Ludzka linia komórkowa THP-1 ludzkiej ostrej białaczki monocytowej (AML) jest szeroko stosowana jako model do badania funkcji makrofagów pochodzących z ludzkich monocytów, w tym ich interakcji z istotnymi ludzkimi patogenami, takimi jak ludzki wirus niedoboru odporności (HIV). W porównaniu z innymi unieśmiertelnionymi liniami komórkowymi pochodzenia szpikowego, komórki THP-1 zachowują wiele nienaruszonych szlaków sygnalizacji zapalnej i wykazują cechy fenotypowe, które bardziej przypominają cechy pierwotnych monocytów, w tym zdolność do różnicowania się w makrofagi po potraktowaniu octanem forbolu-12-mirystynianu 13 (PMA). Zastosowanie technologii CRISPR-Cas9 do inżynierii komórek THP-1 poprzez celowany nokaut genów (KO) zapewnia potężne podejście do lepszego scharakteryzowania mechanizmów związanych z odpornością, w tym interakcji wirus-gospodarz. W tym artykule opisano protokół wydajnej inżynierii opartej na CRISPR-Cas9 wykorzystującej elektroporację do dostarczania wstępnie zmontowanych rybonukleoprotein Cas9:sgRNA do jądra komórkowego. Użycie wielu sgRNA celujących w ten sam locus w nieco różnych pozycjach powoduje delecję dużych fragmentów DNA, zwiększając w ten sposób wydajność edycji, jak oceniono za pomocą testu endonukleazy T7 I. Edycja za pośrednictwem CRISPR-Cas9 na poziomie genetycznym została zwalidowana przez sekwencjonowanie Sangera, a następnie analizę wnioskowania o edycjach CRISPR (ICE). Niedobór białka potwierdzono za pomocą immunoblottingu połączonego z testem czynnościowym. Korzystając z tego protokołu, osiągnięto do 100% indeli w docelowym locus i spadek ekspresji białka o ponad 95%. Wysoka wydajność edycji sprawia, że izolowanie klonów jednokomórkowych jest wygodne poprzez ograniczenie rozcieńczenia.