Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Du-moxibustion w mysim modelu zesztywniającego zapalenia stawów kręgosłupa

2.7K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65586

⸱

27 października 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture-Moxibustion and Tuina, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 2School of First Clinical Medicine, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 3External Treatment Center, Affiliated Hospital of Shandong University of Traditional Chinese Medicine

W tym artykule

Podsumowanie

Ten artykuł szczegółowo opisuje procedury operacyjne i środki ostrożności, które należy podjąć podczas leczenia du-moxibustion w leczeniu zesztywniającego zapalenia stawów kręgosłupa u myszy eksperymentalnych.

Streszczenie

Zesztywniające zapalenie stawów kręgosłupa (AS) jest stopniowo pogarszającą się i upośledzającą formą zapalenia stawów, która dotyczy przede wszystkim szkieletu osiowego. Choroba ta obejmuje głównie kręgosłup i staw krzyżowo-biodrowy. Do zespolenia kręgosłupa i stawu krzyżowo-biodrowego może dojść w późniejszym stadium choroby, co skutkuje sztywnością kręgosłupa i kifozą, a także trudnościami w chodzeniu, co poważnie wpływa na jakość pracy i codziennych czynności życiowych oraz stanowi duże obciążenie dla pacjenta, rodziny i społeczeństwa. Coraz więcej uwagi poświęca się niefarmakoterapii jako alternatywnej terapii ZZSK. Moksowanie to starożytna technika terapeutyczna stosowana w Tradycyjnej Medycynie Chińskiej (TCM). Terapia Du-moxibustion, unikalna i innowacyjna terapia zewnętrzna opracowana na podstawie zwykłej moksacji, ma zdecydowany efekt terapeutyczny na ZZSK. Du-moxibustion umiejętnie łączy kompatybilne techniki TCM w celu zintegrowania meridianów, akupunktów, chińskiej medycyny ziołowej i moksoplastyki. W niniejszej pracy szczegółowo opisano procedury operacyjne i środki ostrożności, które należy podjąć podczas stosowania Du-moxibustion u myszy doświadczalnych, aby zapewnić eksperymentalną podstawę do badania mechanizmu Du-moxibustion w leczeniu ZZSK.

Wprowadzenie

Zesztywniające zapalenie stawów kręgosłupa (AS) jest stopniowo pogarszającą się i upośledzającą formą zapalenia stawów, która dotyczy przede wszystkim szkieletu osiowego. Według najnowszego badania epidemiologicznego, ~0,01%-1,8% ludzi na świecie cierpi na tę chorobę1, z których większość to młodzi mężczyźni (stosunek mężczyzn do kobiet wynosi ~2-3:1)2. Częstość występowania AS w populacji chińskiej wynosi 0,2%-0,4%. Choroba ta obejmuje głównie kręgosłup i staw krzyżowo-biodrowy. Zrost kręgosłupa i stawu krzyżowo-biodrowego może wystąpić w późniejszych stadiach choroby, powodując sztywność kręgosłupa i kifozę, a także trudności w chodzeniu, co poważnie wpływa na jakość pracy i codziennych czynności życiowych oraz stanowi duże obciążenie dla pacjenta, rodziny i społeczeństwa1. Obecnie nie ma ostatecznego rozwiązania dla ZZSK, a oferowane leczenie, zarówno farmakologiczne, jak i niefarmakologiczne, koncentruje się przede wszystkim na łagodzeniu bólu, spowolnieniu postępu choroby i poprawie jakości życia. W ostatnich latach, ze względu na to, że opcje farmakoterapeutyczne były bardzo ograniczone3, coraz więcej uwagi poświęca się niefarmakoterapii, która stała się alternatywną terapią dla ZZSK. W Chinach pacjenci często preferują leczenie zewnętrzne polegające na Tradycyjnej Medycynie Chińskiej (TCM), które ma niewielkie skutki uboczne i dużą wygodę podczas leczenia.

Moxibustion to starożytna technika terapeutyczna stosowana w TCM. Du-moxibustion to zewnętrzna technika leczenia polegająca na "leczniczej moksowaniu z pianką" na odcinku kręgosłupa meridianu Du. Jest stosowany głównie w leczeniu ZZSK i wykazał bezpieczeństwo i skuteczność. W porównaniu ze zwykłą moksybustioną, Du-moxibustion charakteryzuje się szerokim obszarem moxibustion, dużym stożkiem moksy, dużą siłą ognia i wysoką temperaturą4. Systematyczny przegląd i metaanaliza sugerują, że moksowanie jest skutecznym leczeniem uzupełniającym AS5. Niedawne badanie potwierdziło, że objawy kliniczne i niektóre czynniki zapalne u pacjentów z ZA uległy poprawie dzięki moxibustion6. Badania wykazały, że du-moksowanie może zwiększać zawartość β-endorfin w mózgu i wywierać centralny efekt przeciwbólowy7, obniżać ekspresję genu HLA-B278 i opóźniać tempo nawrotów AS. Du-moxibustion ma również łagodzący wpływ na progresję ZZSK poprzez zmniejszenie wskaźnika zapalnego OB (ESR) i poziomu białka C-reaktywnego (CRP), C-końcowego peptydu kolagenu typu I (CTX-I) i białka Dickkopf1 (DKK1)9,10.

Inne badanie kliniczne wykazało, że Du-moxibustion może dodatkowo dostosować nieuporządkowane podzbiory limfocytów T, Ig i dopełniacza C3, aby zrównoważyć mechanizm immunologiczny11. Jeśli chodzi o metabolizm kości, moksoterapia może hamować wzrost fosfatazy alkalicznej w surowicy (ALP) i fosforu w surowicy (S-P), zwiększać stężenie wapnia w surowicy (S-Ca), gęstość mineralną kości (BMD) i wytrzymałość kości12. Co więcej, Du-moxibustion może naprawić funkcję kręgosłupa w wielu punktach, aby złagodzić objawy zmęczenia u pacjentów z ZZSK13. Niektóre badania na zwierzętach ujawniły potencjalny mechanizm moksoterapii w leczeniu ZZSK. Badanie wykazało, że moksowanie znacznie poprawiło ogólny stan zdrowia, zmniejszyło poziom grubości łap i obniżyło poziom IL-1β, PGE2, IL-6 i TNF-α w próbkach tkanki więzadłowej kręgosłupa. Analiza szlaku metabolicznego powiązała zidentyfikowane metabolity z cyklem TCA, a także metabolizmem lipidów, aminokwasów, flory jelitowej i puryn14. Inne badanie wykazało, że moksowanie hamowało ekspresję cytokin prozapalnych, IL-1β, TNF-α, IL-17 i IL-6; obniżył poziomy mRNA RANKL, RANK, ALP i OCN; i poprawił cechy histopatologiczne u myszy z ZZSK15.

Chociaż te badania sugerują, że moksowanie może być skuteczne w leczeniu ZZSK, potrzebne są dalsze badania, aby potwierdzić te wyniki i określić optymalny protokół leczenia moksowania u pacjentów z ZA. Nasz zespół stworzył i zmodyfikował terapię moksyterapii w oparciu o podstawową teorię i praktyczne działanie tradycyjnej chińskiej moksacji, która jest szeroko prowadzona i stosowana w chińskiej praktyce klinicznej od ponad 35 lat. Chociaż istnieje niewiele wysokiej jakości badań dotyczących leczenia ZZSK za pomocą Du-moxibustion, jego wskazania w leczeniu ZZSK zostały poparte dowodami. Jednak mechanizm leczenia ZZSK za pomocą Du-moxibustion jest wart dalszych badań. Badania na zwierzętach są ważną metodą badania mechanizmu du-moxibustion w leczeniu ZZSK. Kliniczne działanie Du-moxibustion jest stosunkowo dojrzałe, ale rzadko stosowane w badaniach nad mechanizmem w doświadczeniach na zwierzętach. W artykule tym szczegółowo opisano działanie i środki ostrożności, które należy podjąć podczas leczenia Du-moxibustion w leczeniu myszy doświadczalnych z użyciem ZZSK.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie eksperymenty na zwierzętach zostały zatwierdzone przez Komitet Oceny Etyki Dobrostanu Zwierząt Doświadczalnych Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Shandong (No. SDUTCM20230831301).

1. Przygotowanie zwierząt

  1. Określ z wyprzedzeniem grupy doświadczalne i liczbę zwierząt w grupie.
  2. Wybierz samce myszy BALb/c, trzymaj je w stałej temperaturze 22 ± 1 °C, stałej wilgotności 60 ± 5% i 12-godzinnym cyklu dobowym.

2. Ustanowienie modelu myszy AS

UWAGA: Model AS został wywołany za pomocą proteoglikanu chrząstki (PG), który jest klasyczną metodą modelowania16,17,18,19,20,21. Myszy szczepu BALB/c były wielokrotnie immunizowane PG w celu wywołania zapalenia ścięgien i zapalenia stawów kręgosłupa. Szczegółowe informacje na temat materiałów, odczynników i przyrządów użytych w tym protokole można znaleźć w Tabeli materiałów.

  1. Za pomocą pipety o pojemności 200 μl pobrać 200 μl PG i CFA (lub IFA) do probówki wirówkowej o pojemności 1,5 ml. Delikatnie potrząsaj, aby wymieszać płyn w probówce wirówkowej.
  2. Umieścić probówkę wirówkową w młynku do tkanek w celu homogenizacji, a następnie inkubować na lodzie przez 4 minuty. Powtórzyć 5x. Ustaw następujące parametry w młynku do tkanek: 60 Hz, mielenie 30 s, interwał 10 s, w sumie 6 cykli.
  3. Ekstrahować 0,2 ml zemulgowanego białka PG z probówki wirówkowej za pomocą strzykawki o pojemności 1 ml.
  4. Chwyć i napraw mysz lewą ręką. Połóż mysz w pozycji leżącej, trzymając głowę niżej niż ogon, aby zapobiec uszkodzeniu narządów jamy brzusznej po włożeniu strzykawki.
  5. Wysterylizuj jamę brzuszną wacikami nasączonymi alkoholem prawą ręką.
  6. Trzymając strzykawkę w prawej ręce, wprowadzić igłę podskórnie lekko po lewej lub prawej stronie kresy białej brzusznej w dolnej połowie brzucha.
  7. Wsunąć igłę 3-5 mm podskórnie równolegle do linii środkowej części brzucha, a następnie wepchnąć igłę do jamy brzusznej pod kątem 45° do skóry.
  8. Wniknąć do otrzewnej, wyjąć zatyczkę igłową i powoli wstrzyknąć zemulgowane białko PG.

3. Du-moxibustion

UWAGA: Przygotuj z wyprzedzeniem trzy najważniejsze surowce do Du-moxibustion (Rysunek 1).

  1. Przygotuj rożki moksy. Weź aksamit w dłoń, z dwiema dłońmi skierowanymi w przeciwnych kierunkach, wywierającymi siłę skręcającą, aby pocierać aksamit w kształt wrzeciona (Rysunek 2)
  2. Imbir pokroić na małe kawałki i zmiksować w sokowirówce (Rysunek 3). Przefiltruj puree imbirowe przez bawełnianą gazę. Oddziel sok imbirowy i błoto imbirowe od puree imbirowego, aby przygotować się do następnego kroku.
  3. Przygotuj 10 g błota imbirowego i 20 ml soku imbirowego i umieść je w papierowych kubkach do późniejszego wykorzystania.
  4. Zważ 0,1 g proszku TCM (mieszanina cynamonu w proszku, goździków w proszku, notopterygium w proszku, antarydyny w proszku i sztucznego piżma)22 i zmiel go w moździerzu.
  5. Umieść myszy w skrzynce indukcyjnej znieczulenia urządzenia do znieczulania zwierząt i znieczulenie ich mieszaniną 2-3% izofluranu i tlenu o natężeniu przepływu 2 l/min.
  6. Oceń głębokość znieczulenia, obserwując początkowo brak odruchu zaskoczenia i sprawdź poziom znieczulenia chirurgicznego, sprawdzając, czy nie ma odruchu pedałowania w odpowiedzi na delikatne uszczypnięcie palca
    7. .
  7. Gdy mysz osiągnie znieczulenie w płaszczyźnie operacyjnej, wyjmij ją z pudełka i zamocuj na stole operacyjnym w pozycji leżącej. Dopasuj usta i nos myszy do wylotu środka znieczulającego.
  8. Znieczulenie należy podawać za pomocą maski dołączonej do aparatu znieczulającego, przez którą izofluran i tlen są dostarczane przez obwód bez ponownego oddychania. Utrzymuj znieczulenie i utrzymuj mysz na poduszce grzewczej o temperaturze 37 °C podczas całej procedury operacyjnej. Nałóż lubrykant na oczy, aby zapobiec wysuszeniu.
  9. Zlokalizuj punkty akupunkturowe i zidentyfikuj obszar stymulacji (Rysunek 4).
  10. Ogol włosy z tyłu myszy, aż zobaczysz cielistą skórę z tyłu myszy. Upewnij się, że szerokość depilacji wynosi ~1,5 cm, a długość od siódmego kręgu szyjnego do kręgu ogonowego (Rysunek 5A).
  11. Przygotowany sok z imbiru nanieść bawełnianą gazą na ogolone miejsce (Rysunek 3).
  12. Rozsyp proszek TCM równomiernie pędzlem do pisania na środkowej linii grzbietu myszy i przykryj go papierem morwowym (Rysunek 5B-D).
  13. Zrób trapezoidalną kolumnę imbirową o długości 6 cm, szerokości 1,5 cm i grubości 3 mm z błota imbirowego. Zamocuj kolumnę imbiru na papierze morwowym (Rysunek 5E).
  14. Zrób rowek nad linią środkową kolumny imbiru (Rysunek 3) i umieść stożek moksy na kolumnie imbiru.
  15. Zapal stożek moksy, umieszczając nowy stożek moksy po wypaleniu się poprzedniego. Sprawdź twardość kolumny imbirowej, aby zapobiec poparzeniu myszy, spalając w sumie trzy stożki (Rysunek 5F).
  16. Po spaleniu stożków moksy zetrzyj imbir i proszek TCM, a następnie wyczyść tył myszy. W tym momencie należy przerwać znieczulenie.
  17. Pozwól myszy odzyskać przytomność w nowej klatce z nieograniczonym dostępem do jedzenia i wody. Umieść klatkę na podgrzewanej podkładce, aby wspomóc proces regeneracji. Monitorować zwierzę do momentu odzyskania wystarczającej przytomności.
  18. Gdy mysz w pełni wyzdrowieje, potwierdź obecność odruchu prostującego przed powrotem do normalnej obudowy.
    UWAGA: Podczas operacji konieczne jest monitorowanie stanu psychicznego myszy, aby uniknąć słabego oddechu. Zapobiegaj poparzeniom, ale utrzymuj myszy w cieple i unikaj siniaków na pazurach i ogonie.

