Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Integracja oceny behawioralnej zwierząt i konwolucyjnej sieci neuronowej w celu zbadania interakcji smak-zapach między wasabi a alkoholem

1.3K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/66981

⸱

16 sierpnia 2024

 ,  ,  ,  ,  , 

W tym artykule

Podsumowanie

Ten artykuł opisuje zestaw metod do mierzenia zdolności tłumienia picia napojów alkoholowych na uczucie pieczenia wywołanego przez wasabi.

Streszczenie

Komercyjne pasty wasabi powszechnie używane do przygotowywania posiłków zawierają homologiczny związek izotiocyjanianów chemosensorycznych (ITC), które wywołują drażniące uczucie po spożyciu. Wpływ wąchania dietetycznych napojów alkoholowych na odczuwanie ostrości wasabi nigdy nie był badany. Podczas gdy większość badań oceny sensorycznej koncentruje się osobno na poszczególnych produktach spożywczych i napojach, brakuje badań nad badaniem węchowym wąchania alkoholu podczas spożywania wasabi. Tutaj opracowano metodologię, która łączy wykorzystanie badania behawioralnego na zwierzętach i konwolucyjnej sieci neuronowej do analizy mimiki myszy, gdy jednocześnie wąchają alkohol i spożywają wasabi. Wyniki pokazują, że wytrenowany i zwalidowany model głębokiego uczenia rozpoznaje 29% obrazów przedstawiających wspólne leczenie wasabi i alkoholu należących do klasy grupy wasabi-ujemnych alkoholowo-dodatnich bez konieczności filtrowania wcześniejszych materiałów szkoleniowych. Analiza statystyczna wyników skali grymasu myszy uzyskanych z wybranych obrazów klatek wideo ujawnia istotną różnicę (P < 0,01) między obecnością a brakiem alkoholu. Odkrycie to sugeruje, że dietetyczne napoje alkoholowe mogą mieć zmniejszający wpływ na reakcje wywołane przez wasabi u myszy. Ta łączona metodologia ma potencjał w zakresie badań przesiewowych poszczególnych związków ITC i analiz sensorycznych składników spirytusowych w przyszłości. Potrzebne są jednak dalsze badania, aby zbadać mechanizm leżący u podstaw indukowanego alkoholem tłumienia ostrości wasabi.

Wprowadzenie

Wasabia japonica, powszechnie znana jako wasabi, zyskała uznanie w przygotowywaniu żywności1,2. Intensywne doznania sensoryczne, jakie wywołuje po spożyciu, charakteryzujące się łzawieniem, kichaniem lub kaszlem, są dobrze znane. Ta charakterystyczna ostrość wasabi może być przypisana homologicznemu związkowi izotiocyjanianów chemosensorycznych (ITC). Są to lotne fitochemikalia siarkoorganiczne, które można podzielić na ω-alkenylowe i ω-metylotioalkiloizotiocyjaniany3. Wśród tych związków, izotiocyjanian allilu (AITC) jest najbardziej dominującym naturalnym produktem ITC występującym w roślinach należących do rodziny krzyżowych, takich jak chrzan i gorczyca4. Komercyjne pasty wasabi są powszechnie przygotowywane z chrzanu, co sprawia, że AITC jest markerem chemicznym używanym do kontroli jakości tych komercyjnych produktów5.

Łączenie dietetycznych napojów alkoholowych z daniami nasączonymi wasabi można uznać za przykład kulturowego usposobienia6. Subiektywnie ta kombinacja może uzupełniać pikantność i ciepło między wasabi a alkoholem, poprawiając ogólne doznania kulinarne. Jakościowa ocena behawioralna zwierząt (QBA) to kompleksowe podejście metodologiczne obejmujące całe zwierzęta, które bada zmiany behawioralne u badanych w odpowiedzi na krótko- lub długoterminowe bodźce zewnętrzne przy użyciu terminów numerycznych7. Metoda ta obejmuje testy bólu, testy motoryczne, testy uczenia się i pamięci, a także testy emocji zaprojektowane specjalnie dla modeli gryzoni8. Jednak badania nad synergiczną oceną sensoryczną smaku wraz z węchem pozostają do tej pory rzadkie w literaturze9,10. Większość badań nad odczuciami chemestetycznymi ogranicza się do osobnego badania indywidualnego spożycia żywności i napojów11. W związku z tym brakuje badań nad interakcją smak-zapach polegającą na wdychaniu alkoholu podczas spożywania wasabi.

