranym przez użytkownika folderze. Plik wynikowy składa się z wielu oddzielnych arkuszy, które można podzielić na dane wejściowe użytkownika, obliczenia masy cząsteczkowej oraz referencje dla wyprowadzeń średniej masy izotopowej (przykład wyników znajduje się w tabelach uzupełniających). Arkusze danych wejściowych użytkownika zawierają sekwencje aminokwasowe białek i inne informacje wprowadzone przez użytkownika, średnie masy pierwiastków oraz masy glikanów, które są wykorzystywane do obliczenia składu pierwiastkowego i różnych mas cząsteczkowych. Arkusze obliczeń masy cząsteczkowej zawierają skład chemiczny różnych form, masę zredukowaną z glikozylacją i bez niej oraz z modyfikacją chemiczną i bez niej, a także masę nienaruszoną z glikozylacją i bez niej oraz z modyfikacją chemiczną i bez niej. Arkusze zawierające masy półprzeciwciał zostaną wygenerowane automatycznie, jeśli użytkownik wprowadzi dwa różne HC i/lub dwa różne LC na stronie danych wejściowych, ponieważ półprzeciwciała są głównymi zanieczyszczeniami, które muszą zostać zidentyfikowane i ilościowo określone w stosunku do pożądanego heterodimeru. Kod źródłowy mAbScale jest dostępny w następnym repozytorium: https://github.com/kkhatri99/mAbScale.

Proces obliczania składu chemicznego; schemat blokowy; sekwencje peptydów; masy glikoform; wyniki w programie Excel.
Rycina 2: Przegląd kroków zaangażowanych w obliczanie składu pierwiastkowego i mas za pomocą aplikacji. Kodowanie kolorystyczne może służyć do powiązania z przepływem procesu opisanym w Rycini uzupełniającej 1. Proszę kliknąć tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

1. Uruchamianie aplikacji mAbscale

  1. Otwórz aplikację programową, dwukrotnie klikając ikonę pliku wykonywalnego.

2. Wprowadzanie sekwencji

  1. Wprowadź sekwencje łańcuchów ciężkich i lekkich w odpowiednie pola tekstowe oznaczone numerem 1, nie pozostawiając żadnych spacji.
    1. W przypadku bsAbs dodaj dodatkowe łańcuchy ciężkie lub lekkie w drugim zestawie pól tekstowych oznaczonych numerem 2. Pozostaw pola 2 puste w przypadku mAbs z identycznymi łańcuchami ciężkimi i lekkimi.
    2. Zaznacz pola wyboru N-Terminal Cyclization (cyklizacja N-końcowa) i/lub C-Terminal Clipping (przycinanie C-końcowe), jeżeli mają zastosowanie te warianty końcowe łańcucha ciężkiego.
    3. Wprowadź wszelkie modyfikacje chemiczne, w tym łącznik i ładunek dla cząsteczek ADC, w polach tekstowych Heavy Chain Chem Mod (modyfikacja chemiczna łańcucha ciężkiego) i/lub Light Chain Chem Mod (modyfikacja chemiczna łańcucha lekkiego).
      1. Określ modyfikacje jako składy pierwiastkowe, np. CaCl2. Modyfikacja zostanie dodana do odpowiedniej podjednostki białkowej lub łańcucha.
        UWAGA: Skład chemiczny można również odjąć od podjednostki lub łańcucha, poprzedzając skład pierwiastkowy znakiem minus. Na przykład -H2O odjąć cząsteczkę wody ze składu i masy podjednostki.

3. Określanie liczby mostków dwusiarczkowych

  1. W polu tekstowym oznaczonym jako Total Number of Disulfides określ liczbę mostków dwusiarczkowych w cząsteczkach białka.
  2. W zależności od stopnia redukcji (całkowitej lub częściowej), wprowadź liczbę nieredukowanych mostków dwusiarczkowych w łańcuchach ciężkich do pola tekstowego Unreduced HC Disulfides oraz liczbę nieredukowanych mostków dwusiarczkowych w łańcuchach lekkich do pola tekstowego Unreduced LC Disulfides.
    UWAGA: Analiza masy zredukowanej podjednostek mAb obejmuje redukcję/separację połączonych mostkami dwusiarczkowymi łańcuchów ciężkich i lekkich.
  3. Jeśli w lekkim łańcuchu mAb występuje glikozylacja, zaznacz pole wyboru Light Chain is Glycosylated.