4. Ocena wskaźnika zapalenia stawów (AI)

  1. Oceń wynik AI trzy razy: przed modelowaniem, po modelowaniu i po zabiegu. Standardy oceny są następujące: 0, brak zaczerwienienia lub obrzęku; 1, lekkie zaczerwienienie lub obrzęk w kilku palcach; 2, zaczerwienienie i obrzęk w większości stawów palców u nóg i palców u stóp; 3, poważne zaczerwienienie i obrzęk stóp i poniżej stawu skokowego; i 4, zaczerwienienie i obrzęk stóp i stawu skokowego23.
  2. Oblicz wyniki SI wszystkich czterech łap, z maksymalną wartością 16.

5. Test Rotarod

UWAGA: Test rotarodu służy do oceny koordynacji ruchowej i równowagi poprzez rejestrowanie czasu, jaki myszy spędzają na obracającym się bębnie. Eksperyment ten składał się z trzech prób oddzielonych 20-minutowymi odstępami. Oficjalne dane testowe zostały zarejestrowane z trzeciej próby, przy czym pierwsze dwa służyły jako ćwiczenia szkoleniowe.

  1. Umieść myszy na obracających się bębnach, które obracają się pod ciągłym przyspieszeniem od 4 do 40 obr./min przez 300 s24.
  2. Zmierz czas opóźnienia (czas, w którym mysz spada z pręta). Zapewnij wyściółkę, aby zapobiec obrażeniom, gdy spadnie.

6. Test w otwartym polu (OFT)

UWAGA: OFT służy do oceny stanu ruchu autonomicznego, mając na celu identyfikację patologicznych zachowań. Cztery kwadratowe areny otwarte (50 cm x 50 cm x 40 cm) zostały umieszczone razem, aby utworzyć aparaturę. Dno pudełka zostało podzielone na dziewięć równych kwadratów.

  1. Kontroluj hałas tła w laboratorium do poziomu poniżej 65 dB.
  2. Przetrzyj całe urządzenie 75% etanolem przed każdą próbą.
  3. Umieść wszystkie myszy w pomieszczeniu testowym na 1 godzinę przed testem, aby umożliwić im przystosowanie się do środowiska.
  4. Umieść myszy na kwadratowych arenach na otwartym polu i pozwól im eksplorować przez 10 minut.
  5. Rejestruj całkowity dystans i prędkość ruchu przez 10 minut.

