Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Stopniowe podejście do wykonywania przezklatkowej biopsji płuc pod kontrolą USG

1.9K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65769

⸱

3 listopada 2023

 ,  , 
1Department of Respiratory Medicine, Odense University Hospital, 2Odense Respiratory Research Unit (ODIN), Department of Clinical Research, University of Southern Denmark, 3Respiratory Medicine Department, North Bristol NHS Trust, Southmead Hospital, 4Academic Respiratory Unit, University of Bristol

W tym artykule

Podsumowanie

Biopsja płuc pod kontrolą USG przezklatkowego stanowi bezpieczne, opłacalne i skuteczne podejście dla pacjentów z podostrzowymi zmianami w płucach podejrzanymi o złośliwość. Stosowanie systematycznego, krok po kroku procesu ma kluczowe znaczenie dla osiągnięcia optymalnej selekcji pacjentów, zminimalizowania ryzyka powikłań i maksymalizacji dokładności diagnostycznej.

Streszczenie

Diagnozowanie pacjentów z radiologicznymi zmianami w płucach, szczególnie tych podejrzanych o pierwotnego raka płuc, jest powszechnym i krytycznym scenariuszem klinicznym. Wybierając najbardziej odpowiednią procedurę inwazyjną w celu postawienia diagnozy w takich przypadkach, należy zachować delikatną równowagę między osiągnięciem wysokiej wydajności diagnostycznej, dostarczeniem informacji o stopniu zaawansowania, zminimalizowaniem potencjalnych powikłań, poprawą doświadczenia pacjenta i kontrolą kosztów. Włączenie ultrasonografii klatki piersiowej jako rutynowego narzędzia klinicznego w medycynie układu oddechowego doprowadziło do zwiększenia świadomości i wykorzystania technik inwazyjnych pod kontrolą ultradźwięków w zabiegach klatki piersiowej, w tym biopsji przezklatkowych. Dzięki systematycznemu i stopniowemu podejściu, przezklatkowa biopsja płuc pod kontrolą USG staje się bezpieczną, opłacalną procedurą o niezwykłej dokładności diagnostycznej. Te cechy łącznie pozycjonują ją jako idealną technikę inwazyjną, gdy jest to technicznie wykonalne. W związku z tym u pacjentów z podospłucnowymi zmianami w płucach podejrzanymi o złośliwość, przezklatkowa biopsja płuc pod kontrolą USG stała się standardową procedurą w dziedzinie nowoczesnej pulmonologii inwazyjnej.

Wprowadzenie

Ustalenie diagnozy u pacjentów z radiologicznymi zmianami w płucach jest kluczowe, szczególnie gdy podejrzewa się złośliwość. Pobieranie próbek tkanek jest niezbędne do potwierdzenia nowotworu złośliwego, uzyskania dodatkowych informacji, takich jak genotypowanie i ocena stopnia zaawansowania, oraz diagnozowania niezłośliwych zmian w płucach (np. infekcji lub zapalenia naczyń)1,2.

Kilka inwazyjnych procedur jest dostępnych do pobierania próbek tkanek u pacjentów ze zmianami w płucach, w tym konwencjonalna bronchoskopia, bronchoskopia uzupełniona promieniowym ultrasonografem wewnątrzoskrzelowym (REBUS), bronchoskopia nawigacji elektromagnetycznej (ENB), ultrasonografia wewnątrzoskrzelowa (EBUS), ultrasonografia endoskopowa (EUS), biopsja przezklatkowa pod kontrolą tomografii komputerowej (CT-TTNB) i biopsja chirurgiczna3,4,5,6. Wybór optymalnej procedury wymaga zrównoważenia takich czynników, jak wydajność diagnostyczna, ryzyko powikłań, komfort pacjenta i alokacja zasobów3.

Większość z tych technik ma ograniczenia. Na przykład konwencjonalna bronchoskopia jest mniej skuteczna w przypadku zmian obwodowych, CT-TTB niesie ze sobą większe ryzyko powikłań (zwłaszcza odmy opłucnowej), a procedury takie jak ENB i biopsja chirurgiczna mogą być kosztowne4,6,7.

8,9. Ponadto sprzęt ultrasonograficzny jest obecnie szerzej dostępny, a szkolenie TUS jest coraz bardziej sformalizowane i staje się bardziej dostępne dla klinicystów na wcześniejszym etapie9,10,11,12,13,14,15,16.

US-TTNB niesie ze sobą kilka potencjalnych korzyści. Wskaźniki powikłań i koszty związane z procedurą są niskie, a wydajność diagnostyczna pozostaje porównywalna z innymi podejściami, zwłaszcza CT-TTB17,18,19,18,19,20,21. Jego głównym ograniczeniem jest jednak jego przydatność tylko dla ograniczonej części zmian w płucach, które można odpowiednio zobrazować za pomocą TUS. Dlatego nie można go stosować w przypadku zmian, które nie stykają się z opłucną ciemieniową przy ścianie klatki piersiowej, takich jak każdy guz centralny; zmiany za strukturami nieprzepuszczalnymi dla fal ultradźwiękowych, takimi jak łopatka; lub zmiany o znaczącej zawartości powietrza, które również nie przepuszczają ultradźwięków, takie jak zmętnienia "szlifowanego szkła" widoczne na CT8,9,17,18,19,20,22,21,22, 23,24,25,26. US-TTNB nie jest również w stanie ostatecznie ocenić stadium N raka płuc, co oznacza, że w niektórych przypadkach procedura musi być połączona z inną inwazyjną procedurą, aby zapewnić pełny obraz1,2.

