Artykuł metodologiczny

Wytwarzanie urządzenia do mocowania elektroakupunktury myszy do wstępnego leczenia elektroakupunktury w modelu myszy z kardiomiopatią cukrzycową

DOI:

10.3791/67427

⸱

18 kwietnia 2025

 ,  ,  ,  ,  , 
1College of Acupuncture and Orthopedics, Hubei University of Chinese Medicine, 2Department of Acupuncture, Hubei Provincial Hospital of Traditional Chinese Medicine, 3Department of Acupuncture, Affiliated Hospital of Hubei University of Chinese Medicine, 4Hubei Province Academy of Traditional Chinese Medicine

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj prezentujemy protokół do stworzenia mysiego modelu kardiomiopatii cukrzycowej oraz mysie urządzenie do mocowania elektroakupunktury do stosowania elektroakupunktury u myszy, które może łagodniej utrwalać myszy podczas leczenia.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kardiomiopatia cukrzycowa (DCM) jest powikłaniem cukrzycy, które może prowadzić do niewydolności serca i jest ograniczane przez stosowanie leków. Elektroakupunktura jest skutecznym sposobem leczenia kardiomiopatii cukrzycowej jako tradycyjna metoda leczenia zewnętrznego medycyny chińskiej. Urządzenie do mocowania elektroakupunktury u myszy może łatwo i delikatnie unieruchomić myszy podczas leczenia elektroakupunkturą i odsłonić punkty akupunkturowe na brzuchu i kończynach myszy. W tym artykule opisano metody stosowane do wytwarzania urządzenia do mocowania elektroakupunktury u myszy ze wszystkimi krokami i środkami ostrożności, ustanawiając mysi model kardiomiopatii cukrzycowej z kompleksowymi środkami w celu kompleksowego rejestrowania zmian wskaźników biochemicznych krwi, takich jak poziom glukozy we krwi. Eksperyment przeprowadzono w 3 grupach: grupie kontrolnej, grupie modelowej i grupie przed leczeniem, z 10 myszami w każdej grupie. Grupa przed leczeniem była leczona elektroakupunkturą Biaoben acupoints raz na drugi dzień, w sumie 7 sesji. Po elektroakupunkturze myszy w grupie przed leczeniem wykazały spadek stężenia glukozy we krwi, któremu towarzyszyło zmniejszenie objawów cukrzycy.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kardiomiopatia cukrzycowa (DCM) jest częstym powikłaniem cukrzycy charakteryzującym się zmianami w strukturze serca oraz funkcji rozkurczowej i kurczliwej komór określonej zmiany, która dalej rozwija się w niewydolność serca. Jest to jedna z głównych przyczyn zgonów u pacjentów z cukrzycą1,2, a jego rosnące rozpowszechnienie przyciągnęło powszechną uwagę w ostatnich latach3. Stwierdzono, że patogeneza tej choroby obejmuje głównie insulinooporność, odpowiedź zapalną, nieprawidłowy metabolizm lipidów, stres oksydacyjny, uszkodzenia mitochondriów4,5.