Ponieważ uważa się, że uczucie pieczenia wywołane przez wasabi jest formą nocycepcji12, oceny zachowania zwierząt są dobrze przystosowane do oceny nocyceptywnych reakcji sensorycznych u gryzoni8,13,14. Metoda oceny nocycepcji u myszy, znana jako skala grymasu myszy (MGS), została opracowana przez Langforda i wsp.15,16. Ta metoda badania behawioralnego jest podejściem do oceny bólu, opartym na analizie mimiki twarzy wykazywanej przez myszy eksperymentalne. Konfiguracja eksperymentalna jest prosta, obejmuje przezroczystą klatkę i 2 kamery do nagrywania wideo. Dzięki zastosowaniu zaawansowanych technologii17,18,19 do automatycznego przechwytywania danych, można uzyskać ilościowe i jakościowe pomiary behawioralne, poprawiając dobrostan zwierząt podczas monitorowania behawioralnego20. W związku z tym MGS ma potencjał do zastosowania w badaniu wpływu różnych bodźców zewnętrznych na zwierzęta w sposób nieprzerwany i ad libitum. Jednak proces punktacji polega tylko na wybraniu kilku (mniej niż 10) obrazów klatek wideo do oceny przez panelistów i konieczne jest wcześniejsze szkolenie. Ocenianie dużej liczby przykładowych obrazów może być pracochłonne. Aby sprostać temu czasochłonnemu wyzwaniu, w kilku badaniach wykorzystano techniki uczenia maszynowego do przewidywania wyniku MGS21,22. Należy jednak zauważyć, że MGS jest miarą ciągłą. W związku z tym wieloklasowy model klasyfikacji byłby bardziej odpowiedni do oceny logicznego i kategorycznego problemu, takiego jak określenie, czy obrazy myszy jednocześnie spożywających wasabi i wąchających alkohol przypominają obrazy normalnych myszy.

W tym badaniu zaproponowano metodologię badania interakcji smak-zapach u myszy. Metodologia ta łączy badania behawioralne zwierząt z konwolucyjną siecią neuronową (CNN) w celu analizy mimiki twarzy myszy. Dwie myszy obserwowano trzykrotnie w normalnych warunkach behawioralnych, podczas doświadczenia nocycepcji wywołanej przez wasabi i podczas wąchania alkoholu w specjalnie zaprojektowanej klatce. Mimika twarzy myszy została nagrana na wideo, a wygenerowane obrazy klatek wykorzystano do optymalizacji architektury modelu głębokiego uczenia (DL). Model został następnie zweryfikowany przy użyciu niezależnego zestawu danych obrazów i wdrożony w celu sklasyfikowania obrazów uzyskanych od grupy eksperymentalnej. Aby określić stopień tłumienia ostrości wasabi, gdy myszy jednocześnie wąchały alkohol podczas konsumpcji wasabi, spostrzeżenia dostarczone przez sztuczną inteligencję zostały dodatkowo potwierdzone poprzez walidację krzyżową za pomocą innej metody analizy danych, MGS scoring16.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

W tym badaniu, dwa 7-tygodniowe samce myszy ICR o wadze od 17 do 25 g zostały wykorzystane do oceny zachowania zwierząt. Wszystkie procedury hodowlane i eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Wykorzystania Przedmiotów Ludzkich i Zwierzęcych w Nauczaniu i Badaniach Uniwersytetu Baptystów w Hongkongu. W pomieszczeniu dla zwierząt utrzymywano temperaturę 25 °C i wilgotność w pomieszczeniu 40%-70% w 12-godzinnym cyklu jasno-ciemnym.

