Artykuł metodologiczny

Szybka ocena mikrobiologiczna na miejscu w kierunku chorób zakaźnych płuc

DOI:

10.3791/66059

⸱

1 marca 2024

 ,  ,  ,  , 
1Department of Emergency and the Intensive Care Unit, Chongqing Hospital of Traditional Chinese Medicine, 2Department of Critical Care Medicine, Hospital of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine, 3Respiratory and critical care, Chongqing Hospital of Traditional Chinese Medicine

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Protokół tutaj demonstruje szybki i ustandaryzowany przepływ pracy szybkiej oceny mikrobiologicznej na miejscu (M-ROSE), obejmujący trzy kroki: tworzenie preparatów, barwienie i interpretację. Protokół ten pomoże lekarzom w podejmowaniu szybkich decyzji klinicznych.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Szybkie rozpoczęcie empirycznej terapii przeciwinfekcyjnej jest kluczowe u pacjentów z niewyjaśnioną infekcją płuc. Chociaż w praktyce klinicznej pobieranie obrazowania jest stosunkowo proste, jego brak swoistości często wymaga dodatkowych czasochłonnych badań, takich jak posiew plwociny, posiew płynu z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego lub sekwencjonowanie genetyczne w celu dokładnego zidentyfikowania etiologii leżącej u podstaw choroby. Co więcej, ograniczona skuteczność empirycznego leczenia przeciwinfekcyjnego może przyczyniać się do nadużywania antybiotyków. Ostatnie postępy w interpretacji tła mikrobiologicznego na szkiełkach do szybkiej oceny na miejscu (ROSE) umożliwiły klinicystom szybkie uzyskanie próbek za pomocą bronchoskopii (np. płukanie pęcherzyków płucnych, szczotkowanie błony śluzowej, zacisk tkankowy), ułatwiając barwienie przy łóżku pacjenta i interpretację, która dostarcza niezbędnych informacji o tle mikrobiologicznym. W związku z tym stanowi to podstawę do opracowania ukierunkowanego leczenia przeciwinfekcyjnego i zindywidualizowanych planów terapii lekowej. Dzięki lepszemu zrozumieniu, które patogeny powodują infekcje w czasie rzeczywistym, lekarze mogą uniknąć niepotrzebnych antybiotyków o szerokim spektrum działania, które przyczyniają się do oporności na antybiotyki. Ustanowienie szybkiego i ustandaryzowanego przepływu pracy M-ROSE na oddziałach chorób układu oddechowego lub intensywnej terapii znacznie pomoże lekarzom w formułowaniu dokładnych strategii leczenia pacjentów, co ma istotne implikacje kliniczne.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Technika szybkiej oceny na miejscu (ROSE) jest wysoce efektywną metodą stosowaną w dziedzinie procedur chorób płuc. Umożliwia pobieranie próbek w czasie rzeczywistym i interwencję diagnostyczną, ułatwiając natychmiastową analizę cytologiczną1. To innowacyjne podejście polega na naniesieniu części próbki tkanki na szkiełko podstawowe przy zachowaniu jej integralności. Jedną z kluczowych zalet ROSE jest jej zdolność do ułatwiania szybkiej interpretacji informacji klinicznych za pomocą specjalistycznych technik mikroskopowych. Obejmuje to analizę morfologii komórki, klasyfikację, kwantyfikację, określenie proporcji składników, ocenę ułożenia, analizę korelacji, ocenę tła i identyfikację ciał obcych. Integrując wszystkie te dane z informacjami klinicznymi pacjenta, ROSE odgrywa kluczową rolę w ocenie adekwatności pobierania próbek i kierowaniu procedurami i technikami interwencyjnymi w czasie rzeczywistym2.

