Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Wykorzystanie urządzeń ubieralnych do spektroskopii bliskiej podczerwieni w celu identyfikacji ograniczeń centralnych i obwodowych podczas ćwiczeń

2.2K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/67609

⸱

19 grudnia 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Exercise Physiology, Department of Kinesiology, School of Health Sciences, Faculty of Medicine, Pontificia Universidad Católica de Chile, 2Department of Informatics and Computing, Faculty of Engineering, Universidad Tecnológica Metropolitana

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Ten protokół integruje technologię bliskiej spektroskopii w podczerwieni (NIRS) do oceny miejscowych zmian hematologicznych i tlenowych w korze przedczołowej, mięśniach oddechowych (m.Intercostales) i lokomotorycznych (m.Vastus Lateralis) podczas testów wysiłkowych krążeniowo-oddechowych, umożliwiając identyfikację centralnych i obwodowych czynników ograniczających wpływających na wydajność ćwiczeń.

Streszczenie

Złotym standardem do oceny wydolności tlenowej u osób aktywnych fizycznie i sportowców jest test maksymalnego zużycia tlenu (VO2–max), który obejmuje analizę wydychanych gazów i zmiennych krążeniowo-oddechowych uzyskanych metodą oddech po oddechu w ergospirometrze podczas ćwiczeń przyrostowych. Jednak ta metoda nie może wyjaśnić zmian metabolicznych na poziomie mięśniowym. Spektroskopia bliskiej podczerwieni (NIRS) stała się cenną technologią do oceny lokalnych poziomów tlenu (Tissular Saturation Index, TSI) poprzez ilościowe określanie stężeń hemoglobiny natlenionej (O2-Hb) i odtlenionej (H-Hb) w mikrokrążeniu tkanek. Zastosowania NIRS obejmują mięśnie oddechowe i ruchowe, oceniając zmiany metaboliczne związane odpowiednio z kosztem oddychania (COB) i obciążeniem obwodowym. Ponadto obszary mózgu, takie jak kora przedczołowa, zostały zbadane za pomocą technologii NIRS w celu oceny zmian fizjologicznych związanych z popytem poznawczym związanym z planowaniem lub ideacją zadań motorycznych związanych z wynikami sportowymi. Tak więc, analizując zmiany wywołane wysiłkiem fizycznym (D) wO2-Hb, H-Hb i TSI, możliwe jest zidentyfikowanie centralnych i obwodowych ograniczeń ćwiczeń, szczególnie gdy trening wytrzymałościowy jest głównym składnikiem sprawności fizycznej (np. bieganie, jazda na rowerze, triathlon itp.). Zajęcie się tymi czynnikami ma kluczowe znaczenie dla trenerów i fizjologów ćwiczeń, aby zoptymalizować wyniki sportowe, włączając strategie treningowe skoncentrowane na podstawowych czynnikach ograniczających wysiłek. Badanie to przedstawia protokół wykorzystania urządzeń ubieralnych wyposażonych w technologię NIRS do analizy zmian wysiłkowych w TSI, O2-Hb i H-Hb, wraz ze zmiennymi krążeniowo-oddechowymi zwykle rejestrowanymi u sportowców podczas testów VO2-max. Podejście to oferuje kompleksową metodę identyfikacji podstawowych systemów zaangażowanych w zatrzymywanie progresji ćwiczeń i poprawę wyników sportowych.

Wprowadzenie

Sportowcy wytrzymałościowi polegają na efektywnej równowadze między dostarczaniem i pobieraniem tlenu, aby utrzymać intensywne ćwiczenia i poprawić swoje wyniki sportowe1,2. Test maksymalnego poboru tlenu (VO2-max) jest istotną oceną fizjologiczną, która określa wyniki sportowe poprzez analizę gazów wydychanych i zmiennych krążeniowo-oddechowych podczas przyrostowej intensywności ćwiczeń1. Ta ocena, znana jako ergospirometria lub testy wysiłkowe krążeniowo-oddechowe (CPET), odzwierciedla reakcję wysiłkową układu sercowo-naczyniowego, oddechowego i mięśniowego3. W związku z tym zwiększony koszt energii związany z oddychaniem, określany jako koszt oddychania (COB), zwiększa zapotrzebowanie na składniki odżywcze i tlen w otaczających tkankach. Udokumentowano, że zjawisko to potencjalnie zmniejsza przepływ krwi do mięśni zaangażowanych w aktywne ruchy, co skutkuje zmniejszoną tolerancją na wysiłek fizyczny i wczesnym zaprzestaniem progresji ćwiczeń z powodu odruchu metabolicznego4.

