Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Solidny i powtarzalny protokół generowania organoidów cewy nerwowej z pojedynczych embrionalnych komórek macierzystych myszy

463 wyświetleń

DOI:

10.3791/67883

19 grudnia 2025

W tym artykule

Podsumowanie

Trójwymiarowe organoidy cewy nerwowej (NTO) pochodzące z embrionalnych komórek macierzystych myszy są cennymi narzędziami do badania ośrodkowego układu nerwowego we wczesnym rozwoju. Tutaj przedstawiono krok po kroku demonstrację zoptymalizowanego protokołu do uprawy NTO in vitro, zapewniającego stabilne warunki hodowli oraz strategie rozwiązywania problemów dla niezawodnej, powtarzalnej generacji NTO.

Streszczenie

Rozwój ssaków to bardzo złożony proces, charakteryzujący się koniecznością precyzyjnego, zależnego od stężenia i czasu sygnalizacji dla prawidłowego tworzenia wzorców i morfogenezy. Pomimo znacznego postępu technologicznego i zdobytej wiedzy, wiele aspektów rozwoju ssaków pozostaje nieuchwytnych. Podczas badania całego organizmu trudno jest rozplątać efekty poszczególnych szlaków lub mechanizm, dzięki któremu bodźce zewnętrzne kierują interferencją otaczających tkanek i czynników. W radzeniu sobie z tą złożonością wyłoniły się trójwymiarowe (3D) modele in vitro , takie jak organoidy, jako cenne narzędzia. Organoidy, pochodzące z embrionalnych komórek macierzystych (ESC) lub indukowanych pluripotentnych komórek macierzystych (iPSC), wykazują cechy tkankowe, które pod względem wzorców ekspresji i funkcjonalności bardzo przypominają ich odpowiedniki in vivo . Co ważne, zapewniają dostępność do manipulacji i szeroko zakrojonych badań biologicznych w kontrolowanych, eksperymentalnych warunkach. Pomimo pochodzenia z kultur pluripotentnych, systemy organoidalne często wykazują heterogeniczność i znaczną zmienność, co ogranicza ich użyteczność przy badaniu złożonych i złożonych zagadnień biologicznych. Dlatego istnieje pilna potrzeba szczegółowych protokołów mających na celu harmonizację procedur, które skutkują wysokiej jakością powtarzalnych danych, ograniczeniem używanych materiałów i, co ważne, umożliwieniem badania zawiłych zjawisk. W tym kontekście przedstawiono tutaj zoptymalizowany protokół hodowli organoidów cewki nerwowej (NTO) in vitro . Dzięki stabilnym warunkom hodowlanym i oferowaniu kompleksowych strategii rozwiązywania problemów, protokół ten umożliwia niezawodne i powtarzalne generowanie NTO, które stanowią odpowiedni model do badania istotnych zagadnień naukowych, w tym mechanizmów indukcji nerwowej, wzorowania i wczesnego rozwoju ośrodkowego układu nerwowego.

Wprowadzenie

Rozwój ssaków, rozpoczynający się od pojedynczej totipotentnej komórki macierzystej, to złożony proces, który obejmuje indukcję tworzenia wzorców i morfogenezę 1,2. Ten rozwój wymaga ściśle regulowanych programów komórkowych do zarządzania dynamicznymi interakcjami między komórkami a ich środowiskiem. Komórki macierzyste mają wrodzoną zdolność do wykrywania, integrowania i reagowania na sygnały systemowe i lokalne, w tym gradienty morfogenów3, granice mechaniczne4, proliferację komórkową oraz przebudowę środowiska5. Zewnętrzne sygnały czas....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

UWAGA: Codziennie sprawdzaj komórki i NLOs w celu oceny jakości przed kolejnymi zabiegami (wymiana medium, leczenie, fiksacja itp.). Wszystkie procedury wymagające bezpośredniego kontaktu komórek z powietrzem muszą być wykonywane w szafie bioasekuracyjnej, aby zapewnić sterylność i zapobiec skażeniu hodowli.

1. Konserwacja, przekazywanie i seeding ESC myszy dla różnicowania NTO

  1. Passaging
    1. Utrzymuj ESC na naczyniach do hodowli komórkowej lub w dołku z 6-dołkową płytką wstępnie pokrytą 0,15% żelatyną przez 30 minut w temperaturze 37 °C.
    2. Passing ESC co 2-3 dni, z codzienną wymianą medium od drug....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Dla wszystkich reprezentatywnych przykładów przedstawionych w tym manuskrypcie użyto ESC R1. Inne wspomniane ESC myszy mogą wykazywać niewielkie różnice w czasie epitelializacji, różnicowaniu nerwowym lub efektywności wzorcowania podczas zasiewania dla NTO, jednak wyniki nie powinny istotnie różnić się od danych przedstawionych tutaj.

Tylko dobrej jakości ESC (rysunek 2A) zasiewane w odpowiedniej gęstości komórek (rysunek 3) tworzą wy.......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Przedstawiono tutaj kilka optymalizacji i ulepszeń oryginalnego protokołu w celu generowania wysokiej jakości NTO, aby ułatwić standaryzację w różnych laboratoriach. