Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Terapia manualna dla przewlekłego niespecyficznego modelu szczura z bólem krzyża

1.4K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65583

⸱

11 sierpnia 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1The Third School of Clinical Medicine, School of Rehabilitation Medicine, Zhejiang Chinese Medical University, 2Research Institute of Tuina (Spinal disease), Zhejiang Chinese Medical University

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

To badanie proponuje standaryzowaną procedurę terapii manualnej na szczurach z przewlekłym bólem krzyża, która będzie stanowić wartość odniesienia dla przyszłych eksperymentalnych badań nad terapią manualną.

Streszczenie

Przewlekły ból krzyża (CLBP) jest bardzo rozpowszechnionym schorzeniem na całym świecie i główną przyczyną niepełnosprawności. U większości pacjentów z CLBP rozpoznaje się przewlekły nieswoisty ból krzyża (CNLBP) z nieznanej przyczyny patologicznej. Terapia manualna (MT) jest integralnym aspektem tradycyjnej medycyny chińskiej i jest uznawana w Chinach za Tuina. Obejmuje techniki takie jak nastawianie kości i manipulacja rozluźnieniem mięśni. Pomimo skuteczności klinicznej w leczeniu CNLBP, mechanizmy leżące u podstaw MT pozostają niejasne. W eksperymentach na zwierzętach, mających na celu zbadanie tych mechanizmów, jednym z głównych wyzwań jest uzyskanie normatywnego MT na szczurach modelowych CNLBP. Poprawa stabilności siły palców jest kluczową kwestią w MT. Aby rozwiązać to ograniczenie techniczne, w niniejszym badaniu przedstawiono znormalizowaną procedurę MT na szczurach modelowych CNLBP. Procedura ta znacznie zwiększa stabilność MT w rękach i łagodzi częste problemy związane z unieruchomieniem szczurów podczas MT. Wyniki tego badania mają wartość referencyjną dla przyszłych badań eksperymentalnych MT.

Wprowadzenie

Przewlekły ból krzyża (CLBP) charakteryzuje się uporczywym bólem krzyża trwającym dłużej niż 3 miesiące, zazwyczaj między klatką piersiową a poprzeczną linią bioder, z bólem kończyn dolnych lub bez niego1,2. Jest to bardzo rozpowszechniona choroba, której szacowana globalna roczna częstość występowania wynosi 38%, a częstość występowania w ciągu całego życia wynosi 39%, co czyni ją powszechnym problemem zdrowia publicznego3,4. Większość pacjentów z CLBP, ponad 90-95%, nie może otrzymać ostatecznej diagnozy patologicznej i anatomicznej (takiej jak guz, złamanie i infekcja), co prowadzi do klasyfikacji przewlekłego nieswoistego bólu krzyża (CNLBP)5,6. Ze względu na niespecyficzny charakter mechanizmu patologicznego, opioidowe leki przeciwbólowe i niesteroidowe leki przeciwzapalne (NLPZ) są głównymi opcjami leczenia w medycynie zachodniej, ale wiążą się z obawami dotyczącymi bezpieczeństwa7,8. W związku z tym rośnie zapotrzebowanie na leki komplementarne i alternatywne, które są zarówno bezpieczne, jak i skuteczne.

Terapia manualna (MT), powszechnie określana w Chinach jako Tui Na, jest znaczącym aspektem tradycyjnej medycyny chińskiej (TCM) i obejmuje techniki takie jak nastawianie kości i manipulacja rozluźnieniem mięśni. Jego powszechne stosowanie w Chinach przypisuje się jego skuteczności klinicznej, wysokiemu profilowi bezpieczeństwa i nieinwazyjności9. W leczeniu CNLBP stwierdzono, że MT jest skuteczną medycyną komplementarną i alternatywną, której skuteczność została udowodniona w poprzednich badaniach10,11,12. TCM uważa, że stagnacja Qi i zastój krwi są głównymi przyczynami przewlekłego bólu, a Tui Na łagodzi ból, promując krążenie krwi i promując Qi w mięśniach i tkankach miękkich. Jednak pomimo jego skuteczności, dokładny mechanizm leżący u podstaw jego działania terapeutycznego pozostaje nieuchwytny.