Podczas testu VO2–max możliwe jest również zidentyfikowanie progów wentylacyjnych (VT), które odpowiadają określonym intensywnościom ćwiczeń oznaczającym przejście z metabolizmu tlenowego do beztlenowego (próg tlenowy lub próg wentylacji 1 [VT1] oraz próg beztlenowy lub punkt kompensacji oddechu [RCP] lub próg wentylacji 2 [VT2])5. VT odzwierciedlają reakcje oddechowe, które kompensują zmiany metaboliczne podczas ćwiczeń przyrostowych6. Identyfikując te progi, CPET oferuje kompleksową ocenę poprzez integrację odpowiedzi wielu systemów biologicznych krytycznie zaangażowanych podczas ćwiczeń o wysokiej intensywności.

Jednakże, chociaż ergospirometria jest powszechnie uważana za złoty standard oceny CPET, nie rejestruje zmian metabolicznych zachodzących na poziomie mięśniowym. Zmiany te mają kluczowe znaczenie dla zrozumienia fizjologicznych czynników ograniczających związanych z brakiem progresji podczas ćwiczeń o wysokiej intensywności u sportowców wytrzymałościowych. W tym kontekście technologia NIRS stała się cennym narzędziem w nauce o ćwiczeniach, pomagając w analizie zmiennych hemodynamicznych na poziomie mięśni mikronaczyniowych7.

W ostatnich latach profesjonaliści sportowi i badacze korzystali z szerokiej gamy komercyjnych urządzeń do noszenia wyposażonych w technologię NIRS do badania nieinwazyjnych zmian mięśniowych podczas ćwiczeń, dając możliwość określenia VT1 i VT2 za pomocą tej technologii8. W ten sposób integracyjna analiza danych z NIRS i CPET oferuje kompleksowe zrozumienie fizjologicznych reakcji na ćwiczenia.

Technologia NIRS wykorzystuje zmodyfikowane prawo Beera-Lamberta do ilościowego określania zmian (D) w stężeniach oksyhemoglobiny (O2-Hb) i deoksyhemoglobiny (H-Hb) podczas ćwiczeń7. Na poziomie tkanek lokalnych spadekO2-Hb odzwierciedla wzrost miejscowego zapotrzebowania metabolicznego, podczas gdy wzrost H-Hb odzwierciedla wzrost ekstrakcji tlenu. Całkowita hemoglobina (tHb), suma O, 2-Hb i H-Hb, jest używana jako wskaźnik lokalnego przepływu krwi w tkankach. I odwrotnie, różnica między O2-Hb i H-Hb (różnica Hb) zapewnia indeks ekstrakcji tlenu w tkankach9. Wskaźnik wysycenia tissular (TSI), obliczany jako stosunek O2-Hb do tHb, odzwierciedla poziom nasycenia tkanek tlenem i wskazuje równowagę między miejscowym dostarczaniem tlenu a wychwytem tlenu10,11. W ten sposób dane NIRS dają krytyczny wgląd w stan fizjologiczny na poziomie mikrokrążenia, zapewniając szczegółowe zrozumienie natlenienia tkanek i hemodynamiki, które uzupełnia informacje uzyskane z CPET.

To szczegółowe zrozumienie dostarczane przez technologię NIRS rozciąga się na wiele praktycznych zastosowań. Ostatnie badania podkreślają wszechstronność NIRS i demonstrują jego praktyczne zastosowanie w monitorowaniu układu oddechowego12,13 i mięśni lokomotorycznych7, a także regionów mózgu zaangażowanych w ideację aktów motorycznych, takich jak kora przedczołowa (PFC)14,15. To szerokie zastosowanie podkreśla zdolność NIRS do dostarczania kompleksowego wglądu w reakcje fizjologiczne na różne rodzaje skurczów mięśni (skurcze koncentryczne lub ekscentryczne lub izometryczne) i ćwiczeń.

Analizując DTSI wywołane wysiłkiem fizycznym zarówno na poziomie mięśniowym, jak i mózgowym, NIRS dostarcza cennego potencjału do identyfikacji powiązań między obwodowymi i centralnymi czynnikami ograniczającymi, które wpływają na postęp ćwiczeń16,17. Na przykład, wśród centralnych czynników ograniczających, zmniejszony przepływ krwi wynikający ze zwężenia naczyń mózgowych spowodowanego kompensacyjną hiperwentylacją spowodowaną podwyższonym poziomem wodoru z metabolizmu beztlenowego i zwiększony poziom mleczanu we krwi podczas ćwiczeń o wysokiej intensywności jest istotnym czynnikiem przyczyniającym się do zmniejszenia TSI w korze przedczołowej17,18. Natomiast obwodowe czynniki ograniczające charakteryzują się brakiem równowagi między podażą a popytem na tlen w ćwiczących mięśniach19. Zmniejszone miejscowe dostarczanie tlenu i zwiększone zużycie tlenu może prowadzić do odtlenienia tkanek, o czym świadczy zmniejszony TSI20. To rozróżnienie podkreśla wieloaspektowy charakter ograniczeń wydajności podczas ćwiczeń o wysokiej intensywności, gdzie kluczowe znaczenie mają zarówno mechanizmy centralne, jak i obwodowe. To zrozumienie sugeruje, że opóźnienie wystąpienia tych czynników ograniczających podczas ćwiczeń może przyczynić się do poprawy wyników sportowych.