Jako spółka zależna technologii ROSE, technologia M-ROSE skupia się przede wszystkim na pozyskiwaniu mikrobiologicznego tła docelowych zmian, a nie na rozróżnianiu komórek łagodnych i złośliwych3,4. Z jednej strony M-ROSE umożliwia mikroskopową identyfikację patogenów, takich jak Aspergillus, Cryptococcus, Pneumocystis i Candida5. Z drugiej strony, ma istotne implikacje przewodnie w ocenie jakości próbek układu oddechowego, odróżnianiu chorób zakaźnych od niezakaźnych, odróżnianiu infekcji od zanieczyszczenia, a także ocenie ciężkości infekcji i rokowania6,7. Na przykład w próbce oddechowej współistnienie bakterii o identycznej morfologii z naciekającymi komórkami zapalnymi wskazuje na infekcję; I odwrotnie, obecność wielu morfologicznie zróżnicowanych bakterii, którym towarzyszą komórki nabłonkowe, sugeruje zanieczyszczenie. Zdolność do kompleksowej analizy informacji klinicznych i przewidywania wyników sprawia, że M-ROSE jest nieocenionym narzędziem w procedurach chorób płuc.

Podsumowując, ROSE służy jako kluczowy nośnik cytologiczny, który znacznie zwiększa skuteczność i precyzję diagnozowania chorób płuc. Jego wieloaspektowe możliwości przyczyniają się do poprawy wyników leczenia pacjentów, zapewniając szybką interwencję i ułatwiając dokładną diagnozę dzięki technikom pobierania próbek w czasie rzeczywistym i interwencji diagnostycznej. Należy jednak pamiętać, że postępy te polegają na uzyskiwaniu kwalifikowanych próbek. W niniejszym artykule przedstawiamy ustandaryzowany protokół M-ROSE obejmujący przygotowanie preparatów, techniki barwienia i wytyczne dotyczące interpretacji. Protokół ten służy jako nieocenione odniesienie dla klinicystów w ustalaniu dokładnych planów oceny i leczenia, ułatwiając jednocześnie podejmowanie decyzji dotyczących późniejszego postępowania z próbkami docelowymi.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie kliniczne zostało zatwierdzone przez Komitet Zatwierdzający Szpitala Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Chongqing (nr 2022-ky-31). Typowy przypadek dotyczył pacjenta, u którego zdiagnozowano zapalenie płuc wywołane przez Pneumocystis i uzyskano od niego świadomą zgodę.

1. Wymagania sprzętowe i materiałowe dla ROSE

  1. Sprzęt: Zapoznaj się z plikiem Tabela materiałów, aby zapoznać się z urządzeniami używanymi w tym protokole.
    UWAGA: Konieczne jest wykorzystanie dedykowanego mikroskopu cytologicznego i systemu obrazowania graficznego (Rysunek 1A).
  2. Przygotowanie materiału (patrz Tabela materiałów).
    1. Przygotuj sterylne szkiełka do hodowli komórkowych (o silnej adhezji komórek), chłonny papier, bezpudrowe rękawiczki lateksowe, jednorazowe igły strzykawkowe o pojemności 2,5-5 ml i umieść kompletny zestaw roztworów barwiących Diff Quik (DQ) w szklanych słoikach do barwienia z uszczelnionymi pokrywkami dla łatwej obsługi (Rysunek 1).

