-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Mysi kręg lędźwiowy Jednoosiowe badanie ściskania z osadzeniem powierzchni ładunkowej

Research Article

Mysi kręg lędźwiowy Jednoosiowe badanie ściskania z osadzeniem powierzchni ładunkowej

DOI: 10.3791/65502

December 1, 2023

Chandler A. Sparks1,2, Ryeim B. Ansaf1,3, Annette M. Gabaldón1

1Department of Biology,Colorado State University-Pueblo, 2Hackensack Meridian School of Medicine, 3Department of Engineering,Colorado State University-Pueblo

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

W tym protokole opisane są dwa podejścia, które ułatwiają jednoosiowe testowanie kompresji kręgów lędźwiowych myszy. W pierwszej kolejności opisano konwersję giętarki trzypunktowej na maszynę do prób ściskania. Po drugie, metoda osadzania w celu przygotowania powierzchni ładunkowej, która wykorzystuje cement kostny, jest dostosowana do kręgów lędźwiowych myszy.

Abstract

Wzrasta świadomość, że kość korowa i gąbczasta różnią się pod względem regulacji i reagowania na terapie farmaceutyczne, terapie hormonalne i inne metody leczenia utraty masy kostnej związanej z wiekiem. Zginanie trzypunktowe jest powszechną metodą stosowaną do oceny wpływu leczenia na obszar środkowej części trzonu kości długich, który jest bogaty w kość korową. Jednoosiowe testy kompresji kręgów myszy, choć zdolne do oceny kości bogatych w kość gąbczastą, są rzadziej wykonywane ze względu na wyzwania techniczne. Jeszcze rzadziej wykonuje się połączenie trzypunktowych testów zginania i ściskania w celu określenia, w jaki sposób leczenie może wpływać na obszar środkowej kości długiej i centrum kręgu w podobny lub różny sposób. W tym miejscu opisujemy dwie procedury, dzięki którym próba kompresji kręgów lędźwiowych myszy jest mniej trudna do wykonania równolegle z zginaniem trzypunktowym: po pierwsze, procedura przekształcania trzypunktowej maszyny do gięcia w maszynę do prób ściskania, a po drugie, metoda osadzania w celu przygotowania powierzchni obciążenia kręgów lędźwiowych myszy.

Introduction

Zmiany kostne związane z wiekiem są powszechnie uznawane za problematyczne ze względu na zwiększone ryzyko złamań kości związanych z tymi zmianami. Złamania kości u ludzi mogą prowadzić do przewlekłego bólu, ograniczonej mobilności, długotrwałej niepełnosprawności, zwiększonego ryzyka śmierci i obciążeń ekonomicznych1. Typowe terapie badane w celu złagodzenia objawów zmian kostnych związanych z wiekiem obejmują suplementy diety, terapie hormonalne i leki2,3,4,5,6,7,8,9. Wstępne badania nad takimi terapiami u ludzi są zwykle wykonywane przy użyciu małych modeli zwierzęcych (np. szczurów laboratoryjnych i myszy), które posiadają dwa główne typy kości znalezione w ludzkim szkielecie10. Kości długie wyrostka robaczkowego, takie jak kość ramienna, kość udowa i piszczelowa, są bogate w kość korową (tj. zwartą), podczas gdy kręgi są bogate w kość gąbczastą (tj. kość tkaną, gąbczastą lub beleczkową)4. Coraz częściej wiadomo, że mechanizmy regulacji kości i szlaki sygnałowe różnią się między kością korową (np. kość długa środkowa trzonu) a kością gąbczastą (np. centrum kręgu)2. Z tego powodu terapie mogą mieć zróżnicowane efekty, które są specyficzne dla kości lub nawet dla danego miejsca w obrębie tej samej klasy bone2,3,4.

Przyłożenie siły do obiektu (np. kości) powoduje przyspieszenie, deformację lub jedno i drugie, w zależności od warunków brzegowych obiektu. Kiedy kość jest związana, przeciwna siła o równej wielkości opiera się przyspieszeniu kości i dochodzi do deformacji. Gdy kość ulega deformacji, generowany jest opór wewnętrzny zwany naprężeniem, którego istnieją dwa podstawowe typy: siła normalna, w postaci rozciągania lub ściskania, oraz siła ścinająca10. Często generowana jest kombinacja podstawowych typów naprężeń, w zależności od przyłożonego układu siły10. Siłą materiału jest jego zdolność do wytrzymywania naprężeń bez awarii. Gdy na materiał przykładane są coraz większe siły, w końcu ulega on trwałemu odkształceniu, w którym to momencie mówi się, że przeszedł ze stanu sprężystego (tj. powróci do swojego pierwotnego kształtu, jeśli siła zostanie usunięta) do stanu plastycznego (tj. nie powróci do swojego pierwotnego kształtu, jeśli siła zostanie usunięta)11. Punkt, w którym następuje przejście ze stanu sprężystego do stanu plastycznego, nazywany jest punktem plastyczności. Ponieważ po przekroczeniu granicy plastyczności na materiał wywierane są jeszcze większe siły, coraz częściej ulega on mikropęknięciom (tj. uszkodzeniom), aż do całkowitego pęknięcia; W tym momencie mówi się, że materiał nie powiódł się11,12. Złamanie kości oznacza awarię zarówno na poziomie strukturalnym, jak i tkankowym10. Na przykład złamanie kości kręgowej ma miejsce, ponieważ nie tylko wiele beleczek zawodzi na poziomie strukturalnym, ale także dochodzi do uszkodzenia elementów macierzy zewnątrzkomórkowej, takich jak kryształy kolagenu i hydroksyapatytu w pojedynczej beleczce na poziomie tkanki.

Zdarzenia mechaniczne prowadzące do uszkodzenia materiału mogą być mierzone za pomocą różnych metod testowania. Zginanie trzypunktowe jest powszechną metodą badania właściwości mechanicznych kości długich ze szkieletu wyrostka robaczkowego. Ta metoda jest prosta i powtarzalna, co czyni ją preferowaną metodą badań biomechanicznych dla wielu badaczy13. Opuszczając belkę poprzeczną na środkowy trzon długiej kości spoczywającej na dwóch dolnych belkach nośnych, metoda ta w szczególności testuje właściwości mechaniczne obszaru środkowego trzonu, który jest gęsto zorganizowaną kością korową. Na podstawie krzywych obciążenia-przemieszczenia można określić między innymi wpływ siły rozciągającej na elastyczność, wytrzymałość, siłę do uszkodzenia oraz przejście od zachowania sprężystego do plastycznego materiałów kostnych.

W drugim typie kości, określanym jako beleczkowa, gąbczasta, tkana lub gąbczasta, elementy kostne są formowane w szereg prętów i belek zwanych beleczkami, nadając im "gąbczasty" wygląd. Główne trzony kręgów (tj. centra) są bogate w kość gąbczastą i często są miejscami związanych z wiekiem złamań kości uciskowych u ludzi14. Kręgi lędźwiowe (tj. dolna część pleców) są największymi kręgami, przenoszą większość ciężaru ciała i są najczęstszym miejscem złamań kręgów15,16. Właściwości mechaniczne trzonów kręgów można najlepiej ocenić bezpośrednio za pomocą jednoosiowych metod testowania ściskania, ponieważ kompresja osiowa jest normalnym obciążeniem siły wywieranym na kolumny kręgowe in vivo17. Kompresja trzonów kręgów in vivo występuje w wyniku skurczów mięśni i więzadeł, siły grawitacji i sił reakcji gruntu18.

Testy kompresji ex vivo kręgów małych zwierząt mogą być trudne ze względu na ich mały rozmiar, nieregularny kształt i kruchość. Kształt trzonów kręgów można oszacować jako równoległobok z łagodnym nachyleniem brzusznym i lekką wklęsłością czaszki17. Taki kształt stanowi wyzwanie dla przeprowadzenia jednoosiowego testu ściskania ex vivo, ponieważ bez odpowiedniego przygotowania powierzchni ładunkowej siły ściskające zostaną przyłożone tylko do części powierzchni ładunkowej, co spowoduje "kontakt lokalny"17,19. Może to spowodować niespójne wyniki i przedwczesne niepowodzenie19. Nie ma to miejsca in vivo, ponieważ powierzchnia ładunkowa jest otoczona krążkami międzykręgowymi w stawach kręgowych, co umożliwia rozłożenie obciążenia na całej płycie końcowej czaszki. Kompleks międzykręgowo-czaszkowo-czaszkowo-płytkowy odgrywa ważną rolę w wywieraniu siły w całym trzonie kręgu i biomechanice złamania trzonu kręgu14,20. Chociaż testy kompresji nie są nowością w dziedzinie biologii, istnieją ograniczenia w obecnych metodach mechanicznego testowania kości. Ograniczenia te obejmują brak modeli predykcyjnych i symulacji dla mechaniki kości, unikalną geometryczną architekturę przestrzenną, a nawet nieodłączne zmienności biologiczne oparte na próbkach21. Co ważniejsze, wyzwaniem dla tej dziedziny jest brak standaryzacji między metodami i ogólny brak metod raportowanych w literaturze22.

W literaturze opisano dwie metody przygotowania kręgów lędźwiowych gryzoni do jednoosiowego testu kompresji: metoda cięcia i metoda osadzania17,19,23,24,25,26. Metoda cięcia wymaga, aby wyrostki kręgowe, płytka końcowa czaszki i płytka końcowa ogonowa zostały wycięte z trzonu kręgu. Pendleton et al.19 wcześniej opisali szczegółową metodę użycia tej metody na kręgach lędźwiowych myszy. Metoda ta wiąże się z wyzwaniami związanymi z uzyskaniem idealnie równoległych cięć zarówno na płytkach końcowych ogonowych, jak i czaszkowych, przy jednoczesnym uniknięciu uszkodzenia próbki. Ma również ograniczenie polegające na tym, że płytka końcowa czaszki jest usuwana. Płytka końcowa czaszki zawiera gęstą powłokę kości korowej i odgrywa ważną rolę w rozkładzie obciążeń z krążków międzykręgowych in vivo i bierze udział w uszkodzeniu kości w przypadku złamań in vivo17,20,27. Natomiast metoda osadzania polega na usunięciu wyrostków kręgowych przy jednoczesnym zachowaniu nienaruszonej płytki końcowej czaszki trzonu kręgu. Powierzchnia ładunkowa jest następnie ustawiana w przybliżeniu poziomo poprzez umieszczenie niewielkiej ilości cementu kostnego na czaszkowym końcu trzonu kręgu. Metoda ta ma tę zaletę, że pokonuje wyzwania techniczne związane z metodą cięcia i może lepiej naśladować mechanizm przykładania obciążenia i uszkodzenia kości in vivo ze względu na zachowanie płytki końcowej czaszki. Podejście to zostało wcześniej udokumentowane w badaniach obejmujących jednoosiowe testy kompresji na kościach szczurów. Jednak, o ile nam wiadomo, nie zostało to wcześniej udokumentowane w kontekście mniejszych kręgów lędźwiowych myszy17,25,26. Metoda, o której mowa, została wcześniej szczegółowo opisana przez Chachra et al.25 i pierwotnie wykorzystywała próbkę kości przechowywaną pomiędzy dwiema płytkami, z których każda miała cylindryczną wnękę, która została następnie wypełniona polimetakrylanem metylu (PMMA). Ta sama grupa badawcza udoskonaliła później metodę, w której jeden koniec jest delikatnie szlifowany (ogonowy), a drugi koniec ma małą plamkę cementu kostnego (czaszka)26. Ta metoda jest ulepszeniem w stosunku do poprzedniej metody, ponieważ minimalizuje materiał między płytami i jest przedmiotem tego artykułu. Pomimo wyzwań związanych z jednoosiową próbą kompresji kręgów, jest to metoda, która może dostarczyć cennych informacji na temat wpływu proponowanej terapii na kość, zwłaszcza w połączeniu z trzypunktowym zginaniem.

Tutaj przedstawiono użycie konwertowalnego trzypunktowego urządzenia do testowania zginania/ściskania, które pozwala na łatwe testowanie zarówno kości długich, jak i trzonów kręgów za pomocą jednej maszyny. Ponadto przedstawiono zastosowanie metody osadzania w celu uzyskania jednoosiowego badania kompresji kręgów lędźwiowych myszy. Niniejsze badanie zostało przeprowadzone w ramach większego badania, którego celem było zbadanie wpływu suplementacji konopi w diecie na właściwości kości szkieletowej u młodych, rosnących samic myszy C57BL/65,6. Tester zginania trzypunktowego został pierwotnie skonstruowany przez wykładowców i studentów z Wydziału Inżynierii Uniwersytetu Stanowego Kolorado-Pueblo i używany przez naszą grupę badawczą w testach zginania trzypunktowego na kościach długich [kość udowa i piszczelowa szczura7 oraz kość ramienna, kość udowa i piszczelowa myszy5,6,8,9]. Jednak jego modyfikacja i zastosowanie do stosowania w testach ucisku trzonu kręgów u myszy nie zostały zbadane. Konstrukcja i budowa giętarki trzypunktowej zostały już wcześniej opisane7. Raport ten skupi się na metodach stosowanych do modyfikacji maszyny do testów ściskania i korygowania przemieszczenia systemu. Po drugie, opisano metodę osadzania w celu przygotowania powierzchni obciążenia trzonu kręgu myszy, wraz z metodami badania jednoosiowego ściskania i analizą danych dotyczących obciążenia i przemieszczenia.

