Artykuł metodologiczny

Przezoskrzelowa kriobiopsja płuc w diagnostyce śródmiąższowych chorób płuc i obwodowych zmian w płucach - podejście krokowe

DOI:

10.3791/65753

⸱

21 lipca 2023

 ,  ,  ,  , 
1South Danish Center for Interstitial Lung Diseases (SCILS), Department of Respiratory Medicine, Odense University Hospital, 2Odense Respiratory Research Unit (ODIN), Department of Clinical Research, University of Southern Denmark, 3Department of Respiratory Diseases and Allergy, Aarhus University Hospital

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przezoskrzelowa kriobiopsja płuc (TBLC) do diagnozowania śródmiąższowej choroby płuc i obwodowych zmian w płucach jest wysoce wydajną i bezpieczną procedurą. Opisujemy stopniowe podejście do przeprowadzania TBLC dla różnych wymienionych wskazań za pomocą elastycznego bronchoskopu, który może być pomocny dla początkujących bronchoskopistów wykonujących TBLC.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przezoskrzelowa kriobiopsja płuc (TBLC) jest inwazyjną procedurą, coraz częściej wdrażaną w ciągu ostatniej dekady jako alternatywa dla wideo-wspomaganej chirurgii klatki piersiowej biopsji płuc (SLB) w diagnostyce śródmiąższowych chorób płuc (ILD). Wskazaniem do TBLC była przede wszystkim podklasyfikacja określonego podtypu ILD, gdy nie można tego osiągnąć na podstawie wcześniejszej wielodyscyplinarnej dyskusji zespołowej. Chociaż SLB jest uważany za złoty standard w ustalaniu diagnozy histologicznej, TBLC jest stopniowo sugerowany jako metoda diagnostyki histologicznej pierwszego wyboru u pacjentów z niesklasyfikowanymi ILD ze względu na porównywalną wydajność diagnostyczną z SLB, ale lepszą od SLB pod względem powikłań, w tym śmiertelności. W ostatnich latach ultrasonografia promieniowa wewnątrzoskrzelowa (R-EBUS) i bronchoskopia z nawigacją elektromagnetyczną (ENB) pod kontrolą TBLC w przypadku obwodowych zmian w płucach zostały również opisane jako bezpieczne procedury, które mogą poprawić wydajność diagnostyczną w porównaniu z biopsjami kleszczowymi. Mimo to właściwości diagnostyczne TBLC zależą od jakości wykonania zabiegu. Niniejszy artykuł ma na celu opisanie stopniowego podejścia do przeprowadzania TBLC za pomocą elastycznego bronchoskopu dla różnych wymienionych wskazań, co może być pomocne dla początkujących bronchoskopistów wykonujących TBLC.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Śródmiąższowe choroby płuc (ILD) stanowią grupę zarówno ostrych, jak i przewlekłych chorób płuc, które wpływają na jeden lub więcej wszystkich składników miąższu płuc tworzących śródmiąższ, takich jak oskrzela, pęcherzyki płucne, tkanka łączna oraz naczynia krwionośne i limfatyczne. Pomimo tego, że są chorobami rzadkimi, ponad 200 różnych podtypów ILD reprezentuje niejednorodną kategorię chorób o różnych cechach klinicznych, radiologicznych i cytohistologicznych. ILD zazwyczaj objawiają się stanem zapalnym, zwłóknieniem lub kombinacją obu, które są podstawowymi przyczynami typowych objawów odczuwanych przez pacjentów, takich jak suchy kaszel, duszność przy wysiłku i zmęczenie1,2.

ILD są klasyfikowane jako idiopatyczne śródmiąższowe zapalenie płuc (IIP), śródmiąższowe zapalenie płuc o znanej etiologii (np. choroba tkanki łącznej, śródmiąższowa choroba płuc, ILD wywołana lekiem i pylica płuc związana z pracą), ziarniniakowe zapalenie śródmiąższowe (np. sarkoidoza i nadwrażliwe zapalenie płuc) oraz sieroce ILD (np. mnogie torbielowate choroby płuc i eozynofilowe zapalenie płuc)1. Ta kategoryzacja i dalsze podtypy diagnostyczne mają fundamentalne znaczenie dla określenia optymalnego leczenia i obserwacji oraz umożliwiają prognozowanie. Ponieważ jednak zagadka diagnostyczna może być trudna, zalecana jest interpretacja dostępnych informacji klinicznych (w tym wywiadu, dyspozycji i potencjalnych ekspozycji) i paraklinicznych, takich jak tomografia komputerowa klatki piersiowej o wysokiej rozdzielczości (HRCT), fizjologia płuc i autoimmunologia uzyskana na podstawie wielodyscyplinarnej dyskusji zespołowej (MDD)3,4,5. Jeśli nie można uzyskać pewnej diagnozy MDD6,7, pobieranie próbek histologicznych w celu zwiększenia prawdopodobieństwa określonego rozpoznania podtypu ILD jest wskazane przez zastosowanie przezoskrzelowej kriobiopsji płuc (TBLC)8,9. U dobrze dobranych pacjentów TBLC jest uważany za bezpieczną procedurę inwazyjną o dokładności diagnostycznej zbliżonej do biopsji płuc w chirurgii klatki piersiowej wspomaganej wideo (SLB), która jest nadal uważana za histologiczny złoty standard w histologicznej diagnostyce ILD10,11,12,13,14. Zabieg TBLC jest wykonywany jako bronchoskopia systematyczna, przy użyciu specjalnych kriosond do pobierania próbek histologicznych i pod zalecaną kontrolą fluoroskopową. Zaleca się, aby TBLC był wykonywany w trzeciorzędowych ośrodkach ILD przy użyciu MDD oraz przez pulmonologów interwencyjnych zaznajomionych z leczeniem powikłań TBLC, którzy przeszli szkolenie w dedykowanym ośrodku z doświadczeniem TBLC9,10,11,15,16,17.

TBLC zyskało ostatnio na popularności jako procedura łączona z radialnym ultrasonografem wewnątrzoskrzelowym (R-EBUS) w diagnostyce ILD18,19. Ponadto TBLC połączono zarówno z R-EBUS, jak i bronchoskopią z nawigacją elektromagnetyczną (ENB) w celu diagnozowania obwodowych zmian w płucach (PPL) w celu poprawy wydajności diagnostycznej w porównaniu z konwencjonalnymi biopsjami kleszczowymi przezoskrzelowymi20,21. Jednak to stosunkowo nowatorskie podejście do diagnostyki PPL nie zostało jeszcze wdrożone jako standardowa procedura, a zatem wymaga dalszych dowodów w tej specyficznej dziedzinie. Celem niniejszego artykułu jest opisanie etapowego podejścia do przeprowadzania TBLC za pomocą elastycznego bronchoskopu w warunkach klinicznych dla wymienionych wskazań.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy pochodzą z dwóch duńskich ośrodków TBLC (Szpital Uniwersytecki w Odense i Szpital Uniwersytecki w Aarhus), które prowadzą badania zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej. Zgoda na badania etyczne nie była konieczna, ponieważ badanie miało charakter obserwacyjny. Wszyscy pacjenci włączeni do celów badawczych wyrazili pisemną świadomą zgodę. Należy podkreślić, że opisane krokowe podejście do przewodności TBLC odnosi się do stosowania elastycznego bronchoskopu i opiera się na połączeniu zaleceń międzynarodowych wytycznych, stwierdzeń ekspertów, najnowocześniejszych przeglądów i doświadczeń z dwóch ośrodków TBLC9,10,11,15,16,17,22,23,24,25.

1. Uwagi dotyczące preTBLC

  1. Upewnij się, że TBLC jest wskazany, co jest uzasadnione u pacjentów, u których integracja informacji z HRCT, biochemii i autoimmunologii w poprzedzającym MDD z udziałem pulmonologów i radiologów nie była w stanie ustalić pewnego rozpoznania ILD.
  2. Wybrać odpowiednich pacjentów, unikając przeciwwskazań opisanych w Tabeli 1.
Przeciwwskazania względneBezwzględne przeciwwskazania
Natężona pojemność życiowa (FVC) < 50% wartości przewidywanejMałopłytkowość < 50 x 109/L lub INR > 1,5
Zdolność dyfuzyjna tlenku węgla do płuc (DLCO) < 35% wartości przewidywanejNieskorygowana skaza krwotoczna
Skurczowe ciśnienie tętnicze płucne > 50 mmHg (np. oszacowanie na podstawie echokardiografii)Postępujący i kliniczny spadek spowodowany zwiększonym ryzykiem powikłań u pacjentów z upośledzoną czynnością płuc
Wskaźnik masy ciała > 35 kg/m2

Tabela 1: Przeciwwskazania do TBLC. Przeciwwskazania względne i bezwzględne do przewodności TBLC. Skrót: TBLC = przezoskrzelowa kriobiopsja płuc.

2. Przygotowanie do egzaminu PreTBLC

  1. Zapoznaj się z HRCT i sugestiami radiologa klatki piersiowej, aby zaplanować, z których odcinków oskrzeli (BS) próbka histologiczna jest najlepiej dostępna w zależności od objawów choroby radiologicznej.
  2. Sprawdź, czy system działa przed wydajnością TBLC.
    1. Naciśnij przycisk pojemności zbiornika gazu (dwutlenku węgla (CO2 ) lub podtlenku azotu (NO)) na panelu ustawień, aby sprawdzić objętość gazu w butli.
    2. Umieść kriosondę na tacy i obserwuj sondę, naciskając przełącznik nożny pedału przez 5-10 sekund. Poszukaj kuli lodu na końcu sondy, która będzie wskazywać, że działa prawidłowo (Rysunek 1).
  3. Stosuj znieczulenie ogólne (GA) lub głęboką sedację pod TBLC i rozważ premedykację kwasem traneksamowym 0,5-1 g, aby zmniejszyć ryzyko krwawienia.
  4. Umieść specjalną rurkę dotchawiczą z podwójnym światłem (ETT) o rozmiarze 7,5-8,5 mm w tchawicy.
    UWAGA: ETT ma główny kanał, który umożliwia dostęp do bronchoskopu, gdy pacjent jest wentylowany, i ma mniejszy kanał boczny, który służy jako kanał roboczy dla cewnika blokującego oskrzela.
    1. Spryskaj w sposób ciągły znieczuleniem miejscowym (np. lidokainą w sprayu 10%), aby zmniejszyć kaszel. Patrz także krok 3.5.

Wymaz mierzony linijką metryczną na turkusowej powierzchni, precyzyjne narzędzie do analizy wielkości pobierania próbek.
Rysunek 1: Kula lodowa jako wskaźnik użytecznego sprzętu TBLC. Pedał aktywuje dyfuzję gazu CO2 ze zbiornika i indukowane zamrażanie. Jest to testowane w wodzie, w której kula lodu pojawi się na końcu kriosondy, jeśli działa prawidłowo. Skrót: TBLC = przezoskrzelowa kriobiopsja płuc. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

3. Przewodność TBLC

  1. Wprowadzić elastyczny bronchoskop przez ETT i wykonać procedurę bronchoskopii.
    UWAGA: Sztywny bronchoskop jest używany w niektórych ośrodkach TBLC do intubacji tchawicy. Jeśli tchawica jest intubowana przez sztywny bronchoskop, elastyczny bronchoskop może być przepuszczony przez sztywny.
    1. Wprowadzić elastyczną kriosondę przez kanał roboczy bronchoskopu do wybranego BS.
      UWAGA: Kriosondy występują zarówno jako sondy jednorazowego użytku (1,1, 1,7 i 2,4 mm), jak i sondy wielokrotnego użytku (1,9 i 2,4 mm).
    2. Użyj fluoroskopii, aby upewnić się, że umieszczenie końcówki kriosondy znajduje się około 10 mm od ściany klatki piersiowej odpowiadającej wybranemu BS (Rysunek 2).
    3. Wprowadzić cewnik blokujący oskrzela (np. balon Fogarty'ego) do kanału bocznego podwójnego luminalnego ETT i umieścić go w wybranym ujściu BS (Rysunek 3).
      1. Napompuj cewnik blokujący oskrzela, aby ocenić prawidłowość umieszczenia i zablokowania potencjalnego krwawienia występującego dystalnie w stosunku do balonu (Rysunek 4).
      2. Opróżnij cewnik blokujący oskrzela, jeśli balon jest dobrze umieszczony.
      3. Zabezpiecz umieszczenie balonu, mocując cewnik blokujący oskrzela za pomocą groszka.
    4. Użyj niewielkich ilości lidokainy w sprayu lub soli fizjologicznej w odpowiednim ETT i jego kanale bocznym, aby zmniejszyć tarcie występujące w wyniku wprowadzenia kriosondy do ETT i cewnika balonowego w kanale bocznym ETT.
    5. Gdy kroki 3.1.1-3.1.3 zostaną wykonane w sposób zadowalający, naciśnij pedał zamrażania na 3-6 sekund, w zależności od rozmiaru kriosondy, aby wykorzystać prawo Joule'a-Thompsona do zamrożenia tkanki miąższowej płuc do około -45-79 °C dla CO2 i -89 °C dla NO.
    6. Cofnij elastyczny bronchoskop zawierający kriosondę jednym szybkim ruchem, przytrzymując pedał zamrażania, aby kontynuować zamrażanie i zapobiec wypadnięciu biopsji podczas wycofania.
    7. Podczas manewru opisanego w kroku 3.1.5 poproś osobę inną niż bronchoskopista, aby utrzymać balon napompowany, aby zablokować miejsce biopsji dystalne wybranego ujścia BS w celu kontrolowania potencjalnego krwawienia.
  2. Kontynuuj krok 3.1.6 aż do uzyskania co najmniej dwóch biopsji od dwóch BS z tego samego płata.
  3. Umieść biopsje w soli fizjologicznej, a gdy wszystkie biopsje zostaną uzyskane, utrwal je w formaldehydzie (4%) (Ryc. 5).
  4. Wyślij biopsje do badania patologicznego przed MDD.

Fluoroskopia struktury naczyniowej, obraz radiologiczny, pokazujący umieszczenie cewnika do użytku diagnostycznego.
Rysunek 2: Fluoroskopia. Fluoroskopia służy do zapewnienia prawidłowego umieszczenia kriosondy przed zamrożeniem. Końcówka kriosondy wygląda jak główka podudzia (grot strzałki). Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Proces intubacji medycznej z użyciem respiratora; Schemat przedstawiający konfigurację wspomagania oddychania.
Rysunek 3: Rurka dotchawicza. Rurka dotchawicza z podwójnym światłem (zielona strzałka) umożliwia dostęp do dróg oddechowych przez bronchoskop i jednocześnie kontroluje krwawienie poprzez wprowadzenie cewnika balonowego do kanału bocznego (czerwona strzałka). Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Zabieg chirurgii endoskopowej; wizualizacja oskrzelowej rurki i wprowadzenie narzędzia chirurgicznego.
Rysunek 4: Napompowanie cewnika balonowego. Napompowanie cewnika balonowego w celu zapewnienia zablokowania i zapobieżenia potencjalnemu krwawieniu dystalnemu dystalnemu balonu rozprowadzającemu się do innych części płata po wykonaniu przezoskrzelowej kriobiopsji płuc. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Wzrost kultury tkankowej na szalce Petriego z linijką; badanie proliferacji komórek i pomiaru.
Rysunek 5: Biopsje. Przezoskrzelowe kriobiopsje płuc umieszcza się w zimnej soli fizjologicznej przed utrwaleniem w formaldehydzie. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