1. Projekt klatki

  1. Przygotuj cegły akrylonitryl-butadien-styren w 3 różnych wymiarach do budowy koszyka: 8 mm x 8 mm x 2 mm, 16 mm x 16 mm x 6 mm i 32 mm x 16 mm x 6 mm.
  2. Przygotować płytkę akrylonitrylo-butadieno-styrenową (312 mm x 147 mm x 2 mm) jako podstawę koszyka.
  3. Przygotuj nieprzezroczystą płytę akrylową o wymiarach 239 mm x 107 mm i grubości 2 mm, która będzie używana jako płyta dolna.
  4. Przygotuj przezroczystą płytę akrylową o wymiarach 239 mm x 107 mm i grubości 5 mm, która będzie używana jako płyta górna.
  5. Przygotuj przezroczystą płytkę akrylową o wymiarach 107 mm x 50 mm i grubości 7 mm, która będzie używana jako płyta zaciskowa.
  6. Zbuduj 2 nieprzezroczyste ściany boczne, układając cegły na wysokość 54 mm.
  7. Osadź płytki akrylowe w klatce na bazie akrylonitrylu i butadienu i styrenu, jak pokazano na rysunku Rysunek 1A.
  8. Przygotuj komorę na chows, która jest zbudowana z pięciu przezroczystych płytek akrylowych o wymiarach 90 mm x 50 mm i grubości 2 mm, jak pokazano na rysunku Rysunek 1B. Spośród 5 przezroczystych płyt akrylowych użyj 2 płytek po bokach, 1 płytki u góry, 1 płytki u dołu i 1 płytki u terminala.
  9. Przygotuj przezroczystą płytkę akrylową o wymiarach 60 mm x 50 mm i 2 mm jako płytkę wprowadzającą do karmy i umieść ją w komorze karwy.

2. Ocena zachowania zwierząt

  1. Domowe rodzeństwo z 2 7-tygodniowych samców myszy ICR razem w zwykłej klatce.
  2. Zapewnij rodzeństwu z miotu 2 myszy swobodny dostęp do granulek pokarmowych i wody z kranu przez 1-tygodniowy okres adaptacji.
  3. Po 1 tygodniu wprowadź rodzeństwo z miotu 2 myszy butelką etanolu (~40% v/v).
    UWAGA: Upewnij się, że mogą wąchać lub wdychać dostarczony wodny etanol tylko ad libitum, gdy picie jest ograniczone.
  4. Przeprowadź eksperymenty behawioralne przy użyciu modelu myszy w wieku 9-10 tygodni i przezroczystej klatki kabiny, która jest przedstawiona na Rysunek 1A.
  5. Zdemontuj wszystkie płytki akrylowe i płyty akrylonitryl-butadien-styren i dokładnie je wyczyść. Zacznij od spłukania ich ultraczystą wodą co najmniej 3 razy, a następnie osusz je ręcznikami papierowymi. Następnie spryskaj je 75% etanolem, a następnie wyczyść je papierem do soczewek. Na koniec pozostaw je do wyschnięcia na powietrzu przez co najmniej 15 minut.
  6. Zważ myszy i zapisz ich masę ciała przed każdym powtórzeniem eksperymentu behawioralnego.
  7. Świeżo przygotuj mieszankę wasabi i masła orzechowego, ważąc 1 g komercyjnego wasabi i 4,5 g masła orzechowego. Wymieszaj je w plastikowej torbie z zamkiem błyskawicznym.
    UWAGA: Ze względu na lotność izotiocyjanianów w wasabi, ważne jest, aby przechowywać komercyjne wasabi w zamrażarce o temperaturze -20 °C.
  8. Zważ i połóż dwie pasty po 0,5 g masła orzechowego lub mieszankę wasabi i masła orzechowego na talerzu wprowadzającym do karmy, jak pokazano na Rysunek 1B, C.
  9. Umieść przygotowaną płytkę wprowadzającą do chow w komorze karmy, jak pokazano na Rysunek 1B, C, aby umożliwić 2 myszom dostęp ad libitum do jedzenia podczas każdej sesji nagrywania wideo.
  10. Wypełnij rowek pod spodem 30 ml płynu, czystej wody lub likieru (~42% v/v etanolu), aby ułatwić jednoczesną inhalację, jak wskazano w Rysunek 1B, C.
  11. Rozpocznij nagrywanie za pomocą kamer w 2 smartfonach umieszczonych na stojakach telefonicznych przy każdym terminalu.
    UWAGA: Specyfikacje filmów są następujące: szerokość klatki, 1920; wysokość ramy, 1080; szybkość transmisji danych, 20745 kb/s; liczba klatek na sekundę, 30,00 klatek na sekundę (fps).
  12. Ostrożnie umieść 2 wyszkolone rodzeństwo myszy na zaprojektowanej platformie do badania zachowań zwierząt od góry i natychmiast zabezpiecz klatkę górną płytą.
    UWAGA: Upewnij się, że ten krok został wykonany w ciągu 15 sekund.
  13. Nagrywaj każdy film przez 2-3 minuty
    UWAGA: Upewnij się, że cały czas trwania eksperymentu, od przygotowania mieszanki masła orzechowego i wasabi do zakończenia nagrania wideo, jest ograniczony do 5 minut.
  14. Powtórz cały eksperyment 3 razy.
    UWAGA: Upewnij się, że każda powtórzona część eksperymentu jest oddzielona przez co najmniej 6 godzin.
  15. Naśladuj różne scenariusze.
    UWAGA: Na przykład w tej pracy para myszy została użyta w 4 grupach z 4 różnymi scenariuszami, które zostały naśladowane przy użyciu ustawień eksperymentalnych opisanych powyżej. Scenariusze te obejmują scenariusz A dla badania podstawowego, scenariusz B dla badania kontroli dodatniej, scenariusz C dla badania interakcji smak-zapach między alkoholem wasabi a alkoholem oraz scenariusz D dla badania kontroli negatywnej. W tabeli 1 przedstawiono podsumowanie tych scenariuszy.