7. Eutanazja i pobieranie próbek

  1. Umieść mysz w pudełku indukcyjnym znieczulenia i znieczul ją mieszaniną 2-3% izofluranu i tlenu o natężeniu przepływu 2 l/min. Gdy mysz wejdzie w stan głębokiego znieczulenia potwierdzonego brakiem odruchu pedałowania, przenieś ją na stół operacyjny w celu znieczulenia podtrzymującego.
  2. Chwyć i napraw mysz ręką niedominującą.
  3. Delikatnie dociśnij okolice oczu, aby gałki oczne były przekrwione i wysunięte.
  4. Użyj nożyczek, aby przyciąć wąsy myszy, aby zapobiec hemolizie spowodowanej włosami.
  5. Potwierdź głębokość znieczulenia, sprawdzając, czy nie ma odruchu pedałowania w odpowiedzi na uszczypnięcie palca. Użyj kleszczy, aby chwycić gałkę oczną i szybko ją wyjąć, umożliwiając przepływ krwi do probówki mikrowirówkowej z oczodołu.
    UWAGA: Można również zastosować alternatywne metody pobierania krwi, takie jak nakłucie serca.
  6. Gdy tempo kapania krwi zwolni, delikatnie naciśnij obszar serca myszy, aby przyspieszyć pompowanie krwi i uzyskać więcej krwi. Następnie poddaj mysz eutanazji za pomocą zwichnięcia szyjki macicy.
  7. Przytrzymaj nogę tuż nad stawem skokowym za pomocą kleszczy w ręce niedominującej. Następnie przetnij nogę tuż nad stawem skokowym za pomocą nożyczek.

8. Analiza histologiczna

  1. Zanurz próbki kostki w 4% paraformaldehydzie na ponad 24 godziny. Odwapnić w 10% EDTA (pH = 7,4) przez 1 miesiąc.
  2. Namocz próbki w 4% paraformaldehydzie przez 2 godziny.
  3. Następnie namocz próbki w gradiencie rosnących stężeń etanolu (70%, 80%, 90%, 100%, 100%, 100%). Moczyć każde stężenie etanolu przez 1 godzinę.
  4. Namocz próbki w ksylenie przez 3 godziny.
  5. Próbki kostek zanurzyć w parafinie na 7 godzin. Odstawić bloki parafiny do lodówki o temperaturze 4 °C.
  6. Bloki parafiny należy kroić na grubość 6 μm za pomocą półautomatycznej maszyny do cięcia parafiny.
  7. Moczyć plastry przez 4 x 5 minut w ksylenie, aby zakończyć odparafinowanie.
  8. Namocz plastry w gradiencie malejących stężeń etanolu (100%, 100%, 95%, 75%) przez 2 minuty każdy. Moczyć w wodzie destylowanej przez 2 minuty.
  9. Plastry barwić hematoksyliną przez 10 minut i płukać wodą destylowaną przez 5 s.
  10. Namocz plastry przez 30 s w płynie różnicującym i spłukuj wodą destylowaną przez 5 sekund.
  11. Plastry barwić eozyną przez 1 min i płukać wodą destylowaną przez 3 min.
  12. Namocz plastry w gradiencie rosnących stężeń etanolu (80%, 95%, 100%, 100%) przez 1 minutę każdy. Moczyć w ksylenie przez 3 x 3 minuty i zamknąć plastry25.