W dziedzinie badań eksperymentalnych nad MT występują rozbieżności w realizacji interwencji na modelach zwierzęcych. Obecnie większość badaczy wybiera maszynowe tłumaczenie maszynowe, podczas gdy mniejszość wykonuje tłumaczenie maszynowe przy użyciu ludzkich rąk13,14,15,16. Podczas gdy maszynowe tłumaczenie maszynowe jest bardziej ustandaryzowane, tłumaczenie maszynowe ma większe znaczenie kliniczne i daje bardziej reprezentatywne dane. Stosowanie MT na zwierzętach doświadczalnych jest jednak utrudnione ze względu na niestabilną siłę palców, co prowadzi do kluczowego wyzwania w doświadczeniach na zwierzętach i utrudnia porównywalność wyników eksperymentalnych. Aby sprostać temu wyzwaniu technicznemu, w niniejszym badaniu zaproponowano odpowiednie rozwiązanie, które zwiększa stabilność siły palca podczas MT na szczurach modelowych CNLBP. Wykonalność tego rozwiązania jest weryfikowana, co stanowi cenne wskazówki dla przyszłych badań eksperymentalnych MT.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ten eksperymentalny protokół został zatwierdzony przez Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami i Użytkowania Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Zhejiang, a wszystkie procedury przestrzegały Przewodnika Narodowego Instytutu Zdrowia dla Opieki i Użytkowania Zwierząt Laboratoryjnych. W badaniu wykorzystano dorosłe samce szczurów SD (patrz tabela materiałów) o masie ciała w zakresie od 330 g do 350 g. Wszystkie szczury były trzymane w standardowym pomieszczeniu dla zwierząt z cyklem jasno-ciemnym trwającym 12 godzin, temperaturą 24 ± 2 °C i wilgotnością 50 ± 5%. Szczury miały zapewnione odpowiednie pożywienie i zaopatrzenie w wodę. Poniższy protokół zawiera szczegółowy opis ustanowienia modelu CNLBP i procedury terapii manualnej.

1. Ustal model bólu krzyża zgodnie z poniższymi krokami (Rysunek 1)

  1. Nakarm szczury, aż ważą 330-350 g, zważ je, a następnie wstrzyknij dootrzewnowo 3% pentobarbital sodu (1 ml / kg) w celu znieczulenia (patrz Tabela materiałów). Odczekaj 2 minuty, a następnie delikatnie uszczypnij kleszczem cztery palce tylnych kończyn i dotknij rogówki szczurów kleszczami, aby sprawdzić, czy nie ma reakcji wycofania lub mrugania, co wskazuje, że znieczulenie się powiodło.
    UWAGA: Wszystkie narzędzia chirurgiczne używane w modelowaniu szczurów należy wcześniej sterylizować w autoklawie i sterylizować alkoholem inne narzędzia nienadające się do sterylizacji w autoklawie, takie jak golarki, urządzenia ELFS i stoły termostatyczne. Operator powinien nosić czysty fartuch laboratoryjny, jednorazowe sterylne rękawiczki, maskę, czepek chirurgiczny i maskę na twarz.
  2. Nałóż odpowiednią ilość maści weterynaryjnej na oczy szczurów, aby zapobiec wysuszeniu z powodu długotrwałej niemożności zamknięcia oczu po znieczuleniu.
  3. Umieść szczura w pozycji leżącej mostka na stole o stałej temperaturze, zlokalizuj jego segment L4-6, zgol włosy z segmentu i zdezynfekuj je Iodophorem 3x przed rozłożeniem jednorazowej serwety do jamy operacyjnej.
  4. Przeciąć skórę i powięź segmentu L4-6 nożyczkami chirurgicznymi, a następnie oddzielić skalpelem mięśnie po obu stronach wyrostka kolczystego kręgów lędźwiowych tego segmentu.
    UWAGA: Upewnij się, że mięsień jest całkowicie oddzielony od wyrostka kolczystego i że żadne włókna mięśniowe nie pozostają przyczepione do wyrostka kolczystego. Ponadto głębokość separacji powinna rozciągać się na wyrostek poprzeczny odcinka lędźwiowego kręgosłupa.
  5. Wywierć otwór w środku wyrostka kolczystego L4-6 za pomocą igły strzykawkowej o pojemności 5 ml, a następnie załaduj system mocowania ogniwa zewnętrznego (ELFS) (patrz tabela materiałów) na wyrostek kolczysty L4-6.
  6. Zdezynfekować jodoforem, a następnie zszyć po wstrzyknięciu domięśniowym 100 000 jednostek penicyliny (patrz Tabela Materiałów) z każdej strony rany.
    UWAGA: Popchnij urządzenie ELFS do przodu, aby obniżyć wysokość urządzenia ELFS przed szyciem, a następnie zszyj pod skórą, aby zapobiec infekcji.
  7. Wykonaj zdjęcie rentgenowskie, zanim szczur się obudzi, aby ustalić, czy urządzenie ELFS jest pomyślnie podłączone do wyrostków kolczystych L4-6 (Rysunek 2).
    UWAGA: Po wykonaniu zdjęć rentgenowskich umieść szczura w pozycji leżącej mostka na stole o stałej temperaturze (patrz Tabela materiałów), poczekaj, aż się obudzi, a następnie włóż go z powrotem do klatki i nie pozostawiaj go bez opieki, dopóki się nie obudzi.
  8. Jak wcześniej zgłoszono17, karm każdego szczura modelowego w pojedynczej klatce przez 2 tygodnie, a jeśli urządzenie ELFS nie odpadnie pod koniec 2 tygodni, modelowanie CNLBP zostanie uznane za udane.
    UWAGA: W okresie rekonwalescencji pooperacyjnej u kilku szczurów pojawią się ropnie w okolicy lędźwiowej z powodu infekcji; w takim przypadku użyj strzykawki o pojemności 2,5 ml, aby odessać ropę, następnie przepłucz ranę solą fizjologiczną, a na koniec dociśnij ranę wacikiem przez kilka sekund.
  9. Aby zapobiec wzajemnemu uszkodzeniu przez szczury urządzeń ELFS, po 2-tygodniowym okresie rekonwalescencji należy nadal trzymać każdy model szczura w jednej klatce.
    UWAGA: Aby zapobiec depresji psychicznej szczurów spowodowanej karmieniem w jednej klatce, umieść w klatce plastikową zabawkę z piłką (patrz Tabela materiałów).