4. Procedury PostTBLC

  1. Po każdej biopsji ponownie wprowadź bronchoskop do BS i opróżnij balon, aby zaobserwować, czy występuje krwawienie.
    1. Ponownie napompuj balon, jeśli zaobserwujesz krwawienie (Rysunek 6). Jeśli balon znajduje się we właściwej pozycji i blokuje BS, odczekaj kilka minut, aż krwawienie ustanie, a następnie kontynuuj procedurę TBLC.
    2. Jeśli po kroku 4.1.1 nadal obserwuje się krwawienie, zainstalować lodowatą sól fizjologiczną dystalnie na balonie.
    3. W przypadku utrzymującego się krwawienia po kroku 4.1.2 lub niewydolności balonu, w której krew rozlewa się do innych BS, należy zastosować kombinację odsysania, podawanego wewnątrzoskrzelowo lodowatego roztworu soli fizjologicznej z adrenaliną lub bez adrenaliny oraz kwasu traneksamowego.
    4. Jeśli zakrzepła krew blokuje drogi oddechowe, użyj kriosondy, aby ponownie otworzyć drogi oddechowe, zamrażając końcówkę kriosondy w skrzepie krwi i cofając ją przez ETT.
    5. Jeśli krwawienie pozostaje niekontrolowane, należy zmienić ETT na taki, który umożliwia zarówno wentylację płuca bez biopsji, jak i zablokowanie głównego oskrzela na krwawiącym płucu, a następnie przenieść pacjenta na oddział intensywnej terapii.
  2. Wykonaj skoncentrowane USG płuc (FLUS) po TBLC, gdy pacjent jest nadal w sedacji, aby zidentyfikować oznaki jatrogennej odmy opłucnowej (PTX).
    1. Rozważ wprowadzenie drenu opłucnowego sterowanego przez FLUS z cewnikiem warkoczowym (Fr 7-16), jeśli obserwacje FLUS wskazują na wysokie prawdopodobieństwo PTX. Drenaż opłucnej jest wskazany, jeśli FLUS wskazuje na szybko rosnący rozmiar PTX, a zwłaszcza jeśli stan kliniczny pacjenta
      2. pogarsza się.
    2. Odłóż ekstubację o 5-10 minut, jeśli FLUS ujawni mały PTX, a pacjent jest stabilny klinicznie. Jeśli rozmiar PTX postępuje w późniejszym czasie lub pacjent staje się niestabilny klinicznie, należy założyć drenaż opłucnowy przed ekstubacją.
  3. Ekstubować pacjenta po kroku 4.2 lub kroku 4.2.2, jeśli nie ma oznak PTX lub postępu rozmiaru PTX, a pacjent pozostaje klinicznie stabilny.
  4. Obserwuj pacjenta na sali pooperacyjnej po TBLC. Tuż przed tym, jak klinicznie stabilny pacjent wróci do domu, upewnij się, że PTX o późnym początku nie występuje ani przez powtarzający się FLUS, ani przez prześwietlenie klatki piersiowej.
  5. Omów prezentację histologicznych charakterystyk biopsji po MDD z pulmonologami, radiologami i patologami w połączeniu z innymi szczegółami, aby stwierdzić podtyp ILD o wysokim prawdopodobieństwie diagnostycznym.
  6. Poinformuj pacjenta o wnioskach dotyczących MDD z kroku 4.5 w przychodni i zaplanuj potencjalne leczenie i obserwację.

Obraz endoskopowy, przewód pokarmowy, badanie źródła krwawienia, proces badania lekarskiego.
Rysunek 6: Niewielkie krwawienie. Jeśli po wykonaniu przezoskrzelowej kriobiopsji płuc zaobserwuje się krwawienie, w tym przypadku niewielkie krwawienie, cewnik balonowy powinien być napompowany przez kilka minut przed ponowną próbą opróżnienia. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

5. TBLC w połączeniu z R-EBUS i ENB do diagnostyki PPL

  1. Nawiguj i potwierdź lokalizację obwodowej zmiany płucnej.
  2. Wprowadzić kriosondę 1,1 mm do rozszerzonego kanału roboczego pod kierunkiem fluoroskopii.
    1. Dopasuj końcówkę sondy zamrażającej do pozycji promieniowej sondy EBUS.
  3. Wciśnij pedał zamrażania na 4-8 sekund.
  4. Wsuń kriosondę przez przedłużony kanał roboczy jednym szybkim ruchem, przytrzymując pedał zamrażania, aby kontynuować zamrażanie i zapobiec wypadnięciu biopsji podczas wycofania.
    1. Utrzymuj bronchoskop i przedłużony kanał roboczy na miejscu, podczas gdy kriosonda jest schowana.
  5. Powtarzać kroki 5.2-5.4 aż do uzyskania wystarczającej liczby biopsji.
  6. Z biopsjami należy postępować zgodnie z opisem w krokach 3.3 i 3.4.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Na podstawie obserwacji autorów z dwóch ośrodków TBLC, opisana krok procedura dla TBLC z elastycznym bronchoskopem pozwoliła na pobranie próbek histologicznych u dobrze wyselekcjonowanych duńskich pacjentów z jeszcze niezdiagnozowanymi podtypami ILD, pomimo wcześniejszego MDD. Szczegółowe obserwacje z tych kohort zostały przedstawione w dwóch ostatnio opublikowanych badaniach23,25 oraz dla środka pierwszego autora podsumowane w Tabeli 2.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niezależnie od wskazań do TBLC, jego właściwości diagnostyczne zależą od jakości wykonania zabiegu oraz wybranych kryteriów poddania się zabiegowi. Podkreśla to zalecenie wdrożenia formalnego i certyfikowanego programu szkoleniowego w celu nabycia kompetencji wymaganych do przeprowadzenia ustandaryzowanej procedury TBLC. Pomimo faktu, że obecnie nie jest dostępna żadna oficjalna edukacja na temat TBLC, ostatnie wytyczne Europejskiego Towarzystwa Chorób Układu Oddechowego dotyczące TBLC dla ILD sugerują, że pulmonolodzy i...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy pragną podziękować personelowi z Oddziału Chirurgii Klatki Piersiowej i Anestezjologii na Oddziale Bronchoskopii w Szpitalu Uniwersyteckim w Odense, Dania, za pomoc w przygotowaniu rysunków do tego artykułu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

