Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Antagonistyczny wpływ Jiawei Shengjiang San na szczurzy model nefropatii cukrzycowej: związany ze szlakiem sygnałowym EGFR/MAPK3/1

1.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/66179

⸱

10 maja 2024

 ,  ,  ,  , 
1Graduate School, Hebei University of Chinese Medicine, 2School of Basic Medical Sciences, Hebei University of Chinese Medicine, 3Department of Endocrinology and Nephrology, Renal Research Institute of Beijing University of Chinese Medicine, Dongzhimen Hospital Affiliated to Beijing University of Chinese Medicine, 4Hebei Province Academy of Chinese Medicine Sciences, 5Department of Nephrology, First Affiliated Hospital, Hebei University of Chinese Medicine

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj prezentujemy protokół opisujący farmakologię sieciową i techniki dokowania molekularnego, aby zbadać mechanizm działania Jiawei Shengjiang San (JWSJS) w leczeniu nefropatii cukrzycowej.

Streszczenie

Naszym celem było zagłębienie się w mechanizmy leżące u podstaw działania Jiawei Shengjiang Sana (JWSJS) w leczeniu nefropatii cukrzycowej i wdrażaniu farmakologii sieciowej. Wykorzystując farmakologię sieciową i techniki dokowania molekularnego, przewidzieliśmy aktywne składniki i cele JWSJS oraz zbudowaliśmy skrupulatną sieć "lek-komponent-cel". Analizy wzbogacania ontologii genów (GO) i encyklopedii genów i genomów z Kioto (KEGG) wykorzystano do rozpoznania ścieżek terapeutycznych i celów JWSJS. Autodock Vina 1.2.0 został wdrożony do molekularnej weryfikacji dokowania i przeprowadzono symulację dynamiki molekularnej 100 ns w celu potwierdzenia wyników dokowania, a następnie weryfikację na zwierzętach in vivo. Wyniki ujawniły, że JWSJS ma wspólne 227 przecinających się celów z nefropatią cukrzycową, konstruując topologię sieci interakcji białko-białko. Analiza wzbogacenia KEGG wykazała, że JWSJS łagodzi nefropatię cukrzycową poprzez modulację lipidów i miażdżycy, szlaku sygnałowego PI3K-Akt, apoptozy i szlaku sygnałowego HIF-1, z aktywowaną mitogenem kinazą białkową 1 (MAPK1), MAPK3, receptorem naskórkowego czynnika wzrostu (EGFR) i kinazą białkową seryny/treoniny 1 (AKT1) zidentyfikowanymi jako zbiorowe cele wielu szlaków. Dokowanie molekularne wykazało, że podstawowe składniki JWSJS (kwercetyna, kwas oleopalmitynowy i luteolina) mogą stabilizować konformację z trzema kluczowymi celami (MAPK1, MAPK3 i EGFR) poprzez wiązania wodorowe. Badania in vivo wykazały znaczny wzrost masy ciała i zmniejszenie stężenia glikowanego białka surowicy (GSP), cholesterolu lipoprotein o niskiej gęstości (LDL-C), trifosforanu urydyny (UTP) i poziomu glukozy we krwi na czczo (FBG) z powodu JWSJS. Mikroskopia elektronowa w połączeniu z hematoksyliną i eozyną (HE) oraz barwieniem kwasem okresowym Schiffa (PAS) podkreśliła potencjał każdej grupy leczonej w łagodzeniu uszkodzenia nerek w różnym stopniu, wykazując różne spadki p-EGFR, p-MAPK3/1 i BAX oraz przyrosty ekspresji BCL-2 w tkankach nerkowych leczonych szczurów. Podsumowując, spostrzeżenia te sugerują, że skuteczność ochronna JWSJS w nefropatii cukrzycowej może być związana z tłumieniem aktywacji szlaku sygnałowego EGFR / MAPK3 / 1 i łagodzeniem apoptozy komórek nerkowych.

Wprowadzenie

Cukrzyca (DM) jest przewlekłą chorobą, która wpływa na wiele układów i może powodować różne powikłania z powodu ciągłej hiperglikemii, takie jak nefropatia cukrzycowa (DN), retinopatia i neuropatia1. DN jest poważnym powikłaniem cukrzycy, odpowiadającym za około 30%-50% schyłkowej niewydolności nerek (ESRD)2. Jego objawem klinicznym jest mikroalbuminuria, która może przekształcić się w ESRD charakteryzującą się zwiększoną objętością kłębuszków nerkowych, przerostem zrębu mezangialnego i pogrubioną błoną podstawną kłębuszków nerkowych3. Patogeneza DN jest złożona i nie została w pełni wyjaśniona. Metody kliniczne, takie jak obniżenie poziomu glukozy we krwi, regulacja ciśnienia krwi i zmniejszenie białkomoczu, są najczęściej stosowane w celu opóźnienia jego postępu, ale efekt jest ogólny.

Obecnie nie znaleziono żadnego konkretnego leku na DN4. Jednak od wieków chińskie leki ziołowe były szeroko stosowane w leczeniu cukrzycy i jej powikłań5 i poprawiały objawy kliniczne pacjentów i opóźniały postęp choroby. Ze względu na zalety efektów wieloskładnikowych, wielokierunkowych i wielościeżkowych, oczekuje się, że chińskie leki ziołowe będą innowacyjnym źródłem leków w leczeniu DN6.

"Shengjiang san" pochodzi od "Wanbing Huichun" autorstwa lekarza z dynastii Ming, Gong Tingxiana. Książka "Neifu Xianfang" opisuje użycie Bombyx Batryticatus, Cicadae Periostracum, Curcumaelongae Rhizoma i Radix Rhei et Rhizome. Na tej podstawie, po dodaniu Hedysarum Multijugum Maxim, Epimrdii Herba i Smilacis Glabrae Rhixoma, wywiera funkcję shengjiang san zwiększając jasność, zmniejszając zmętnienie, uwalniając zastałe "ciepło" i harmonizując "qi" i klasę krew7,8. Zwiększa również efekt wzmocnienia śledziony i ujędrnienia nerek. Jego skuteczność jest zgodna z patogenezą "qi" DN do wznoszenia się i opadania w kolejności z powodu niedoboru "energii życiowej", nadmiernej suchości i "ciepła" oraz stagnacji "ciepła" spowodowanej przez potrójny energetyzator7,8.

