Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Charakterystyka wielolekowych systemów wypływu u Acinetobacter baumannii przy użyciu szczepu bakteryjnego z niedoborem wypływu i systemu ekspresji genów z pojedynczą kopią

1.6K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/66471

⸱

5 stycznia 2024

 , 

W tym artykule

Podsumowanie

Opisujemy łatwą procedurę jednokopijnego uzupełniania chromosomalnego genu pompy wypływu za pomocą systemu ekspresji opartego na mini-Tn7 do zmodyfikowanego szczepu Acinetobacter baumannii, z niedoborem wypływu. To precyzyjne narzędzie genetyczne pozwala na kontrolowaną ekspresję genów, co ma kluczowe znaczenie dla scharakteryzowania pomp wypływowych w patogenach opornych na wiele leków.

Streszczenie

Acinetobacter baumannii jest uznawany za trudny patogen Gram-ujemny ze względu na jego powszechną oporność na antybiotyki. Kluczowe jest zrozumienie mechanizmów stojących za tą opornością, aby zaprojektować nowe i skuteczne opcje terapeutyczne. Niestety, nasza zdolność do zbadania tych mechanizmów u A. baumannii jest utrudniona przez niedostatek odpowiednich narzędzi manipulacji genetycznej. W tym miejscu opisujemy metody wykorzystania chromosomalnego systemu opartego na mini-Tn7 w celu osiągnięcia ekspresji genu w pojedynczej kopii w szczepie A. baumannii, który nie ma funkcjonalnych mechanizmów wypływu typu RND. Insercja pojedynczej kopii i indukowalna ekspresja pompy wypływowej są dość korzystne, ponieważ obecność operonów wypływu RND na plazmidach o dużej liczbie kopii jest często słabo tolerowana przez komórki bakteryjne. Co więcej, włączenie rekombinowanych wektorów ekspresyjnych mini-Tn7 do chromosomu zastępczego gospodarza A. baumannii o zwiększonej wrażliwości na wypływ pomaga uniknąć zakłóceń powodowanych przez inne pompy wypływu. System ten jest cenny nie tylko do badania niescharakteryzowanych bakteryjnych pomp wypływowych, ale także do oceny skuteczności potencjalnych inhibitorów ukierunkowanych na te pompy.

Wprowadzenie

Acinetobacter baumannii jest patogenem o najwyższym priorytecie Światowej Organizacji Zdrowia ze względu na jego odporność na wszystkie klasy antybiotyków1. Jest to patogen oportunistyczny atakujący głównie osoby hospitalizowane, ranne lub z obniżoną odpornością. A. baumannii w dużej mierze unika antybiotyków za pomocą pomp wypływowych, z których najistotniejszą jest rodzina eksporterów Resistance-Nodulation-Division (RND)2. Zrozumienie, w jaki sposób te pompy wypływowe działają mechanicznie, pozwoli na opracowanie ukierunkowanych opcji terapeutycznych.

Jednym z pows....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

1. Przygotowanie eksperymentalne

  1. Oczyść plazmid pUC18T-mini-Tn7T-LAC-Gm9 (plazmid insercyjny, Rysunek 2A) za pomocą interesującego genu.
    UWAGA: W tym przypadku interesującym genem jest adeIJK. Końcowe stężenie plazmidu powinno wynosić ≥100 ng/μL.
  2. Oczyść plazmid pomocniczy (pTNS2)9 i plazmid wycinający (pFLP2ab)6 (Rysunek 2B,C, odpowiednio), najlepiej do końcowego stężenia plazmidowego DNA wynoszącego ≥100 ng / μL.
  3. Przygotuj 50 ml sterylnej ultraczys....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Procedura insercji chromosomalnej trwa łącznie tylko 2 h w ciągu 3 dni do momentu uzyskania wyniku – kolonii rosnących na selektywnym podłożu agarowym (Rysunek 1A-C). Oczekiwana liczba kolonii na płytce po transformacji zależy od szczepu: można zaobserwować od 20-30 do nawet setek kolonii, ponieważ insercja Tn7 w miejscach attTn7 jest specyficzna i wydajna9. Przenoszenie kolonii z płytki po transformacji na podłoża selektywne.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Mimo że ta procedura chromosomalnej insercji indukowalnego systemu ekspresji genów z pojedynczą kopią u A. baumannii jest technicznie prosta i nie jest pracochłonna, istnieje kilka ważnych kroków, które należy podkreślić. Po pierwsze, przygotowanie właściwych komórek musi odbywać się w jak największym stopniu na lodzie, ponieważ komórki stają się kruche podczas wymiany pożywki na lodowatą wodę. Idealnie byłoby, gdyby etapy wirowania odbywały się w temperaturze 4 °C, ale dopuszczalne jest wirowanie w temperaturze.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

Ta praca była wspierana przez Grant Odkrywczy od Kanadyjskiej Rady Nauk Przyrodniczych i Inżynierii dla AK. Schematy użyte na rysunkach są tworzone za pomocą BioRender.com.