2

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
"Komin" do rurki
Adapter
gazu CO2Erbe
Kolumna
Rurka dotchawicza, rozmiar 7,5-8,5 mmpedałowy Erbe
ErbecryoErbe
Stacja robocza Erbecryo2 Erbe
Elastyczny bronchoskop
Elastyczny wąż gazowyMediland
Elastyczna jednorazowa kriosonda do jednorazowego użytku, OD 1,1 mmElastyczna
, OD 1,7 mmElastyczna
, OD 2,4 mm
Fluoroskop
balonowy Fogarty
Okulary formalinowe w systemie
NaCl w tym zimny NaCl
Pean do mocowania Balon
Sterylny kubek
Sterylna rurka
Sterylne pęsety
Strzykawka do pompowania/opróżniania
Torba stołowa na fluoroskop
Trzykierunkowy kran do strzykawki
Ssanie
UltrasonografErbe
Zawór do biopsji kanałowej
Zawór do kanału
butli gazowej CO zbiornik endoskopowa Przełącznik nożny jednorazowa kriosonda Erbe jednorazowa kriosonda ErbeCewnik zamkniętymFogartyjednorazowyssącabalonu Fogartybalonowej Fogartytchawicy ssącego

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Travis, W. D., et al. An official American Thoracic Society/European Respiratory Society statement: Update of the international multidisciplinary classification of the idiopathic interstitial pneumonias. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 188 (6), 733-748 (2013).
  2. Ruaro, B., et al. Editorial: Pulmonary fibrosis: One manifestation, various diseases. Frontiers in Pharmacology. 13, 1027332(2022).
  3. Lamas, D. J., et al. Delayed access and survival in idiopathic pulmonary fibrosis: a cohort study. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 184 (7), 842-847 (2011).
  4. Tomassetti, S., Piciucchi, S., Tantalocco, P., Dubini, A., Poletti, V. The multidisciplinary approach in the diagnosis of idiopathic pulmonary fibrosis: a patient case-based review. European Respiratory Review. 24 (135), 69-77 (2015).
  5. Walsh, S. L. F., et al. Multicentre evaluation of multidisciplinary team meeting agreement on diagnosis in diffuse parenchymal lung disease: a case-cohort study. Lancet Respiratory Medicine. 4 (7), 557-565 (2016).
  6. Ryerson, C. J., et al. A standardized diagnostic ontology for fibrotic interstitial lung disease. An International Working Group perspective. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 196 (10), 1249-1254 (2017).
  7. Cottin, V., et al. Integrating clinical probability into the diagnostic approach to idiopathic pulmonary fibrosis: An International Working Group perspective. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 206 (3), 247-259 (2022).
  8. Rodrigues, I., et al. Diagnostic yield and safety of transbronchial lung cryobiopsy and surgical lung biopsy in interstitial lung diseases: a systematic review and meta-analysis. European Respiratory Review. 31 (166), 210280(2022).
  9. Korevaar, D. A., et al. European Respiratory Society guidelines on transbronchial lung cryobiopsy in the diagnosis of interstitial lung diseases. European Respiratory Journal. 60 (5), 2200425(2022).
  10. Colella, S., Haentschel, M., Shah, P., Poletti, V., Hetzel, J. Transbronchial lung cryobiopsy in interstitial lung diseases: best practice. Respiration. 95 (6), 383-391 (2018).
  11. Hetzel, J., et al. Transbronchial cryobiopsies for the diagnosis of diffuse parenchymal lung diseases: expert statement from the Cryobiopsy Working Group on safety and utility and a call for standardization of the procedure. Respiration. 95 (3), 188-200 (2018).
  12. Ravaglia, C., Poletti, V. Transbronchial lung cryobiopsy for the diagnosis of interstitial lung diseases. Current Opinion in Pulmonary Medicine. 28 (1), 9-16 (2022).