Obecnie kliniczne leczenie kardiomiopatii cukrzycowej opiera się głównie na doustnych lekach do kontrolowania poziomu glukozy we krwi i łagodzenia objawów chorób serca, ale ma pewne ograniczenia, takie jak reakcje na leki, wpływ funkcji nerek i uzależnienie od długotrwałych leków6. Akupunktura, jako tradycyjna metoda leczenia zewnętrznego medycyny chińskiej, ma lepszy wpływ regulujący poziom glukozy we krwi, lipidów we krwi i odpowiedź zapalną u pacjentów z kardiomiopatią cukrzycową, a skuteczność kliniczna jest niezwykła7. Akupunktura nie ma negatywnego wpływu na funkcje przewodu pokarmowego i nerek, a długotrwałe leczenie nie powoduje uzależnienia. Teoria punktów akupunkturowych Biaoben jest ważną metodą wyboru i wykorzystania punktów akupunkturowych w tradycyjnej teorii akupunktury8. Definiuje akupunkty, które mogą poprawić objawy chorób jako punkty akupunkturowe Biao, a punkty akupunkturowe, które mogą regulować podstawowe funkcje organizmu związane z chorobami i leczyć podstawowe przyczyny chorób, nazywane są punktami akupunkturowymi Ben. Stymulacja punktów akupunkturowych Biao i akupunkturów Ben w tym samym czasie z akupunkturą może osiągnąć cel leczenia chorób, a także zwiększenia odporności organizmu na choroby oraz zapobiegania zaostrzeniom i nawrotom chorób9. Może zapobiec zaostrzeniu i nawrotom choroby. Współczesne badania dowiodły, że akupunktura z akupunkturami Biaoben jest skuteczna w leczeniu cukrzycy i jej wielu powikłań, w tym cukrzycowej choroby serca, nefropatii cukrzycowej, retinopatii cukrzycowej, stopy cukrzycowej i tak dalej10,11. Schemat wyboru punktów akupunkturowych zgodny z teorią punktów akupunkturowych Biaoben polega na wybraniu PC6 (Neiguan), który może regulować funkcje serca i poprawiać odpowiedź zapalną, jako akupunkt Biao12 i ST36 (Zusanli), który może poprawić poziom glukozy i cukru we krwi, poprawić insulinooporność i zmniejszyć stres oksydacyjny, jak klasa akupunkturów Bena13.

Modele zwierzęce są ważnym narzędziem w badaniach nad kardiomiopatią cukrzycową, ponieważ eksperymentalnie wykazano, że modele szczurów lub myszy dobrze naśladują nieprawidłowości strukturalne i zmiany funkcjonalne serca spowodowane kardiomiopatią cukrzycową i dostarczają próbek wymaganych do biochemicznego wykrywania wskaźników kardiomiopatii cukrzycowej14,15. Stosowanie paszy o wysokiej zawartości cukru i tłuszczu w połączeniu z roztworem streptozotocyny w celu indukcji myszy może prowadzić do powstania modeli cukrzycowych w ciągu 4-5 tygodni, skutecznie skracając czas modelowania i poprawiając wskaźnik sukcesu, a także nie ma specjalnych wymagań dotyczących środowiska hodowlanego16,17. Kardiomiopatia cukrzycowa to rodzaj kardiomiopatii spowodowanej uszkodzeniem struktury i funkcji serca spowodowanym ciągłą hiperglikemią. Wraz z przedłużeniem przebiegu choroby, model choroby serca cukrzycowego może być naturalnie rozwijany przez model cukrzycowy w warunkach długotrwałej hiperglikemii18,19,20. Wstępne leczenie akupunkturą odnosi się do wstępnego leczenia myszy po powstaniu cukrzycy i przed powstaniem oczywistego uszkodzenia mięśnia sercowego. Jednak po wielokrotnej stymulacji eksperymentalnej myszy często stają się ruchliwe i trudne do unieruchomienia, a irytujące eksperymentalne techniki manipulacji mogą spowodować obrażenia myszy lub sprawić, że będą one maniakalne lub przygnębione21. Dlatego potrzebna jest odpowiednia metoda unieruchamiania myszy. Powszechnie stosowane metody unieruchamiania myszy obejmują znieczulenie i wiązanie22. Chociaż metoda anestezjologiczna może lepiej wyeksponować punkty akupunkturowe, może wpływać na przewodnictwo nerwowe i ostatecznie wpływać na wyniki eksperymentalne. Metoda spinania taśmą jest metodą fizycznego unieruchomienia i nie daje takich samych efektów fizjologicznych jak znieczulenie, ale związane myszy będą zestresowane i staną się trudne do współpracy22,23. Ponadto igła nie może łatwo osiągnąć żądanej pozycji. Tutaj przedstawiamy mysie urządzenie do mocowania elektroakupunktury, które może być używane do zapewnienia, że myszy się nie poruszają, a także odsłaniają punkty akupunkturowe podczas leczenia elektroakupunkturą, dzięki czemu zabieg elektroakupunktury może być wykonywany wygodnie, bezpiecznie, bez przemocy i bez następstw.