Aby w pełni wykorzystać potencjał technologii NIRS w identyfikowaniu tych ograniczeń, niezbędne są standardowe procedury zapewniające wysokiej jakości gromadzenie i analizę danych. Niniejszy dokument przedstawia metody przeprowadzania testów wysiłkowych o maksymalnej wytrzymałości przy użyciu technologii NIRS w celu zbierania danych fizjologicznych i wyjaśnienia związku między centralnymi i obwodowymi czynnikami ograniczającymi podczas ćwiczeń o wysokiej intensywności u sportowców wytrzymałościowych. Proponowany protokół zapewnia ustandaryzowane podejście w celu zapewnienia spójności i dokładności w ocenie zjawisk fizjologicznych leżących u podstaw tych czynników ograniczających.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Protokół został zatwierdzony przez Institutional Review Board of the Pontificia Universidad Católica de Chile (projekty nr 210525001 i 220608010), a badanie zostało przeprowadzone zgodnie z Deklaracją Helsińską. Wszyscy uczestnicy wyrazili pisemną świadomą zgodę przed wzięciem udziału w opisanych testach.

1. Rozmieszczenie i konfiguracja urządzeń do noszenia NIRS

UWAGA: Można korzystać z różnych urządzeń do noszenia NIRS i oprogramowania do akwizycji danych. Badacze powinni dokładnie zapoznać się z instrukcjami i wytycznymi producenta, aby zapewnić prawidłową konfigurację i użytkowanie. W tym badaniu wykorzystano urządzenia wykorzystujące ciągły rejestr falowy sygnału NIRS. Te komercyjne urządzenia są łatwe w użyciu, ale mogą wykrywać tylko zmiany tłumienia światła w stosunku do fazy odniesienia lub podstawowej i nie mogą wykrywać stężeń bezwzględnych, jak inne urządzenia, które wykorzystują rejestr NIRS w dziedzinie czasu.

  1. Przygotowanie urządzeń ubieralnych NIRS i ogólne wytyczne dotyczące rozmieszczenia
    1. Przed umieszczeniem urządzeń i rozpoczęciem pomiarów upewnij się, że wszystkie urządzenia do noszenia są w pełni naładowane.
      UWAGA: W przypadku urządzeń użytych w tym badaniu producent podaje, że bateria przy pełnym naładowaniu może rejestrować 6–8 godzin bez przerwy.
    2. Nałóż dwustronną taśmę klejącą na wszystkie urządzenia do noszenia, aby przymocować je do skóry uczestnika, upewniając się, że taśma nie zasłania emiterów światła i detektorów.
    3. Przykryj wszystkie urządzenia do noszenia warstwą folii spożywczej, a następnie warstwą wodoodpornego opatrunku samoprzylepnego, aby chronić je przed potem.
    4. Przed umieszczeniem urządzeń należy oczyścić obszar docelowy wacikiem nasączonym alkoholem, aby usunąć wszelkie pozostałości, które mogą zakłócać rejestr (np. kremy, kosmetyki itp.). W razie potrzeby ogol obszar wokół miejsca docelowego, ponieważ włosy mogą zakłócać sygnały NIRS.
      UWAGA: Zaleca się dokładne umycie rąk przed umieszczeniem jakiegokolwiek urządzenia na skórze uczestnika, aby zapobiec potencjalnemu zanieczyszczeniu. Zaleca się noszenie rękawiczek, ponieważ może to jeszcze bardziej zmniejszyć ryzyko zanieczyszczenia.
    5. Po prawidłowym umieszczeniu wszystkich wearables na skórze uczestnika (patrz punkt 1.2), zabezpiecz je warstwą elastycznej taśmy terapeutycznej. Jeśli potrzebne jest dodatkowe mocowanie, użyj elastycznego bandaża w ciemnym kolorze, upewniając się, że nadmierna kompresja nie zmieni pomiarów (mniej niż ciśnienie okluzji kapilarnej 25 mm Hg mierzone konwencjonalnym ciśnieniomierzem).
    6. Umieść czarną szmatkę na wszystkich urządzeniach do noszenia, aby zapobiec przenikaniu światła z otoczenia. Jeśli zakrycie obszaru szmatką nie jest możliwe (około 6cm2), użyj czarnej elastycznej taśmy terapeutycznej, aby zablokować światło otoczenia.
  2. Rozmieszczenie urządzenia NIRS
    UWAGA: Upewnij się, że urządzenia ubieralne NIRS są umieszczone tak, aby przyciski włączania/wyłączania i ustawień były łatwo dostępne.
    1. Kora przedczołowa: Umieść sondę NIRS na lewej lub prawej grzbietowo-bocznej korze przedczołowej, około 10 mm powyżej łuku rzęskowego uczestnika, podobnie jak w przypadku umieszczenia elektrody Fp1 zgodnie ze zmodyfikowanym międzynarodowym systemem EEG 10-2021.
    2. m.Intercostales: Umieść sondę NIRS nad 7. przestrzenią międzyżebrową na prawej przedniej linii pachowej22,23,24. Jeśli z jakiegoś powodu nie jest umieszczony nad prawym półklatkiem piersiowym, umieść go nad lewym półtułowiem, ale sygnał z tętna może być wyraźniejszy po lewej stronie.
      1. Aby potwierdzić głębokość penetracji NIRS, użyj ultradźwięków w trybie B, aby sprawdzić odległość od tkanki podskórnej do zewnętrznej granicy m. Intercostales. W przypadku pomiarów w m. Intercostales należy upewnić się, że odległość między skórą a mięśniami jest mniejsza niż 15 mm.
    3. m.Vastus Lateralis: Umieść sondę NIRS 5 cm w bok od punktu środkowego wyimaginowanej linii, łącząc górną krawędź rzepki i większy krętarz kości udowej24,25,26.
      1. Aby upewnić się, że grubość tkanki tłuszczowej (ATT) nie zmienia rejestru sygnału NIRS, zmierz grubość fałdu skórnego, aby potwierdzić głębokość penetracji NIRS27. W przypadku pomiarów w m.Vastus Lateralis upewnij się, że ATT jest mniejszy niż 20 mm.
  3. Konfiguracja oprogramowania NIRS
    1. Po prawidłowym umieszczeniu wszystkich urządzeń do noszenia NIRS (patrz sekcja 1.2), włącz je przed rozpoczęciem pomiaru.
    2. Uruchom oprogramowanie do akwizycji danych dostarczone przez producenta, utwórz nowy plik i połącz urządzenia ubieralne NIRS.
    3. Po pomyślnym połączeniu wszystkich urządzeń ubieralnych NIRS ustaw częstotliwość próbkowania na 10 Hz w celu akwizycji danych i konwersji analogowo-cyfrowej dla ocenianych tkanek. W przypadku pomiarów kory przedczołowej dostosuj współczynnik różnicowej długości ścieżki (DPF) zgodnie z zależnym od wieku DPF dla każdego uczestnika28. W przypadku pomiaru mięśni ustaw DPF na 4, tak jak w poprzednich protokołach ze sportowcami jako obiektami badania29,30.

2. Kalibracja i konfiguracja ergospirometru

  1. Kalibracja objętości
    1. Otwórz oprogramowanie ergospirometru dostarczone przez producenta, aby rozpocząć proces kalibracji.
    2. Przymocuj przepływomierz do turbiny 28 mm za pomocą adaptera strzykawki. Podłącz jedną rurkę karbowaną do adaptera strzykawki, a drugą do strzykawki kalibracyjnej o pojemności 3 l.
    3. Wykonaj sześć manewrów pobierania/wstrzykiwania, utrzymując stałe natężenie przepływu. Po zakończeniu oprogramowanie automatycznie potwierdzi, czy test kalibracyjny zakończył się pomyślnie.
  2. Kalibracja gazu
    UWAGA: Upewnij się, że kalibracja przepływu została wykonana przed rozpoczęciem kalibracji gazu.
    1. Kalibracja powietrza
      1. Upewnij się, że przewód próbkowania z analizatora gazu jest odłączony od portu kalibracyjnego i swobodnie zwisa. Następnie zainicjuj proces kalibracji.
      2. Podczas kalibracji obserwuje się stabilną płaską linię, ponieważ stężenia tlenu (O2) i dwutlenku węgla (CO2) nie różnią się znacząco (mniej niż 5%). Po pomyślnym zakończeniu kalibracji powietrza przejdź do kalibracji gazów metabolicznych.
    2. Kalibracja gazów metabolicznych
      1. Otwórz zawory gazowe i sprawdź, czy do układu dostarczane jest odpowiednie ciśnienie, sprawdzając manometr (szczegółowe instrukcje należy skonsultować z producentem).
      2. Podłącz linię próbkowania do portu kalibracji i zainicjuj proces kalibracji. Przed rozpoczęciem kalibracji wykonaj 3-minutowe podgrzewanie, zgodnie z zaleceniami producenta.
      3. Przy prawidłowym przebiegu, po 3-minutowym okresie wstępnego nagrzewania należy zwrócić uwagę na dwie płaskie linie: jedną wahającą się między powietrzem w pomieszczeniu (około 21,00%O2 i 0,04%CO2), a drugą między gazem kalibracyjnym (16,00%O2 i 5,00%CO2
        4. ).
      4. Na koniec odłącz przewód próbkowania od portu kalibracyjnego i podłącz go do ustnika, który będzie używany do nadchodzącego testu.

3. Umieszczenie elektrody EKG (12 odprowadzeń)

  1. Przygotuj skórę, złuszczając skórę kremem i/lub goląc włosy z miejsc umieszczenia elektrod, jeśli to konieczne. Oczyść te obszary wacikiem nasączonym alkoholem, aby usunąć wszelkie powierzchowne pozostałości tkanek.
  2. Umieść elektrody EKG w następujący sposób31:
    1. Umieść przewody bipolarne (elektrody odprowadzające kończyny) w następujący sposób: Lewe ramię (LA): lewa strona dołu podobojczykowego; Prawe ramię (RA): prawa strona dołu podobojczykowego; Lewa noga (LL): przedni występ lewej głowy kości udowej; Prawa noga (RL): przedni występ prawej głowy kości udowej.
    2. Umieść elektrody ołowiane przedsercowe w następujący sposób: V1: 4. przestrzeń międzyżebrowa po prawej stronie mostka; V2: 4.przestrzeń międzyżebrowa na lewo od mostka (w linii z V1); V3: W połowie drogi między V2 i V4; V4: 5.przestrzeń międzyżebrowa na linii środkowej obojczyka; V5: przednia linia pachowa na tym samym poziomie co V4; V6: linia środkowa pachy na tym samym poziomie co V4 i V5.

4. Przyrostowy test wysiłkowy (test wysiłkowy krążeniowo-oddechowy, CPET)

  1. Poproś uczestnika, aby usiadł na rowerze, upewniając się, że siodełko i kierownica są dostosowane do jego wysokości, aby zapewnić optymalny komfort i pozycję.
    UWAGA: Zaleca się ustawienie wysokości siedziska tak, aby kolano było lekko zgięte przy pełnym wyprostowaniu32. Kierownica powinna być ustawiona tak, aby umożliwić lekkie zgięcie łokci.
  2. Przymocuj pulsoksymetr do płatka ucha uczestnika, upewniając się, że miejsce jest czyste, przecierając je wacikiem nasączonym alkoholem.
  3. Wyjaśnij protokół i poinstruuj uczestnika, aby oddychał przez maskę przed, w trakcie i po teście.
    UWAGA: Uczestnik musi unikać mówienia lub gwizdania podczas noszenia maski, ponieważ może to wpłynąć na odczyty ergospirometru 33.
  4. Gdy uczestnik jest już ustawiony i przygotowany, poproś uczestnika, aby wyprostował prawą nogę i odczekał 2 minuty na instrukcję startową (początkowy etap odpoczynku). Pozwól, aby uczestnik pedałował z częstotliwością 80–100 obr./min przez 6 minut przy 0,6 W·kg-1 i 0,8 W·kg-1 odpowiednio dla kobiet/mężczyzn (faza rozgrzewki). Następnie zwiększaj obciążenie pracą w tempie 20 W·min-¹ dla kobiet i 25 W·min-¹ dla mężczyzn, aż uczestnik osiągnie wyczerpanie (faza ćwiczeń).
  5. Po zakończeniu fazy ćwiczeń poinstruuj uczestnika, aby pozostał nieruchomy i kontynuował oddychanie do maski przez 3 minuty (faza schładzania lub regeneracji).
  6. Po zakończeniu protokołu ćwiczeń ostrożnie wyjmij pulsoksymetr z płatka ucha, maskę, wszystkie trzy urządzenia do noszenia NIRS i elektrody EKG.
    UWAGA: Aby utrzymać laboratoryjne warunki otoczenia (np. temperatura powietrza ~20 ± 2 °C, wilgotność względna ~40% ± 5%), jest to kluczowe kryterium. Niektórzy uczestnicy mogą wykazywać wysoką szybkość pocenia się, co zakłóca mocowanie urządzeń na skórze i wpływa na rejestrację danych NIRS. Zastosowanie wentylatorów może pomóc w zmniejszeniu termoregulacji ciepła przez pocenie się.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Podczas zakończenia badania CPET u wszystkich badanych wystąpiły objawy duszności, zmęczenia kończyn dolnych oraz określony poziom subiektywnego odczucia wysiłku (RPE). Równoległe zastosowanie urządzeń NIRS nie spowodowało dodatkowego dyskomfortu w ocenie doznań badanych. Ponadto nie przerwaliśmy badań CPET z powodu żadnego zdarzenia ryzyka związanego z nadmiernym stresem fizjologicznym.