  13. Troy, L. K., et al. Diagnostic accuracy of transbronchial lung cryobiopsy for interstitial lung disease diagnosis (COLDICE): a prospective, comparative study. Lancet Respiratory Medicine. 8 (2), 171-181 (2020).
  14. Ruaro, B., et al. Transbronchial lung cryobiopsy and pulmonary fibrosis: A never-ending story. Heliyon. 9 (4), e14768(2023).
  15. Lentz, R. J., Argento, A. C., Colby, T. V., Rickman, O. B., Maldonado, F. Transbronchial cryobiopsy for diffuse parenchymal lung disease: a state-of-the-art review of procedural techniques, current evidence, and future challenges. Journal of Thoracis Disease. 9 (7), 2186-2203 (2017).
  16. Maldonado, F., et al. Transbronchial cryobiopsy for the diagnosis of interstitial lung diseases: CHEST Guideline and Expert Panel Report. Chest. 157 (4), 1030-1042 (2020).
  17. Avasarala, S. K., Wells, A. U., Colby, T. V., Maldonado, F. Transbronchial cryobiopsy in interstitial lung diseases: State-of-the-art review for the interventional pulmonologist. Journal of Bronchology Interventional Pulmonology. 28 (1), 81-92 (2021).
  18. Abdelghani, R., Thakore, S., Kaphle, U., Lasky, J. A., Kheir, F. Radial Endobronchial Ultrasound-guided Transbronchial Cryobiopsy. Journal of Bronchology Interventional Pulmonology. 26 (4), 245-249 (2019).
  19. Inomata, M., et al. Utility of radial endobronchial ultrasonography combined with transbronchial lung cryobiopsy in patients with diffuse parenchymal lung diseases: a multicentre prospective study. BMJ Open Respiratory Research. 8 (1), e000826(2021).
  20. Benn, B. S., Gmehlin, C. G., Kurman, J. S., Doan, J. Does transbronchial lung cryobiopsy improve diagnostic yield of digital tomosynthesis-assisted electromagnetic navigation guided bronchoscopic biopsy of pulmonary nodules? A pilot study. Respiratory Medicine. 202, 106966(2022).
  21. Ankudavicius, V., Miliauskas, S., Poskiene, L., Vajauskas, D., Zemaitis, M. Diagnostic yield of transbronchial cryobiopsy guided by radial endobronchial ultrasound and fluoroscopy in the radiologically suspected lung cancer: A single institution prospective study. Cancers. 14 (6), 1563(2022).
  22. Ravaglia, C., et al. Transbronchial lung cryobiopsy in diffuse parenchymal lung disease: Comparison between biopsy from 1 segment and biopsy from 2 segments - diagnostic yield and complications. Respiration. 93 (4), 285-292 (2017).
  23. Davidsen, J. R., Skov, I. R., Louw, I. G., Laursen, C. B. Implementation of transbronchial lung cryobiopsy in a tertiary referral center for interstitial lung diseases: a cohort study on diagnostic yield, complications, and learning curves. BMC Pulmonary Medicine. 21 (1), 67(2021).
  24. Laursen, C. B., et al. Lung ultrasound assessment for pneumothorax following transbronchial lung cryobiopsy. ERJ Open Research. 7 (3), 00045-2021 (2021).
  25. Kronborg-White, S., et al. Integration of cryobiopsies for interstitial lung disease diagnosis is a valid and safe diagnostic strategy-experiences based on 250 biopsy procedures. Journal of Thoracic Disease. 13 (3), 1455-1465 (2021).
  26. Barisione, E., et al. Competence in transbronchial cryobiopsy. Panminerva Medica. 61 (3), 290-297 (2019).
  27. Raghu, G., et al. Idiopathic pulmonary fibrosis (an update) and progressive pulmonary fibrosis in adults: An Official ATS/ERS/JRS/ALAT Clinical Practice Guideline. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 205 (9), e18-e47 (2022).
  28. Ravaglia, C., et al. Diagnostic yield and risk/benefit analysis of trans-bronchial lung cryobiopsy in diffuse parenchymal lung diseases: a large cohort of 699 patients. BMC Pulmonary Medicine. 19 (1), 16(2019).