Mimo to, US-TTNB pozostaje ważnym i coraz częściej używanym narzędziem pierwszej linii w nowoczesnej inwazyjnej praktyce pulmonologicznej u wybranych pacjentów z podejrzeniem złośliwych zmian w płucach9,18.

Wskazania i przeciwwskazania
US-TTNB jest wskazany, gdy spełnione są wszystkie następujące kryteria: (1) konsolidacja płuc podopłucnowa, którą można uwidocznić za pomocą USG klatki piersiowej; (2) klinicznie uzasadniona biopsja tkanki płucnej (np. w celu ustalenia diagnozy, uzyskania materiału do dodatkowych analiz diagnostycznych). US-TTNB nie należy wykonywać, gdy spełnione jest co najmniej jedno z następujących kryteriów: (1) jawna przewlekła lub ostra niewydolność oddechowa; (2) skazy krwotoczne; (3) trwające leczenie lekami przeciwzakrzepowymi lub inhibitorami agregacji płytek krwi; (4) inna inwazyjna metoda pobierania próbek tkanek może ustalić diagnozę i jednocześnie zapewnić stopień zaawansowania N lub M (np. EBUS/EUS-B u pacjentów z podejrzeniem raka płuc i podejrzeniem zajęcia węzłów chłonnych śródpiersia).

Należy jednak zauważyć, że wymienione przeciwwskazania są na ogół względne. Lekarz, w porozumieniu z pacjentem, powinien rozważyć kliniczne konsekwencje uzyskania biopsji za pomocą US-TTNB i zrównoważyć je z ryzykiem powikłań i innymi potencjalnymi metodami inwazyjnymi lub diagnostycznymi, które można by wykonać zamiast US-TTNB.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Opisany poniżej protokół jest zgodny z wytycznymi Szpitala Uniwersyteckiego w Odense, Odense, Dania oraz Uniwersytetu Południowej Danii, Odense, Dania. Opisany poniżej protokół krokowy stanowi potencjalne, systematyczne podejście dla typowego pacjenta z podejrzeniem raka płuc, u którego US-TTNB wykonano w warunkach ambulatoryjnych lub dziennych. Uzyskano świadomą pisemną zgodę pacjenta. Wzięliśmy pod uwagę aktualną praktykę kliniczną w instytucjach autorów, a także opisy z wcześniej opublikowanych artykułów9,13,17,26, i staraliśmy się osiągnąć równowagę między prawdopodobnym sukcesem diagnostycznym, kosztami i doświadczeniem pacjenta, jak opisano we wstępie. Podejście to może jednak i powinno być modyfikowane zgodnie z lokalnymi różnicami w dostępnym sprzęcie, warunkach klinicznych, preferencjach pacjenta i specyficznych wymaganiach dotyczących uzyskanego materiału biopsyjnego, w tym w przypadku podejrzenia zmiany niezłośliwej. Każdy US-TTB powinien być również wykonywany zgodnie z istniejącymi lokalnymi, krajowymi i międzynarodowymi wytycznymi i standardami, w stosownych przypadkach. Protokół zależy od tego, czy jest jeden lekarz, który jest przeszkolony i kompetentny w wykonywaniu US-TTNB oraz jeden asystent, taki jak pielęgniarka zabiegowa. Obaj powinni mieć wystarczające doświadczenie w zabiegu i powinni mieć pewność co do postępowania w przypadku ewentualnych ostrych powikłań.

1. Przedzabiegowa ocena dostępnych informacji klinicznych i obrazowania

  1. Przed wykonaniem zabiegu i poinformowaniem pacjenta należy ocenić dostępne informacje kliniczne, aby upewnić się, że zabieg jest wskazany i klinicznie istotny.
  2. Upewnij się, że nie ma bezwzględnych przeciwwskazań do wykonania zabiegu, takich jak nieskorygowana krzepliwość, jawna niewydolność oddechowa, znane alergie na leki wymagane do zabiegu lub pacjent, który nie jest w stanie współpracować przy zabiegu.
  3. Oceń obecność wszelkich względnych przeciwwskazań, a jeśli takie występują, upewnij się, że potencjalny wpływ kliniczny wykonania zabiegu przewyższa związane z nim ryzyko. Względne przeciwwskazania mogą obejmować obniżoną FEV1, stosowanie niektórych leków przeciwpłytkowych lub podstawową chorobę płuc.
  4. Przejrzyj dostępne obrazowanie przekrojowe, zwłaszcza CT i pozytonową tomografię emisyjną (PET), jeśli jest dostępne. Upewnij się, że docelowa zmiana ma kontakt z opłucną trzewną, znajduje się w miejscu, które może być dostępne za pomocą TUS i można do niego dotrzeć za pomocą igły do biopsji.1
    UWAGA: W razie potrzeby należy również rozważyć, które zmiany należy poddać biopsji i czy określone obszary wybranych zmian (np. obszary niemartwicze) powinny być traktowane priorytetowo.

2. Przedproceduralna kontrola sprzętu

  1. Upewnij się, że cały sprzęt potrzebny do przeprowadzenia zabiegu (patrz tabela materiałów) jest dostępny w sali zabiegowej, a w razie potrzeby części zamienne.
  2. Upewnij się, że sprzęt potrzebny do radzenia sobie z ostrymi powikłaniami, zwłaszcza odmą opłucnową, silnym bólem i krwawieniem, jest łatwo dostępny na sali zabiegowej i w pełni sprawny.
  3. Włącz urządzenie amerykańskie i upewnij się, że odpowiednie przetworniki są dostępne i w pełni sprawne (patrz Tabela materiałów).