2. Przepływ pracy M-ROSE

  1. Przygotowanie preparatów cytologicznych
    UWAGA: Istnieje wiele sposobów przygotowania preparatów, a poniżej przedstawiono kilka powszechnie stosowanych metod przygotowania.
    1. Prowadnice rolkowe
      UWAGA: Podczas tego procesu należy zapewnić minimalną utratę próbki tkanki.
      1. Usuń cząstki tkanki za pomocą jednorazowej igły strzykawkowej o pojemności 2,5-5 ml (Rysunek 2A).
      2. Rozprowadzić okrągły obszar o średnicy około 1 cm i umiarkowanej grubości, od wewnętrznej do zewnętrznej jednej trzeciej części barwionego końca (koniec wykazujący silne przyczepienie komórek) na sterylnym szkiełku cytologicznym.
    2. Zjeżdżalnie szczotkowe
      UWAGA: Ta metoda ma zastosowanie do próbek uzyskanych przy użyciu konwencjonalnych szczotek komórkowych, szczoteczek do komórek zapobiegających zanieczyszczeniom lub szczoteczek do ultradrobnych komórek, a także próbek półpłynnych, takich jak plwocina i lepkie płyny ustrojowe.
      1. Wysuń główkę szczoteczki i nałóż ją na dystalną trzecią część sterylnego szkiełka cytologicznego (szkiełko ma silne właściwości adhezyjne komórek), aby uzyskać prostokątny obszar o wymiarach około 2 cm x 1 cm o umiarkowanej grubości.
    3. Szkiełka natryskowe
      1. Umieścić igłę do nakłuwania na jednej trzeciej wybarwionego końca sterylnego szkiełka cytologicznego o silnej adhezji komórek.
      2. Zastosuj ciśnienie powietrza do końcówki igły do przekłuwania i włóż ją od wewnętrznej strony na zewnątrz, tworząc okrągły obszar o średniej grubości o średnicy około 1 cm.
  2. Barwienie szkiełka cytologicznego
    UWAGA: Światowa Organizacja Zdrowia (WHO) zaleca szybkie barwienie szkiełka cytologicznego ROSE przy użyciu barwnika Diff's dye5. Barwnik Diff może być ponownie użyty, ale nie powtarzany wiele razy. Jeśli jest osad, należy go przefiltrować po użyciu. Zbyt głębokie barwienie może zostać odpowiednio odbarwione metanolem lub alkoholem, najlepiej już nie farbowanym. Jeśli barwienie jest zbyt głębokie lub zbyt płytkie, należy dostosować czas barwienia lub stężenie cieczy roboczej; wartość pH ma pewien wpływ na barwienie, a szkiełko powinno być czyste i wolne od zanieczyszczeń kwasowych i zasadowych. Zarówno roztwór Diff A, jak i roztwór Diff B są lotne i powinny być szczelnie zamknięte i przechowywane po użyciu.
    1. Zanurz szkiełko w roztworze Diff A na 10-30 s (Rysunek 2B), a następnie przepłucz je w kąpieli barwiącej PBS, aby usunąć nadmiar roztworu Diff A i delikatnie strząśnij pozostały bufor (Rysunek 2C).
    2. Następnie zanurz szkiełko w roztworze Diff B na 20-40 s (Rysunek 2E).
    3. Na koniec wyczyść szkiełko w zbiorniku do barwienia wodą (Rysunek 2F), osusz i wytrzyj resztki płynu szkiełka papierem absorpcyjnym ( Rysunek 2D) i zakończ farbowanie.
      UWAGA: M-ROSE umożliwia bezpośrednią wizualizację mikroorganizmów chorobotwórczych i ułatwia ocenę jakości próbek z dróg oddechowych, umożliwiając rozróżnienie między infekcją a brakiem infekcji oraz infekcją i zanieczyszczeniem, co ma zasadnicze znaczenie dla oceny ciężkości infekcji i rokowania. Sekcja dyskusji będzie dotyczyła tego aspektu, ponieważ nie obejmuje ona żadnych procedur eksperymentalnych.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W typowym przypadku, 63-letni mężczyzna zgłosił się do szpitala z kaszlem, gorączką i bólem w klatce piersiowej. U pacjenta wcześniej zdiagnozowano zespół nerczycowy, charakteryzujący się białkomoczem i obrzękiem, i przez długi czas otrzymywał leczenie prednizonem i takrolimusem. Wstępne wyniki badań laboratoryjnych wykazały liczbę białych krwinek 10,49 x 109/L, liczbę neutrofili 8,87 x 109/L, stężenie białka C-reaktywnego we krwi pełnej oraz (1-3)-β-D-glukan 155,81 mg/L i 249,7 pg/ml. Tomografia komputerowa klatki piersiowej (CT) wykazała zmętnienie szkła mielonego z rozlaną, obustronną i centralną lokalizacją (Figura 3A). Początkowe leczenie przeciwinfekcyjne cefoperazonem tazobaktamem było nieskuteczne, a objawy nasilały się z powodu zmęczenia serca, duszności i duszności po wysiłku; Wielokrotne obrazowanie TK nie wykazało znaczącej poprawy (Ryc. 3B). Następnie pacjent został przeniesiony na oddział intensywnej terapii (OIOM) w celu wentylacji mechanicznej i poddany bronchoskopii. Próbkowanie fokusowe uzyskano pod kierunkiem wirtualnej nawigacji i pobrano trzy próbki biopsji kleszczowej (Ryc. 4). ROSE był dostępny do natychmiastowej oceny mikroskopowej tkanki, a rozpoznanie Pneumocystis jiroveci zostało potwierdzone (Figura 5A). Pacjent natychmiast otrzymał leczenie przeciwgrzybicze sulfametoksazolem (1,92 g, co 6 godzin); Późniejsze barwienie (Ryc. 5B-E) potwierdziło tę diagnozę. Jednak powtarzane obrazowanie TK nadal nie wykazało znaczącej poprawy (Ryc. 3C). Pacjent otrzymywał karbofunginę (pierwszego dnia 70 mg, a następnie 50 mg na dobę), metyloprednizolon (80 mg na dobę) i immunoglobulinę (10 g na dobę) na zakażenie grzybicze. Objawy szybko ustąpiły, a pacjent kontynuował dalsze leczenie.