  29. Hernandez-Gonzalez, F., et al. Cryobiopsy in the diagnosis of diffuse interstitial lung disease: yield and cost-effectiveness analysis. Archivos de Bronconeumología. 51 (6), 261-267 (2015).
  30. Cooley, J., et al. Safety of performing transbronchial lung cryobiopsy on hospitalized patients with interstitial lung disease. Respiratory Medicine. 140, 71-76 (2018).
  31. Hetzel, J., et al. Transbronchial cryobiopsy increases diagnostic confidence in interstitial lung disease: a prospective multicenter trial. European Respiratory Journal. 56 (6), 1901520(2020).
  32. Kheir, F., et al. Transbronchial lung cryobiopsy in patients with interstitial lung disease: a systematic review. Annals of the American Thoracic Society. 19 (7), 1193-1202 (2022).
  33. Walscher, J., et al. Transbronchial cryobiopsies for diagnosing interstitial lung disease: real-life experience from a tertiary referral center for interstitial lung disease. Respiration. 97 (4), 348-354 (2019).
  34. Gnass, M., et al. Transbronchial lung cryobiopsy guided by radial mini-probe endobronchial ultrasound in interstitial lung diseases - a multicenter prospective study. Advances in Respiratory Medicine. 88 (2), 123-128 (2020).
  35. Ma, X., et al. Global and regional burden of interstitial lung disease and pulmonary sarcoidosis from 1990 to 2019: results from the Global Burden of Disease study 2019. Thorax. 77 (6), 596-605 (2022).
  36. Kronborg-White, S., et al. A pilot study on the use of the super dimension navigation system for optimal cryobiopsy location in interstitial lung disease diagnostics. Pulmonology. 29 (2), 119-123 (2021).
  37. Wijmans, L., et al. Confocal laser endomicroscopy as a guidance tool for transbronchial lung cryobiopsies in interstitial lung disorder. Respiration. 97 (3), 259-263 (2019).
  38. Kheir, F., et al. Using bronchoscopic lung cryobiopsy and a genomic classifier in the multidisciplinary diagnosis of diffuse interstitial lung diseases. Chest. 158 (5), 2015-2025 (2020).
  39. Renzoni, E. A., Poletti, V., Mackintosh, J. A. Disease pathology in fibrotic interstitial lung disease: is it all about usual interstitial pneumonia. Lancet. 398 (10309), 1437-1449 (2021).
  40. Chaudhary, S., et al. Interstitial lung disease progression after genomic usual interstitial pneumonia testing. European Respiratory Journal. 61 (4), 2201245(2023).
  41. Raghu, G., et al. Use of a molecular classifier to identify usual interstitial pneumonia in conventional transbronchial lung biopsy samples: a prospective validation study. Lancet Respiratory Medicine. 7 (6), 487-496 (2019).
  42. Kheir, F., et al. Use of a genomic classifier in patients with interstitial lung disease: a systematic review and meta-analysis. Annals of American Thoracic Society. 19 (5), 827-832 (2022).
  43. Glenn, L. M., Troy, L. K., Corte, T. J. Novel diagnostic techniques in interstitial lung disease. Frontiers in Medicine. 10, 1174443(2023).
  44. Kim, S. H., et al. The additive impact of transbronchial cryobiopsy using a 1.1-mm diameter cryoprobe on conventional biopsy for peripheral lung nodules. Cancer Research and Treatment. 55 (2), 506-512 (2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Elastyczny bronchoskoptorakotomia wideochirurgicznaradialny ultrasonograf endobronchialnyelektromagnetyczna nawigacyjna bronchoskopiabiopsje kleszczykowymidiagnoza histopatologiczna
Film wkrótce dostępny

Powiązane artykuły