Protocol

Wszystkie eksperymenty i protokoły zostały przeprowadzone zgodnie z Przewodnikiem Opieki i Użytkowania Zwierząt Laboratoryjnych od National Institutes of Health i otrzymały zgodę od Międzynarodowego Komitetu ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Stanowego Kolorado-Pueblo (Numer protokołu: 000-000A-021). Szczegółowe procedury dotyczące opieki nad zwierzętami zostały wcześniej opisane5,6. Myszy uzyskano w wieku trzech tygodni w ramach szerszego badania mającego na celu zbadanie wpływu diety uzupełnionej nasionami konopi na młode, rosnące samice myszy C57BL/6 (patrz tabela materiałów). W wieku od 5 do 29 tygodni myszy były hodowane na jednej z trzech diet: kontrolnej (0% nasion konopnych), 50 g/kg (5%) nasion konopi lub 150 g/kg (15%) nasion konopi, z ośmioma myszami w grupie5,6. Przez cały czas trwania badania myszy miały dostęp ad libitum do odpowiedniej diety i wody, były trzymane w parach w klatkach z poliwęglanu i utrzymywane w cyklu 12 godzin światła: 12 godzin ciemności (z włączonym światłem od 06:00 do 18:00). Waga i zdrowie myszy były oceniane co tydzień, a wszystkie myszy pomyślnie ukończyły badanie bez wystąpienia żadnych niekorzystnych warunków zdrowotnych. W wieku dwudziestu dziewięciu tygodni myszy zostały głęboko znieczulone za pomocą izofluranu i poddane eutanazji poprzez zwichnięcie szyjki macicy5,6. Wykonano nacięcie w linii środkowej na powierzchni brzusznej od mostka do ogona, a z tusz usunięto wszystkie narządy wewnątrzpiersiowe, otrzewnowe i zaotrzewnowe. Wypatroszone tusze konserwowano w 0,9% roztworze chlorku sodu w temperaturze -70 °C do czasu wycięcia kości w celu przeprowadzenia badania kręgów, które nastąpiło około rok później.

1. Konwersja giętarki trzypunktowej na maszynę do prób ściskania

  1. Odkręć belkę poprzeczną przymocowaną do czujnika obciążenia w giętarce trzypunktowej7 (patrz Tabela materiałów) (Rysunek 1A,B).
  2. Przykręć samonastawną górną płytę dociskową do czujnika obciążenia (patrz tabela materiałów) z gwintem identycznym jak belka poprzeczna (Rysunek 1C).
  3. Wywierć dwa poziome otwory w każdym z dolnych wsporników, do których dolna płyta zostanie później przymocowana (Rysunek 1D).
  4. Wbij gwinty w dwie strony dolnej płyty ze stali nierdzewnej, aby wyrównać z wywierconymi otworami w dolnych wspornikach (Rysunek 1E).
  5. Przymocuj dolną płytę dociskową do dwóch dolnych wsporników za pomocą gwintowanych sześciokątnych i dokręć, aż będzie bezpieczna (Rysunek 1F).
    UWAGA: sześciokątne muszą mieć gwinty pasujące do gwintowanych otworów na dolnych wspornikach i górnych/dolnych płytach. Zastosowanie samonastawnej górnej płyty dociskowej może pomóc w uzyskaniu równomiernego kontaktu między górną płytą a powierzchnią ładunkową, ale nie jest wystarczające, biorąc pod uwagę wklęsłość czaszkowego końca trzonów kręgów. Wymagane jest dalsze przygotowanie przy użyciu metody przygotowania powierzchni ładunkowej. Podczas konstruowania maszyny do próbowania ściskania kości małych zwierząt, które są mniejsze i słabsze niż wiele materiałów przemysłowych/inżynieryjnych, należy wziąć pod uwagę nośność czujnika obciążenia i rozmiar ramy ładunkowej. Dodatkowo maszyny powinny być regularnie czyszczone i smarowane, aby zapewnić dokładne wyniki i płynną pracę.