Ten artykuł szczegółowo opisuje produkcję urządzenia do mocowania elektroakupunktury u myszy oraz stworzenie mysiego modelu kardiomiopatii cukrzycowej. Leczyliśmy kardiomiopatię cukrzycową za pomocą wstępnego leczenia elektroakupunkturą Biaoben acupoints, pokazaliśmy, w jaki sposób jej działanie zostało zrealizowane na urządzeniu do fiksacji myszy i oceniliśmy efekt terapeutyczny wstępnego leczenia elektroakupunkturą Biaoben acupoints na kardiomiopatię cukrzycową, mierząc wskaźniki związane z metabolizmem glikolipidów.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie eksperymenty na zwierzętach są zgodne z zasadą 3R etyki zwierząt i zostały sprawdzone i zatwierdzone przez Komitet ds. Etyki Eksperymentów na Zwierzętach Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej w Hubei (numer poświadczenia etycznego HUCMS00309300). Tutaj uzyskano 30 myszy klasy SPF z Centrum Kontroli i Zapobiegania Chorobom prowincji Hubei (certyfikat jakości nr 42010200009690).

1. Produkcja urządzenia do mocowania elektroakupunktury

  1. Do montażu urządzenia do mocowania elektroakupunktury należy zaopatrzyć się w przezroczystą, akrylową, pustą w środku rurkę z tworzywa sztucznego i instrument do terapii elektroakupunkturą jako główny korpus (Rysunek 1A). W tubie utrzymuj korpus rurki i przygotuj zaczepy zamykające znajdujące się w otworach na każdym końcu. Wykonaj rowki w pustej rurze pośrodku każdego końca i zabezpiecz zaczepy zamykające w rowkach na każdym końcu za pomocą ręcznie obracanych.
  2. Na środku pustej rurki wykonaj trzy owalne otwory o długości około 2 cm i szerokości 1 cm, rozmieszczone obok siebie. Otwory po obu stronach służą do wyciągania przednich kończyn myszy w celu zamocowania do leczenia elektroakupunkturą kończyn przednich, a otwór w środku może być używany do odsłaniania punktów akupunkturowych w okolicy piersiowej i brzusznej myszy do leczenia elektroakupunkturą w okolicy klatki piersiowej i brzucha.
  3. Na końcu pustej rurki wykonaj owalny otwór symetrycznie rozmieszczony po obu stronach środkowego rowka, który można wykorzystać do wyciągnięcia tylnych kończyn myszy w celu leczenia elektroakupunkturą kończyn tylnych (Rysunek 1B).
  4. Sprawdź integralność pustej plastikowej rurki i zainstaluj zaczepy zamykające. Przesuń zaczepy zamykające w korpusie rurki, gdy wsuwają się w rowki, upewniając się, że można dostosować długość mocowania do długości myszy.
  5. Włącz przyrząd do terapii elektroakupunkturą i upewnij się, że jest sprawny. Każdy przycisk można regulować, naciskając go raz (Rysunek 1C).
  6. Przygotuj przyrząd do terapii elektroakupunkturą, który zostanie umieszczony obok pustych plastikowych rurek do przeprowadzania zabiegów elektroakupunktury na myszach. Przyrząd do terapii elektroakupunkturą składa się z urządzenia do terapii elektroakupunkturą i kilku par energetyzujących klipsów; Każda para klipsów energetyzujących może zapewnić dwa bieguny energetyzowania.
  7. Używając klipsów do przypinania uchwytu igły w celu zasilenia igły, należy użyć klipsa do zamocowania igły.
  8. Maszyna do terapii elektroakupunkturą posiada 11 przycisków. Użyj górnych 5, aby ustawić częstotliwość, czas i kształt fali elektroakupunktury i są używane od lewej do prawej dla częstotliwości, czasu, fali ciągłej, fali rzadkiej i gęstej oraz fali przerywanej. Użyj dolnego 6, aby ustawić aktualną siłę elektroakupunktury. Każdy z tych przycisków ma pod spodem wycięcie do mocowania klipsów energetyzujących; Liczba klipów energetyzujących może zwiększać się lub zmniejszać wraz z liczbą myszy, maksymalnie do 6.