2. Procedura terapii manualnej na szczurach modelu CNLBP (Rysunek 3)

  1. Przed MT wykonuj ćwiczenia stabilności siły palców na stole wagowym (patrz Tabela Materiałów) przez 2 tygodnie. Podczas ćwiczenia utrzymuj kontrolowaną siłę ugniatania palca na poziomie około 600 g z częstotliwością dwa razy na sekundę. Wykonuj ćwiczenie raz dziennie przez 10 minut za każdym razem.
  2. Przed MT zaaklimatyzuj modelowe szczury w torbie dla szczurów na 1 tydzień. Umieść górną część ciała szczura w torbie, tak aby odcinek lędźwiowy i kończyny dolne były odsłonięte. Jednocześnie delikatnie głaszcz odcinek lędźwiowy szczurów, aby zachęcić je do zaakceptowania kontaktu palców z odcinkiem lędźwiowym.
    UWAGA: Wytnij kształt kawałka tkaniny w kształt wachlarza o kącie nachylenia 90° i promieniu 12 cm. Następnie zszyj ze sobą dwie strony zapiekanej tkaniny, aby utworzyć woreczek na szczura (patrz rysunek uzupełniający S1).
  3. Umieść szczura w torbie na szczury. W tym czasie górna połowa ciała szczura jest pokryta torbą szczura, a odsłonięta jest tylko talia i kończyny dolne. Przytrzymaj górną część ciała szczura w kształcie litery "C" za pomocą ręki niedominującej, jednocześnie wykonując MT na odcinku lędźwiowym szczura ręką dominującą.
    UWAGA: Nie trzymaj tułowia szczura zbyt mocno, gdy trzymasz go ręką niedominującą. Klatka piersiowa szczura zostanie ściśnięta, a oddychanie będzie utrudnione, jeśli szczur będzie trzymany zbyt mocno. Spowoduje to również, że szczur stanie się bardzo odporny
    4. .
  4. Znajdź dokładną lokalizację punktów akupunkturowych Jiaji (EX-B2). Najpierw określ lokalizację wyrostka kolczystego L4-6 szczura. Punkty akupunktowe Jiaji znajdują się po obu stronach L4-6, 0,5 cm od wyrostka kolczystego kręgów. W sumie jest sześć punktów akupunkturowych Jiaji.
    UWAGA: U szczurów kolce L6 znajdują się na linii dwóch przednich górnych kolców biodrowych, a pozycje L4 i L5 można znaleźć, licząc w górę wzdłuż kolców L6.
  5. Umieść kciuk na akupunkcie Jiaji segmentu L4-6 szczura i stopniowo zwiększaj intensywność ugniatania. Kiedy modelowe szczury wykazują zachowania oporowe, takie jak wicie kończyn, głośne krzyki i silne zmagania się w stanie cichym, siła ugniatania w tym czasie jest maksymalną wartością nacisku. Upewnij się, że najbardziej odpowiednie ciśnienie jest nieco mniejsze niż maksymalna wartość ciśnienia, która jest maksymalną wartością ciśnienia, którą szczury mogą tolerować bez wykazywania zachowań opórowych.
  6. Zacznij od akupunktu Jiaji po lewej stronie L6. Po znalezieniu najbardziej odpowiedniego poziomu nacisku dla akupunktury Jiaji szczura, przytrzymaj kciuk na tym poziomie nacisku tak długo, jak to możliwe, wykonując ugniatanie z częstotliwością dwa razy na sekundę przez jedną minutę. Powtórz dla pozostałych pięciu punktów akupunkturowych Jiaji.
  7. Jeśli podczas procedury ugniatania zaobserwuje się oporne zachowanie u szczurów, przerwij nacisk kciuka, aż szczur się uspokoi, a następnie wznów procedurę. Upewnij się, że proces ugniatania trwa 1 minutę dla każdego punktu akupunkturowego, nawet jeśli w trakcie procesu nastąpi przerwa
    8. .