3. Sprawdzenie i wyrażenie zgody na pacjenta

  1. Upewnij się, że jest to właściwy pacjent do danego zabiegu i że odpowiednie materiały (np. karta pacjenta, obrazowanie) i etykiety również są poprawne. W niektórych ośrodkach może być wymagana lista kontrolna przed procedurą, w zależności od lokalnych i krajowych wytycznych27.
  2. Przekaż pacjentowi (i/lub pełnomocnikowi, jeśli jest to wymagane) ustne i pisemne informacje dotyczące procedury US-TTNB, obejmujące poszczególne kroki przed, w trakcie i po zabiegu.
  3. Przekaż również ustne i pisemne informacje dotyczące najczęstszych (np. miejscowy ból po zabiegu) i rzadkich, ale poważnych powikłań (np. odma opłucnowa, odma opłucnowa).
  4. Upewnij się, że nie ma odpowiednich alergii na jakiekolwiek leki/materiały używane podczas zabiegu.
  5. Udokumentuj pisemną świadomą zgodę pacjenta na zabieg (i/lub pełnomocnika, jeśli to konieczne).

4. Ułożenie pacjenta

  1. Użyj wybranego miejsca biopsji (patrz krok 1.4), aby określić optymalne ułożenie pacjenta do zabiegu.
    UWAGA: Ogólnie rzecz biorąc, w przypadku zmian zlokalizowanych z przodu lub przednio-bocznie wybiera się pozycję leżącą. Pacjenta można ułożyć na boku, z hemitorax do biopsji skierowanym do góry, w przypadku zmian zlokalizowanych z tyłu lub z tyłu z boku.
  2. Oceń, czy pacjent będzie w stanie leżeć i utrzymywać pozycję uznaną za optymalną dla procedury US-TTNB (patrz krok 1.4) przez co najmniej 30 min.
    UWAGA: Jeśli odpowiedź na krok 4.2 brzmi tak, umieść pacjenta w podanej pozycji. Jeśli odpowiedź brzmi "nie", należy ułożyć pacjenta w innej pozycji (np. siedzącej), zakładając, że nadal istnieje pozycja akceptowalna do zabiegu z perspektywy operatora i pacjenta. Jeśli utrzymanie pozycji nadal nie jest możliwe, rozważ alternatywne rozwiązania w celu zapewnienia komfortu pacjenta (np. dożylne podanie opioidów w przypadku miejscowego bólu w danej pozycji). Czasami może być konieczne przejście na alternatywną modalność, taką jak CT-TTNB (Rysunek 1).

5. USG klatki piersiowej przed zabiegiem

  1. Wprowadź identyfikator pacjenta do aparatu ultrasonograficznego, aby umożliwić przechowywanie obrazów/klipów USG, które powinny być często zapisywane podczas zabiegu.
  2. Wybierz optymalny przetwornik w oparciu o umiejscowienie i rozmiar zmiany. Ogólnie rzecz biorąc, optymalny jest zakrzywiony przetwornik o niskiej częstotliwości (brzuszny). Przetwornik liniowy o wyższej częstotliwości jest alternatywą dla bardzo szczupłych pacjentów i/lub z bardzo małymi zmianami.
  3. Wybierz ogólne ustawienie wstępne dla jamy brzusznej lub płuc.
  4. Zidentyfikuj docelową zmianę za pomocą konwencjonalnego US 2D i zoptymalizuj jakość i pozycję obrazu w USA za pomocą głębokości, wzmocnienia i ostrości.
  5. Oceń docelową zmianę za pomocą prostej metody "eye-balling" i określ: (1) wygląd (np. hipo/hiperechoiczny, wzór mieszany), (2) jego rozgraniczenie (np. dobrze/rozlany kierunek), (3) oznaki oczywistego wzrostu inwazyjnego (np. widoczny wzrost w ścianie klatki piersiowej) oraz (4) pośrednie oznaki możliwego wzrostu inwazyjnego (np. brak ślizgania się płuc bez widocznego wzrostu inwazyjnego)9 (Rysunek 2).
  6. Zmierz docelową zmianę w co najmniej dwóch płaszczyznach i zmierz długość kontaktu opłucnowego (Rysunek 2).
  7. Wykonaj dodatkową kolorową ocenę dopplerowską docelowej zmiany i bardziej powierzchownie położonych struktur (np. ściany klatki piersiowej) i zwróć uwagę na obecność: (1) objawów neowaskularyzacji, (2) większych naczyń (np. tętnic międzyżebrowych), których należy unikać podczas procedury biopsji9,13.
  8. Przeprowadź ukierunkowaną ocenę dotkniętego połowicza, aby ustalić, czy przed zabiegiem biopsji występuje przesuwanie się płuc, wysięk opłucnowy lub inna oczywista patologia.
  9. Na podstawie kroków 1.4 i 5.5-5.7 wybierz obszar w obrębie docelowej zmiany do biopsji.
  10. Skorzystaj z systemu naprowadzania do biopsji w maszynie amerykańskiej, aby pomóc w wyborze optymalnego kąta igły. Zwróć uwagę na prawdopodobny bezpieczny rozmiar biopsji (większość igieł tnących jest dostarczana z opcją biopsji o długości 2 cm lub 1 cm, przy czym ta ostatnia jest bardziej odpowiednia w przypadku mniejszych zmian lub tych przylegających do ważnych struktur).
  11. Potwierdź ponownie optymalizację obrazu po wybraniu optymalnego kąta biopsji.
  12. Zamocuj głowicę (patrz Tabela materiałów) w optymalnej pozycji do wykonania biopsji i zaznacz umiejscowienie na skórze pacjenta.
  13. Jeśli zmiana porusza się synchronicznie z oddechem pacjenta, należy poprosić pacjenta o wstrzymanie oddechu, aby upewnić się, że pacjent może wstrzymać oddech na wystarczająco długi czas, aby uzyskać biopsję (około 10-20 s).