Poprzednie badania kliniczne wykazały, że chińskie leki ziołowe były stosowane w leczeniu DM i jego powikłań, a jiawei shengjiang san (JWSJS) wykazano, że regulują poziom glukozy i lipidów we krwi, zmniejszają białkomocz i znacznie poprawiają skuteczność kliniczną pacjentów z wczesnym DN7. Zdolność JWSJS do obniżania poziomu białka w moczu i glukozy we krwi u szczurów DN została potwierdzona w poprzednich badaniach. Prawdopodobnie dzieje się to poprzez hamowanie szlaków sygnałowych TXNIP/NLRP3 i RIP1/RIP3/MLKL, zmniejszanie pyroptozy podocytów i zapobieganie nekrotycznej apoptozie w tkankach nerkowych szczurów DN, osiągając w ten sposób ochronę nerek9. JWSJS może zwiększać ekspresję białka nefryny i podocyny oraz zmniejszać uszkodzenie podocytów u szczurów DN, co sugeruje, że JWSJS ma hamujący wpływ na uszkodzenie podocytów. JWSJS ma pewne działanie anty-DN z dobrymi profilami bezpieczeństwa, ale niewiele jest badań na ten temat, a praca ta koncentruje się głównie na piroptozie i martwiczej apoptozie. Literatura nie jest wystarczająco obszerna ani usystematyzowana10. Nasze wcześniejsze odkrycia potwierdziły, że JWSJS może zmniejszać białkomocz i łagodzić uszkodzenia nerek u szczurów DN7. Istnieje jednak tylko kilka badań dotyczących mechanizmu JWSJS w leczeniu DN i brakuje im głębi i usystematyzowania. W związku z tym badanie to ma na celu analizę substancji molekularnych i mechanizmów działania JWSJS w leczeniu DN przy użyciu farmakologii sieciowej i zapewnienie solidnych podstaw dla przyszłych badań.

Farmakologia sieciowa to nowa metoda badania mechanizmu działania leków, w tym chemiinformatyka, biologia sieciowa, bioinformatyka i farmakologia11,12. Projekt badań farmakologicznych sieci jest dość podobny do holistycznej koncepcji tradycyjnej medycyny chińskiej13,14 i jest to ważna metoda badania mechanizmu chińskich leków ziołowych. Dokowanie molekularne może badać interakcje między cząsteczkami i przewidywać ich wzorce wiązania i powinowactwo. Dokowanie molekularne stało się kluczową techniką w dziedzinie komputerowo wspomaganych badań nad lekami15. W związku z tym w badaniu tym stworzono sieć interakcji JWSJS-DN-cel za pomocą farmakologii sieciowej i metod dokowania molekularnego, która oferuje wiarygodną i teoretyczną podstawę do dalszego badania leczenia DN za pomocą JWSJS.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie zwierzęta były utrzymywane i używane zgodnie z Przewodnikiem Narodowej Rady ds. Badań Naukowych Stanów Zjednoczonych dotyczącym opieki i użytkowania zwierząt laboratoryjnych, wydanie 8, i zostały zgłoszone zgodnie z zaleceniami w wytycznych ARRIVE16,17. Badanie zostało przeprowadzone zgodnie z Przewodnikiem Chińskiej Narodowej Rady ds. Badań Naukowych dotyczącym opieki i wykorzystywania zwierząt laboratoryjnych i zostało zatwierdzone przez Komisję Etyki Zwierząt Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Hebei (DWLL2019030).

1. Składniki aktywne JWSJS i kolekcja docelowa

  1. Wprowadź kompozycję leczniczą JWSJS (Hedysarum Multijugum Maxim, Epimrdii Herba, Smilacis Glabrae Rhixoma, Radix Rhei et Rhizome i Curcumaelongae Rhizoma) do bazy danych tradycyjnej medycyny chińskiej i platformy analizy farmakologicznej (TCMSP) 18, aby pobrać wszystkie składniki chemiczne. Zgodnie z doustnym badaniem wchłaniania, dystrybucji, metabolizmu i wydalania (ADME) biodostępność (OB) ≥ 30% i właściwości podobne do leku (DL) ≥ 0,18 składniki chemiczne19,20.
  2. Użyj bazy danych TCMSP (https://old.tcmsp-e.com/ tcmsp.php, wersja 2.3), aby pobrać odpowiednie cele składników chemicznych.
  3. Uzyskaj aktywne składniki Bombyx Batryticatus i Cicadae Periostracum, przeszukując bazy danych Tradycyjnej Medycyny Chińskiej i Składu Chemicznego21.
  4. Aby uzyskać wiarygodność eksperymentalną, wybierz związki z numerami CAS (Chemical Abstracts Service) do tego badania. Następnie pobierz diagramy struktury 2D (format .sdf) składników aktywnych z PubChem (https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/, zaktualizowano w 2021 r.)22.
  5. Użyj SwissADME (www.swissadme.ch, zaktualizowanego w 2021 r.)23, aby przebadać składniki o wysokim wchłanianiu przez przewód pokarmowy (GI) jako podobieństwo leków (Lipinski, Ghose, Veber, Egan, Muegge), których ≥ 2 pozycje to "Tak". Doprowadziło to do powstania aktywnych składników Bombyx Batryticatus i Cicadae Periostracum.
  6. Zaimportuj je do bazy danych TCMSP w celu przewidywania docelowego białka (https://old.tcmsp-e.com/tcmsp.php, wersja 2.3)18.
  7. Ustandaryzuj cele w bazie danych UniProt (https://www.uniprot.org, zaktualizowanej w 2021 r.) ze statusem ustawionym jako Przejrzany i gatunkiem ustawionym jako Human24.