4. Ustawienie folderu wyjściowego i uruchomienie aplikacji

  1. Kliknij przycisk Browse, aby wybrać folder wyjściowy dla pola tekstowego Output Folder.
  2. Wpisz nazwę pliku wyjściowego bez rozszerzenia (plik zostanie automatycznie zapisany jako .xlsx) w polu tekstowym Excel File (no ext) .
  3. Kliknij przycisk Submit , aby uruchomić aplikację. Plik wyjściowy zostanie zapisany w wybranym folderze.
    ​UWAGA: Masy pierwiastków oraz listę glikanów można dostosować, edytując odpowiednio pliki tekstowe z ogranicznikami Element_Mass.csv (Supplementary Coding File 1) oraz Glycan.csv (Supplementary Coding File 2). Pliki te muszą znajdować się w tym samym folderze co plik wykonywalny mAbScale.exe (Supplementary Coding File 3), aby aplikacja mogła zostać uruchomiona. Aplikacja zostanie automatycznie zamknięta po jednym wykonaniu. W przypadku potrzeby przeprowadzenia drugiego obliczenia użytkownik musi ponownie uruchomić aplikację.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Wybrano różne rodzaje mAbs. Wybrano dostępny na rynku wzorzec mAb tak, aby reprezentował konwencjonalny mAb z identycznymi łańcuchami ciężkimi, identycznymi łańcuchami lekkimi i jednym miejscem glikozylacji sprzężonym z N w regionie Fc. Wybrano również mAb z dodatkową glikozylacją sprzężoną z łańcuchem lekkim N, bispecyficzny mAb i mAb koniugat przeciwciało-lek (ADC) w celu poszerzenia zastosowania aplikacji. Skład chemiczny, obliczoną masę, zmierzoną masę i błąd masy tych przykładowych mAb podsumowano w tabeli 1...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

mAbScale zapewnia intuicyjny interfejs użytkownika z elastycznością w zakresie zmiany elementów składowych do obliczeń masy i pierwiastków. Oczekuje się, że użytkownicy będą mieli podstawową wiedzę na temat cząsteczki docelowej, aby korzystać z aplikacji, wyprowadzać prawidłowe masy i interpretować wyniki. Na przykład arkusz wyjściowy nienaruszonej lub o zmniejszonej masie może być przytłaczający ze względu na liczne rzędy nienaruszonych lub zredukowanych mas, ponieważ domyślna baza danych glikanów zawiera 88 glikanów po...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

To oprogramowanie jest wydawane na licencji Apache 2.0. Prawa autorskie (2022) GlaxoSmithKline Research & Development Limited. Wszelkie prawa zastrzeżone. Licencjonowane na podstawie Licencji Apache, wersja 2.0 ("Licencja"); nie możesz używać tego pliku, chyba że jest to zgodne z Licencją. Licencjobiorca może uzyskać kopię Licencji pod adresem http://www.apache.org/licenses/LICENSE-2.0. O ile nie jest to wymagane przez obowiązujące prawo lub nie zostało to uzgodnione na piśmie, oprogramowanie rozpowszechniane na podstawie Licencji jest rozpowszechniane na zasadzie "tak jak jest", bez jakichkolwiek gwarancji lub warunków, wyraźnych lub dorozumianych. Zapoznaj się z Licencją, aby zapoznać się z konkretnym językiem regulującym uprawnienia i ograniczenia w ramach Licencji. L.C. jest pracownikiem GlaxoSmithKline (GSK). T.H. i K.K. opracowali to oprogramowanie jako pracownicy GSK, a obecnie są współpracownicy odpowiednio firm Merck i Moderna.

Podziękowania

Autorzy dziękują Robertowi Schusterowi za pomoc w weryfikacji danych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
System Acquity UPLC Waters Corp., Milford, MAN/ASystem modułowy
Koniugat przeciwciało-lek (ADC)GlaxoSmithKlineN/AZastrzeżona cząsteczka
BEH 200 SEC kolumna Waters Corp., Milford, Massachusetts176003904
Bispecyficzny mAbGlaxoSmithKlineN/AZastrzeżona cząsteczka
ByosProtein Metrics, Cupertino, Kaliforniahttps://proteinmetrics.com/byos/
Wersja 4.5
GPMAWGPMAWhttp://www.gpmaw.com/
Woda klasy LC-MS Thermo Fisher Scientific, Waltham, MAW6-1
mAb wzorzec Waters Corp., Milford, Massachusetts186009125Waters Humanizowana masowa kontrola mAb Standardowa
mAbScaleGlaxoSmithKlineApache, wersja 2.0 
Spektrometr masowy Xevo G2 Q-TOFWaters Corp., Milford, MassachusettsN/ASystem modułowy
licencja