9. Test immunoenzymatyczny (ELISA)

  1. Zmierz stężenia IL-17 i TNF-α w osoczu przy użyciu odpowiednich zestawów zgodnie z instrukcjami producenta.

10. Analiza statystyczna

  1. Wyrazić dane jako średnią ± błąd standardowy średniej (SEM).
  2. Określ istotność za pomocą jednoczynnikowej analizy wariancji (ANOVA) lub dwukierunkowych powtarzanych pomiarów ANOVA, a następnie testów post hoc Bonferroniego lub Tamhane'a T2.
  3. Uznajmy, że P < 0,05 jest statystycznie istotne.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Myszy w modelu indukowanym PG rozwinęły objawy zapalenia stawów obwodowych, charakteryzujące się zaczerwienieniem i obrzękiem kończyn oraz palców, a następnie stopniowo rozwinęły zapalenie stawów osiowych już w 14. tygodniu, co jest bardzo podobne do obrazu klinicznego AS. W związku z tym model mysi AS uznano za udany, jeśli indeks zapalenia stawów (AI) przekroczył 3 punkty w 14. tygodniu po ostatniej iniekcji22. Gdy łapy myszy stały się obrzęknięte, przeprowadzono zabieg moksyburnacji Du raz w ty...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Zespół Aspergera objawia się klinicznie bólem pleców, odcinka lędźwiowego i obrzękiem stawów, a w ciężkich przypadkach może wystąpić deformacja kręgosłupa i sztywność stawów26. Wczesna diagnoza i leczenie mogą poprawić jakość życia, zmniejszyć wskaźniki niepełnosprawności i poprawić rokowania pacjentów z ZZSK. Zgodnie z tradycyjną medycyną chińską (TCM), uważa się, że AS jest spowodowany niedoborem Yang w nerkach i meridianach Du, a także nagromadzeniem zimnego zła wewnętrznie. TCM stoi na stanowi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Program Ogólny Narodowej Fundacji Nauk Przyrodniczych Chin (No.82174491) oraz Qilu School of Traditional Chinese Medicine Academic School Inheritance Project (No. Lu Weihan [2020]132). Dziękujemy Centrum Zwierząt Laboratoryjnych Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Shandong za zapewnienie nam warunków eksperymentalnych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
10% EDTAShanghai Macklin Biochemical Co., Ltd., Szanghaj, Chiny
Poduszki alkoholoweHYNAUT, Qingdao Hainuo Biological Engineering Co., LTD, Qingdao, Chiny
Aparat anestezjologicznyArtykuły medyczne i Usługi INT. LTD, Keighley, Wielka Brytania
probówki wirówkoweAxygen, Corning, Nowy Jork, UAS
kompletny adiuwant Frecha (CFA)aladdin, Szanghaj, ChinyF393378
wacikHenan RUIKE MEDICAL Equipment Co., Ltd., Xinxiang, Chiny
BawełnaHenan RUIKE MEDICAL Equipment Co., Ltd., Xinxiang, Chiny
deska do krojeniasamodzielne przygotowanie
dekoracji z chrząstki stawowej bydłaSigma-Aldrich, MO, USAD8428
krem do depilacjiVeet, Reckitt Benckiser (China) Investment Co. LTD, Szanghaj, Chiny
elektronicznaShanghai Yajin Electronic Technology Co., Ltd., Szanghaj, Chiny
RurkaEppendorfaAxygen, Corning, Nowy Jork, Smar do oczu UAS
Beijing Shuangji Pharmaceutical Co., LTD., Pekin, Chiny
samodzielne przygotowanieimbiru
Oprogramowanie GraphPad Prism 7Oprogramowanie GraphPad, Boston, USA
maszynka do strzyżenia włosówSuper human Group CO LTD, Jinhua, Chiny
poduszkigrzewczeShenzhen Leshuo Tech Co., Ltd., Shenzhen, Chiny
niekompletne Freund' s adiuwant (IFA)aladdin,Szanghaj, ChinyF393371
iniekcji  strzykawkaShandong Xinhua Ande Medical Supplies Co., LTD, Zibo, Chiny
izofluranShenzhen Rayward Life Technology Co., LTD, Shenzhen, ChinyR510-22-10
kij jossShijiazhuang Lidu Pachnący przemysł Co., LTD., Shijiazhuang, Chiny
sokowirówkaBraun (Shanghai) Co., Ltd., Szanghaj, Chiny
nóżzapalniczka do samodzielnego przygotowania
Zhejiang tiger-lighter Co. LTD
moździerzLuoyang Yinai Ceramic Technology Co., LTD., Luoyang, Chiny
Mysz IL-17 ELISA Kitabsin, Szanghaj, Chinyabs520009-96T
Mysz  TNF-&alfa; Zestaw ELISAWuhan  Sanying, Wuhan, Chińska Republika LudowaKE10002
papier morwowyHrabstwo Yishui Mulinsang paper Co., LTD, Linyi, Chiny
OFT Xinruan, Szanghaj, ChinyXR-XZ301
papierowedo samodzielnego przygotowania
OXFORD BIO INSTRUMENTS INC., Oksford, Wielka Brytania
rafinowana aksamitna moksasamodzielnego przygotowania
rotarodXinruan, Szanghaj, ChinyXR-6C
scientz-48L kriogeniczna szlifierka do tkanek o wysokiej przepustowościNożyczki Ningbo Xinzhi Biotechnology Co., LTD
Shandong Jiaren Medical Supplies Co., Ltd., Zibo, Chiny
półautomatyczna maszyna do cięcia parafinyLeica Camera AG, Watznach, Niemcy
SPSS Oprogramowanie 25.0International Business Machines Corporation, Nowy Jork, UAS
proszku TCM
Biosharp, Labgic, Pekin, Chiny
Pędzel do pisaniaYishui County Mulinsang paper Co., LTD, Linyi, Chiny
waga kubki do Wskazówki dotyczące samodzielnego przygotowania

Bibliografia

  1. Sieper, J., Poddubnyy, D. Axial spondyloarthritis. Lancet. 390 (10089), 73-84 (2017).
  2. Lee, W., Reveille, J. D., Weisman, M. H. Women with ankylosing spondylitis: a review. Arthritis Rheum. 59 (3), 449-454 (2008).
  3. Sari, İ, Öztürk, M. A., Akkoç, N. N. of ankylosing spondylitis. Turk J Med Sci. 45 (2), 416-430 (2015).
  4. Zhang, L., et al. Governor vessel moxibustion: Ancient Chinese medical technology with new vitality. Chin J Integr Med. 23 (5), 396-400 (2017).
  5. Hu, J., et al. Moxibustion for the treatment of ankylosing spondylitis: a systematic review and meta-analysis. Ann Palliat Med. 9 (3), 709-720 (2020).
  6. Liu, Y., Wang, P., Sun, Y. Y., Qu, J., Li, M. Efficacy of thunder-fire moxibustion in treating ankylosing spondylitis of kidney deficiency and governor meridian cold and its influence on TNF-α and RANKL: study protocol for a prospective, nonblinded, single-center, randomized controlled trial. Trials. 23 (1), 344(2022).
  7. Chong, G. Q., Ma, Y., Sun, H. S., Zhang, T., Peng, W. Study on clinical and analgesic mechanism of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. J Clin Acupunct Moxib. (06), 48-49 (1999).
  8. Liu, W. Q., Lu, X. H. Clinical observation of Melilotus extract tablets combined with Dujiu for treating ankylosing spondylitis. Pharm Res. 35 (03), 182-184 (2016).
  9. Zhang, Y. L., Lin, J. H., Zhou, Y. Y., Zhao, G. Q., He, Y. T. Clinical observation of Bushen Qiangdu Zhilou decoction combined Du-moxibustion in treating ankylosing spondylitis. Chin J Exp Tradit Med Formulae. 21 (10), 190-194 (2015).
  10. Guo, L. J., et al. Clinical effect of moxibustion at governor vessel combined with Bushen Quhan Huashi prescription for ankylosing spondylitis and its effect on levels of CTX-I and DKK1 in serum. New Chin Med. 53 (10), 117-121 (2021).
  11. Deng, Y. X. Governor moxibustion treatment of ankylosing spondylitis the adjustment of the T-cell subsets observed. J Practical Tradi Chin Inter Med. 26 (18), 77-78 (2012).
  12. Wang, Y. Q. Mechanism of exercise combined with moxibustion in the treatment of osteoporosis in castrated rats. Chin J Gerontol. 37 (04), 839-840 (2017).
  13. Ren, J. Y., Li, F., Yan, J., Wan, C., Cai, L. Clinical study of Du-moxibustion combined with needling Huatuo Jiaji acupoint in the treatment of AS of kidney-Yang deficiency. J Clin Acupunct Moxib. 35 (06), 41-44 (2019).
  14. Xu, X., et al. Metabolomic analysis of biochemical changes in the tissue and urine of proteoglycan-induced spondylitis in mice after treatment with moxibustion. Integr Med Res. 10 (1), 100428(2021).
  15. Xu, X., et al. Moxibustion attenuates inflammation and alleviates axial spondyloarthritis in mice: Possible role of APOE in the inhibition of the Wnt pathway. J Tradit Complement Med. 12 (5), 518-528 (2022).
  16. Li, X., et al. Inflammation intensity-dependent expression of osteoinductive wnt proteins is critical for ectopic new bone formation in ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 70, 1056-1070 (2018).
  17. Cui, H., et al. CXCL12/CXCR4-Rac1-mediated migration of osteogenic precursor cells contributes to pathological new bone formation in ankylosing spondylitis. Sci Adv. 8 (14), eabl8054(2022).
  18. Braem, K., Lories, R. J. Insights into the pathophysiology of ankylosing spondylitis: contributions from animal models. Joint Bone Spine. 79 (3), 243-248 (2012).
  19. Mikecz, K., Glant, T. T., Poole, A. R. Immunity to cartilage proteoglycans in BALB/c mice with progressive polyarthritis and ankylosing spondylitis induced by injection of human cartilage proteoglycan. Arthritis Rheum. 30, 306-318 (1987).