Zbadaliśmy dwóch mężczyzn będących kolarzami wyczynowymi, zrekrutowanych z krajowego klubu kolarskiego. Kry...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Istnieje znaczny potencjał w wykorzystaniu urządzeń do noszenia NIRS jako narzędzia uzupełniającego CPET do oceny wyników sportowych i identyfikacji czynników ograniczających ćwiczenia centralne i obwodowe u sportowców aerobowych lub wytrzymałościowych, biorąc pod uwagę, że technologia NIRS udowodniła swoją ważność i niezawodność w ocenie hemodynamiki mikronaczyniowej zarówno w obszarach mózgowych, jak i mięśniowych37,38. Jednak, aby zmaksymalizować korzyści płyn...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Podziękowania

Dziękujemy wszystkim uczestnikom tego badania oraz personelowi laboratorium technicznego za wsparcie w pomiarach wykonanych w Laboratorium Fizjologii Wysiłku Fizycznego. Autorzy FC-B i ME-R byli częściowo wspierani przez III, IV i V Konkurs Badań i Innowacji Szkoły Nauk o Zdrowiu (Wydział Lekarski, Pontificia Universidad Católica de Chile). Autor RC-C został sfinansowany przez Projekt wspierany przez Competition for Research Regular Projects, rok 2023, kod LPR23-17, Universidad Tecnológica Metropolitana.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Waga kolumnowaSECA711Istnieje wiele alternatyw dla tego elementu
Przenośny stadiometr SECA217Istnieje wiele alternatyw dla tego elementu
12-odprowadzeniowe EKGCOSMEDQuark T12xA 12-odprowadzeniowe EKG zapewnia lepsze zrozumienie tętna podczas ćwiczeń i ułatwia wykrywanie arytmii.
PulsoksymetrCOSMEDZintegrowany pulsoksymetr
ErgoespirometrCOSMEDQuark-CPETW zestawie gazy kalibracyjne i strzykawka kalibracyjna
Ergometr rowerowyErgoline GmHViaSprint 150PIstnieje wiele alternatyw dla tego elementu. Musi zapewniać kompatybilność z dostarczonym oprogramowaniem
NIRS weareableArtinis Medical SystemsPortalite ArticulatedNIRS weareable dopasowuje się do powierzchni, na której jest umieszczony. 
Ubieralne urządzenieNIRS Artinis Medical SystemsPortamonzapewnia lepsze wyniki na powierzchniach o wysokiej zawartości tkanki tłuszczowej.
Oprogramowanie do zarządzania danymi metabolicznymi (OMNIA)COSMEDbędzie się różnić w zależności od wyboru systemu
Oprogramowanie do zarządzania danymi NIRS (Oxysoft)Oprogramowanie Artinis Medical Systemsbędzie się różnić w zależności od wyboru urządzenia
Bezprzewodowy ultrasonograf typu sondaSONUSDuo LCIstnieje wiele alternatyw dla tego elementu
Oprogramowanie