3. Próg wycofania łapy (PWT)

  1. Umieść szczury w przezroczystym pudełku z pleksiglasu na siatce drucianej na 30 minut przed oficjalnym testem, aby zaaklimatyzować je w środowisku.
  2. Użyj różnych rozmiarów włókien von Freya (0,6, 1, 2, 4, 6, 8, 15, 26 g) (patrz tabela materiałów), po tym, jak szczury przestaną eksplorować i pielęgnować, stymuluj pionowo środek lewej tylnej łapy, powoli zwiększaj nacisk, aż włókna zostaną lekko zgięte, a następnie zatrzymaj nacisk i utrzymuj wartość ciśnienia przez 5 s.
    UWAGA: Unikaj grubszego obszaru skóry na środku tylnej łapy podczas stymulacji tylnych łap za pomocą filamentu.
  3. Zapisuj pozytywne zachowanie jako X, jeśli szczur wykazuje reakcję na wycofanie nogi lub lizanie stopy i daj niższy poziom włókna bodźcowego. Zapisz brak pozytywnego zachowania jako O i podaj wyższy poziom włókna bodźca.
    UWAGA: Odstęp między dwoma sąsiednimi bodźcami powinien być większy niż 30 s.
  4. Wykryj 4x z rzędu, gdy uzyskany zostanie X, a następnie uzyskana zostanie sekwencja kolejnych X O, a następnie przekonwertuj sekwencję na odpowiednią wartość PWT zgodnie z metodą Chaplan18.

4. Opóźnienie wycofania łapy (PWL)

  1. Umieścić szczury w aparacie Hargreavesa (patrz tabela materiałów) na 30 minut przed formalnym badaniem, aby umożliwić im aklimatyzację w środowisku.
  2. Ustaw parametry przyrządu w następujący sposób: maksymalny czas ekspozycji na światło 20 s; natężenie światła 50% (patrz rysunek uzupełniający S2).
    UWAGA: Maksymalny czas ekspozycji na światło nie powinien przekraczać 20 s, aby uniknąć poparzenia łap szczura, co wpłynęłoby na dokładność kolejnych wartości testowych.
  3. Dopasuj + na stymulatorze ciepła do środka lewej tylnej łapy szczura po tym, jak szczur przestał eksplorować i pielęgnować. Kliknij Start, a gdy szczur zacznie podnosić stopę, a instrument automatycznie przestanie odmierzać czas, zapisz wynikową wartość czasu. Wykonaj w sumie pięć testów dla każdego szczura.
    UWAGA: Przerwa między każdym testem dla tego samego szczura wynosi co najmniej 5 minut, aby uniknąć poparzenia skóry tylnej łapy szczura.
  4. Usuń wartości maksymalne i minimalne z pięciu wartości zmierzonych dla każdego szczura i przyjmij średnią z pozostałych trzech wartości jako wartość PWL szczura.