figure-results-1
Rysunek 1: Sprzęt i materiały. (A) Mikroskop cytologiczny i system obrazowania graficznego. (B) Roztwór barwiący Diff Quik (DQ) A. (C) Roztwór barwiący Diff Quik (DQ) B. (D) Rękawice lateksowe bezpudrowe. (E) Sterylne szkiełka do hodowli komórkowych. (F) Jednorazowe igły strzykawkowe o pojemności 2,5-5 ml. (G) Papier chłonny. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-2
Rysunek 2: Przepływ pracy M-ROSE. (A) Drukowanie slajdu. (B) Zanurz szkiełko w roztworze dyferencjału A na 10-30 s. (C) Przepłucz szkiełko w kąpieli barwiącej PBS, aby usunąć nadmiar roztworu Diff A. (D) Osuszyć i zetrzeć pozostałą ciecz ze szkiełka papierem chłonnym. (E) Zanurz szkiełko w roztworze dyferencjału B na 20-40 s. (F) Wyczyść szkiełko w zbiorniku do barwienia wodą. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-3
Rysunek 3: Obrazy tomografii komputerowej klatki piersiowej. (A) Przy przyjęciu. (B) W dniu przekazania na oddział intensywnej terapii. (C) Po leczeniu sulfametoksazolem Proszę kliknąć tutaj aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-4
Rysunek 4: Lokalizacja tylnego segmentu podstawnego dolnego płata prawego płuca przez VBN. (A) Prawe oskrzela główne. (B) Prawe środkowe oskrzel. (C) Tylny segment podstawy oskrzela dolnego płata prawego płuca. (d) Mapa 3D VBN. (E) Mapa koronalna CT klatki piersiowej. (F) Mapa osiowa CT klatki piersiowej. (G) Mapa strzałkowa CT klatki piersiowej Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

figure-results-5
Rysunek 5: Zdjęcia dokumentujące pojawienie się pneumocysty w różnych metodach barwienia. (A) RÓŻA 100 x 10; Biała strzałka: cysty zawierające askospory. (B) Hematoksylina i eozyna (H-E), 60 x 10. (C) Błękit alcyjski, 60 x 10. (D) GIEMSA, 40 x 10. (E) Srebro heksaminowe, 20 x 10. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pulmonologia interwencyjna jest cenną gałęzią współczesnych chorób układu oddechowego; W szczególności znajduje szerokie zastosowanie w diagnostyce chorób płuc 8,9. W ostatnich latach diagnostyczna pulmonologia interwencyjna rozwija się ze względu na zwiększoną częstość występowania nowotworów złośliwych płuc, większą liczbę lekoopornych zakażeń patogenami występującymi w dolnych drogach oddechowych oraz wymagające zapytania o diagnozę kłopotliwych i krytycznych chorób układu oddechowego 10,11,12. Skuteczność diagnostyki interwencyjnej zależy od takich czynników, jak wielkość i anatomiczne umiejscowienie obszarów ogniskowych, odsetek powikłań i liczba miejsc biopsji oraz choroby podstawowe, co sprzyja klinicznemu zastosowaniu wielu zaawansowanych technologii i udogodnień13. ROSE spotkała się z niezwykłym zainteresowaniem i szybko pojawiła się jako "technika towarzysząca w czasie rzeczywistym" do diagnozowania w pulmonologii interwencyjnej.