  20. Li, Z., et al. Tenascin-C-mediated suppression of extracellular matrix adhesion force promotes entheseal new bone formation through activation of Hippo signalling in ankylosing spondylitis. Ann Rheum Dis. 80 (7), 891-902 (2021).
  21. Glant, T. T., Cs-Szabo´, G., Nagase, H., Jacobs, J. J., Mikecz, K. Progressive polyarthritis induced in BALB/c mice by aggrecan from human osteoarthritis cartilage. Arthritis Rheum. 41, 1007-1018 (1998).
  22. Hu, B., Li, Y., Tan, J. Research progress of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. Rheum & Arthritis. 11 (05), 77-80 (2022).
  23. Yang, Y., Dong, Q., Li, R. Matrine induces the apoptosis of fibroblast-like synoviocytes derived from rats with collagen-induced arthritis by suppressing the activation of the JAK/STAT signaling pathway. Int J Mol Med. 39 (2), 307-316 (2017).
  24. Shiotsuki, H., et al. A rotarod test for evaluation of motor skill learning. J Neurosci Methods. 189 (2), 180-185 (2010).
  25. Liu, P., et al. A mouse model of ankle-subtalar joint complex instability induced post-traumatic osteoarthritis. J Orthop Surg Res. 16 (1), 541(2021).
  26. Taurog, J. D., Chhabra, A., Colbert, R. A. Ankylosing spondylitis and axial spondyloarthritis. N. Engl. J. Med. 374, 2563-2574 (2016).
  27. Schett, G., et al. Enthesitis: From pathophysiology to treatment. Nat. Rev. Rheumatol. 13, 731-741 (2017).
  28. Duan, W. X., et al. Effect of different concentrations of Moxa-smoke on lung function and TNF-α and IL-1 β levels in serum and lung tissues in normal rats. Zhen Ci Yan Jiu [Acupuncture Research]. 43 (2), 98-103 (2018).
  29. Callhoff, J., Sieper, J., Weiß, A., Zink, A., Listing, J. Efficacy of TNFα blockers in patients with ankylosing spondylitis and non-radiographic axial spondyloarthritis: a meta-analysis. Ann Rheum Dis. 74 (6), 1241-1248 (2015).
  30. Schinocca, C., et al. Role of the IL-23/IL-17 pathway in rheumatic diseases: an overview. Front Immunol. 12, 637829(2021).
  31. Gravallese, E. M., Schett, G. Effects of the IL-23-IL-17 pathway on bone in spondyloarthritis. Nat Rev Rheumatol. 14 (11), 631-640 (2018).
  32. Kenna, T. J., et al. Enrichment of circulating interleukin-17-secreting interleukin-23 receptor-positive γ/δ T cells in patients with active ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 64 (5), 1420-1429 (2012).
  33. Poddubnyy, D., Sieper, J. Treatment of axial spondyloarthritis: what does the future hold. Curr Rheumatol Rep. 22 (9), 47(2020).
  34. van der, H. D., et al. COAST-V study group. Ixekizumab, an interleukin-17A antagonist in the treatment of ankylosing spondylitis or radiographic axial spondyloarthritis in patients previously untreated with biological disease-modifying anti-rheumatic drugs (COAST-V): 16 week results of a phase 3 randomised, double-blind, active-controlled and placebo-controlled. Lancet. 392 (10163), 2441-2451 (2018).
  35. Fu, Y. S., et al. Pharmacological properties and underlying mechanisms of curcumin and prospects in medicinal potential. Biomed Pharmacother. 141, 111888(2021).
  36. Hassan, A. S., Hofni, A., Abourehab, M. A. S., Abdel-Rahman, I. A. M. Ginger extract-loaded transethosomes for effective transdermal permeation and anti-inflammation in rat model. Int J Nanomedicine. 18, 1259-1280 (2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Tradycyjna medycyna chińskaterapia zewnętrznastymulacja punktów akupunkturowychstożek moksyaplikacja imbiruleczenie kręgosłupaniefarmakoterapia
Du-moxibustion w mysim modelu zesztywniającego zapalenia stawów kręgosłupa
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.