6. Monitorowanie i bezpieczeństwo pacjenta

  1. Pacjent należy podłączyć do systemu monitorowania fizjologicznego (patrz tabela materiałów), aby zazwyczaj umożliwić ciągłą lub regularną ocenę: (1) saturacji, (2) pulsu, w tym EKG, oraz (3) ciśnienia krwi.
  2. Wprowadzić i przepłukać cewnik do żył obwodowych (zwykle o minimalnym rozmiarze 20 G).

7. Przygotowanie sprzętu do biopsji

  1. Przymocuj system naprowadzania do biopsji do głowicy wybranej do zabiegu. Ustaw kąt systemu naprowadzania biopsji tak, aby odpowiadał kątowi poprzednio wybranemu w urządzeniu amerykańskim (krok 5.10).
  2. Nałóż żel ultradźwiękowy (patrz Tabela materiałów) na głowicę i zabezpiecz go w "uchwycie przetwornika" na maszynie amerykańskiej.
  3. Przygotuj sterylny wózek i ułóż sprzęt niezbędny do procedury biopsji (Ryc. 3).
  4. Upewnij się, że operator nosi sterylne rękawice (z fartuchem lub bez).
  5. Dwukrotnie zdezynfekuj obszar biopsji i otaczający go obszar skóry.
  6. Przymocuj serwetę chirurgiczną (patrz Tabela materiałów) z otworem do skóry pacjenta, używając znaku wykonanego w kroku 5.11 jako wskazówki.
    UWAGA: Jeśli operator zdecyduje się nie używać obłożenia chirurgicznego, zdezynfekuj większy obszar i umieść serwetę poniżej miejsca biopsji, aby upewnić się, że wszelkie drobne krwawienia skórne z miejsca biopsji zostały powstrzymane.
  7. Pobrać odpowiednią objętość środka znieczulającego miejscowo (np. 20 ml 1% lidokainy, patrz tabela materiałów) do strzykawki. Należy upewnić się, że ilość środka znieczulającego miejscowo podanego pacjentowi nie przekracza maksymalnej dawki zalecanej dla jego wagi. Podłączyć igłę podskórną 21 G do strzykawki.
    UWAGA: Optymalna długość igły 21 G zależy od długości drogi igły od skóry do obszaru biopsji. U większości pacjentów optymalna jest długość 10 cm.
  8. Otwórz sterylny zestaw do biopsji głowicy USG (patrz tabela materiałów) i umieść jego zawartość na sterylnym mobilnym stole.
  9. Z pomocą umieść sterylną osłonę przetwornika nad przetwornikiem, upewniając się, że wcześniej nałożony żel US jest równomiernie rozprowadzony między "śladem" przetwornika a sterylną osłoną.
  10. Umieść dwie elastyczne opaski ze sterylnego zestawu do biopsji u podstawy przetwornika, aby zapewnić dokładne dopasowanie między przetwornikiem a osłoną przetwornika, bez zatrzymywania znacznego powietrza pod osłoną.
  11. Przymocuj plastikowy uchwyt ze sterylnego zestawu do biopsji głowicy amerykańskiej zarówno do głowicy amerykańskiej, jak i do amerykańskiego systemu naprowadzania do biopsji.
  12. Włóż adapter igły 21 G do plastikowego uchwytu systemu prowadnic biopsyjnych głowicy amerykańskiej.
  13. Nałóż sterylny żel ze sterylnego zestawu do biopsji na głowicę.

8. Wstrzyknięcie środków znieczulających miejscowo

  1. Ustaw głowicę w wcześniej wybranym optymalnym obszarze do wykonania biopsji i upewnij się, że wybrany kąt igły jest optymalnie umieszczony w stosunku do wybranego obszaru biopsji. Zabezpiecz przetwornik ręką trzymającą go, aby zapewnić pełną stabilność podczas wstrzykiwania znieczulenia miejscowego.
  2. Wziąć strzykawkę ze środkiem znieczulającym miejscowo i umieścić ją w systemie naprowadzania biopsji bez wsuwania jej w skórę pacjenta. Upewnij się, że strzykawka jest umieszczona w taki sposób, aby końcówka igły była wyrównana równolegle do powierzchni styku głowicy.
    UWAGA: Maksymalizuje to powierzchnię końcówki igły widoczną na ekranie ultrasonograficznym, co pozwala na optymalną wizualizację.
  3. Poinformuj pacjenta, że zostanie zastosowane znieczulenie miejscowe i podkreśl znaczenie pozostania w bezruchu, nawet jeśli aplikacja powoduje dyskomfort.
  4. Powoli wprowadzić strzykawkę ze środkiem znieczulającym miejscowo do skóry i tkanki podskórnej (Rysunek 4).
    UWAGA: Robiąc to, upewnij się, że: (1) ciągła wizualizacja końcówki igły na ekranie USG, (2) aspiracja przed wstrzyknięciem w celu potwierdzenia, że znieczulenie miejscowe nie jest wstrzykiwane do naczynia krwionośnego, (3) skoncentruj się na zastosowaniu większości znieczulenia miejscowego w obszarze podskórnym tuż pod skórą i w obszarze tuż powierzchownym do opłucnej ciemieniowej, ponieważ te obszary są najbardziej wrażliwe (Rysunek 5).
  5. Po podaniu znieczulenia miejscowego powoli odjąć i wyjąć strzykawkę.
  6. Przed przystąpieniem do dalszych czynności należy zdjąć głowicę ze skóry pacjenta i odczekać co najmniej 3 minuty, aby zapewnić pełny efekt znieczulenia miejscowego.

9. Procedura biopsji

  1. Wyjmij adapter igły 21 G z plastikowego uchwytu systemu prowadnicy do biopsji głowicy amerykańskiej i włóż zamiast niego adapter igły 18 G.
  2. Przygotuj igłę do biopsji grubiówkowej, upewniając się, że sprężyna igły do biopsji może zostać "załadowana", "wystrzelona" bez nadmiernej siły i poinformuj pacjenta, że dźwięk generowany podczas "wystrzeliwania" igły do biopsji jest normalny.
  3. "Załadować" igłę do biopsji gruboigłowy na z góry określoną długość biopsji (zwykle 1 lub 2 cm), jak określono w kroku 5.9.
  4. Za pomocą skalpela wykonaj małe kilkumilimetrowe nacięcie w skórze odpowiadające otworowi pozostawionemu przez igłę po zastosowaniu znieczulenia miejscowego. Jeśli nacięcie jest bolesne, odczekaj dodatkowe 2 minuty, a następnie ponownie przetestuj ostrzem skalpela. Jeśli ból nadal występuje, wróć do kroku 8.2 i zastosuj dodatkowe znieczulenie miejscowe, uważając, aby nie przekroczyć maksymalnej zalecanej dawki.
  5. Weź igłę do biopsji grubioriowej i umieść ją w systemie naprowadzania biopsji bez wsuwania jej w skórę pacjenta.
  6. Umieść głowicę z zamontowaną igłą do biopsji gruboioricznej na skórze pacjenta w miejscu biopsji.
  7. Wbij końcówkę igły do biopsji gruboiowej na kilka milimetrów w wcześniej wykonany otwór w skórze za pomocą skalpela.
  8. Ostrożnie wyreguluj kąt i obrót głowicy, zachowując dobry kontakt ze skórą, aby zapewnić: (1) optymalną jakość obrazu na całej długości ścieżki igły/biopsji oraz (2) optymalne umiejscowienie ścieżki biopsji w stosunku do obszaru biopsji i unikanie ważnych struktur i żeber. Po znalezieniu optymalnej pozycji zabezpiecz przetwornik ręką.
  9. Drugą ręką stopniowo przesuwaj igłę do biopsji gruboigłowej, ściśle monitorując postęp końcówki igły na ekranie USG (Rycina 6).
    UWAGA: Po umieszczeniu końcówki igły tylko powierzchownie w opłucnej ciemieniowej, kolejne kroki będą zależeć od tego, czy zmiana w płucach porusza się synchronicznie z oddechem pacjenta, czy też jest przymocowana do ściany klatki piersiowej.
  10. Poproś pacjenta o wstrzymanie oddechu, gdy docelowa zmiana jest optymalnie ustawiona w stosunku do ścieżki biopsji. Gdy pacjent wstrzymuje oddech, przejdź do kroku 9.11. Należy pamiętać, że czas wykonania kroków od 9.11 do 9.13 powinien być zminimalizowany, aby uniknąć przypadkowego ruchu oddechowego zmiany podczas wprowadzania igły do biopsji.
  11. Przesuń końcówkę igły do biopsji przez opłucną, aż końcówka znajdzie się tuż obok "obszaru docelowego biopsji" na ścieżce igły.
  12. Przesunąć wewnętrzny trzpień igły do biopsji gruboirogowej odpowiadający z góry ustalonej długości biopsji podczas "ładowania" igły (krok 9.3). Przesuwając trzpień wewnętrzny, upewnij się, że wcięcie próbki jest optymalnie umieszczone w docelowym obszarze biopsji (Rysunek 7).
  13. Poinformuj pacjenta, że igła do biopsji zostanie teraz "wystrzelona".
  14. "Wystrzelić" igłę do biopsji gruboigłowyej, a następnie powoli wycofać i usunąć igłę do biopsji gruboiówkowej z pacjenta. Po wyjęciu igły należy również wyjąć przetwornik.
  15. Ponownie załadować igłę do biopsji gruboigłowej, pociągając za tłok. Przesuń wewnętrzny sztyft i wyjmij próbkę tkanki, umieszczając ją w odpowiednim pojemniku do biopsji (Ryc. 8). Może to wymagać pomocy przy użyciu małej igły.
  16. Po wyjęciu biopsji z wycięcia próbki należy schować wewnętrzny sztyft i ponownie umieścić igłę do biopsji rdzeniowej w amerykańskim systemie naprowadzania biopsji głowicy.
  17. Powtarzać kroki od 9.5 do 9.14 aż do uzyskania wystarczającej liczby biopsji.
    UWAGA: Powtarzając krok 9.8, upewnij się, że: (1) nie ma natychmiastowych objawów powikłań w USG (np. utrata zsuwania się płuc, sugerowanie odmy opłucnowej) oraz (2) nieznacznie dostosuj kąt biopsji (jeśli to możliwe), aby uzyskać biopsje z różnych obszarów w obrębie docelowej zmiany.
  18. Po umieszczeniu ostatniej biopsji w pojemniku na próbkę do biopsji zamknij pojemnik i dodaj do pojemnika odpowiedni materiał/płyn utrwalający zgodnie z lokalnymi zasadami. Dołącz wszelkie niezbędne etykiety identyfikacyjne pacjenta i próbki, dokładnie sprawdzając, czy są poprawne.