ROSE jest przeznaczony do szybkiej oceny, wstępnej diagnozy i priorytetyzacji satysfakcji próbki podczas procedur takich jak nakłucie, biopsja i szczotkowanie. Dostarcza informacji zwrotnych, które kierują kolejnym postępem technologicznym 14,15,16,17. M-ROSE, oddział ROSE, koncentruje się przede wszystkim na ocenie tła mikrobiologicznego, a nie na ocenie złośliwości komórek tkankowych5. Metoda M-ROSE jest techniką szybkiej oceny, a nie narzędziem diagnostycznym, dlatego nie należy przesadzać z jej skutecznością diagnostyczną. Jego zastosowanie kliniczne obejmuje przede wszystkim następujące aspekty: identyfikację wizualną niektórych mikroorganizmów chorobotwórczych, różnicowanie między zakażeniem a zakażeniem oraz rozróżnienie między zakażeniem a brakiem zakażenia7.

Po szybkim barwieniu jądro komórkowe tkanki wykazywało fioletowo-czerwony odcień, podczas gdy cytoplazma wykazywała niebieskawo-fioletowy kolor. Bakterie i grzyby wydawały się niebieskie, co powodowało wyraźny kontrast między komórkami tkankowymi a patogenami7. Projekt M-ROSE może wykazać pewien poziom zdolności w zakresie identyfikacji bakterii i grzybów. W szczególności wykazuje wysoki dodatni wskaźnik dla Aspergillus, cryptococcus, Pneumocystis jiroveci i innych grzybów 3,18. Ma jednak ograniczenia, jeśli chodzi o rozpoznawanie patogenów o małej objętości i średnicy lub wewnątrzkomórkowych czynników chorobotwórczych. Należy podkreślić, że diagnoza każdej choroby powinna opierać się na kompleksowej ocenie obejmującej podstawowy stan pacjenta, objawy kliniczne, badania obrazowe i inne czynniki, a nie polegać wyłącznie na mikroskopowej identyfikacji mikroorganizmów chorobotwórczych.

M-ROSE oferuje również korzyści w identyfikacji infekcji i zanieczyszczeń, takie jak ocena jakości próbek płynu z płukania pęcherzyków płucnych. Na oddziałach, na których pozwalają na to warunki, można przeprowadzić ocenę płynu popłuczyn przy łóżku poprzez wirowanie i barwienie. Kwalifikowane próbki płynu z płukania pęcherzyków płucnych wykazują, że odsetek komórek płaskonabłonkowych wśród wszystkich komórek (z wyłączeniem czerwonych krwinek) pod mikroskopią o małej mocy wynosi mniej niż 1%, komórki nabłonka walcowatego są mniejsze niż 5%, a czerwone krwinki są mniejsze niż 10% (z wyłączeniem czynników związanych z urazem lub krwawieniem)19. Badanie mikroskopowe tła cytologicznego ułatwi nam dokonanie oceny w odpowiednim czasie.

Co więcej, M-ROSE może pomóc w rozróżnieniu zmian zakażonych i niezakażonych5. W zakażonych zmianach często dochodzi do naciekania neutrofili, makrofagów i limfocytów przez komórki zapalne, z okazjonalną obserwacją fagocytozy neutrofili. I odwrotnie, niezakażone zmiany zazwyczaj nie mają nacieku komórek zapalnych.