2. Odpowiadająca DN kolekcja docelowa

  1. Szukaj nefropatii cukrzycowej za pomocą GeneCards (https://www.genecards.org/, wersja 5.1)25, OMIM (https://omim.org/, zaktualizowano w 2021 r.)26, TTD (http://db.idrblab.net/ttd/, zaktualizowano w 2021 r.)27, PharmGKB (https://www.pharmgkb.org/, zaktualizowano w 2021 r.)28,oraz bazy danych DrugBank (https://www.drugbank.ca/, zaktualizowano w 2021 r.)29. Uzyskaj cele DN po połączeniu i deduplikacji.
  2. Przegląd wspólnych celów JWSJS i DN oraz budowa sieci
    1. Przesiewaj typowe cele JWSJS i DN za pomocą oprogramowania R 4.2.0 i rysuj diagramy Venna. Zaimportuj aktywne składniki i potencjalne cele JWSJS do Cytoscape 3.8.0 software30, aby zbudować diagram sieci Lek-Składnik-Cel, który wizualizuje związek między lekami, składnikami, celami i chorobami.
    2. Niech rozmiar węzła odzwierciedla rozmiar wartości stopnia, gdzie wyższa wartość stopnia oznacza, że węzeł jest ważniejszy w sieci.
  3. Budowa sieci interakcji białko-białko PPI i badania przesiewowe głównych celów
    1. Przeanalizuj przecinające się geny za pomocą platformy internetowej STRING (Version:11.5), aby skonstruować sieć interakcji białko-białko (PPI)31. Skonstruuj sieć przy użyciu trybu analizy wielu białek, ustaw gatunek na Homo sapiens i ustaw minimalny wymagany wynik interakcji na >0,930.
    2. Użyj Cytoscape 3.8.0, aby przeanalizować topologicznie sieć, obliczyć centralność między węzłami (BC), centralność bliskości (CC), centralność stopnia (DC), centralność wektora własnego (EC), metodę lokalnej średniej opartej na łączności (LAC) i wartości centralności sieci (NC) dla każdego węzła, a następnie odfiltruj sześć węzłów ze wszystkimi wartościami większymi niż median32. Powtórz ten proces kilka razy, aby zidentyfikować główne cele JWSJS w terapii DN.
  4. Analizy funkcjonalne GO i analiza wzbogacania szlaków KEGG
    1. Wykonaj analizy wzbogacenia GO i KEGG w celu zidentyfikowania procesów biologicznych, funkcji molekularnych, składników komórkowych i szlaków związanych ze wspólnymi celami JWSJS i DN.
    2. Użyj metody org. Hs.eg.db pakietu, aby uzyskać identyfikatory obiektów docelowych skrzyżowania, a następnie użyj clusterProfiler, org. Pakiety Hs.eg.db, enrichplot i ggplot2 do analiz wzbogacania33.
    3. Ekran przesiewowy do funkcjonalnej analizy wzbogacenia GO na 10 największych trafieniach biologicznych z skorygowaną wartością P < 0,05 i wybierz 30 najlepszych ścieżek o najwyższym wzbogaceniu dla analizy KEGG.

3. Dokowanie molekularne

  1. Użyj oprogramowania AutoDock Vina, aby przeprowadzić dokowanie molekularne między podstawowymi komponentami JWSJS a głównymi celami terapii DN34.
  2. Wyszukaj w bazie danych PubChem, aby uzyskać plik sdf ze strukturą 2D podstawowych komponentów JWSJS. Użyj oprogramowania ChemBio 3D Ultra14.0, aby wygenerować i zoptymalizować jego strukturę 3D, zapisz go w formacie mol2 i użyj jako pliku liganda.
  3. Znajdź i pobierz format pdb struktury 3D głównych celów z bazy danych Banku Danych Białkowych (PDB) Collaboratory for Structural Bioinformatics (RCSB). Użyj oprogramowania Pymol 2.4.0, aby usunąć cząsteczki wody i ligandy ze struktury białka, zapisz je w formacie pdb i użyj jako pliku receptora.
  4. Zaimportuj plik pdb receptora do oprogramowania AutoDockTools 1.5.7 w celu uwodornienia, przekształć zarówno białko receptorowe, jak i ligand małocząsteczkowy na format pdbqt, ustaw aktywną kieszeń dla białka receptorowego ze współczynnikiem odstępów ustawionym na 1.
  5. Użyj Autodock vina 1.2.0 do dokowania molekularnego i oblicz energię wiązania; jeśli powinowactwo < 0, weź pod uwagę, że cząsteczka spontanicznie wiąże się z białkiem, większa wartość bezwzględna Powinowactwa wskazuje na bardziej stabilne wiązanie między nimi. Na koniec zwizualizuj wyniki dokowania za pomocą oprogramowania Pymol 2.3.0 i LigPlot 2.2.5.

4. Symulacja dynamiki molekularnej

  1. Aby przeprowadzić symulacje MD za pomocą oprogramowania Desmond, wykonaj następujące kroki:
    1. Wykorzystaj akademicką wersję oprogramowania Desmond 2019-1 do oceny stabilności i elastyczności interakcji białko-ligand.
    2. Przeprowadzenie badań dynamiki molekularnej (MD) na trzech najbardziej obiecujących kompleksach ligandów pochodzących z badań dokowania. Przeprowadzanie symulacji w środowisku wodnym SPC z 0,15 M NaCl, odtwarzając fizjologiczne warunki jonowe. Pole symulacji jest zaprojektowane w taki sposób, aby zapewnić, że substancja rozpuszczona pozostaje w odległości co najmniej 10 A od swoich granic. Przeciwjony są wprowadzane w celu zneutralizowania ładunku elektrycznego systemu. Dodatkowo stosowane są okresowe warunki brzegowe, regulowane parametrami pola siłowego OPLS 2005.
    3. Zainicjuj fazę minimalizacji energii przez 100 ps, używając domyślnych parametrów Desmonda.
    4. Zapewnić stabilizację temperatury i ciśnienia na poziomie 26,85 °C (300 K) i 1,01325 bar za pomocą łańcucha Nosé-Hoovera i metodologii Martyny-Tobiasa-Kleina we wszystkich produkcyjnych systemach MD. Symulacja dynamiki molekularnej jest wykonywana z krokiem czasowym 2 fs przez łączny czas trwania 100 ns, rejestrując współrzędne atomowe co 100 ps.
    5. Otwórz moduł diagramu interakcji symulacji (SID). Załaduj pliki danych wyników symulacji do modułu.
    6. Wybierz żądany typ analizy z opcji dostępnych w module (np. odchylenie średniokwadratowe [RMSD], fluktuacja średniej kwadratowej [RMSF], analiza wiązań wodorowych itp.). Określ wszelkie dodatkowe parametry wymagane dla wybranego typu analizy.
    7. Uruchom analizę, klikając przycisk Analizuj lub Start.
    8. Po zakończeniu analizy wyświetl i zinterpretuj wyniki w interfejsie modułu SID. W razie potrzeby eksportuj wyniki do dalszego wykorzystania lub prezentacji.