10. USG klatki piersiowej po zabiegu

  1. Po ostatniej biopsji należy przeprowadzić TUS i ocenić pod kątem wszelkich natychmiastowych powikłań (np. odmy opłucnowej, hemothorax) w miejscu biopsji. Jeśli nie występują żadne objawy, należy nałożyć sterylny opatrunek, aby zakryć małe nacięcie biopsji.
  2. Gdy pacjent znajduje się w pozycji leżącej, należy zbadać przednią powierzchnię heitorax pod kątem oznak odmy opłucnowej, a gdy pacjent znajduje się w pozycji siedzącej, ocenić powierzchnię tylno-boczną pod kątem oznak rozwijającej się hemothoraxy.

11. Obserwacja i informacje o pacjencie po zabiegu

  1. Jeśli pacjent nie wykazuje żadnych objawów, ma stabilne parametry życiowe i nie wykazuje oznak ultrasonograficznych natychmiastowych powikłań, należy zaprzestać monitorowania pacjenta. Pozostaw cewnik do żył obwodowych na miejscu.
  2. Pozwól pacjentowi ubrać się we własne ubranie i poinstruuj go, aby czekał w poczekalni przez 1 godzinę.
  3. Jeśli w ciągu 1 godziny po zabiegu pacjent nie wykazał żadnych objawów przedmiotowych ani podmiotowych i zostanie uznany za klinicznie stabilny, należy usunąć cewnik do żył obwodowych i wypisać pacjenta z niezbędnymi dokumentami. Jeśli pacjent wykazuje oznaki lub objawy lub zostanie uznany przez personel za klinicznie niestabilny, należy przeprowadzić dalsze oceny kliniczne i radiologiczne w celu określenia dalszych kroków.
  4. Przed wypisem ze szpitala należy upewnić się, że pacjent i jego krewni zapoznali się z następującymi kwestiami: (1) ustnymi i pisemnymi informacjami dotyczącymi sposobu reagowania w przypadku wystąpienia objawów powikłań po wypisie ze szpitala oraz (2) planem, kiedy i w jaki sposób pacjent otrzyma wyniki uzyskanej biopsji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Całkowita wydajność diagnostyczna US-TTNB u pacjentów z uszkodzeniami płuc wyniosła 88,7%, zgodnie z wynikami metaanalizy przeprowadzonej przez DiBardiono i współpracowników18. Należy jednak zauważyć, że w innych badaniach zgłoszono niższą wydajność diagnostyczną US-TTNB17,23,25. Wykazano, że na wydajność diagnostyczną US-TTNB wpływa szereg czynników związanych z pacjentem, w tym: (1) charakter zmiany (zł...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Właściwa selekcja pacjentów i dokładna wstępna ocena TUS są kluczowymi krokami przed wykonaniem US-TTNB. Jeśli nie można uwidocznić zmiany w płucach, US-TTNB nie jest realną opcją. Idealnie byłoby, gdyby TUS został przeprowadzony przed zaplanowaniem zabiegu podczas wizyty w klinice, aby zapobiec odwołaniu w ostatniej chwili w sali zabiegowej17. Takie podejście pozwala również na bardziej kompleksowe planowanie i potencjalne przejście do alternatywnej procedury inwazyjnej, jeśli nie można uwidoczni...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Ambu BlueSensor RAmbuR-00-S/25Plastry EKG
BD PosiFlush SP Strzykawka 5 mlBD306574Strzykawka z 5 ml 0,9%
NaCl igła do napełniania z filtrem 5 mikronów (18 G x 11/2")Sol-Millennium Medical Inc.Głowica18 G
C1-6VNHealthcare5476279Przetwornik ultradźwiękowy
Przetwornik ultradźwiękowy C2-9D Przetwornik ultradźwiękowyGE Healthcare5405253Przetwornik ultradźwiękowy
OSTRZA CHIRURGICZNE ZE STALI WĘGLOWEJOstrze skalpelaSwann-Morton203
Chusteczka dezynfekcyjna (82% ehanolu + 0,5% chlorheksydyny)Vitrex Medical A/S527297Chusteczka dezynfekująca 
Jednorazowa igła jednorazowego użytku (0,80 mm x 80 mm)Misawa Medical Industry Co., Ltd.K070001Igła podskórna 80 mm 21 G
EKO GELEkkomed A/S29060008-29Żel do ultradźwięków
System formalinowy, buforowany roztwór formaliny 450 mlSarstedt5,11,703Zawarta próbka biopsyjna i odpowiedni płyn utrwalający (np. formaldehyd)
GAMMEX LateksAnsell330048075Sterylne rękawiczki
KD-JECT 20 mlKD Medcial GmbH82020920 ml strzykawka
Klorhexidin sprit 0,5% 500 mlFuckborg Pharma212045Środek dezynfekujący
Lidokain Mylan 10 mg/mL, 20 mlMylanNO-6042A1Znieczulenie miejscowe (20 ml, 2% lidokainy)
LOGIQ E10GE HealthcareNAWysokiej klasy ultrasonograf
Mö lnlycke BARRIER Serweta samoprzylepna (50 x 60 cm / 6 x 8 cm) Mö lnlycke Healthcare AB906693Adhezyjna serweta chirurgiczna z centralnym otworem
Mö lnlycke Gaza 10 x 10 cmMö lnlycke Healthcare AB158440Wymienniki do aplikacji środka dezynfekującego
Philips IntelliVue X2PhilipsNASystem monitorowania pacjenta
Raucodrape PRO 75 x 90 cmLohmann & Rauscher International GmbH & Co33 005Sterylna serweta na stół zabiegowy
SEMICUT 18 G x 100 mmMDLPD0181018 G x 100 mm igła do biopsji grubioricznej
SEMICUT 18 G x 160 mmMDLPD0181618 G x 160 mm igła do biopsji grubioriowej
S-Monovette, 25 mL, do systemu Formalina, (LxØ): 97 x 25 mm, z etykietą papierowąSarstedt9,17,05,001Pojemnik na próbki do biopsji
Sterican (0,80 x 120 mm BL/LB)Igła4665643120 mm 21 G
Tegaderm I.V.3M1633I.V. Przezroczysty dressing foliowy z obramowaniem
Ultra-Pro II  Jednorazowe zestawy zamienneCIVCO610-608Do użytku z przetwornikiem GE Healthcare C2-9
Ultra-Pro II  Prowadnice igieł ultrasonograficznych w płaszczyźnie-wielokątoweCIVCOH4913BADo użytku z przetwornikiem GE Healthcare C2-9
Verza  System naprowadzania igły dla VerzaLink™   PrzetwornikiCIVCO610-1500-24Do użytku z przetwornikiem GE Healthcare C1-6
Verza  Ultradźwiękowy system naprowadzania igłyCIVCOH4917VBDo użytku z przetwornikiem GE Healthcare C1-6
ultradźwiękowa BN1815F GE podskórna Braun