Przedstawiony tutaj protokół przedstawia proces działania M-ROSE; Dzięki interpretacji tła mikrobiologicznego można postawić wstępną diagnozę lub zawęzić diagnostykę różnicową. Jak sugerują nasze wyniki, rozpoznanie PCP wymaga potwierdzonych dowodów na obecność Pneumocystis jiroveci, które nie powinny opierać się na objawach klinicznych i obrazowaniu, nawet u objawowych pacjentów wysokiego ryzyka. Mikroskopowa identyfikacja worków i form troficznych jest najbardziej intuicyjnym dowodem. Skuteczność diagnostyczna zależy w dużej mierze od metody barwienia próbki. Historycznie rzecz biorąc, konwencjonalne barwniki, takie jak srebro Wrighta-Giemsa, srebro heksaaminowe i błękit toluidynowy, są dostępne dla PCP, ale są czasochłonne i mają niższą wrażliwość. W tym przypadku natychmiastowe rozpoznanie PCP zostało potwierdzone w pierwszej dobie od przekazania pacjenta na OIT z zastosowaniem ROSE. Diff-quick wykazał swoją przewagę w identyfikacji pneumocystów, charakteryzujących się wyraźną strukturą, ostrym kontrastem i łatwą identyfikacją worka (ryc. 5A).

W zastosowaniu medycyny etnicznej ROSE ma również znaczącą wartość. Na przykład w chorobach ropnych klinicyści mogą zidentyfikować różnorodny zakres komórek zapalnych zdominowanych głównie przez neutrofile w tle mikrobiologicznym5. W związku z tym leki o właściwościach oczyszczających z ciepła i detoksykujących mogą być wybierane jako potencjalne metody leczenia tych schorzeń, takich jak między innymi wiciokrzew, mniszek lekarski i patrynia.

Ponieważ ROSE jest dodatkowym programem, który nie musi być wybierany w pulmonologii interwencyjnej, przeprowadzenie ROSE z pewnością zwiększy koszty pracy i koszty ekonomiczne. Dyskusyjne jest, czy ROSE powinien być stosowany regularnie. Jeśli chodzi o korzyści ekonomiczne, martwimy się o czas i koszty pracy. Głównym dodatkowym zapotrzebowaniem na siłę roboczą jest ewaluator. Ocena ROSE może być przeprowadzona przez cytotechnologa, patologa lub klinicystę. Cytotechnolodzy są najbardziej prawdopodobnym personelem do procedury ROSE. Jednak w praktyce klinicznej klinicyści zastępują tę rolę, ale może to wymagać pewnej podstawy szkoleniowej15. Poprzednie badanie wykazało, że program szkoleniowy może pomóc w poprawie dokładności oceny adekwatności przeprowadzanej przez klinicystów i wyeliminowaniu zmiennych zakłócających20. Ponadto M-ROSE, jako morfologiczna technika diagnostyczna, ma czynniki subiektywne w swoim raporcie wyników. Klinicyści powinni dokonać kompleksowej oceny w oparciu o dodatkowe informacje kliniczne.

Zalecamy, aby szpitale dysponujące odpowiednim wyposażeniem i przeszkolonymi specjalistami rozważyły wdrożenie procedury ROSE na swoich oddziałach chorób układu oddechowego lub oddziałach intensywnej terapii, ponieważ może ona ułatwić wczesną ocenę trudnych chorób układu oddechowego i skutecznie kierować leczeniem klinicznym.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie zgłaszają konfliktu interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Doceniamy projekt zachęt i wskazówek dla instytucji naukowo-badawczej w Chongqing (jxyn-2021-15 i jxyn-2021-2-6) za wsparcie finansowe.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Mikroskop cytologicznyOlympus CorporationCX43
Diff Quik (DQ) roztwory barwiąceBesso Biotechnology Co. LTDG1541
Jednorazowe igły strzykawkowe 2,5-5 mlShandong Zhu Pharmaceutical Group20183150304
Bezpudrowe rękawiczki lateksoweHenan Yadu Industrial Co., LTD20182140728
Sterylna komórka slajdy kulturoweJinan Preret przemysł i handel Co., LTD7101