....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Probówka do PCR 0,2 mlVWR20170-012Do preparatów do gotowania kolonii i reakcji PCR
1,5 ml probówki do mikrofugeSarstedt72-690-301Probówki do hodowli ogólnego zastosowania
13 mL, PyrexFisher14-957KPłynne naczynia hodowlane
6x bufor ładujący DNAFroggabioLD010Żel agarozowy elektroforeza do ładowania próbki barwnik
octowy kwas, lodowiecFisher351271-212Składnik buforowy w żelu agarozowym
AgarBioshopAGR003Stałe podłoże wzrostowe
AgarozaBioBasicD0012Separacja elektroforetyczna produktów reakcji PCR; stosowany w stężeniu 0,8– 2%
Jednostka do elektroforezy w żelu agarozowymFisher29-237-54Elektroforeza w żelu agarozowym; rozdzielanie produktów reakcji PCR
KarbenicylinaFisher50841231Pożywki selektywne
Zamknięcia probówek hodowlanychFisher13-684-138Nakrętka ze stali nierdzewnej do probówek hodowlanych 13 ml
Zestaw trifosforanu deoksynukleotydu (dNTP)BiobasicDD0058składnik reakcji PCR; dostarczane jako 100 mM każdy dATP, dCTP, dGTP, dTTP; zmieszane i rozcieńczone przez 10 mM każdy dNTP
Sucha kąpiel/grzałka blokowaFisher88860023Cyfrowa sucha łaźnia Isotemp do przygotowania wrzenia
Kuwety do elektroporacjiVWR89047-208Kuwety do elektroporacji 2 mm z okrągłą nasadką
ElektroporatorCole Parmer940000009110 VAC, 60 Hz Elektroporator
Bromek etydynyFisherBP102-1Wizualizacja produktów reakcji PCR i markera DNA w żelu agarozowym
Kwas etylenodiaminotetraoctowy (EDTA)VWRCA-EM4050Składnik buforowy w żelu agarozowym
GentamycynaBiobasicGB0217Do przygotowania pożywek selektywnych
GlicerolFisherG33Przygotowanie zapasów bakterii do długotrwałego przechowywania w zamrażarce o bardzo niskiej temperaturze
Inkubator (wytrząsanie)New Brunswick ScientificM1352-0000Excella E24 Wytrząsarka do wzrostu płynnych kultur
Inkubator (statyczny)Fisher11-690-550DPiec do inkubatora izotemperaturowego Model 550D do wzrostu kultur stałych (agar LB)
Pętla inokulacyjnaSarstedt86.1562.050Smugi kolonii na płytkach agarowych
Rozsiewacz inokulacjiSarstedt86.1569.005Rozprzestrzenianie hodowla na płytkach agarowych
Rosół lizogeniczny (LB), LennoxFisherBP1427Płynna pożywka wzrostowa (20 g/l: 5 g/l chlorku sodu, 10 g/l tryptonu, 5 g/l ekstraktu drożdżowego)
MicrofugeFisher75002431Sorvall Legend Micro 17 do wirowania próbek
MiniwirówkaFisherS67601BWirowanie 0,2 ml probówek PCR
Szalki PetriegoSPL Nauki przyrodnicze10090Do stałych pożywek wzrostowych (płytki agarowe): 90 x 15 mm
Pipety MandelRóżnepipety jednokanałowe Gilson (P10, P20, P200, P1000)
ZasilanieBiorad1645050PowerPac Podstawowy zasilacz do elektroforezy
Startery SkładnikIDTNAPCR; specyficzny dla genu będącego przedmiotem zainteresowania; przygotowany w temperaturze 100 μ M zgodnie z zaleceniami w karcie specyfikacji produktu
SacharozaBioBasicSB0498Do przygotowania pożywek przeciwselektywnych do usuwania plazmidu pFLP2ab z transformowanego A. baumannii
Taq DNA polimerazaFroggaBioT-500Składnik reakcji PCR; polimeraza dostarczana z 10x buforem
TermocyklerBiorad1861096Model T100 do PCR
WykałaczkiFisherS24559Do łatania kolonii na płytkach agarowych
Baza TrizmaSigmaT1503Składnik buforowy w żelu agarozowym
Woda ultraczystaMillipore SigmaZLXLSD51040MilliQ: ultra czysta woda do przygotowania pożywek i roztworów oraz mycia komórek
Szeroki zakres markerów DNABiobasicM103R-2Oznaczanie wielkości produktów PCR na żelu agarozowym
Drewniane patyczki do zaszczepianiaFisher29-801-02Zaszczepianie kultur koloniami z płytek agarowych
reakcji System oczyszczania wody

Bibliografia

  1. Prioritization of pathogens to guide research, discovery, research and development of new antibiotics for drug-resistant bacterial infections, including tuberculosis. World Health Organization. , Geneva, Switzerland . Available from: https://www.who.int/publications/i/item/WHO-EMP-IAU-2017.12 (2017).
  2. Kornelsen, V., Kumar, A. Update on multidrug resistance efflux pumps in Acineto....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Ekspresja pomp effluxchromosomowy system Mini-Tn7mechanizmy efflux RNDkomórki elektrokompetentneprzesiewowa metoda colony PCRoporność na antybiotykiinsercja genów