3. Rozpoznawanie obrazów

Podobnie jak w wielu badaniach nad przetwarzaniem obrazów23,24,25, model klasyfikacji został osiągnięty poprzez szkolenie CNN. Skrypt dla operacji DL został napisany w języku Python v.3.10 na Jupyter Notebook (anaconda3). Jest on dostępny w następującym repozytorium GitHub: git@github.com:TommyNHL/imageRecognitionJove.git. Do konstruowania i trenowania CNN użyto bibliotek typu open source, w tym numpy v.1.21.5, seaborn v.0.11.2, matplotlib v.3.5.2, cv2 v.4.6.0, sklearn v.1.0.2, tensorflow v.2.11.0 i keras v.2.11.0. Biblioteki te zapewniły niezbędne narzędzia i funkcje do opracowania i przeszkolenia CNN w zakresie rozpoznawania obrazów.

  1. Wyeksportuj serię obrazów klatek wideo z zebranych klipów wideo, aby wygenerować zestaw danych do trenowania modelu przy użyciu podanego notesu Jupyter Notebook o nazwie Step1_ExtractingAndSavingVideoFrameImages.ipynb.
  2. Wybieraj tylko obrazy, w których co najmniej 1 mysz zużywa dostarczoną pastę. Przykłady wybranych obrazów znajdują się na rysunku uzupełniającym 1, rysunku uzupełniającym 2, rysunku uzupełniającym 3, rysunku uzupełniającym 4, rysunku uzupełniającym 5, rysunku uzupełniającym 6 i rysunku uzupełniającym 7.
  3. Wykonaj rozszerzanie danych, przerzucając wygenerowane obrazy w poziomie, implementując skrypt dostarczony w Jupyter Notebook o nazwie Step2_DataAugmentation.ipynb.
  4. Zarezerwuj dane obrazu z każdej replikacji na potrzeby zewnętrznej, niezależnej walidacji modelu CNN. Użyj obrazów z każdej pierwszej i trzeciej repliki do trenowania i testowania modelu wewnętrznego.
  5. Wstępnie przetwórz dane obrazu używane w modelowaniu CNN, uruchamiając skrypt w notesie Jupyter Notebook o nazwie Step3_CNNmodeling_TrainTest.ipynb, w tym zmianę rozmiaru obrazu, konwersję koloru czarnego i normalizację sygnału obrazu.
  6. Podziel materiały szkoleniowe na wewnętrzne zestawy danych szkoleniowych i testowych w sposób losowy 8:2.
  7. Zainicjuj architekturę dla CNN. Zaprojektuj liczbę wyjść CNN w oparciu o liczbę scenariuszy do zbadania.
    UWAGA: Na przykład w tym badaniu sieć neuronowa została wyznaczona do sklasyfikowania 3 klas. Upewnij się, że skrypt do obsługi nierównowagi danych na wadze klasy jest skompilowany.
  8. Znajdź kombinację hiperparametrów, która zapewnia minimalną stratę w wewnętrznych próbkach testowych dla konstrukcji CNN.
  9. Zastosuj optymalną kombinację hiperparametrów do konstruowania architektury CNN.
  10. Otwórz dostarczone notesy Jupyter Notebook Step4_CNNmodel_ExternalValOriginal.ipynb i Step5_CNNmodel_ExternalValFlipped.ipynb. Zweryfikuj uzyskany model za pomocą niezależnych (oryginalnych i odwróconych) obrazów z drugiej repliki eksperymentu behawioralnego na zwierzętach.
  11. Wdróż uzyskany i zweryfikowany model do klasyfikowania obrazów klatek wideo wygenerowanych na podstawie grupy eksperymentalnej przy użyciu Jupyter Notebook Step6_CNNmodel_Application.ipynb.
    UWAGA: Na przykład jest to scenariusz C w tej pracy.

4. Ręczne punktowanie skali grymasu myszy

UWAGA: Aby zweryfikować spostrzeżenia dostarczone przez przewidywania modelu CNN, zastosowano inną metodę wcześniej opracowaną i zweryfikowaną przez Langforda i in.16. Metoda ta polega na ocenie MGS na podstawie 5 specyficznych jednostek działania twarzy myszy (AU): zaostrzenie orbity, wybrzuszenie nosa, wybrzuszenie policzka, uszy zaciśnięte na zewnątrz i zmiana wąsów. Każda jednostka analizy ma przypisany wynik 0, 1 lub 2, wskazujący odpowiednio na brak, umiarkowaną obecność lub oczywistą obecność jednostki analizy. Ten system punktacji pozwala na kwantyfikację i skalowanie każdej jednostki analizy w celu oceny poziomu nocycepcji lub dyskomfortu odczuwanego przez myszy.

  1. Uchwyć 3 klatki wideo, na których rodzeństwo z miotu spożywa pastę dla każdego klipu wideo. Upewnij się, że każda klatka jest oddzielona od siebie o co najmniej 3 sekundy.
  2. Niezaszyfrowany kod i losowo zmieniaj kolejność obrazów z różnych klas scenariuszy, korzystając z dostarczonego pliku szablonu o nazwie "shuffleSlides.pptm" (plik uzupełniający 1) i uruchamiając osadzony kod makra.
  3. Zaproś co najmniej 10 panelistów, aby ocenili przykładowe obrazy.
  4. Przeszkol panelistów w zakresie oceniania próbek obrazów za pomocą MGS. Przekaż panelistom materiały szkoleniowe, które zawierają oryginalny artykuł dotyczący MGS i jego instrukcji15,16.
  5. Oblicz wynik MGS każdego zwierzęcia badanego w przechwyconej klatce, uśredniając wszystkie punkty punktowe odpowiednich 5 jednostek analizy twarzy. Przedstaw wynik MGS jako średni ± standardowy błąd pomiaru (SEM).
  6. Określ, czy istnieją statystycznie istotne różnice między różnymi klasami scenariuszy, za pomocą jednoczynnikowej analizy wariancji (ANOVA) za pomocą testu post-hoc wielokrotnego porównania Bonferroniego.
    UWAGA: Wartość P < 0,05 jest uważana za statystycznie istotną.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Głównym celem niniejszego badania jest opracowanie solidnych ram badawczych do analizy interakcji między smakiem a węchem u myszy. Ramy te obejmują wykorzystanie sztucznej inteligencji oraz analizy QBA w celu opracowania predykcyjnego modelu klasyfikacji. Ponadto wnioski uzyskane z DL są walidowane krzyżowo z ilościową oceną MGS w ramach niezależnej analizy wewnętrznej. Podstawowym zastosowaniem tej metodologii jest zbadanie stopnia tłumienia nocycepcji wywołanej przez wasabi w sytuacji, gdy myszy wąchają spożywcze napoj...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Proponowana metoda badania interakcji smak-zapach w tej pracy opiera się na oryginalnej metodzie kodowania behawioralnego wyrazu bólu na twarzy u myszy, która została opracowana przez Langforda i wsp.16. W kilku ostatnio opublikowanych artykułach wprowadzono CNN do automatycznego śledzenia twarzy myszy i późniejszego punktacji MGS 21,26,27,28. Zastosowanie CNN daje przew...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie występują konflikty interesów.