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Zhang, S., et al. Diagnostic value of endoscopic ultrasound-guided fine needle aspiration with rapid on-site evaluation performed by endoscopists in solid pancreatic lesions: A prospective, randomized controlled trial. J Gastroenterol Hepatol. 37 (10), 1975-1982 (2022).
  2. Bruno, P., et al. Efficacy and cost effectiveness of rapid on site examination (ROSE) in management of patients with mediastinal lymphadenopathies. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 17 (11), 1517-1522 (2013).
  3. Li, T., et al. Microbiology rapid on-site evaluation: a better method for Mucoid Pseudomonas Aeruginosa diagnosis in bronchiectasic patients. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 26 (5), 1738-1742 (2022).
  4. Tao, Y., et al. Application of microbiological rapid on-site evaluation in respiratory intensive care units: a retrospective study. Ann Transl Med. 10 (1), 7(2022).
  5. Yan, P., et al. The value of microbiology rapid on-site evaluation of sepsis caused by pulmonary infection. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 27 (12), 5862-5868 (2023).
  6. Muri, R., Trippel, M., Borner, U., Weidner, S., Trepp, R. The impact of rapid on-site evaluation on the quality and diagnostic value of thyroid nodule fine-needle aspirations. Thyroid. 32 (6), 667-674 (2022).
  7. Wang, Z., Shi, Y. Application of rapid on-site evaluation in contemporary pediatric interventional respiratory diseases. Chinese Journal of Practical Pediatrics. 12, 470-475 (2019).
  8. Shah, P. L., Herth, F. J. F. Progress in interventional pulmonology. Respiration. 95 (5), 287-288 (2018).
  9. Hsia, D., Musani, A. I. Interventional pulmonology. Med Clin North Am. 95 (6), 1095-1114 (2011).
  10. Moore, A. J., Mercer, R. M., Musani, A. I. Advances in interventional pulmonology. Clin Chest Med. 39 (1), 271-280 (2018).
  11. Majid, A., Fernandez-Bussy, S., Folch, E. Interventional pulmonology and solitary pulmonary nodule. Arch Bronconeumol. 54 (10), 497-498 (2018).
  12. Ali, M. S., Sorathia, L. Palliative care and interventional pulmonology. Clin Chest Med. 39 (1), 57-64 (2018).
  13. Czarnecka, K., Yasufuku, K. Interventional pulmonology: focus on pulmonary diagnostics. Respirology. 18 (1), 47-60 (2013).
  14. Schacht, M. J., et al. Endobronchial ultrasound-guided transbronchial needle aspiration: performance of biomedical scientists on rapid on-site evaluation and preliminary diagnosis. Cytopathology. 27 (5), 344-350 (2016).
  15. Pearson, L., et al. Rapid on-site evaluation of fine-needle aspiration by non-cytopathologists: A systematic review and meta-analysis of diagnostic accuracy studies for adequacy assessment. Acta Cytol. 62 (4), 244-252 (2018).
  16. Arimura, K., et al. Cryobiopsy with endobronchial ultrasonography using a guide sheath for peripheral pulmonary lesions and DNA analysis by next generation sequencing and rapid on-site evaluation. Respir Investig. 57 (2), 150-156 (2019).
  17. Gianella, P., et al. Utility of rapid on-site cytologic evaluation during endobronchial ultrasound-guided transbronchial needle aspiration in malignant and nonmalignant disease. Acta Cytol. 62 (5-6), 380-385 (2018).
  18. Natella, V., Cozzolino, I., Sosa Fernandez, L. V., Vigliar, E. Lymph nodes fine needle cytology in the diagnosis of infectious diseases: clinical settings. Infez Med. 20, 12-15 (2012).
  19. Baughman, R. P., Spencer, R. E., Kleykamp, B. O., Rashkin, M. C., Douthit, M. M. Ventilator associated pneumonia: quality of nonbronchoscopic bronchoalveolar lavage sample affects diagnostic yield. Eur Respir J. 16 (6), 1152-1157 (2000).
  20. Petrone, M. C., et al. Does cytotechnician training influence the accuracy of EUS-guided fine-needle aspiration of pancreatic masses. Dig Liver Dis. 44 (4), 311-314 (2012).

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Mikrobiologiczne ROSEpobieranie pr bek podczas bronchoskopiibarwienie Diff Quikidentyfikacja patogen wdiagnostyka infekcji dr g oddechowychoporno na antybiotykiprzygotowanie preparat w cytologicznychbadanie mikroskopowe

Powiązane artykuły