5. Barwienie hematoksyliną i eozyną (H&E)

  1. Znieczulić szczury pentobarbitalem sodu pod koniec 2 tygodni MT i poddać eutanazji wszystkie szczury przez perfuzję serca po ich całkowitym znieczuleniu.
  2. Usuń lewy mięsień lędźwiowo-lędźwiowy od szczura L5 i zanurz w 4% paraformaldehydzie (patrz Tabela Materiałów) na 48 godzin utrwalenia.
  3. Przytnij tkankę do odpowiedniego rozmiaru i umieść ją w pudełku do zatapiania (patrz Tabela materiałów), a następnie użyj automatycznego odwadniacza (patrz Tabela materiałów) do odwodnienia.
  4. Użyj wosku parafinowego, aby zatopić tkankę, a następnie pokrój tkankę na odcinki o grubości 5 μm.
  5. Zamontuj sekcje na szkiełkach i piecz przez 4 godziny.
  6. Umieść tkanki w automatycznym barwniku (patrz Tabela materiałów) w celu późniejszego odparafinowania, barwienia hematoksyny, różnicowania, niebieszczenia, barwienia eozyny, odwodnienia i przezroczystości19.
  7. Uszczelnij sekcje żywicą neutralną (patrz tabela materiałów) i pozostaw w przewiewnym miejscu na 24 godziny.
  8. Zeskanuj slajdy za pomocą cyfrowego skanera slajdów (patrz Spis materiałów).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Celem niniejszego badania było zbadanie działania przeciwbólowego MT na model szczurów z CNLBP. W tym celu 24 szczury randomly przydzielono do czterech grup: grupy kontrolnej (blank), grupy pozorowanej (sham-operated), grupy modelowej oraz grupy MT, z których każda składała się z sześciu szczurów. Grupa kontrolna nie otrzymała żadnej interwencji, natomiast w grupie pozorowanej przeprowadzono jedynie zabieg chirurgiczny, polegający na rozdzieleniu i zaszyciu mięśni lędźwiowych po obu stronach wyrostków kolczystych L4-6, b...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Obecnie brakuje konsensusu w sprawie modelu zwierzęcego, który dokładnie odwzorowuje przewlekły niespecyficzny ból krzyża (CNLBP). Istnieje wiele zwierzęcych modeli CNLBP, takich jak modele dyskowe, neurogenne, kostno-stawowe i mięśniowe23. Modele te mają jednak ograniczenia ze względu na niejednorodny charakter CNLBP w praktyce klinicznej. Model CNLBP zastosowany w tym badaniu został zmodyfikowany z modelu "linku zewnętrznego" Hendersona24, który jest modelem CNLBP wywodzą...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak sprzecznych interesów lub relacji, które mogłyby stanowić konflikt interesów.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Program Ogólny Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin (81774442, 82274672), Projekt Fundacji Nauk Przyrodniczych Prowincji Zhejiang (Q23H270025), Fundusz Budowy Studia Budowy Studia Dziedzictwa Prowincji Zhejiang Lv Lijiang (GZS2021026) oraz Projekt Badań Naukowych na Poziomie Szkolnym Uniwersytetu Medycyny Chińskiej Zhejiang (2021RCZXZK03, 2022FSYYZQ13, 2022GJYY045).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Automatyczna suszarkaThermo Fisher Scientific Co., LtdExcelsior AS
Automatyczny barwnikThermo Fisher Scientific Co., LtdGemini AS
Tabela stałej temperaturyHarvard Bioscience (Shanghai) Co., Ltd50-1247Podgrzewany stół operacyjny dla małych zwierząt, zwykle pracujący pod kątem 37 & stopni; C– 38 &stopni; C
Cyfrowy skaner slajdówHAMAMATSU Co., LtdC13210-01
System mocowania linków zewnętrznychSzanghaj Naturethink nauki przyrodnicze i Technology CO., Ltdwykonane
pudełko do zatapianiaCitotest Labware Manufacturing Co., Ltd31050102W
Aparat HargreavesUGO BASILE Co., Ltd37370
Żywica neutralnaZSGB-BIO Co., LtdZLI-9555
ParaformaldehydMacklin Co., LtdP804536
PenicylinaHangzhou Zhengbo Biotechnology Co., LtdZSQ-100-160A Plastikowe
zabawki kulkoweShanghai Huake Industrial Co., Ltd.HK11029-35503
Szczury SDShanghai SLAC Laboratory Animal Co., LtdSCXK (HU) 2022-0004samiec, 330-350 g
pentobarbital soduHangzhou Dacheng Biotechnology Co., Ltd.P3761
Filamenty Von FreyStoeltingco Co., Ltd.
Stół wagowyShanghai Lichen Bangxi Instrument Technology Co., Ltd.
na zamówienieNC12775YP20002B