2. Korekta przemieszczenia maszyny do próbowania ściskania

  1. Gdy między górną płytą a dolną płytą nie ma badanego materiału, opuść górną płytę na dolną płytę, aż do uzyskania lekkiego kontaktu (siła napięcia wstępnego ~0,3-0,5 N).
  2. Włącz maszynę ze stałą prędkością opuszczania (~1 mm/min), aby rozpocząć test kompresji. Zbierz pomiary obciążenia (N) i przemieszczenia (mm) za pomocą oprogramowania do cyfrowego gromadzenia danych (patrz tabela materiałów) w celu gromadzenia danych z badań mechanicznych.
    UWAGA: Ponieważ żaden materiał nie znajduje się między górną a dolną płytą, całe zaobserwowane przemieszczenie będzie spowodowane przemieszczeniem samej maszyny (maszyny Δx) (rama, ogniwo obciążnikowe, płyty dociskowe, złącza itp.).
  3. Kontynuuj opuszczanie górnej płyty na dolną płytę ze stałą (tj. monotoniczną) prędkością, aż zostaną osiągnięte siły wyższe niż te, które zostaną uzyskane ze wszystkich próbek kości.
  4. Powtórz kroki od 2.1 do 2.3, w sumie trzy razy.
  5. Wykreśl dane dotyczące przemieszczenia systemu (maszyna Δx, mm) w funkcji przyłożonego obciążenia (siła, N).
  6. Dopasuj linię regresji o najlepszym dopasowaniu do danych (Rysunek 2A-D).
  7. W arkuszu kalkulacyjnym z danymi z testu ucisku kości użyj równania dostarczonego przez analizę regresji, aby określić wielkość przemieszczenia maszyny (maszyna Δx) wpływającego na zarejestrowane przemieszczenie (Δx całkowite zarejestrowane) dla punktu danych testu kompresji kręgów lędźwiowych na myszy.
    UWAGA: Na przykład rozważmy punkt danych, w którym przyłożona jest siła 18 N i zarejestrowano przemieszczenie 2,730 mm (zarejestrowano łącznie Δx). Zgodnie z przykładowym równaniem regresji wielomianowej trzeciego rzędu (Rysunek 2D) [Maszyna Δx = (4 × 10-7 x przyłożone obciążenie3) - (8 × 10-5 x przyłożone obciążenie2) + (0,0044 x przyłożone obciążenie)], 0,056 mm zarejestrowanego przemieszczenia wynika z przemieszczenia maszyny (maszyna Δx).
    Δxcałkowita zapisana = Δxmaszyna + Δxpróbka
  8. Korygowanie zarejestrowanego przemieszczenia dla punktu danych.
    UWAGA: Rozważmy na przykład powyższy przykład. Jeśli zarejestrowane jest przemieszczenie 2,730 mm (zarejestrowane całkowite Δx), a przemieszczenie maszyny (maszyna Δx) stanowi 0,056 mm całości, to przemieszczenie, jakiemu poddano badany wzór (tj. kość) (próbka Δx) wynosi 2,664 mm. Zatem 2,664 mm to rzeczywiste przemieszczenie, jakiemu uległ kręg (próbka Δx) i jest to wartość, którą należy wykorzystać do analizy krzywej obciążenia-przemieszczenia.
    Δx próbka = Δxcałkowita zarejestrowana próbka - Δx maszyna
  9. Powtórz kroki 2.7-2.8 dla każdego punktu danych zebranego dla każdej pojedynczej próbki (kości).
    UWAGA: Ten krok jest ważny, ponieważ podczas próby ściskania obserwowane przemieszczenie nie wynika tylko z przemieszczenia próbki, ale zamiast tego obserwowane przemieszczenie jest kombinacją przemieszczenia maszyny (maszyna Δx) (np. ściskanie/przemieszczenie ramy, ogniwa obciążnikowego, płyt dociskowych, sprzęgieł itp.) i próbki (próbka Δx). Tak więc w przypadku próbek, które podlegają stosunkowo niewielkim przemieszczeniom, takich jak próbki małego zwierzęcia (np. myszy), przemieszczenie systemu (maszyna Δx) może powodować duże błędy. Opisane tutaj procedury korygujące przemieszczenie systemu zostały wcześniej opisane przez Kalidindi i Abusafieh28, którzy szczegółowo opisują również dwie inne metody oprócz opisanej tutaj. Zauważono, że niektórzy badacze używają więcej niż jednej metody do określania przemieszczenia systemu17. Każda maszyna może wyświetlać unikalne wzorce i stopnie przemieszczenia systemu po przyłożeniu do niej obciążeń. Z tego powodu współczynnik korekcji przemieszczenia systemu musi być określony dla każdej maszyny i nie będzie taki sam dla dowolnych dwóch maszyn. W przeciwieństwie do próby ściskania kości kręgowej, podczas pomiaru przemieszczenia systemu nie zaobserwuje się dużego zmniejszenia siły, ponieważ między górną a dolną płytą nie znajduje się żaden materiał.

3. Wycięcie piątego kręgu lędźwiowego (L5) z tuszy myszy

  1. Rozmrażaj zamrożoną tuszę myszy w temperaturze pokojowej, dbając o nawodnienie tkanek miękkich i kości, regularnie stosując roztwór izotoniczny 0,9% NaCl.
  2. Wykonaj małe (<0,5 cm) nacięcie w skórze na grzbietowej linii środkowej w pobliżu podstawy ogona, a następnie przedłuż nacięcie na każdą tylną kończynę i delikatnie pociągnij, aby usunąć futro od podstawy ogona do głowy zwierzęcia.
  3. Odetnij mięśnie ściany brzucha, aż kręgosłup będzie dobrze widoczny.
  4. Pod mikroskopem preparacyjnym wyobraź sobie dwa stawy krzyżowo-biodrowe i czaszkowy koniec kości krzyżowej.
  5. Za pomocą żyletki lub skalpela wykonaj drobne cięcie, aby oddzielić ostatni kręg lędźwiowy (L6) od czaszkowego końca kości krzyżowej.
  6. Ponownie, przecinając przestrzeń międzykręgową, usuń L6 i L5 z kręgosłupa, odkładając L5 do analizy (Rysunek 3).
  7. Zbadaj kręg pod mikroskopem preparacyjnym i usuń wszystkie tkanki miękkie z kości, w tym krążek międzykręgowy, używając głównie gazików i, jeśli to konieczne, delikatnie kleszczami.
    UWAGA: W niniejszym badaniu L5 został wybrany jako kręg będący przedmiotem zainteresowania, ale inne kręgi lędźwiowe mogą być wybrane do testów kompresyjnych.

4. Przygotowanie powierzchni nośnej kręgu L5 do jednoosiowego testu ściskania przy użyciu metody zatapiania cementu kostnego PMMA