2. Ustalenie mysiego modelu kardiomiopatii cukrzycowej

  1. Podziel 30 myszy na 3 grupy metodą tabeli liczb losowych: grupę kontrolną, grupę modelową i grupę przed leczeniem, po 10 myszy w każdej grupie. Przebadano łącznie 20 myszy w grupie modelowej i grupie przed leczeniem, aby ustalić model kardiomiopatii cukrzycowej. Leczyć grupę przed leczeniem elektroakupunkturą Biaoben acupoints.
    UWAGA: Model był budowany przez długi okres czasu, a znaczna kardiomiopatia rozwija się po 16 tygodniach. Nasz czas leczenia trwa od 36 dnia do 70 dnia (od 6 tygodnia do 10 tygodnia). Leczenie to zostało wybrane po ustaleniu się cukrzycy, ale przed znacznym uszkodzeniem mięśnia sercowego. Pod koniec 6 tygodni usunięto serce myszy i stwierdzono u niego znaczną kardiomiopatię cukrzycową. Dlatego wybór leczenia w tym punkcie czasowym należy do kategorii obróbki wstępnej.
  2. Karm myszy w grupie kontrolnej normalną karmą przez 16 tygodni. Karm myszy w grupie modelowej i grupie przed leczeniem dietą wysokotłuszczową i wysokocukrową przez 16 tygodni, aby wywołać stan metaboliczny bardzo podobny do stanu cukrzycowego. Skład paszy wysokotłuszczowej i wysokocukrowej to 67,0% karmy standardowej, 10,0% smalcu, 2,5% cholesterolu, 20,0% sacharozy i 0,5% soli żółciowych.
  3. Wstrzyknąć dootrzewnowo roztwór streptozotocyny w celu ustalenia modelu mysiej kardiomiopatii cukrzycowej.
    1. Przygotować 150 mg/kg roztworu streptozotocyny w dniu 29. Rozpuścić streptozotocynę w buforze przygotowanym przez zmieszanie kwasu cytrynowego z cytrynianem trisodowym (pH = 4,4).
    2. Zapewnij tylko wodę i nie jedz przez 12 godzin w 29 dniu. Następnie należy podać każdej myszy pojedyncze wstrzyknięcie dootrzewnowe 150 mg/kg roztworu streptozotocyny, jak opisano poniżej (można go również podawać przez dootrzewnowe wstrzyknięcie 50 mg/kg roztworu streptozotocyny przez 5 kolejnych dni).
    3. Prawą ręką chwyć mysz za ogon i wyjmij ją z klatki. Umieść mysz na powierzchni klatki i delikatnie wyciągnij jej ogon. Unieruchom mysz lewą ręką i odwróć ją, aby odsłonić brzuch.
    4. Wstrzyknąć mysz dootrzewnowo prawą ręką za pomocą strzykawki o pojemności 1 ml przygotowanej z odpowiednią ilością już pobranego roztworu streptozotocyny. Należy uważnie obserwować zwierzęta i podawać im dodatkową dawkę glukozy po wstrzyknięciu.
  4. Wykonaj zabieg akupunktury za pomocą punktów akupunkturowych Biaoben.
    1. Wybierz punkty akupunkturowe zgodnie z teorią punktów akupunkturowych Biaoben13, w tym obustronne PC6 i ST36. W grupie przed leczeniem należy wykonać akupunkturę w 36 dniu, raz na drugi dzień, w sumie 18 zabiegów, przy czym leczenie trwa łącznie 5 tygodni (od 36 dnia do 70 dnia; Rysunek 2).
      1. Akupunkt Biao: Wybierz obustronny PC6 jako punkt akupunkturowy Biao; PC6 znajduje się po przyśrodkowej stronie kończyny przedniej, między szwami łokciowo-promieniowymi około 3 mm od stawów nadgarstkowych. Akupunkt Bena: Wybierz obustronny ST36 jako punkty akupunkturowe Bena; ST36 znajduje się w tylno-bocznej części stawu kolanowego, około 2 mm poniżej guzowatości strzałkowej.