Bibliografia

  1. Maconachie, R., Mercer, T., Navani, N., McVeigh, G., Guideline, C. Lung cancer: diagnosis and management: summary of updated NICE guidance. BMJ. 364, 1049(2019).
  2. Rasmussen, T. R., et al. Lungecancer - Visitation, Diagnose, Stadie. , (2020).
  3. Interventional Pulmonology. Herth, F. J. F., Shah, P. L., Gompelmann, D. , (2017).
  4. Juul, A. D., et al. Does the addition of radial endobronchial ultrasound improve the diagnostic yield of electromagnetic navigation bronchoscopy? a systematic review. Respiration. 101 (9), 869-877 (2022).
  5. Kuijvenhoven, J. C., et al. Endobronchial ultrasound for the diagnosis of centrally located lung tumors: a systematic review and meta-analysis. Respiration. 99 (5), 441-450 (2020).
  6. Li, Y., Yang, F., Huang, Y. Y., Cao, W. Comparison between computed tomography-guided core and fine needle lung biopsy: A meta-analysis. Medicine (Baltimore). 101 (9), e29016(2022).
  7. Fu, Y. F., Zhang, J. H., Wang, T., Shi, Y. B. Endobronchial ultrasound-guided versus computed tomography-guided biopsy for peripheral pulmonary lesions: A meta-analysis. Clin Respir J. 15 (1), 3-10 (2021).
  8. Chandrasekhar, A. J., Reynes, C. J., Churchill, R. J. Ultrasonically guided percutaneous biopsy of peripheral pulmonary masses. Chest. 70 (5), 627-630 (1976).
  9. Laursen, C. B., et al. European respiratory society statement on thoracic ultrasound. Eur Respir J. 57, 2001519(2020).
  10. Laursen, C. B., Graumann, O., Rahman, N. M. Thoracic Ultrasound - new challenges, new horizons. Ultraschall Med. 42, 226-227 (2021).
  11. Hallifax, R. J., et al. Physician-based ultrasound-guided biopsy for diagnosing pleural disease. Chest. 146 (4), 1001-1006 (2014).
  12. Corcoran, J. P., et al. Ultrasound-guided pneumothorax induction prior to local anaesthetic thoracoscopy. Thorax. 70 (9), 906-908 (2015).
  13. Bedawi, E. O., et al. Intercostal vessel screening prior to pleural interventions by the respiratory physician: a prospective study of real world practice. Eur Respir J. 55 (4), 1902245(2020).
  14. Mei, F., et al. Diagnostic yield and safety of image-guided pleural biopsy: a systematic review and meta-analysis. Respiration. 100 (1), 77-87 (2021).
  15. Pietersen, P. I., et al. Lung ultrasound training: a systematic review of published literature in clinical lung ultrasound training. Crit Ultrasound J. 10 (1), 23(2018).
  16. Pietersen, P. I., Laursen, C. B., Petersen, R. H., Konge, L. Structured and evidence-based training of technical skills in respiratory medicine and thoracic surgery. J Thorac Dis. 13 (3), 2058-2067 (2021).
  17. Laursen, C. B., et al. Ultrasound-guided lung biopsy in the hands of respiratory physicians: diagnostic yield and complications in 215 consecutive patients in 3 centers. J Bronchology Interv Pulmonol. 23 (3), 220-228 (2016).
  18. DiBardino, D. M., Yarmus, L. B., Semaan, R. W. Transthoracic needle biopsy of the lung. J Thorac Dis. 7 (Suppl 4), S304-S316 (2015).
  19. Yamamoto, N., et al. Efficacy and safety of ultrasound (US) guided percutaneous needle biopsy for peripheral lung or pleural lesion: comparison with computed tomography (CT) guided needle biopsy. J Thorac Dis. 11 (3), 936-943 (2019).
  20. Sconfienza, L. M., et al. Pleural and peripheral lung lesions: comparison of US- and CT-guided biopsy. Radiology. 266 (3), 12112077(2012).
  21. Lee, M. H., Lubner, M. G., Hinshaw, J. L., Pickhardt, P. J. Ultrasound guidance versus CT guidance for peripheral lung biopsy: performance according to lesion size and pleural contact. AJR Am J Roentgenol. 210 (3), W110-W117 (2018).
  22. Chen, C. C., Hsu, W. H., Huang, C. M., Hsu, J. Y., Chiang, C. D. Ultrasound-guided fine needle aspiration biopsy of small pulmonary nodules abutting to the chest wall. Zhonghua Yi Xue Za Zhi (Taipei). 57 (2), 106-111 (1996).
  23. Diacon, A. H., et al. Safety and yield of ultrasound-assisted transthoracic biopsy performed by pulmonologists. Respiration. 71 (5), 519-522 (2004).