5. Walidacja eksperymentu na zwierzętach

  1. Zwierzęta i projektowanie eksperymentalne
    UWAGA: W badaniu tym wzięło udział 75 samców szczurów Sprague-Dawley, które uzyskano z zakładu produkcji zwierzęcej klasy SPF i miały 8 tygodni o masie ciała 150 g ± 20 g (numer certyfikatu produkcji zwierzęcej SCXK [Hebei] 2018-004).
    1. Umieść szczury w laboratorium dla zwierząt na poziomie SPF i losowo podziel je na grupy normalne i modelowe po 1 tygodniu karmienia adaptacyjnego. Zapewnij normalnej grupie normalną dietę, a grupie modelowej dietę wysokocukrową i wysokotłuszczową. Po 4 tygodniach pościć szczury, ale nie pozbawiać ich wody przez 12 godzin.
    2. Wstrzyknąć grupie modelowej dootrzewnowe wstrzyknięcie streptozotocyny (STZ; 35 mg·kg-1). Po 72 godzinach należy zbadać poziom cukru we krwi poprzez pobranie próbki krwi z żyły ogonowej. Jeśli poziom glukozy we krwi na czczo wynosi ≥16,7 mmol·L-1, potwierdź, że jest to udany model cukrzycy.
    3. Potwierdź udany model DN, obserwując zmiany histopatologiczne w nerce szczura.
    4. Losowo podziel pomyślnie powtórzone modele na grupę modelową, która otrzymała JWSJS w dawce 4,37 g/kg, 8,73 g/kg i 17,46 g/kg (co odpowiada 3,2, 6,3 i 12,6 razy klinicznie równoważnej dawce), a także grupę irbesartanu (0,014 g/kg). Każda grupa składała się z 10 szczurów. Wszystkie leki należy podawać przez zgłębnik doustny raz dziennie. Utrzymuj ten schemat dawkowania konsekwentnie przez 4 tygodnie.
    5. Znieczulić szczury za pomocą dootrzewnowego wstrzyknięcia 1% pentobarbitalu sodu (50 mg / kg) i potwierdzić prawidłowe znieczulenie poprzez utratę odruchu wycofania pedału. Pobrać próbki krwi z aorty brzusznej przed eutanazją.
    6. Pobrać nerki po eutanazji szczurów za pomocą dootrzewnowego wstrzyknięcia pentobarbitalu sodu w dawce 150 mg/kg.
      UWAGA: Zwierzęta zostały poddane eutanazji w sposób humanitarny, zgodnie z najbardziej aktualnymi wytycznymi (https://www.avma.org/resources-tools/avma-policies/avma-guidelines-euthanasia-animals) Amerykańskiego Stowarzyszenia Lekarzy Weterynarii (AVMA) dotyczącymi eutanazji.
  2. Analizy histologiczne nerek
    UWAGA: Tkanki nerkowe utrwalono w 4% paraformaldehydzie i odwodniono w etanolu po 48 godzinach; Skrawki zatopiono w parafinie. Skrawki pocięto na cienkie (4 μm) plastry w celu barwienia hematoksyliną i eozyną (HE) oraz kwasem okresowym Schiffa (PAS), a zmiany morfologiczne histologii nerek obserwowano pod mikroskopem świetlnym.
    1. Barwienie HE:
      1. Odparafinowanie i nawilżanie: Potraktuj skrawki tkanek ksylenem I i II (po 10 minut), alkoholem bezwodnym I i II (po 3 minuty). Następnie zanurz skrawki tkanki w 95%, 90%, 80% i 70% etanolu (po 2 minuty), a następnie przepłucz wodą destylowaną przez 5 minut.
      2. Umieść skrawki tkanki w barwieniu hematoksylinowym na 5 minut, a następnie różnicuj skrawki alkoholem solnym przez 5 sekund.
      3. Umieść sekcję w roztworze barwiącym eozynę na 3 minuty.
      4. Odwodnienie, oczyszczenie i montaż: Odwodnić sekcje w różnym czasie w różnych etanolach (70%, 80%, 90%, 95% i etanole absolutne), a następnie oczyścić je w ksylenie I i II, a następnie połączyć gumą neutralną.
    2. Barwienie PAS:
      1. Postępuj zgodnie z krokami odparafinowania opisanymi w kroku 5.2.1 i potraktuj sekcję roztworem do barwienia kwasem okresowym przez ~8 minut.
      2. Opłucz skrawki w wodzie destylowanej przez 2 minuty, a następnie zabarwij je odczynnikiem Schiffa przez 15 minut w ciemności.
      3. Umyj skrawki w wodzie z kranu przez 10 minut po potraktowaniu ich odczynnikiem Schiffa.
      4. Przeciwbarwić skrawki za pomocą hematoksyliny przez 1 minutę, a następnie różnicować je alkoholem HCl przez 30 s. Ponownie umyj skrawki w wodzie z kranu przez 5 minut, aby zabarwić jądro na niebiesko.
    3. Mikroskopia elektronowa:
      1. Utrwal próbki w 2,5% aldehydzie glutarowym przez 3 godziny, a następnie płucz je w PBS przez 3 godziny. Następnie próbki należy poddać działaniu 1% kwasu osmowego przez 3 godziny, a następnie ponownie płukać w PBS przez 3 godziny.
      2. Odwadnianie odbywa się poprzez stopniowaną serię kąpieli alkoholowych zakończonych acetonem (każdy etap trwa łącznie około 2 godzin).
      3. Próbki infiltrować mieszaniną epoksydowego propanu i żywicy epoksydowej (1:1) w temperaturze pokojowej (RT) przez 2 godziny, a następnie czystą żywicą epoksydową w temperaturze 37 °C przez dodatkowe 2 godziny.
      4. Następnie próbki należy utwardzić i utwardzić w coraz wyższych temperaturach przez okres 36 godzin przed podziałem na sekcje. Proces ten zapewnia, że tkanka jest dokładnie infiltrowana żywicą, która jest następnie utwardzana, aby umożliwić cienkie plasterki do mikroskopii elektronowej.
      5. Podwójnie zabarwić 3% octanem uranylu i kwasem ołowiowym, a następnie obserwować i fotografować próbki za pomocą mikroskopii elektronowej w ciągu 15 minut
        UWAGA: Ustawienia transmisyjnej mikroskopii elektronowej (TEM) są następujące: powiększenie 7000x w trybie wysokiego kontrastu (Zoom-1 HC-1), z napięciem przyspieszającym 80,0 kV w systemie TEM.
  3. Immunohistochemia
    1. Odparafinowanie: Umieść skrawki tkanki w ksylenie I i II na 10 minut każdy.
    2. Ponowne nawodnienie: Ponownie nawodnić odparafinowane skrawki tkanki, umieszczając je kolejno w absolutnym etanolu I i II na 3 minuty każde, a następnie 95%, 90%, 80% i 70% etanolu przez 2 minuty każda.
    3. Pobieranie antygenu: Zanurzyć skrawki tkanki w 0,1 M roztworze buforowym cytrynianu i kwasu cytrynowego pod wysokim ciśnieniem na około 5 minut, a następnie schłodzić do temperatury pokojowej.
    4. Blokowanie: Aby zapobiec niespecyficznemu wiązaniu przeciwciał, należy zablokować poprzez inkubację skrawków tkanek z 5% normalną surowicą kozią w temperaturze około 37 °C przez 30 minut.
    5. Inkubacja przeciwciał pierwszorzędowych: Dodać przeciwciała pierwszorzędowe p-EGFR (rozcieńczone w stosunku 1:200) i p-MAPK3/1 (rozcieńczone w stosunku 1:200) do wycinków tkanki i inkubować przez noc w temperaturze 4 °C w wilgotnej komorze.
    6. Inkubacja przeciwciał wtórnych: Przemyć skrawki trzykrotnie PBS, następnie dodać przeciwciała drugorzędowe znakowane biotyną (rozcieńczone w PBS zgodnie z instrukcjami producenta) na skrawki i inkubować w temperaturze 37 °C przez 30 minut.
    7. Nanieść roztwór roboczy streptawidyny sprzężony z peroksydazą chrzanową na skrawki tkanki w temperaturze 37 °C, a następnie trzykrotnie przemyć roztworem soli fizjologicznej buforowanym fosforanem (PBS).