    2. Chwyć mysz, uszczypnij ją w ogon i połóż na powierzchni klatki. Trzymaj ujście akrylowej pustej plastikowej rurki pod kątem 30° do płaszczyzny poziomej, z małym otworem pośrodku skierowanym w stronę ziemi, a wylotem rurki wyrównanym z głową myszy.
    3. Przyłóż głowę myszy do wylotu rurki. Powoli obracaj głowę myszy do tuby, wykonując dobrowolne ruchy i lekkie naciśnięcie. Delikatnie poklep pośladki myszy, aby mysz autonomicznie i całkowicie wczołgała się do tuby.
    4. Wyreguluj zaczepy zamykające, wyjmij ogon myszy z rowka, dokręć nakrętkę i użyj zaczepów zamykających na górnym i dolnym końcu, aby ograniczyć ruch myszy. W tym momencie mysz nie może już swobodnie poruszać się w korpusie tuby.
    5. Użyj pęsety, aby delikatnie wyciągnąć cztery kończyny myszy z każdego z czterech małych otworów po obu stronach. Po wyciągnięciu czterech kończyn z małych otworów delikatnie przymocuj je na zewnątrz korpusu rurki. W tym momencie nie można już było przemieścić czterech kończyn myszy.
    6. Trzymaj jednorazową rączkę igły ze stali nierdzewnej (0,3 mm x 13 mm) kciukiem i palcem wskazującym prawej ręki, a lewą ręką trzymaj akrylową rurkę i unieruchomione myszy.
    7. Dotknij i zlokalizuj miejsce, w którym znajdują się PC6 i ST36, środkowym palcem prawej ręki, a następnie delikatnie nakłuj skórę myszy sterylną końcówką igły. Szybko wprowadzić igłę wstrzykniętą skośnie na około 3 mm i szybko usunąć prawą rękę.
  5. Wykonaj wstępny zabieg elektroakupunktury
    1. Włącz maszynę do terapii elektroakupunkturą i dostosuj się do przerywanej fali, 1 Hz. Dla każdej myszy należy przeprowadzić zabieg elektroakupunktury przez 15 minut.
    2. Użyj pasującego klipsa pod napięciem urządzenia do terapii elektroakupunkturowej, aby przytrzymać uchwyt igły, jeden klips na jeden uchwyt igły.
    3. Dostosuj prąd przycisku z dołączonym zaciskiem do 1 mA (Rysunek 3).
    4. Odczekaj 15 minut i obserwuj stan myszy podczas wstępnego zabiegu elektroakupunktury.
    5. Pod koniec zabiegu zwolnij klips i wyjmij igłę do akupunktury. Wyreguluj zaczepy zamykające i uwolnij myszy z urządzenia do mocowania elektroakupunktury.
    6. Zbadaj całe ciało myszy i obserwuj, czy myszy są zranione lub mają jakiekolwiek nieprawidłowości.
  6. Wykonuj zabiegi akupunktury co drugi dzień po 7 dniach od wstrzyknięcia roztworu streptozotocyny, w sumie 18 zabiegów na urządzeniu do elektroakupunktury myszy od 36 do 70 dnia.
  7. Zakończ eksperyment w 112 dniu (koniec 16 tygodnia).
    1. Znieczulenie przez dootrzewnowe wstrzyknięcie 40 mg/kg pentobarbitalu sodu i potwierdź znieczulenie przez reakcję uszczypnięcia palca u nogi. Zmierz czynność serca myszy za pomocą echokardiografii.
      1. Rejestruj średnicę końcowo-rozkurczową lewej komory (LVEDD), średnicę końcowoskurczową lewej komory (LVESD), frakcję wyrzutową lewej komory (LVEF) i frakcyjne skrócenie lewej komory (LVFS).
    2. Eutanazja myszy przez zwichnięcie szyjki macicy. Wyjmij serce, umyj w soli fizjologicznej i zanurz w 4% paraformaldehydzie.