Bibliografia

  1. Reichert, J. M., Valge-Archer, V. E. Development trends for monoclonal antibody cancer therapeutics. Nature Reviews Drug Discovery. 6 (5), 349-356 (2007).
  2. Kintzing, J. R., Filsinger Interrante, M. V., Cochran, J. R. Emerging strategies for developing next-generation protein therapeutics for cancer treatment. Trends in Pharmacological Sciences. 37 (12), 993-1008 (2016).
  3. Wang, M. -Y., et al. SARS-CoV-2: Structure, biology, and structure-based therapeutics development. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 587269(2020).
  4. ICH Q8 (R2) Pharmaceutical Development - Scientific Guideline. European Medicines Agency. , Available from: https://www.ema.europa.eu/en/ch-q8-r2-pharmaceutical-development-scientific-guideline (2018).
  5. Donnelly, D. P., et al. Best practices and benchmarks for intact protein analysis for top-down mass spectrometry. Nature Methods. 16 (7), 587-594 (2019).
  6. Gadgil, H. S., Pipes, G. D., Dillon, T. M., Treuheit, M. J., Bondarenko, P. V. Improving mass accuracy of high performance liquid chromatography/electrospray ionization time-of-flight mass spectrometry of intact antibodies. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 17 (6), 867-872 (2006).
  7. Beck, A., Sanglier-Cianférani, S., Van Dorsselaer, A. Biosimilar, biobetter, and next generation antibody characterization by mass spectrometry. Analytical Chemistry. 84 (11), 4637-4646 (2012).
  8. Camperi, J., Goyon, A., Guillarme, D., Zhang, K., Stella, C. Multi-dimensional LC-MS: the next generation characterization of antibody-based therapeutics by unified online bottom-up, middle-up and intact approaches. Analyst. 146 (3), 747-769 (2021).
  9. Liu, H., May, K. Disulfide bond structures of IgG molecules. mAbs. 4 (1), 17-23 (2012).
  10. Jakes, C., Füssl, F., Zaborowska, I., Bones, J. Rapid analysis of biotherapeutics using protein a chromatography coupled to orbitrap mass spectrometry. Analytical Chemistry. 93 (40), 13505-13512 (2021).
  11. Robotham, A. C., Kelly, J. F. Chapter 1 - LC-MS characterization of antibody-based therapeutics: Recent highlights and future prospects. Approaches to the Purification, Analysis and Characterization of Antibody-Based Therapeutics. Matte, A. , Elsevier. Amsterdam, the Netherlands. 1-33 (2020).
  12. Valeja, S. G., et al. Unit mass baseline resolution for an intact 148 kDa therapeutic monoclonal antibody by fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry. Analytical Chemistry. 83 (22), 8391-8395 (2011).
  13. Fornelli, L., Ayoub, D., Aizikov, K., Beck, A., Tsybin, Y. O. Middle-down analysis of monoclonal antibodies with electron transfer dissociation orbitrap fourier transform mass spectrometry. Analytical Chemistry. 86 (6), 3005-3012 (2014).
  14. Berglund, M., Wieser, M. E. Isotopic compositions of the elements 2009 (IUPAC Technical Report). Pure and Applied Chemistry. 83 (2), 397-410 (2011).
  15. Wang, M., et al. The Ame2012 atomic mass evaluation. Chinese Physics C. 36 (12), 1603-2014 (2012).
  16. Peri, S., Steen, H., Pandey, A. GPMAW--A software tool for analyzing proteins and peptides. Trends in Biochemical Sciences. 26 (11), 687-689 (2001).
  17. Tipton, J. D., et al. Analysis of intact protein isoforms by mass spectrometry. The Journal of Biological Chemistry. 286 (29), 25451-25458 (2011).
  18. De Leoz, M. L. A., et al. interlaboratory study on glycosylation analysis of monoclonal antibodies: Comparison of results from diverse analytical methods. Molecular & Cellular Proteomics. 19 (1), 11-30 (2020).
  19. Cymer, F., Beck, H., Rohde, A., Reusch, D. Therapeutic monoclonal antibody N-glycosylation - Structure, function and therapeutic potential. Biologicals. 52, 1-11 (2018).
  20. Baker, P. R., Trinidad, J. C., Chalkley, R. J. Modification site localization scoring integrated into a search engine. Molecular & Cellular Proteomics. 10 (7), (2011).
  21. Chalkley, R. J., Clauser, K. R. Modification site localization scoring: Strategies and performance. Molecular & Cellular Proteomics. 11 (5), 3-14 (2012).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Obliczanie masy przeciwciaprzeciwcia a monoklonalnespektrometria maskoniugaty przeciwcia o lekprzeciwcia a bispecyficznemasa cz steczkowa bia kaanaliza glikoproteinrozw j biofarmaceutyk wsk ad pierwiastkowy