    8. W celu opracowania DAB należy inkubować sekcje z roztworem rozwijającym DAB (3 minuty w ciemności w temperaturze pokojowej), a następnie przepłukać wodą destylowaną. DAB działa jako substrat chromogenowy dla enzymu peroksydazy chrzanowej (HRP), który po utlenieniu brązowieje.
    9. Użyj hematoksyliny do barwienia przeciwstawnego przez około 2 minuty, rozdziel skrawki 1% alkoholem solnym przez 5 s, a następnie umyj pod bieżącą wodą, aby zmieniły kolor na niebieski.
    10. Odwodnić poprzez kolejno umieszczanie skrawków w szeregu etanolu o stężeniu od niskiego do wysokiego stężenia, klarownego w ksylenie I i II, a następnie zamontować skrawki za pomocą neutralnej gumy.
      UWAGA: Ta procedura trwa około 18-24 godzin, wliczając w to nocną inkubację przeciwciał pierwotnych.
    11. Losowo wybierz trzy pola wizualne (200x) dla każdej sekcji i przeanalizuj wyniki barwienia przekrojów za pomocą oprogramowania do analizy obrazu. Oprogramowanie Image Pro Plus 6.0 zostało użyte zgodnie z poniższymi krokami.
    12. Najpierw zaimportuj obraz sekcji do oprogramowania.
    13. Korekcja gęstości: Aby zapewnić dokładne wyniki, należy wykonać korektę gęstości.
      1. Przejdź do opcji Pomiar > Kalibracja > intensywności > nowe standardowe opcje > gęstości nowej > > obrazu. Następnie kliknij pusty obszar obrazu, aby zapisać wartość tła i potwierdź ją, klikając OK.
    14. Ustawianie parametrów pomiaru: Skonfiguruj parametry pomiaru, aby obliczyć powierzchnię i zintegrowaną gęstość optyczną (IOD).
      1. Kliknij Zmierz > liczbę/rozmiar> Zmierz > wybierz Pomiary. Wybierz Obszar (100) i IOD, a następnie kliknij przycisk OK.
      2. Przejdź do Opcji, zaznacz Ciemne tło na próbce, 4-Connect Pre-Filter i kliknij OK.
    15. Wybór koloru: Aby dokładnie określić pozytywność, wybierz kolory, aby wykryć obszary poplamione i obszary niebarwione.
      1. Kliknij Wybierz kolory > histogram oparty > HSI. Dostosuj wartość H zgodnie z obrazem, zachowując S bez zmian, a I w zakresie od zera do wartości tła. Następnie potwierdź, klikając Zamknij.
      2. Gromadzenie danych i obliczanie: Wykonaj zbieranie danych i obliczenia, klikając pozycję Zmierz > Kolektor danych > Układ, gdzie wybrano Nazwę, Obszar (Suma) i IOD (Suma). Następnie kliknij Policz > Zbierz teraz > Lista danych, aby wyeksportować dane do dalszej analizy lub przechowywania.
        UWAGA: W ten sposób uzyskano półilościowy pomiar ekspresji białka w każdej sekcji pod względem IOD/Area, który wskazuje, ile białka jest obecne w stosunku do całkowitego analizowanego obszaru.
  4. Western blotting (zachodnia plama)
    1. Zdobądź tkankę nerkową i pokrój ją na kawałki. Umieść te kawałki w probówce wirówkowej o pojemności 1,5 ml, dodaj wstępnie schłodzony roztwór do lizy białek (50 mM Tris [pH 7,4], 150 mM NaCl, 1% Triton X-100, 1% deoksycholan sodu, 0,1% dodecylosiarczan sodu [SDS]) i homogenizuj.
    2. Pozostawić na lodzie na 30 minut, a następnie odwirować w temperaturze 13400 x g przez 20 minut w temperaturze 4 °C. Otrzymaną próbkę przechowywać w zamrażarce o temperaturze -80 °C.
    3. Użyj metody Bradforda, aby określić ilościowo białka.
      1. Przygotować roztwór roboczy Coomassie Brilliant Blue, mieszając odczynnik i wodę destylowaną w stosunku 1:4.
      2. Ustal trzy grupy - ślepą, standardową grupę białkową i grupę białka próbki. Dodaj 3 ml roztworu roboczego Coomassie Brilliant Blue do każdej grupy wraz z solą fizjologiczną dla grupy ślepej, białkiem wzorcowym dla grupy wzorcowej i wyekstrahowanym białkiem supernatantowym dla grupy próbki.
      3. Po odstawieniu mieszanin na 5 minut zmierzyć ich wartości absorbancji za pomocą spektrofotometru ultrafioletowego.
      4. Obliczyć stężenie próbki za pomocą tego wzoru: Stężenie białka (mg / ml) = (wartość absorbancji próbki/standardowa wartość absorbancji probówki) x standardowe stężenie białka x 5.
    4. Dodać równą objętość 6-krotnego buforu ładującego do każdej próbki białka. Gotować w temperaturze 100 °C przez 5 minut, a następnie porcjować i przechowywać w zamrażarce w temperaturze -20°C do czasu dalszego użycia.
    5. Wykonaj standardową elektroforezę, osuszanie i blokowanie.
      1. Wykonaj standardową elektroforezę w żelu poliakryloamidowym SDS (PAGE) przy użyciu żelu o rozdzielczości 12%. Zastosuj stałe napięcie 100 V dla żelu do układania w stosy i 120 V dla żelu rozdzielczego, aż przód barwnika dotrze do dna żelu.
      2. Przenieść białka na membrany z polifluorku winylidenu (PVDF) pod napięciem 100 V przez 2 godziny w chłodni w temperaturze 4 °C przy użyciu mokrego systemu przenoszenia.
      3. Po transferze białka zablokuj błony z 5% mlekiem beztłuszczowym w TBST przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.
    6. Rozcieńczyć przeciwciała pierwszorzędowe EGFR (1:2,000), p-EGFR (1:2,000), MAPK3/1 (1:2,000), p-MAPK3/1 (1:2,000), Bcl-2 (1:2,000), BAX (1:2,000) i CAPDH (1:5,000) w TBST z 5% BSA. Dodać rozcieńczone przeciwciała pierwszorzędowe i inkubować błony przez noc w temperaturze 4 °C, delikatnie mieszając.
    7. Po trzykrotnym przemyciu membrany TBST dodać rozcieńczone przeciwciała drugorzędowe (1:5 000), a następnie inkubować przez 1 godzinę. Po opracowaniu koloru przeprowadzić analizę ilościową pasm docelowych za pomocą oprogramowania ImageJ.
  5. Analiza qPCR
    1. Grupowanie: Przypisz próbki do grup - Kontrola, DN, Irbesartan, JWSJS-L, JWSJS-M, JWSJS-H.
    2. Ekstrakcja RNA: Wykonaj homogenizację tkanek i ekstrakcję RNA, a następnie dodanie chloroformu, odwirowanie i wytrącanie RNA zgodnie z instrukcjami producenta.
    3. Wytrącanie i mycie RNA: Wytrącić RNA izopropanolem i przemyć etanolem.
    4. Solubilizacja RNA: Wysuszyć osad RNA i rozpuścić go w wodzie uzdatnionej przez DEPC.
    5. Synteza cDNA: Wykonaj odwrotną transkrypcję przy użyciu określonych mieszanin reakcyjnych zgodnie z instrukcjami producenta.
    6. Amplifikacja qPCR: Użyj specjalnych starterów do GAPDH, MAPK3, MAPK1 i EGFR do qPCR i wykonaj amplifikację zgodnie z instrukcjami producenta.
      Sekwencje starterów były następujące:
      GAPDH: F-5'-GCAAGTTCAACGGCACAG-3', R-5'-CTCGCTCCTGGAAGATGG-3';
      MAPK3: F-5'-AGATCTGTGATTTTGGCCT-3', R-5'-TCAATGGATTTGGTGTAGC-3';
      MAPK1: F-5'-CCTCAAGCCTTCCAACCTC-3', R-5'-GCCCACAGACCAAATATCA-3';
      EGFR: F-5'-GGGGATGTGATTATTTCTG-3, R-5'-ATTTTGGTCTTTTGATTGG-3'.