Bibliografia

  1. Bassett, D. R. Limiting factors for maximum oxygen uptake and determinants of endurance performance. Med Sci Sports Exerc. 70 (1), 12-25 (2000).
  2. Seiler, S. What is best practice for training intensity and duration distribution in endurance athletes. Int J Sports Physiol Perform. 5 (3), 276-291 (2010).
  3. Palange, P., et al. Recommendations on the use of exercise testing in clinical practice. Eur Respir J. 29 (1), 185-209 (2006).
  4. Contreras-Briceño, F., et al. Intercostal muscles oxygenation and breathing pattern during exercise in competitive marathon runners. Int J Environ Res Public Health. 18 (16), 8287(2021).
  5. Mier, C. M., Alexander, R. P., Mageean, A. L. Achievement of VO2max criteria during a continuous graded exercise test and a verification stage performed by college athletes. J Strength Cond Res. 26 (10), 2648-2654 (2012).
  6. Racinais, S., Buchheit, M., Girard, O. Breakpoints in ventilation, cerebral and muscle oxygenation, and muscle activity during an incremental cycling exercise. Front Physiol. 5, 142(2014).
  7. Perrey, S., Quaresima, V., Ferrari, M. Muscle oximetry in sports science: An updated systematic review. Sports Med. 54 (4), 975-996 (2024).
  8. Contreras-Briceño, F., et al. Determination of the respiratory compensation point by detecting changes in intercostal muscles oxygenation by using near-infrared spectroscopy. Life (Basel). 12 (3), 444(2022).
  9. Kozlova, S. G. The use of near-infrared spectroscopy in the sport-scientific context. J Neurol Neurol Diord. 4 (2), 203(2018).
  10. Perrey, S. Non-invasive NIR spectroscopy of human brain function during exercise. Methods. 45 (4), 289-299 (2008).
  11. Barstow, T. J. Understanding near infrared spectroscopy and its application to skeletal muscle research. J Appl Physiol. 126 (5), 1360-1376 (2019).
  12. Kowalski, T., et al. Respiratory muscle training induces additional stress and training load in well-trained triathletes—randomized controlled trial. Front Physiol. 14, 1264265(2023).
  13. Espinosa-Ramírez, M., et al. Sex-differences in the oxygenation levels of intercostal and vastus lateralis muscles during incremental exercise. Front Physiol. 12, 738063(2021).
  14. Perrey, S. Evaluating brain functioning with NIRS in sports: Cerebral oxygenation and cortical activation are two sides of the same coin. Front Neuroergonomics. 3, 1022924(2022).
  15. Thomas, R., Perrey, S. Prefrontal cortex oxygenation and neuromuscular responses to exhaustive exercise. Eur J Appl Physiol. 102 (2), 153-163 (2007).
  16. Kirby, B. S., Clark, D. A., Bradley, E. M., Wilkins, B. W. The balance of muscle oxygen supply and demand reveals critical metabolic rate and predicts time to exhaustion. J Appl Physiol. 130 (6), 1915-1927 (2021).
  17. Perrey, S. Training monitoring in sports: It is time to embrace cognitive demand. Sports (Basel). 10 (4), 56(2022).
  18. Angius, L., et al. Transcranial direct current stimulation over the left dorsolateral prefrontal cortex improves inhibitory control and endurance performance in healthy individuals. Neuroscience. 419, 34-45 (2019).
  19. Dempsey, J. A., McKenzie, D. C., Haverkamp, H. C., Eldridge, M. W. Update in the understanding of respiratory limitations to exercise performance in fit, active adults. Chest. 134 (3), 613-622 (2008).
  20. Peltonen, J. E., et al. Cerebral and muscle deoxygenation, hypoxic ventilatory chemosensitivity and cerebrovascular responsiveness during incremental exercise. Respir Physiol Neurobiol. 169 (1), 24-35 (2009).
  21. Klem, G. H., Lüders, H. O., Jasper, H. H., Elger, C. The ten-twenty electrode system of the International Federation. Electroencephalogr Clin Neurophysiol Suppl. 52, 3-6 (1999).
  22. Vogiatzis, I., et al. Intercostal muscle blood flow limitation in athletes during maximal exercise. J Physiol. 587 (14), 3665-3677 (2009).
  23. Vogiatzis, I., et al. Intercostal muscle blood flow limitation during exercise in chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 182 (9), 1105-1113 (2010).
  24. Contreras-Briceño, F., et al. Reliability of NIRS portable device for measuring intercostal muscles oxygenation during exercise. J Sports Sci. 37 (23), 2653-2659 (2019).
  25. Crum, E. M., O'Connor, W. J., Van Loo, L., Valckx, M., Stannard, S. R. Validity and reliability of the Moxy oxygen monitor during incremental cycling exercise. Eur J Sport Sci. 17 (8), 1037-1043 (2017).
  26. Vogiatzis, I., et al. Quadriceps muscle blood flow and oxygen availability during repetitive bouts of isometric exercise in simulated sailing. J Sports Sci. 29 (10), 1041-1049 (2011).
  27. Grassi, B., Quaresima, V. Near-infrared spectroscopy and skeletal muscle oxidative function in vivo in health and disease: A review from an exercise physiology perspective. J Biomed Opt. 21 (9), 091313(2016).