  24. Koegelenberg, C. F., et al. Diagnostic yield and safety of ultrasound-assisted biopsies in superior vena cava syndrome. Eur Respir J. 33 (6), 1389-1395 (2009).
  25. Meena, N., Bartter, T. Ultrasound-guided percutaneous needle aspiration by pulmonologists: a study of factors with impact on procedural yield and complications. J Bronchology Interv Pulmonol. 22 (3), 204-208 (2015).
  26. Thoracic Ultrasound. Laursen, C. B., Rahman, N. M., Volpicelli, G. Vol 79, European Respiratory Society. (2018).
  27. Roberts, M. E., et al. British Thoracic society guideline for pleural disease. Thorax. , (2023).
  28. Dallari, R., Gollini, C., Barozzi, G., Gilioli, F. Ultrasound-guided percutaneous needle aspiration biopsy of peripheral pulmonary lesions. Monaldi Arch Chest Dis. 54 (1), 7-10 (1999).
  29. Liao, W. Y., et al. US-guided transthoracic cutting biopsy for peripheral thoracic lesions less than 3 cm in diameter. Radiology. 217 (3), 685-691 (2000).
  30. Diacon, A. H., et al. Ultrasound-assisted transthoracic biopsy: fine-needle aspiration or cutting-needle biopsy. Eur Respir J. 29 (2), 357-362 (2007).
  31. Laursen, C. B., Graumann, O., Moller, T. V., Davidsen, J. R. Contrast-enhanced Ultrasound-guided Transthoracic Lung Biopsy. Am J Respir Crit Care Med. 194 (5), e5-e6 (2016).
  32. Jacobsen, N., et al. Clinical applications of contrast-enhanced thoracic ultrasound (CETUS) compared to standard reference tests: a systematic review. Ultraschall Med. 43 (1), 72-81 (2020).
  33. Koegelenberg, C. F., et al. The diagnostic yield and safety of ultrasound-assisted transthoracic fine-needle aspiration of drowned lung. Respiration. 81 (1), 26-31 (2011).
  34. Adams, R. F., Gleeson, F. V. Percutaneous image-guided cutting-needle biopsy of the pleura in the presence of a suspected malignant effusion. Radiology. 219 (2), 510-514 (2001).
  35. McAlister, S., et al. The carbon footprint of hospital diagnostic imaging in Australia. Lancet Reg Health West Pac. 24, 100459(2022).
  36. Pietersen, P. I., et al. Development of and gathering validity evidence for a theoretical test in thoracic ultrasound. Respiration. 98 (3), 221-229 (2019).
  37. Pietersen, P. I., et al. Objective structured clinical examination in basic thoracic ultrasound: a European study of validity evidence. BMC Pulm Med. 23 (1), 15(2023).
  38. Laursen, C., et al. Learning curves for ultrasound guided lung biopsy in the hands of respiratory physicians. European Respiratory Journal. 48 (suppl 60), PA3850(2016).
  39. Safai Zadeh, E., et al. WFUMB technological review: how to perform contrast-enhanced ultrasound of the lung. Ultrasound Med Biol. 48 (4), 598-616 (2022).
  40. Ahmed, M., Daneshvar, C., Breen, D. Neck Ultrasound for the detection of cervical lymphadenopathy in sarcoidosis: an alternative to endobronchial ultrasound. J Bronchology Interv Pulmonol. 26 (3), 225-227 (2019).
  41. van Overhagen, H., et al. Metastases in supraclavicular lymph nodes in lung cancer: assessment with palpation, US, and CT. Radiology. 232 (1), 75-80 (2004).
  42. Koegelenberg, C. F., et al. The diagnostic yield and safety of ultrasound-assisted transthoracic biopsy of mediastinal masses. Respiration. 81 (2), 134-141 (2011).
  43. Psallidas, I., et al. A Pilot feasibility study in establishing the role of ultrasound-guided pleural biopsies in pleural infection (The AUDIO study). Chest. 154 (4), 766-772 (2018).
  44. Koegelenberg, C. F., et al. Direct comparison of the diagnostic yield of ultrasound-assisted Abrams and Tru-Cut needle biopsies for pleural tuberculosis. Thorax. 65 (10), 857-862 (2010).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Biopsja pod kontrol USGUSG klatki piersiowejzmiany w p ucachpierwotny rak p ucainwazyjna pulmonologiawarto diagnostycznapodpleuralne zmiany w p ucachmedycyna oddechowapowik ania biopsji

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny

Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.