  1. Za pomocą tarczy diamentowej do cięcia (patrz Tabela materiałów) przymocowanej do narzędzia obrotowego, wykonaj nacięcie na każdej szypułce, aby usunąć wyrostek poprzeczny i kolczysty (Rysunek 4). Pozostawione w centrum, wyrostki kręgowe mogą powodować lokalne kontakty z górnymi/dolnymi płytami dociskowymi przy samych procesach, w przeciwieństwie do rozkładu obciążenia w całym środku.
  2. Delikatnie przeszlifuj ogonowy koniec kręgu drobnym papierem ściernym o ziarnistości 120 (patrz Tabela materiałów), aby usunąć wszystkie krążki międzykręgowe, tkanki miękkie i nierówności.
  3. Oznacz szlifowany koniec ogona trwałym markerem, aby ułatwić późniejszą identyfikację.
  4. Wymieszaj cement kostny PMMA zgodnie z instrukcjami producenta (patrz Tabela materiałów).
  5. Gdy cement kostny PMMA jest nadal półmiękki, umieść minimalną ilość na czaszkowym (nieoznaczonym) końcu kręgu skierowanym do góry, upewniając się, że cała powierzchnia jest pokryta, podczas gdy kręg znajduje się w kąpieli solankowej, aby próbka kości była nawilżona i chłodna.
  6. Gdy PMMA jest nadal półmiękki, umieść kręg na dolnej płycie ogonowej (zaznaczoną) stroną skierowaną w dół (Rysunek 5).
  7. Włącz maszynę, aby włączyć koła zębate napędowe i powoli opuść górną płytę dociskową na kompleks kręg + cement kostny PMMA, aż dojdzie do kontaktu z cementem kostnym i zostanie przyłożona minimalna siła (<0,5 N) w celu równomiernego rozprowadzenia PMMA na powierzchni kości. Górna płyta dociskowa w neutralnej pozycji może być oszacowana jako pozioma, a podczas naciskania na półmiękki PMMA spowoduje, że PMMA wypełni wklęsłość na czaszkowym końcu kręgu i utworzy płaską poziomą powierzchnię pod górną płytą.
  8. Z górną płytą delikatnie dociskającą cement kostny PMMA, pozwól próbce siedzieć w spokoju, aż cement kostny PMMA całkowicie stwardnieje (~ 10 minut zgodnie z instrukcjami producenta dla cementu kostnego PMMA używanego w niniejszym badaniu). W tym okresie należy przechowywać próbkę w kąpieli solankowej lub często spryskiwać ją solą fizjologiczną, aby utrzymać próbkę nawodnioną i chłodną.
  9. Gdy cement kostny PMMA całkowicie stwardnieje, można rozpocząć testy ściskania. Zbierz dane dotyczące obciążenia (tj. siły) (N) i przemieszczenia (tj. ugięcia) (mm) z czujników do arkusza kalkulacyjnego w czasie rzeczywistym za pomocą cyfrowego oprogramowania przeznaczonego do zbierania danych z badań mechanicznych (patrz Tabela materiałów).
  10. Po zebraniu danych wyjściowych przez 5 s, przyłożonych przy minimalnej sile napięcia wstępnego <0,5 N, należy rozpocząć opuszczanie górnej płyty dociskowej na próbkę z pojedynczą (tj. monotoniczną), z góry określoną prędkością opuszczania, aby rozpocząć próbę ściskania (~1 mm/min).
  11. Przerwij zbieranie danych, gdy zaobserwujesz duże zmniejszenie obciążenia (N), co wskazuje na awarię materiału.
    UWAGA: Instrukcje producenta określają przybliżony czas utwardzania cementu kostnego PMMA. Czas utwardzania cementu kostnego PMMA może się różnić w zależności od rodzaju użytego cementu kostnego PMMA. Postępuj zgodnie z instrukcjami producenta, aby określić czas oczekiwania na utwardzenie PMMA. Jednak jako wskaźnik, że cement kostny PMMA całkowicie stwardniał, dodatkowa próbka cementu kostnego PMMA może być zmieszana w tym samym czasie, co próbka, która zostanie umieszczona na kręgu, ale odłożona na bok i sprawdzona, czy jest nadal miękka lub całkowicie stwardniała. Jeśli jest całkowicie stwardniały, może to oznaczać, że PMMA na kości jest również całkowicie stwardniały bez naruszania kompleksu kość + PMMA. Próbka kości musi pozostać dobrze nawodniona i chłodna przez cały okres twardnienia PMMA i badań. Już kilka minut ekspozycji na suche powietrze może spowodować zmiany właściwości biomechanicznych. Niektórzy badacze używają maszyn do testowania kompresji wyposażonych w kąpiel solankową19. Maszyna do prób ściskania nie była wyposażona w kąpiel solną w niniejszym badaniu. Zamiast tego przez cały okres utwardzania PMMA i okres testowania regularnie stosowano delikatną mgiełkę soli fizjologicznej.

5. Analiza krzywych obciążenia-przemieszczenia dla testów jednoosiowego ściskania kręgów L5

  1. Skopiuj i wklej dane obciążenia (N) i skorygowanego przemieszczenia (mm) z arkusza kalkulacyjnego do oprogramowania do tworzenia wykresów technicznych i analizy danych (patrz tabela materiałów).
  2. Wygeneruj wykres z obciążeniem (N) na osi y i skorygowanym przemieszczeniem próbki (próbka Δx, mm) na osi x (Rysunek 6). Zrób to w oprogramowaniu, klikając najpierw Windows, Nowa tabela, a następnie Zrób to, aby utworzyć tabelę. Skopiuj skorygowane dane o przemieszczeniu (mm) i obciążeniu (N) z arkusza kalkulacyjnego danych pierwotnych do nowej tabeli.
  3. Następnie wygeneruj przebieg reprezentujący surowe dane, klikając Dane, a następnie kliknij XY Pair to Waveform i wybierz skorygowane dane przemieszczenia dla X-Wave i załaduj dane dla Y-Wave. Upewnij się, że w polu "Liczba punktów" znajduje się prawidłowa liczba punktów danych, nazwij przebieg, a następnie kliknij Utwórz przebieg. Po utworzeniu przebiegu wygeneruj wykres, klikając Windows, a następnie Nowy wykres i umieść przebieg na osi Y i "obliczony" na osi X.
  4. Użyj narzędzia kursora, aby zaznaczyć punkty/obszary zainteresowania na wykresie do analizy. Kilka punktów/obszarów zainteresowania do obliczenia typowych właściwości mechanicznych całej kości jest wymienionych w krokach 5.4-5.8 (Rysunek 6) i obejmują pracę do uszkodzenia (N x mm), maksymalne obciążenie (N), sztywność (N / mm), obciążenie plastyczności (N) i przemieszczenie po plastyczności (mm).
  5. W celu obliczenia stosunku pracy do uszkodzenia (N x mm) należy umieścić kursor (A) na początku badania i kursor (B) w punkcie bezpośrednio poprzedzającym uszkodzenie materiału (tj. przy maksymalnym obciążeniu osiągniętym podczas badania, zanim zaobserwowano duży spadek obciążenia).
    UWAGA: W ten sposób kursory A-B obejmą w nawiasie cały test od momentu, gdy materiał zaczyna wytrzymywać siły i ulegać przemieszczeniu do punktu, w którym materiał ulega uszkodzeniu. Stosunek pracy do niepowodzenia (N x mm) można mierzyć jako całkowity obszar pod krzywą (tj. obszar pod krzywą między kursorami A i B).
  6. Obliczyć maksymalne obciążenie (N) jako najwyższą wartość obciążenia zaobserwowanego podczas badania (tj. obciążenie przy kursorze B).
  7. Oblicz sztywność (N/mm) materiału jako nachylenie liniowego obszaru sprężystego (tj. nachylenie między kursorami C i D).
  8. Obciążenie plastyczności (N) to obciążenie, przy którym krzywa obciążenia-przemieszczenia odchyla się od liniowości i wchodzi w obszar plastyczny, doznając w ten sposób trwałego odkształcenia (tj. obciążenia w punkcie D). Oblicz to, mierząc obciążenie przy kursorze D.
  9. Przemieszczenie po plastyczności (mm) jest wskaźnikiem plastyczności materiału. Zmierz to jako przemieszczenie między granicą plastyczności a punktem uszkodzenia materiału (tj. przemieszczenie między kursorami D i B).
    UWAGA: Parametry wymienione powyżej to tylko niektóre z powszechnie podawanych właściwości mechanicznych całej kości. Nie jest to pełna lista wszystkich właściwości mechanicznych całej kości, które można uzyskać na podstawie krzywej obciążenia-przemieszczenia. Inne parametry właściwości mechanicznych całej kości obejmują między innymi przemieszczenie całkowite (mm), pochłoniętą energię sprężystą (N x mm), przemieszczenie sprężyste (mm), pochłoniętą energię plastyczną (N x mm) i przemieszczenie plastyczne (mm), aby wymienić tylko kilka. Ponadto nie wymieniono właściwości mechanicznych kości na poziomie tkankowym; Wymagają one przekształceń danych przy użyciu określonych pomiarów anatomicznych, takich jak średnica kości. Przykładowy kod do wykonania pomiarów z krzywej obciążenia-przemieszczenia w oprogramowaniu został wymieniony w pliku uzupełniającym 1.

Representative Results

Dzięki temu protokołowi krok po kroku, który wykorzystuje osadzanie powierzchni ładunkowej L5 i konwertowalną trzypunktową giętarkę/maszynę do testowania kompresji, możliwe jest przeprowadzenie testów kompresji na kręgu lędźwiowym myszy w celu porównań między grupami. Metodą osadzania przygotowano łącznie dwadzieścia cztery mysie kręgi L5. Trzy z próbek zostały jednak uszkodzone podczas usuwania wyrostków kręgowych za pomocą diamentowego koła tnącego na narzędziu obrotowym i dlatego nie zostały przebadane. Biorąc to pod uwagę, wymienione właściwości mechaniczne udało się uzyskać z dwudziestu jeden z dwudziestu czterech próbek przy użyciu metody zatapiania. Próbki były sprawdzane wizualnie po każdym teście, a nasadka z PMMA nie uległa uszkodzeniu w żadnym z testów. Jak wspomniano, myszy użyte w niniejszym badaniu były częścią większego badania mającego na celu określenie wpływu dietetycznych nasion konopi na kości młodych i rosnących samic myszy C57BL / 6. Statystyki opisowe pięciu powszechnie zgłaszanych właściwości mechanicznych całej kości przedstawiono w tabeli 1. Krzywe obciążenia i przemieszczenia dla wszystkich dwudziestu jeden próbek są podane w Rysunek 7.

Rysunek 1
Rysunek 1: Konwersja giętarki trzypunktowej na maszynę do prób ściskania. (A) Maszyna w pełni wyposażona do pracy jako giętarka trzypunktowa z czujnikiem przemieszczenia i czujnikiem obciążenia (białe strzałki). (B) Maszyna po zdjęciu belki poprzecznej. (C) Maszyna po umieszczeniu samonastawnej płyty górnej w miejscu, w którym wcześniej umieszczono belkę poprzeczną. (D) Dolne belki nośne z wywierconymi w nich otworami. (E) Dolna płyta ze stali nierdzewnej z czterema gwintowanymi otworami wbitymi w nią, oraz śrubą częściowo wkręconą w jeden z otworów. Pozostałe dwa otwory niewidoczne na zdjęciu znajdują się po przeciwnej stronie. (F) Dolne belki nośne z dolną płytą przymocowaną do nich za pomocą czterech sześciokątnych. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 2
Rysunek 2: Przykładowy wykres przemieszczenia systemu (maszyna Δx) w porównaniu z obciążeniem wyposażony w regresję liniową (A), logarytmiczną (B), wielomianową drugiego rzędu (C) i wielomianową trzeciego rzędu (D). W tym przykładzie wielomian trzeciego rzędu zapewnia najlepsze dopasowanie na wartość R2, a jego regresja jest używana jako współczynnik korekcji przemieszczenia systemu. Obrazy reprezentują przykładowe dane demonstrujące dopasowanie regresji i będą musiały zostać uzyskane przez badaczy dla poszczególnych maszyn. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 3
Rysunek 3: Kręgosłup lędźwiowy myszy. Kręgosłup lędźwiowy myszy pod mikroskopem preparacyjnym przed usunięciem L6 (A) i po usunięciu L6, pozostawiając przyczepiony L5 (B). L5 zostanie następnie usunięty i przygotowany do próby kompresji. Białe pasma to krążki międzykręgowe, które zostały wypreparowane i usunięte. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 4
Rysunek 4: Anatomia kręgu L5. Reprezentatywny kręg L5 myszy w widoku czaszkowym, ogonowym, grzbietowym i brzusznym pod mikroskopem preparacyjnym. Ważne wymiary trzonu kręgu obejmują wysokość, szerokość grzbietowo-brzuszną i szerokość boczną, jak pokazano kolorowymi liniami. Czarne przerywane linie pokazują mniej więcej miejsce, w którym należy wykonać nacięcia w celu usunięcia wyrostków kręgowych. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 5
Rysunek 5: Okres twardnienia cementu kostnego PMMA. Przykładowy kręg L5 z cementem kostnym PMMA (zielony) umieszczonym na płycie końcowej czaszki i górną płytą opuszczoną na cement kostny PMMA + kompleks kostny. Gdy cement kostny PMMA całkowicie stwardnieje, rozpocznie się próba ściskania. Górna płyta dociskowa będzie dalej obniżana, dopóki nie zostanie zaobserwowane uszkodzenie materiału. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 6
Rysunek 6: Test kompresji kości kręgowej myszy krzywa obciążenia-przemieszczenia i analiza danych. Kursor A oznacza początek testu kompresji. Kursor B oznacza punkt uszkodzenia materiału. Kursor C oznacza początek liniowego obszaru sprężystego, podczas gdy kursor D oznacza koniec (tj. granicę plastyczności). Obszar zacieniony w kolorze jasnoszarym to liniowy obszar sprężysty, w którym materiał powróci do swojego pierwotnego kształtu, jeśli obciążenie zostanie usunięte. Obszar zacieniony na ciemnoszaro to obszar plastyczny, w którym materiał uległ trwałemu odkształceniu i nie powróci do swojego pierwotnego kształtu, jeśli ładunek zostanie usunięty. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Rysunek 7
Rysunek 7: Krzywe obciążenia-przemieszczenia dla wszystkich dwudziestu jeden próbek kości. Wzory różniły się między kośćmi. Ogólnie rzecz biorąc, największa zmienność występowała w przemieszczeniu po plonowaniu, przy czym niektóre (n = 5) kości miały stosunkowo małe przemieszczenie po plonowaniu, a inne (n = 16) miały stosunkowo duże przemieszczenie po plonowaniu. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