Bibliografia

  1. Deyo, R. A., et al. Report of the NIH task force on research standards for chronic low back pain. International Journal of Therapeutic Massage & Bodywork. 8 (3), 16-33 (2015).
  2. Koes, B. W., van Tulder, M. W., Thomas, S. Diagnosis and treatment of low back pain. BMJ (Clinical Research Ed.). 332 (7555), 1430-1434 (2006).
  3. Hoy, D., et al. A systematic review of the global prevalence of low back pain. Arthritis and Rheumatism. 64 (6), 2028-2037 (2012).
  4. Hoy, D., Brooks, P., Blyth, F., Buchbinder, R. The epidemiology of low back pain. Best Practice & Research in Clinical Rheumatology. 24 (6), 769-781 (2010).
  5. Hoy, D., et al. The global burden of low back pain: Estimates from the global burden of disease 2010 study. Annals of the Rheumatic Diseases. 73 (6), 968-974 (2014).
  6. Henschke, N., et al. Prevalence of and screening for serious spinal pathology in patients presenting to primary care settings with acute low back pain. Arthritis and Rheumatism. 60 (10), 3072-3080 (2009).
  7. Vlaeyen, J. W. S., et al. Low back pain. Nature Reviews Disease Primers. 4 (1), 52(2018).
  8. Li, W., et al. Peripheral and central pathological mechanisms of chronic low back pain: A narrative review. Journal of Pain Research. 14, 1483-1494 (2021).
  9. Yang, J., et al. Efficacy and safety of tuina for chronic nonspecific low back pain: A PRISMA-compliant systematic review and meta-analysis. Medicine. 102 (9), e33018(2023).
  10. Kong, L. J., et al. Chinese massage combined with herbal ointment for athletes with nonspecific low back pain: A randomized controlled trial. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine. 2012, 695726(2012).
  11. Zhang, Y., Tang, S., Chen, G., Liu, Y. Chinese massage combined with core stability exercises for nonspecific low back pain: A randomized controlled trial. Complementary Therapies in Medicine. 23 (1), 1-6 (2015).
  12. Zheng, Z., et al. Therapeutic evaluation of lumbar tender point deep massage for chronic non-specific low back pain. Journal of Traditional Chinese Medicine. 32 (4), 534-537 (2012).
  13. Seo, B. R., et al. Skeletal muscle regeneration with robotic actuation-mediated clearance of neutrophils. Science Translational Medicine. 13 (614), eabe8868(2021).
  14. Lawrence, M. M., et al. Muscle from aged rats is resistant to mechanotherapy during atrophy and reloading. Geroscience. 43 (1), 65-83 (2021).
  15. Lawrence, M. M., et al. Massage as a mechanotherapy promotes skeletal muscle protein and ribosomal turnover but does not mitigate muscle atrophy during disuse in adult rats. Acta Physiologica. 229 (3), e13460(2020).
  16. Li, H., et al. Abdominal massage improves the symptoms of irritable bowel syndrome by regulating mast cells via the Trypase-PAR2-PKCε pathway in rats. Pain Research & Management. 2022, 8331439(2022).
  17. Kong, L. J., Cheng, Y. W., Yuan, W. A., He, T. X., Gao, Q. Establishment and evaluation of external link fixation system. Liaoning Journal of Traditional Chinese Medicine. 39 (1), 162-165 (2012).
  18. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. W., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. Journal of Neuroscience Methods. 53 (1), 55-63 (1994).
  19. Sun, X. Y., et al. Interactive effects of copper and functional substances in wine on alcoholic hepatic injury in mice. Foods. 11 (16), 2383(2022).
  20. Wang, J. Z., et al. Experimental research on substance P content variation of subluxation rats model. Chinese Archives of Traditional Chinese Medicine. 36 (7), 1577-1579 (2018).
  21. Lyu, Z. Z., et al. Effects of manual loading on calcitonin gene related peptide and nerve growth factor in rats with chronic low back pain. China Journal of Orthopaedics and Traumatology. 34 (3), 282-287 (2021).