6. Metody statystyczne

  1. Przeprowadzić analizę za pomocą odpowiedniego oprogramowania (np. SPSS) i przedstawić zmierzone dane jako średnią ± odchylenie standardowe. Jeśli dane spełniały kryteria rozkładu normalnego i jednorodności wariancji, porównaj grupy za pomocą jednoczynnikowej ANOVA i przeprowadź wielokrotne porównania metodą Bonferroniego.
  2. Testu T2 należy używać do wielokrotnych porównań, jeśli wariancja nie jest jednorodna. Uznajmy, że P < 0,05 jest statystycznie istotne.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Zgodnie z protokołem, po przeprowadzeniu analizy, przesiewania i usuwaniu duplikatów według ustalonych standardów OB i DL, ostatecznie uzyskano 90 składników aktywnych JWSJS. Obejmowały one 20 rodzajów składników Hedysarum Multijugum Maxim, 23 rodzaje Epimrdii Herba, 15 rodzajów Smilacis Glabrae Rhixoma, 16 rodzajów Radix Rhei et Rhizome, cztery rodzaje Curcumaelongae Rhizoma, 15 rodzajów Cicadae Periostracum oraz sześć rodzajów składników Bombyx Batryticatus...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

W naszym badaniu wykorzystaliśmy połączenie farmakologii sieciowej, dokowania molekularnego i modeli zwierzęcych in vivo . Kluczowym krokiem było utworzenie sieci "lek-komponent-cel", która miała kluczowe znaczenie dla zidentyfikowania potencjalnych mechanizmów JWSJS w leczeniu DN, ze szczególnym uwzględnieniem jego interakcji ze szlakiem sygnałowym EGFR/MAPK3/1.

Podczas tego badania dokonaliśmy kilku modyfikacji, szczególnie w procesie dokowania molekularnego, aby zwiększyć dokładnoś...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

To badanie było wspierane przez ogólny projekt Fundacji Nauk Przyrodniczych prowincji Hebei, Chiny (nr H2019423037).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
2 razy; SYBR Green qPCR Master Mix Servicebio, Wuhan, ChinyG3320-05
24-godzinna kwantyfikacja białka moczu (UTP)Nanjing Jiancheng Institute of Biological EngineeringN/A
3,3'-diaminobenzydynaShanghai Huzheng Biotech, Chiny91-95-2
Automatyczny przyrząd do analizy biochemicznejHitachi, Japonia7170A
Bezwodny etanolBiosharp, Tianjin, ChinyN/A
BAX Przeciwciała pierwotne Powinowactwo, USAAF0120
Szczur BCL-2 Przeciwciała pierwszorzędowe Powinowactwo, USAAF6139
Szczur BX53mikroskop Olympus, JaponiaBX53
Substytut chloroformuECOTOP, Guangzhou, ChinyES-8522
Oprogramowanie Desmond Nowy Jork, NY, USAWydanie 2019-1
Cyfrowa łaźnia wodna o stałej temperaturzeInstrument Changzhou Jintan Liangyou, ChinyDK-8D
EGFR Przeciwciała pierwotne Affinity, USAAF6043Rat
Embed-812 RESINShell Chemical, USA14900
Stężenie glukozy we krwi na czczo (FBG)Nanjing Jiancheng Institute of Biological EngineeringN/A
Analizator etykiet enzymów o pełnej długości fali typu FCMultiskan; Thermo, Stany ZjednoczoneNie dotyczy
GAPDH  Przeciwciała pierwszorzędowe Powinowactwo, USAAF7021
Szczurze glikowane białko surowicy (GSP)Instytut Inżynierii Biologicznej Nanjing JianchengNie dotyczy
Transmisyjnego mikroskopu elektronowegoHitachi, JaponiaH-7650
Roztwór do barwienia hematykaliny/eozyny (HE)Servicebio, Stany ZjednoczoneG1003
Image-Pro PlusMEDIA CYBERNETYKA, USAN/A
Przyrząd do amplifikacji PCR w czasie rzeczywistym AppliedBiosystems, USAiQ5 
Irbesartan tabletkiHangzhou Sanofi PharmaceuticalsN/A
IsopropanolBiosharp, Tianjin, ChinyN/A
  Granulki JWSJSGuangdong Yifang PharmaceuticalN/A
Kodak Image Station System obrazowania 2000 MMKodak, USAIS2000
Cholesterol o niskiej gęstości (LDL-C)Nanjing Jiancheng Institute of Biological EngineeringN/A
MAPK3/1Przeciwciała pierwszorzędowe Affinity, USAAF0155
Wirówka medyczna dla szczurówRozwój przyrządów laboratoryjnych Hunan Xiangyi, Chiny TGL-16K
Mini system transferu trans-blotBio-Rad, USAN/A
Mini-PROTEAN system elektroforezyBio-Rad, USAN/A
Spektrofotometr NanoVue PlusHealthcare Bio-Sciences AB, Szwecja111765
p-EGFR Przeciwciała pierwotne Powinowactwo, USAAF3044
Szczur Roztwór do barwienia kwasem okresowym Schiffa (PAS)Servicebio, USAG1008
p-MAPK3/1 Przeciwciała pierwszorzędowe Powinowactwo, USAAF1015
Szczur Przeciwciała drugorzędowe  Santa Cruz, Stany Zjednoczonesc-2357
StreptozotocynaSigma, USAS0130
Zestaw do syntezy pierwszej nici cDNASureScript GeneCopeia, USAQP056T
TriQuick OdczynnikSolarbio, Pekin, ChinyR1100
Ultra-czysty stół warsztatowySprzęt do oczyszczania Suzhou, ChinySW-CJ-1F 
królika