grupa Stosunek pracy do niepowodzenia (N*mm) Maksymalne obciążenie (N) Sztywność (N/mm) Obciążenie plastyczności (N) Przemieszczenie po plonowaniu (mm)
CON (n = 7) 13.43 ± 2.44 A,B 37,93 ± 3,28 od 109,14 ± 11,86 22.68 ± 2.04 0,34 ± 0,06
5HS (n = 8) 12,12 ± 1,23 A 33,62 ± 2,43 od 99,70 ± 16,62 20,88 ± 2,69 0,38 ± 0,08
15HS (n = 6) 19.55 ± 2.13 B od 41,82 ± 1,85 134,58 ± 19,73 28.07 ± 3.20 0,51 ± 0,07
Grupy połączone (n = 21) 14,68 ± 1,27 37,40 ± 1,63 121,82 ± 9,43 23.54 ± 1.60 0,40 ± 0,04

Tabela 1: Reprezentatywne wartości dla powszechnie zgłaszanych właściwości mechanicznych całej kości uzyskane przy użyciu metody osadzania przygotowania powierzchni obciążeniowej. Wartości uzyskano przy użyciu wszystkich protokołów wyszczególnionych w niniejszym badaniu. Zatem wartości reprezentują te, które można uzyskać za pomocą opisanych tutaj metod. Grupy ±reprezentują samice myszy C57BL/6 karmione dietą wzbogaconą o całe nasiona konopi w stężeniach 0% (CON), 50 g/kg (5%) (5HS) lub 150 g/kg (15%) (15HS) w wieku 5-29 tygodni. Dla jednego z parametrów (praca do niepowodzenia) wydaje się, że dieta wpłynęła na wartości dla jednoczynnikowej ANOVA (p < 0,05). Wartości o tym samym indeksie górnym literowym nie różnią się znacząco (p > 0,05), podczas gdy wartości z różnymi indeksami górnymi liter różnią się znacząco (p < 0,05), zgodnie z analizą post hoc Tukeya-Kramera.

Plik uzupełniający 1: Przykładowy kod do uzyskania właściwości mechanicznych całej kości. Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.

Discussion

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Disclosures

W tym protokole opisane są dwa podejścia, które ułatwiają jednoosiowe testowanie kompresji kręgów lędźwiowych myszy. W pierwszej kolejności opisano konwersję giętarki trzypunktowej na maszynę do prób ściskania. Po drugie, metoda osadzania w celu przygotowania powierzchni ładunkowej, która wykorzystuje cement kostny, jest dostosowana do kręgów lędźwiowych myszy.

Acknowledgements

Jesteśmy wdzięczni za znaczące wysiłki, które Wydział Inżynierii Uniwersytetu Stanowego Kolorado-Pueblo włożył w skonstruowanie trzypunktowej giętarki i jej modyfikację na konwertowalną trzypunktową maszynę do testowania gięcia/ściskania. Jesteśmy szczególnie wdzięczni Panu Paulowi Wallace'owi, koordynatorowi warsztatu mechanicznego, za jego wysiłek włożony w zaplanowanie i przeprowadzenie budowy i modyfikacji maszyny. Wiedza i informacje zwrotne od dr Bahaa Ansaf (Colorado State University-Pueblo, Wydział Inżynierii) i dr Franziski Sandmeier (Colorado State University-Pueblo, Wydział Biologii) również znacząco przyczyniły się do tego projektu. Grant Instytutu Badań nad Konopiami Indyjskimi na Uniwersytecie Stanowym Kolorado-Pueblo sfinansował większy projekt, którego częścią był ten eksperyment i pozwolił na zakup myszy, odczynników i części używanego sprzętu.

Materials

końcowej fizjologicznej dotyczy dotyczy Do dotyczy Nie dotyczy Nie dotyczy
Papier ścierny o ziarnistości 120N/AN/ADo usuwania tkanek miękkich i nierówności ogonowej płytki
24-bitowy interfejs ogniwa obciążnikowegoLoadStar Sensors, Freemont, Kalifornia, USADQ-1000Do podłączenia czujników obciążenia i przemieszczenia do osobistego koputeru
Base Mouse DietDyets, Inc, Bethlehem, PA, USAAIN-93GDiet myszy były karmione bez dodatku nasion konopi
Diamentowa tarcza tnąca z narzędziem obrotowymDremel US, Mt. Prospect, Illinois, USAF0130200AKDo usuwania wyrostków kręgowych Czujnik
przemieszczeniaMitutoyo, Aurora, Illinois, USAID-S112EX Czujnikprzemieszczenia o rozdzielczości 0,001 mm i dokładności 0,00305 mm
Zewnętrzne źródło prądu o zmiennym napięciuExtech Instruments, Nashua, New Hampshire, USA382213Aby zapewnić moc do testowania kompresji maszyna
Samica C57BL/6 MyszyCharles River Laboratories, Wilmington, Massachusetts, USA027 (Kod szczepu)Model myszy wykorzystany w niniejszym badaniu
HempseedNatera, Pitt Meadows, Kanada670834012199Nasiona konopi dodane do oprogramowania Base Mouse
Diet Igor Pro (wersja 8.04)Wave Metrics, Portland, Oregon, USANie dotyczyOprogramowanie używane do analizy
krzywej obciążenia i przemieszczeniaiLoad Mini ForceSensor LoadStar Sensors, Freemont, Kalifornia, USAMFM-010-050-SCzujnik obciążenia (siły) z dokładnością 1,0%
Izotoniczny (0,9%) roztwór soliNieAby utrzymać nawodnienie kości
Leica EZ4 W MiscoscopeLeica Microsystems, Wetzlar, NiemcyNC1601884Do preparacji kości i usuwania wyrostka kręgowego
Oprogramowanie Microsoft ExcelMicrosoft Corporation, Redmond, Waszyngton, USA NiedotyczyDo przesyłania danych z oprogramowania SensorVue
PALACOS R Bone CementHareus Medical, Wehreim, Niemcy00-1112-140-01Cement kostny PMMA do zatapiania powierzchni ładunkowej
Komputer osobistyNierejestrowania danych (patrz 24-bitowy interfejs ogniwa obciążnikowego, oprogramowanie SensorVue, oprogramowanie Microsoft Excel) i analizy (patrz Oprogramowanie Igor Pro)
Oprogramowanie SensorVueCzujniki LoadStar, Freemont, Kalifornia, USANie dotyczyOprogramowanie używane do zbierania danych w czasie rzeczywistym podczas testów kompresji
Zestaw do preparowania małych zwierzątNieNie dotyczy Nożyczki preparacyjne, kleszcze, skalpel, ostrza, szpilki, gaziki
Para górnych płyt dociskowych ze stali nierdzewnej (samoprzystających) i dolnychSkonstruowane przez Colorado State University-Pueblo Dept. of Engineering
Giętarka trzypunktowaN/AN/Askonstruowana przez Colorado State University-Pueblo Dept. of Engineering. Patrz Sarper et al. (2014) aby uzyskać więcej informacji na temat budowy