  22. Henderson, C. N., Cramer, G. D., Zhang, Q., DeVocht, J. W., Fournier, J. T. Introducing the external link model for studying spine fixation and misalignment: Part 1--need, rationale, and applications. Journal of Manipulative and Physiological Therapeutics. 30 (3), 239-245 (2007).
  23. Shi, C., et al. Animal models for studying the etiology and treatment of low back pain. Journal of Orthopaedic Research. 36 (5), 1305-1312 (2018).
  24. Henderson, C. N., et al. Introducing the external link model for studying spine fixation and misalignment: Current procedures, costs, and failure rates. Journal of Manipulative and Physiological Therapeutics. 32 (4), 294-302 (2009).
  25. Chen, B., Lin, X., Zhang, M., Zhan, H. S., Shi, Y. Y. Radiological study on rat lumbar vertebral semidislocation model. Zhejiang Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 44 (2), 117-123 (2015).
  26. Shuang, F., et al. Establishment of a rat model of lumbar facet joint osteoarthritis using intraarticular injection of urinary plasminogen activator. Scientific Reports. 5, 9828(2015).
  27. Yeh, T. T., et al. Intra-articular injection of collagenase induced experimental osteoarthritis of the lumbar facet joint in rats. European Spine Journal. 17 (5), 734-742 (2008).
  28. Kong, L. J., et al. Study on hypomobility of motion segment of rats with lumbar subluxation model. China Journal of Orthopaedics and Traumatology. 25 (3), 241-245 (2012).
  29. Kong, L. J., et al. Study of stiffness and Nissl of ventral horn of spinal cord of the rat lumbar subluxation model. China Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy. 27 (12), http://www.cqvip.com/qk/91070a/201212/44074159.html 3234-3237 (2012).
  30. Lv, Z. Z., Kong, L. J., Cheng, Y. B., Yao, C. J., Fang, M. Evaluation of spinal Tuina for gait behavior in chronic low back pain model rats based on CatWalk. China Journal of Traditional Chinese Medicine and Pharmacy. 37 (6), 3475-3479 (2022).
  31. Bu, J. H., Kong, L. J., Yang, X. C., Cheng, Y. W. Empirical study on NCV variation of spinal nerve of subluxation rat model. Liaoning Journal of Traditional Chinese Medicine. 42 (10), 2002-2006 (2015).
  32. Oderda, G. M., Gan, T. J., Johnson, B. H., Robinson, S. B. Effect of opioid-related adverse events on outcomes in selected surgical patients. Journal of Pain & Palliative Care Pharmacotherapy. 27 (1), 62-70 (2013).
  33. Enthoven, W. T., Roelofs, P. D., Deyo, R. A., van Tulder, M. W., Koes, B. W. Non-steroidal anti-inflammatory drugs for chronic low back pain. Cochrane Database of Systematic Reviews. 2 (2), CD012087(2016).
  34. Wang, S. Q., Jiang, A. Y., Gao, Q. Effect of manual soft tissue therapy on the pain in patients with chronic neck pain: A systematic review and meta-analysis. Complementary Therapies in Clinical Practice. 49, 101619(2022).
  35. Kong, L. J., et al. Massage therapy for neck and shoulder pain: A systematic review and meta-analysis. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine. 2013, 613279(2013).
  36. Wu, Q., Zhao, J., Guo, W. Efficacy of massage therapy in improving outcomes in knee osteoarthritis: A systematic review and meta-analysis. Complementary Therapies in Clinical Practice. 46, 101522(2022).
  37. Dai, X. Q., et al. Moxibustion strategies for mice. Journal of Visualized Experiments: JoVE. 179, e63119(2022).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Przewlek y b l dolnego odcinka kr gos upaterapia Tuinarozlu nianie mi nitechnika nastawiania ko cieksperyment na zwierz tachstabilno si y palc wmechanizmy b lu
Film wkrótce dostępny
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki Korzystania

Zasady

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.