Bibliografia

  1. Viigimaa, M., Sachinidis, A., Toumpourleka, M., Koutsampasopoulos, K., Alliksoo, S., Titma, T. Macrovascular complications of Type 2 diabetes mellitus. Curr Vasc Pharmacol. 18 (2), 110-116 (2020).
  2. Umanath, K., Lewis, J. B. Update on diabetic nephropathy: Core Curriculum 2018. Am J Kidney Dis. 71 (6), 884-895 (2018).
  3. Han, W., et al. Huangkui capsule alleviates renal tubular epithelial-mesenchymal transition in diabetic nephropathy via inhibiting NLRP3 inflammasome activation and TLR4/NF-kappaB signaling. Phytomedicine. 57, 203-214 (2019).
  4. Giralt-Lopez, A., et al. Revisiting experimental models of diabetic nephropathy. Int J Mol Sci. 21 (10), 3587(2020).
  5. Lu, Z., Zhong, Y., Liu, W., Xiang, L., Deng, Y. the efficacy and mechanism of Chinese herbal medicine on diabetic kidney disease. J Diabetes Res. 2019, 2697672(2019).
  6. Niu, H., et al. The therapeutic mechanism of PuRenDan for the treatment of diabetic nephropathy: Network pharmacology and experimental verification. J Ethnopharmacol. 293, 115283(2022).
  7. Gao, F., Wang, Z., Yang, B., Tan, J. Mechanism of Jiawei Shengjiang San in the treatment of membranous nephropathy based on network pharmacology. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 37 (5), 132-138 (2021).
  8. Li, W., Xie, M. Analysis of composing and application rule in the evolution of Shengjiang San. Journal of Beijing University of Traditional Chinese Medicine. 44 (10), 894-898 (2021).
  9. Zhang, Y., et al. Mechanism of Jiawei Shengjiang powder in inhibiting renal inflammation and fibrosis in diabetic rats based on TLR4/NF-kappaB and Raf/MEK pathways. Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica. 38 (5), 20-27 (2022).
  10. Zhao, L., et al. Pharmacodynamic mechanism of Yishen Tongluo Formula in treatment of diabetic kidney disease based on network pharmacology and verification of key regulation pathway. Journal of Beijing University of Traditional Chinese Medicine. 45 (8), 824-834 (2022).
  11. Zhang, J., Liang, R., Wang, L., Yang, B. Effects and mechanisms of Danshen-Shanzha herb-pair for atherosclerosis treatment using network pharmacology and experimental pharmacology. J Ethnopharmacol. 229, 104-114 (2019).
  12. Chen, L., et al. Network pharmacology-based strategy for predicting active ingredients and potential targets of Yangxinshi tablet for treating heart failure. J Ethnopharmacol. 219, 359-368 (2018).
  13. Zhu, M., Qin, Y. C., Gao, C. Q., Yan, H. C., Wang, X. Q. l-Glutamate drives porcine intestinal epithelial renewal by increasing stem cell activity via upregulation of the EGFR-ERK-mTORC1 pathway. Food Funct. 11 (3), 2714-2724 (2020).
  14. Ding, Z., et al. Systems pharmacology reveals the mechanism of activity of Ge-Gen-Qin-Lian decoction against LPS-induced acute lung injury: A novel strategy for exploring active components and effective mechanism of TCM formulae. Pharmacol Res. 156, 104759(2020).
  15. Pinzi, L., Rastelli, G. Molecular docking: Shifting paradigms in drug discovery. Int J Mol Sci. 20 (18), 4331(2019).
  16. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biol. 8 (6), e1000412(2010).
  17. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guides for the Care and Use of Laboratory Animals. , National Academies Press (US). Washington (DC. (2011).
  18. Ru, J., et al. TCMSP: a database of systems pharmacology for drug discovery from herbal medicines. J Cheminform. 6, 13(2014).
  19. Xu, X., et al. A novel chemometric method for the prediction of human oral bioavailability. Int J Mol Sci. 13 (6), 6964-6982 (2012).
  20. Tao, W., et al. Network pharmacology-based prediction of the active ingredients and potential targets of Chinese herbal Radix Curcumae formula for application to cardiovascular disease. J Ethnopharmacol. 145 (1), 1-10 (2013).
  21. Traditional Chinese Medicine and Chemical Composition databases in Chemistry Database[DB/OL]. , Available from: http://www.organchem.csdb.cn (2021).
  22. Halladay, C. W., Trikalinos, T. A., Schmid, I. T., Schmid, C. H., Dahabreh, I. J. Using data sources beyond PubMed has a modest impact on the results of systematic reviews of therapeutic interventions. J Clin Epidemiol. 68 (9), 1076-1084 (2015).
  23. Daina, A., Michielin, O., Zoete, V. SwissADME: a free web tool to evaluate pharmacokinetics, drug-likeness and medicinal chemistry friendliness of small molecules. Sci Rep. 7, 42717(2017).
  24. UniProt, C. Reorganizing the protein space at the Universal Protein Resource (UniProt). Nucleic Acids Res. 40 (D1), D71-D75 (2012).
  25. Stelzer, G., et al. The GeneCards Suite: From gene data mining to disease genome sequence analyses. Curr Protoc Bioinformatics. 54, 1-33 (2016).
  26. Amberger, J. S., Hamosh, A. Searching Online Mendelian Inheritance in Man (OMIM): A knowledgebase of human genes and genetic phenotypes. Curr Protoc Bioinformatics. 58, 1-12 (2017).
  27. Zhou, Y., et al. Therapeutic target database update 2022: facilitating drug discovery with enriched comparative data of targeted agents. Nucleic Acids Res. 50 (D1), D1398-D1407 (2022).
  28. Whirl-Carrillo, M., et al. Pharmacogenomics knowledge for personalized medicine. Clin Pharmacol Ther. 92 (4), 414-417 (2012).
  29. Law, V., et al. DrugBank 4.0: shedding new light on drug metabolism. Nucleic Acids Res. 42 (D1), D1091-D1097 (2014).
  30. Shannon, P., et al. Cytoscape: a software environment for integrated models of biomolecular interaction networks. Genome Res. 13 (11), 2498-2504 (2003).
  31. Xu, J., et al. Pharmacological mechanisms underlying the neuroprotective effects of Alpinia oxyphylla Miq. on Alzheimer's disease. Int J Mol Sci. 21 (6), 2071(2020).
  32. Tang, Y., Li, M., Wang, J., Pan, Y., Wu, F. X. CytoNCA: a cytoscape plugin for centrality analysis and evaluation of protein interaction networks. Biosystems. 127, 67-72 (2015).
  33. Yu, G., Wang, L. G., Han, Y., He, Q. Y. clusterProfiler: an R package for comparing biological themes among gene clusters. OMICS. 16 (5), 284-287 (2012).
  34. Trott, O., Olson, A. J. AutoDock Vina: improving the speed and accuracy of docking with a new scoring function, efficient optimization, and multithreading. J Comput Chem. 31 (2), 455-461 (2010).
  35. Yang, X., et al. Rational selection of the 3D structure of biomacromolecules for molecular docking studies on the mechanism of endocrine disruptor action. Chem Res Toxicol. 29 (9), 1565-1570 (2016).
  36. Diller, D. J., Merz, K. M. throughput docking for library design and library prioritization. Proteins. 43 (2), 113-124 (2001).
  37. Hsin, K. Y., Ghosh, S., Kitano, H. Combining machine learning systems and multiple docking simulation packages to improve docking prediction reliability for network pharmacology. PLoS One. 8 (12), e83922(2013).
  38. Godse, N. R., et al. TMEM16A/ANO1 inhibits apoptosis via downregulation of Bim expression. Clin Cancer Res. 23 (23), 7324-7332 (2017).
  39. Ilhan, I., et al. Irbesartan decreased mitochondrial stress-related apoptosis in cisplatin-induced acute kidney injury via regulating BCL-2/BAX signaling. Mol Biol Rep. 49 (7), 6125-6133 (2022).
  40. Lee, M., et al. Protective effect of hydroxysafflor yellow a on nephropathy by attenuating oxidative stress and inhibiting apoptosis in induced Type 2 diabetes in rat. Oxid Med Cell Longev. 2020, 7805393(2020).
  41. Schlessinger, J. Ligand-induced, receptor-mediated dimerization and activation of EGF receptor. Cell. 110 (6), 669-672 (2002).
  42. Gu, X., Chu, L., Kang, Y. Angiogenic factor-based signature predicts prognosis and immunotherapy response in non-small-cell lung cancer. Front Genet. 13, 894024(2022).
  43. Chu, L., et al. Age-related changes in endogenous glucocorticoids, gonadal steroids, endocannabinoids and their ratios in plasma and hair from the male C57BL/6 mice. Gen Comp Endocrinol. 301, 113651(2021).
  44. Chen, J., Chen, J. K., Harris, R. C. EGF receptor deletion in podocytes attenuates diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol. 26 (5), 1115-1125 (2015).
  45. Skibba, M., et al. New EGFR inhibitor, 453, prevents renal fibrosis in angiotensin II-stimulated mice. Eur J Pharmacol. 789, 421-430 (2016).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Sygnalizacja EGFRszlak MAPK3/1farmakologia sieciowadokowanie molekularnesieć oddziaływań białkowychregulacja apoptozyhistopatologia nerek
Antagonistyczny wpływ Jiawei Shengjiang San na szczurzy model nefropatii cukrzycowej: związany ze szlakiem sygnałowym EGFR/MAPK3/1
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.