References

  1. Kemmak, A. R., et al. Economic burden of osteoporosis in the world: A systematic review. Medical Journal of The Islamic Republic of Iran. 34, 153 (2020).
  2. Li, J., et al. Different bone remodeling levels of trabecular and cortical bone in response to changes in Wnt/β-catenin signaling in mice. Journal of Orthopaedic Research. 35 (4), 812-819 (2016).
  3. Crandall, C. Parathyroid hormone for treatment of osteoporosis. JAMA Internal Medicine. 162 (20), 2297-2309 (2002).
  4. Ott, S. M. Cortical or trabecular bone: what's the difference. American Journal of Nephrology. 47 (6), 373-375 (2018).
  5. Sparks, C. A., Streff, H. M., Williams, D. W., Blanton, C. A., Gabaldón, A. M. Dietary hempseed decreases femur maximum load in a young female C57BL/6 mouse model but does not influence bone mineral density or micro-architecture. Nutrients. 14 (20), 4224 (2022).
  6. Blanton, C. A., Barrott, J. J., Kunz, K., Bunde, E., Streff, H. M., Sparks, C. A., et al. The Impact of Hempseed Consumption on Bone Parameters and Body Composition in Growing Female C57BL/6 Mice. International Journal of Environmental Research and Public Health. 19 (10), 5839 (2022).
  7. Sarper, H., Blanton, C., Depalma, J., Melnykov, I. V., Gabaldón, A. M. Simulated weightlessness and synbiotic diet effects on rat bone mechanical strength. Life Sciences in Space Research. 3, 45-54 (2014).
  8. Choman, M. The Effect of a synbiotic diet on the structure and strength of cortical bone in aging male mice. , (2015).
  9. Sparks, C. A., Giltner, Z. T., Blanton, C. A., Gabaldón, A. M. The Effects of a synbiotic diet on humerus bone mineralization and mechanical strength in aging male mice. El Río. 4 (1), 3-12 (2021).
  10. Bilezikian, J. P., Martin, T. J., Clemens, T. L., Rosen, C. J. . Principles of bone biology (Fourth Edition). , (2019).
  11. Jepsen, K. J., et al. Establishing biomechanical mechanisms in mouse models: practical guidelines for systematically evaluating phenotypic changes in the diaphyses of long bones. Journal of Bone and Mineral Research. 30 (6), 951-966 (2015).
  12. Vashith, D., Tanner, K. E., Bonfield, W. Contribution, development and morphology of microcracking in cortical bone during crack propagation. Journal of Biomechanics. 33 (9), 1169-1174 (2000).
  13. Turner, C. H., Burr, D. B. Basic biomechanical measurements of bone: A tutorial. Bone. 14 (4), 595-608 (1993).
  14. Warriner, A. H., et al. Which fractures are most attributable to osteoporosis. Journal of Clinical Epidemiology. 64 (1), 46-53 (2011).
  15. Donally, C. I., DiPompeo, C., Varcallo, M. . Vertebral compression fractires. , (2022).
  16. Alhadhoud, M., Alsiri, N. The epidemiology of spinal fractures in a level 2 trauma center in Kuwait. SAGE Open Medicine. 9, 1-11 (2021).
  17. Schumancher, Y. . Comparison of two loading surface preparation methods on rat vertebral bodies for compression testing. , (2013).
  18. Rathore, M., Sharma, D., Sinha, M., Siddiqui, A., Trivedi, S. A. Focused review - thoracolumbar spine: anatomy, biomechanics and clinical significance. Indian Journal of Clinical Anatomy and Physiology. 1 (1), 41-48 (2014).
  19. Pendleton, M. M., et al. High-precision method for cyclic loading of small-animal vertebrae to assess bone quality. Bone Reports. 9, 165-172 (2018).
  20. Lundon, K., Bolton, K. Structure and function of the lumbar intervertebral disk in health, aging, and pathologic conditions. Journal of Orthopaedic & Sports Physical Therapy. 31 (6), 291-306 (2011).
  21. Sharir, A., Barak, M. M., Shahar, R. Whole bone mechanics and mechanical testing. The Veterinary Journal. 177 (1), 8-17 (2008).
  22. Zhao, S., et al. Standardizing compression testing for measuring the stiffness of human bone. Bone & Joint Research. 7 (8), 524-538 (2018).
  23. Akhter, M. P., Jung, L. K. L. Decreased bone strength in HLA-B27 transgenic rat model of spondyloarthropathy. Rheumatology. 46 (8), 1258-1262 (2007).
  24. Shahnazari, M., et al. Higher doses of bisphosphonates further improve bone mass, architecture, and strength but not the tissue material properties in aged rats. Bone. 46 (5), 1267-1274 (2011).
  25. Chachra, D., Kasra, M., Vanin, C., MacLusky, N., Casper, R., Grynpas, M. The effect of different hormone replacement therapy regimens on the mechanical properties of rat vertebrae. Calified Tissue International. 56 (2), 130-134 (1995).
  26. Bushinsky, D. A., Willet, T., Asplin, J. R., Culbertson, C., Sara, C., Grynpas, M. Chlorthalidone improves vertebral bone quality in genetic hypercalciuric stone-forming rats. The Journal of Bone and Mineral Research. 26 (8), 1904-1912 (2011).
  27. Fujiwara, T., Akeda, K., Yamada, J., Kondo, T., Sudo, A. Endplate and intervertebral disc injuries in acute and single level osteoporotic vertebral fractures: is there any association with the process of bone healing. BMC Musculoskeletal Disorders. 20 (1), 336 (2019).
  28. Kalidindi, S. R., Abusafieh, A. Accurate characterization of machine compliance for simple compression testing. Experimental Mechanics. 37 (2), 210-215 (1997).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Mysi kręg lędźwiowy Jednoosiowe badanie ściskania z osadzeniem powierzchni ładunkowej
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code