3. Barwienie hematoksyliną-eozyną (HE)

  1. Odwodnić, zatopić, pokroić, odparafinować serce i wykonać barwienie HE zgodnie ze standardową procedurą.
  2. Obserwuj patologiczne zmiany w tkance serca myszy pod mikroskopem świetlnym.

4. Obserwacje na myszach

  1. Zmierz poziom cukru we krwi za pomocą glukometru w 27, 36 i 49 dniu.
  2. Obserwuj, ile myszy jedzą, mierz ich spożycie wody i objętość oddawania moczu każdego dnia oraz rejestruj zmiany ich wagi.

5. Analiza statystyczna

  1. Zbierz dane dotyczące stężenia glukozy we krwi i użyj jednoczynnikowej ANOVA w celu określenia istotności statystycznej. Ustal istotność statystyczną jako p < 0,05.
  2. Określ ilościowo dane przez asystentów, którzy są ślepi na warunki eksperymentalne. Wyrazić dane jako średnią ± odchylenie standardowe.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Postępowaliśmy zgodnie z procedurą opisaną powyżej i stworzyliśmy mysi model kardiomiopatii cukrzycowej. Jak można zaobserwować na obrazach wybarwionych HE (Ryc. 4), myszy w grupie kontrolnej miały nienaruszoną strukturę tkanki mięśnia sercowego, regularne rozmieszczenie kardiomiocytów i brak widocznych zmian. W grupie modelowej komórki mięśnia sercowego były nieregularnie ułożone, niektóre komórki mięśnia sercowego były uszkodzone i rozpadły się (strzałka), a w śródmiąższu zaobserwowano wyraźny nacie...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W tym badaniu myszy, które miały wysoki poziom glukozy we krwi i wykazywały oznaki cukrzycy, uzyskano przez dootrzewnowe wstrzyknięcie roztworu Streptozotocyny, co jest skuteczną i uznaną metodą modelowania27. PC6 został wybrany jako punkt Biao, a ST36 został wybrany jako punkt Bena zgodnie z teorią punktów akupunkturowych Biaoben28. Wszystkie te punkty znajdują się na kończynach myszy, więc akrylowe rurki, które mogą odsłonić brzuch i unieruchomić kończyny, dobrze nadają s...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają nic do ujawnienia.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ta praca jest wspierana przez grant z Hubei Natural Science Foundation wspólny projekt 2022CFD024; Chińska Narodowa Fundacja Nauk Przyrodniczych, nr 81704142; Hubei University of Traditional Chinese Medicine 2023 podwójny pierwszorzędny projekt budowlany kluczowy specjalny projekt naukowo-badawczy,2023ZZXT005; Zbadanie mechanizmu wstępnego kondycjonowania elektroakupunktury Biaoben acupoints do regulacji ferroptozy komórek mięśnia sercowego u szczurów z uszkodzeniem niedokrwienno-reperfuzyjnym mięśnia sercowego (MIRI) w ramach kluczowego projektu Administracji Tradycyjnej Medycyny Chińskiej prowincji Hubei, ZY2025D001; Projekt Innowacji Wiedzy Biura Nauki i Technologii w Wuhan, nr 2023020201010172; Hubei Shi Zhen Projekt Inżynierii Talentów, E Wei Han [2024]256.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
akrylowa pusta plastikowaHenan ZhikeZK-GDQ
Hwato0,3 mm x 13 mm
C57BL/6  myszyHubei Prowincjonalne Centrum Kontroli i Zapobiegania
Monohydrat kwasu cytrynowegoSigmaC1909
instrument do terapii elektroakupunkturąHwatoSDZ-V
waga elektronicznaGlukometry Henan ZhikeZK-DST
LifeScanOneTouch VerioVue
pasek testowy glukozyLifeScanOneTouch Verio
streptozotocynaSigmaS0130
cytrynian trisodowy dwuwodnySigmaW302600
pęsetaLabshark130302001
igła do akupunktury Chorobom