Podziękowania

Z. Cai chciałby podziękować za wsparcie finansowe ze strony Funduszu Charytatywnego Kwok Chung Bo Fun na ustanowienie Katedry Analizy Środowiskowej i Biologicznej Kwok Yat Wai.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Etanol absolutny (EtOH)VWR Chemicals BDHCAS# 64-17-5
Cegły akrylonitryl-butadien-styrenFlagowy sklep Jiahuifenghttps://shop.paizi10.com/jiahuifeng/chanpin.html
Płyty akrylonitryl-butadien-styrenFlagowy sklep Jiahuifenghttps://shop.paizi10.com/jiahuifeng/chanpin.html
Izotiocyjanian allilu (AITC)Sigma-AldrichCAS # 57-06-7
Bezwodny dimetylosulfotlenekSigma-AldrichCAS # 67-68-5
Chiński spirytusYanghe Qingcihttps://www.chinayanghe.com/article/45551.html
Komercyjne wasabiS& B FOODS INC.
Kwas mrówkowy (FA)VWR Chemicals BDHCAS# 64-18-6
GraphPad Prism 5GraphPadhttps://www.graphpad.com
acetonitryl (ACN) klasy HPLC)VWR Chemicals BDHCAS# 75-05-8
Metanol klasy HPLC (MeOH)VWR Chemicals BDHCAS# 67-56-1
Microsoft Excel 2016Microsofthttps://www.microsoft.com 
Microsoft PowerPoint 2016System wodny Microsofthttps://www.microsoft.com
Milli-QMysz Milliporehttps://www.merckmillipore.com
ICRLaboratory Animal Services Centre (Chiński Uniwersytet w Hongkongu, Hongkong, Chiny)N/A
Masło orzechoweSkippyhttps://www.peanutbutter.com/peanut-butter/creamy
Python v.3.10Python Software Foundationhttps://www.python.org 
Przezroczyste płyty akryloweTaobao Storehttps://item.taobao.com/item.htm?_u=32l3b7k63381&id=60996545797
0& spm=a1z09.2.0.0.77572e8dFPM
EHU
https://www.sbfoods-worldwide.com:

Bibliografia

  1. Isshiki, K., Tokuoka, K., Mori, R., Chiba, S. Preliminary examination of allyl isothiocyanate vapor for food preservation. Biosci Biotechnol Biochem. 56 (9), 1476-1477 (1992).
  2. Li, X., Wen, Z., Bohnert, H. J., Schuler, M. A., Kushad, M. M. Myrosinase in horseradish (Armoracia rusticana) root: Isolation of a full-length cDNA and its heterologous expression in Spodoptera frugiperda insect cells. Plant Sci. 172 (6), 1095-1102 (2007).
  3. Depree, J. A., Howard, T. M., Savage, G. P. Flavour and pharmaceutical properties of the volatile sulphur compounds of Wasabi (Wasabia japonica). Food Res Int. 31 (5), 329-337 (1998).
  4. Hu, S. Q., Wei, W. Study on extraction of wasabi plant material bio-activity substances and anti-cancer activities. Adv Mat Res. 690 - 693, 1395-1399 (2013).
  5. Lee, H. -K., Kim, D. -H., Kim, Y. -S. Quality characteristics and allyl isothiocyanate contents of commercial wasabi paste products. J Food Hyg Saf. 31 (6), 426-431 (2016).
  6. Bacon, T. Wine, wasabi and weight loss: Examining taste in food writing. Food Cult Soc. 17 (2), 225-243 (2014).
  7. Fleming, P. A., et al. The contribution of qualitative behavioural assessment to appraisal of livestock welfare. Anim Prod Sci. 56, 1569-1578 (2016).
  8. Shi, X., et al. Behavioral assessment of sensory, motor, emotion, and cognition in rodent models of intracerebral hemorrhage. Front Neurol. 12, 667511(2021).
  9. Stevenson, R. J., Prescott, J., Boakes, R. A. Confusing tastes and smells: How odours can influence the perception of sweet and sour tastes. Chem Senses. 24 (6), 627-635 (1999).
  10. Pfeiffer, J. C., Hollowood, T. A., Hort, J., Taylor, A. J. Temporal synchrony and integration of sub-threshold taste and smell signals. Chem Senses. 30 (7), 539-545 (2005).
  11. Simons, C. T., Klein, A. H., Carstens, E. Chemogenic subqualities of mouthfeel. Chem Senses. 44 (5), 281-288 (2019).
  12. Andrade, E. L., Luiz, A. P., Ferreira, J., Calixto, J. B. Pronociceptive response elicited by TRPA1 receptor activation in mice. Neuroscience. 152 (2), 511-520 (2008).
  13. Palazzo, E., Marabese, I., Gargano, F., Guida, F., Belardo, C., Maione, S. Methods for evaluating sensory, affective and cognitive disorders in neuropathic rodents. Curr Neuropharmacol. 19 (6), 736-746 (2020).
  14. Topley, M., Crotty, A. M., Boyle, A., Peller, J., Kawaja, M., Hendry, J. M. Evaluation of motor and sensory neuron populations in a mouse median nerve injury model. J Neurosci Methods. 396, 109937(2023).
  15. Langford, D. J., et al. Mouse Grimace Scale (MGS): The Manual. , https://www.nc3rs.org.uk/sites/default/files/documents/Guidelines/MGS%20Manual.pdf (2015).
  16. Langford, D. J., et al. Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse. Nat Methods. 7 (6), 447-449 (2010).
  17. Liu, H., Fang, S., Zhang, Z., Li, D., Lin, K., Wang, J. MFDNet: Collaborative poses perception and matrix Fisher distribution for head pose estimation. IEEE Trans Multimedia. 24, 2449-2460 (2022).
  18. Liu, T., Wang, J., Yang, B., Wang, X. NGDNet: Nonuniform Gaussian-label distribution learning for infrared head pose estimation and on-task behavior understanding in the classroom. Neurocomputing. 436, 210-220 (2021).
  19. Liu, T., Liu, H., Yang, B., Zhang, Z. LDCNet: Limb direction cues-aware network for flexible human pose estimation in industrial behavioral biometrics systems. IEEE Trans Industr Inform. 20 (6), 8068-8078 (2023).
  20. Grant, E. P., et al. What can the quantitative and qualitative behavioural assessment of videos of sheep moving through an autonomous data capture system tell us about welfare. Appl Anim Behav Sci. 208, 31-39 (2018).
  21. Vidal, A., Jha, S., Hassler, S., Price, T., Busso, C. Face detection and grimace scale prediction of white furred mice. Mach Learn Appl. 8, 100312(2022).
  22. Zylka, M. J., et al. Development and validation of Painface, A software platform that simplifies and standardizes mouse grimace analyses. J Pain. 24 (4), 35-36 (2023).
  23. Liu, H., Zhang, C., Deng, Y., Liu, T., Zhang, Z., Li, Y. F. Orientation cues-aware facial relationship representation for head pose estimation via Transformer. IEEE Trans Image Process. 32, 6289-6302 (2023).
  24. Liu, H., Liu, T., Chen, Y., Zhang, Z., Li, Y. F. EHPE: Skeleton cues-based Gaussian coordinate encoding for efficient human pose estimation. IEEE Trans Multimedia. , (2022).
  25. Liu, H., et al. TransIFC: Invariant cues-aware feature concentration learning for efficient fine-grained bird image classification. IEEE Trans Multimedia. , (2023).
  26. Akkaya, I. B., Halici, U. Mouse face tracking using convolutional neural networks. IET Comput Vis. 12 (2), 153-161 (2018).
  27. Andresen, N., et al. Towards a fully automated surveillance of well-being status in laboratory mice using deep learning: Starting with facial expression analysis. PLoS One. 15 (4), e0228059(2020).
  28. Ernst, L., et al. Improvement of the mouse grimace scale set-up for implementing a semi-automated Mouse Grimace Scale scoring (Part 1). Lab Anim. 54 (1), 83-91 (2020).
  29. Tuttle, A. H., et al. A deep neural network to assess spontaneous pain from mouse facial expressions. Mol Pain. 14, 1744806918763658(2018).
  30. Lencioni, G. C., de Sousa, R. V., de Souza Sardinha, E. J., Corrêa, R. R., Zanella, A. J. Pain assessment in horses using automatic facial expression recognition through deep learning-based modeling. PLoS One. 16 (10), e0258672(2021).
  31. Steagall, P. V., Monteiro, B. P., Marangoni, S., Moussa, M., Sautié, M. Fully automated deep learning models with smartphone applicability for prediction of pain using the Feline Grimace Scale. Sci Rep. 13, 21584(2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Przeglądaj więcej artykułów

Badanie zachowania zwierzątinterakcja alkoholu z wasabiskala grymasu myszymodel głębokiego uczeniaocena sensorycznaaugmentacja danych obrazowycheksperyment behawioralnybadanie węchowe