  28. Duncan, A., et al. Measurement of cranial optical path length as a function of age using phase resolved near infrared spectroscopy. Pediatr Res. 39 (5), 889-894 (1996).
  29. Aebi, M. R., Willis, S. J., Girard, O., Borrani, F., Millet, G. P. Active preconditioning with blood flow restriction or/and systemic hypoxic exposure does not improve repeated sprint cycling performance. Front Physiol. 10, 1393(2019).
  30. Cocking, S., et al. Repeated sprint cycling performance is not enhanced by ischaemic preconditioning or muscle heating strategies. Eur J Sport Sci. 21 (2), 166-175 (2021).
  31. Kligfield, P., et al. Recommendations for the standardization and interpretation of the electrocardiogram. J Am Coll Cardiol. 49 (10), 1109-1127 (2007).
  32. Dillon, H. T., et al. The effect of posture on maximal oxygen uptake in active healthy individuals. Eur J Appl Physiol. 121 (5), 1487-1498 (2021).
  33. DeCato, T. W., Haverkamp, H., Hegewald, M. J. Cardiopulmonary exercise testing (CPET). Am J Respir Crit Care Med. 201 (1), P1-P2 (2020).
  34. Skinner, J. S., Mclellan, T. H. The transition from aerobic to anaerobic metabolism. Res Q Exerc Sport. 51 (1), 234-248 (1980).
  35. Elmberg, V., et al. Reference equations for breathlessness during incremental cycle exercise testing. ERJ Open Res. 9 (2), 00566-02022 (2023).
  36. Borg, G. A. Psychophysical bases of perceived exertion. Med Sci Sports Exerc. 14 (5), 377-381 (1982).
  37. Perrey, S. Could near infrared spectroscopy be the new weapon in our understanding of the cerebral and muscle microvascular oxygen demand during exercise. J Sport Health Sci. 13 (4), 457-458 (2024).
  38. Orcioli-Silva, D., et al. Cerebral and muscle tissue oxygenation during exercise in healthy adults: A systematic review. J Sport Health Sci. 13 (4), 459-471 (2024).
  39. Kovalenko, B., Roskosky, M., Freedman, B. A. Effect of ambient light on near infrared spectroscopy. J Trauma Treat. 04 (03), (2014).
  40. Wik, L. Near-infrared spectroscopy during cardiopulmonary resuscitation and after restoration of spontaneous circulation: A valid technology. Curr Opin Crit Care. 22 (3), 191-198 (2016).
  41. Pirovano, I., et al. Effect of adipose tissue thickness and tissue optical properties on the differential pathlength factor estimation for NIRS studies on human skeletal muscle. Biomed Opt Express. 12 (1), 571(2021).
  42. Van Beekvelt, M. C. P., Borghuis, M. S., Van Engelen, B. G. M., Wevers, R. A., Colier, W. N. J. M. Adipose tissue thickness affects in vivo quantitative near-IR spectroscopy in human skeletal muscle. Clin Sci (Lond). 101 (1), 21-28 (2001).
  43. Homma, S. Influence of adipose tissue thickness on near infrared spectroscopic signal in the measurement of human muscle. J Biomed Opt. 1 (4), 418(1996).
  44. Gomes, A. C., et al. Body composition assessment in athletes: Comparison of a novel ultrasound technique to traditional skinfold measures and criterion DXA measure. J Sci Med Sport. 23 (11), 1006-1010 (2020).
  45. Delpy, D. T., Cope, M., Zee, P. V. D., Arridge, S., Wray, S., Wyatt, J. Estimation of optical pathlength through tissue from direct time of flight measurement. Phys Med Biol. 33 (12), 1433-1442 (1988).
  46. Talukdar, T., Moore, J. H., Diamond, S. G. Continuous correction of differential path length factor in near-infrared spectroscopy. J Biomed Opt. 18 (5), 056001(2013).
  47. Zonios, G., Bykowski, J., Kollias, N. Skin melanin, hemoglobin, and light scattering properties can be quantitatively assessed in vivo using diffuse reflectance spectroscopy. J Invest Dermatol. 117 (6), 1452-1457 (2001).
  48. Patel, N. A., Bhattal, H. S., Griesdale, D. E., Hoiland, R. L., Sekhon, M. S. Impact of skin pigmentation on cerebral regional saturation of oxygen using near-infrared spectroscopy: A systematic review. Crit Care Explor. 6 (2), e1049(2024).
  49. Wassenaar, E. B., Van Den Brand, J. G. H. Reliability of near-infrared spectroscopy in people with dark skin pigmentation. J Clin Monit Comput. 19 (3), 195-199 (2005).
  50. Miranda-Fuentes, C., et al. Changes in muscle oxygen saturation measured using wireless near-infrared spectroscopy in resistance training: A systematic review. Int J Environ Res Public Health. 18 (8), 4293(2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Ograniczenie wysiłkuutlenowanie tkanekograniczenie centralneograniczenie obwodowetest VO2 maxutlenowanie mięśnikora przedczołowafizjologia wysiłku
Wykorzystanie urządzeń ubieralnych do spektroskopii bliskiej podczerwieni w celu identyfikacji ograniczeń centralnych i obwodowych podczas ćwiczeń
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.