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Dillmann, W. H. Diabetic cardiomyopathy. Circ Res. 124 (8), 1160-1162 (2019).
  2. Murtaza, G., et al. Diabetic cardiomyopathy - a comprehensive updated review. Prog Cardiovasc Dis. 62 (4), 315-326 (2019).
  3. Peng, M. L., et al. Signaling pathways related to oxidative stress in diabetic cardiomyopathy. Front Endocrinol. 13, 907757(2022).
  4. Tong, M., et al. Mitophagy is essential for maintaining cardiac function during high fat diet-induced diabetic cardiomyopathy. Circ Res. 124 (9), 1360-1371 (2019).
  5. Jia, G., Demarco, V. G., Sowers, J. R. Insulin resistance and hyperinsulinaemia in diabetic cardiomyopathy. Nat Rev Endocrinol. 12 (3), 144-153 (2016).
  6. Nakamura, K., et al. Pathophysiology and treatment of diabetic cardiomyopathy and heart failure in patients with diabetes mellitus. Int J Mol Sci. 23 (7), 3587(2022).
  7. Ye, Y., et al. Acupuncture reduces hypertrophy and cardiac fibrosis, and improves heart function in mice with diabetic cardiomyopathy. Cardiovasc Drugs Ther. 34 (6), 835-848 (2020).
  8. Zhou, X. L., et al. Effect of acupuncture-moxibustion stimulation of combined "biao-ben" acupoints on autonomic nervous activity and related factors in rats with irritable bowel syndrome diarrhea. Zhen Ci Yan Jiu. 48 (7), 635-642 (2023).
  9. Chen, Q., Liang, F., Wu, S., Lu, W., Wang, H. Theoretic exploration and clinical application of acupoint combination based on biaoben theory. Zhongguo Zhen Jiu. 38 (5), 5053-5059 (2018).
  10. Chen, J., et al. Protective effect and mechanism of electroacupuncture of "biao-ben" acupoints combination for mitochondrial dysfunction in diabetic nephropathy rats. Zhen Ci Yan Jiu. 47 (9), 759-768 (2022).
  11. Wang, K. X., et al. Effect of electroacupuncture of "biao-ben" acupoints on renal function and hemorheology and enos level in patients with early diabetic nephropathy. Zhen Ci Yan Jiu. 47 (1), 46-52 (2022).
  12. Zhang, M., et al. Acupuncture at pc6 prevents cardiac hypertrophy in isoproterenol-treated mice. Acupunct Med. 37 (1), 55-63 (2019).
  13. Chen, Q., et al. Protective effect and metabonomics research of "biao-ben acupoint combination" electroacupuncture in chronic myocardial ischemia model rats. Zhen Ci Yan Jiu. 43 (11), 698-704 (2018).
  14. Pulinilkunnil, T., et al. Cardiac-specific adipose triglyceride lipase overexpression protects from cardiac steatosis and dilated cardiomyopathy following diet-induced obesity. Int J Obes (Lond). 38 (2), 205-215 (2014).
  15. Sverdlov, A. L., et al. High fat, high sucrose diet causes cardiac mitochondrial dysfunction due in part to oxidative post-translational modification of mitochondrial complex ii. J Mol Cell Cardiol. 78, 165-173 (2015).
  16. Marino, F., et al. Streptozotocin-induced type 1 and 2 diabetes mellitus mouse models show different functional, cellular and molecular patterns of diabetic cardiomyopathy. Int J Mol Sci. 24 (2), 1132(2023).
  17. Ren, B. C., et al. Curcumin alleviates oxidative stress and inhibits apoptosis in diabetic cardiomyopathy via sirt1-foxo1 and pi3k-akt signalling pathways. J Cell Mol Med. 24 (21), 12355-12367 (2020).
  18. Wang, H., et al. Inhibition of fatty acid uptake by tgr5 prevents diabetic cardiomyopathy. Nat Metab. 6 (6), 1161-1177 (2024).
  19. Wang, R., et al. Fibroblast growth factor 21 improves diabetic cardiomyopathy by inhibiting ferroptosis via ferritin pathway. Cardiovasc Diabetol. 23 (1), 394(2024).
  20. Xu, H., et al. Types of cell death in diabetic cardiomyopathy: Insights from animal models. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). , (2024).
  21. Miyamoto, T., et al. Repeated cold stress enhances the acute restraint stress-induced hyperthermia in mice. Biol Pharm Bull. 40 (1), 11-16 (2017).
  22. Zhang, H. X., Wang, D. J., Yu, J. C., Han, J. X. Effect of the restriction on the efficacy of acupuncture in mice. Zhen Ci Yan Jiu. 34 (6), 429(2009).
  23. Chen, H. C., et al. Sub-acute restraint stress progressively increases oxidative/nitrosative stress and inflammatory markers while transiently upregulating antioxidant gene expression in the rat hippocampus. Free Radic Biol Med. 130, 446-457 (2019).
  24. Marwick, T. H., et al. Echocardiographic phenotypes of diabetic myocardial disorder: Evolution over 15 months follow-up in the arise-hf trial. Cardiovasc Diabetol. 24 (1), 16(2025).
  25. Fiordelisi, A., et al. L-arginine supplementation as mitochondrial therapy in diabetic cardiomyopathy. Cardiovasc Diabetol. 23 (1), 450(2024).
  26. Li, J. P., et al. Nlrp3 inflammasome-modulated angiogenic function of epc via pi3k/ akt/mtor pathway in diabetic myocardial infarction. Cardiovasc Diabetol. 24 (1), 6(2025).
  27. Racine, K. C., et al. The high-fat diet and low-dose streptozotocin type-2 diabetes model induces hyperinsulinemia and insulin resistance in male but not female c57bl/6j mice. Nutr Res. 131, 135-146 (2024).
  28. Wu, F., et al. Effects of moxibustion of "biaoben acupoint combination" on heart rate variability, atrial natriuretic peptide in the model rats of ibs-d complicated with anxiety. Zhongguo Zhen Jiu. 43 (10), 1139-1147 (2023).
  29. Zhang, S., et al. Research progress on the mechanism of acupuncture on type II diabetes mellitus. Zhen Ci Yan Jiu. 49 (6), 641-649 (2024).
  30. Zhang, Z., et al. Acupuncture-assisted lifestyle intervention improve the metabolic status and spontaneous brain activity of type 2 diabetes mellitus patients: A randomized, clinical trial. Diabetol Metab Syndr. 16 (1), 255(2024).
  31. Jia, X., et al. "Adjusting internal organs and dredging channelon" electroacupuncture glycolipid metabolism disorders in nafld mice by mediating the ampk/acc signaling pathway. Diabetol Metab Syndr. 16 (1), 173(2024).
  32. Li, S., Wang, S., Feng, X., Chang, Y., Yan, D. Biao and ben acupoints regulate mitochondrial function through p2x receptor to improve myocardial ischemia. Altern Ther Health Med. 29 (4), 43-51 (2023).
  33. Guo, J., et al. A new mouse-fixation device for iop measurement in awake mice. Vision Res. 219, 108397(2024).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Mouse Fixation DeviceBlood GlucoseAcupoint StimulationStreptozotocin InjectionCardiac Function IndicesEchocardiography AnalysisMyocardial TissueBiaoben Acupoints

Powiązane artykuły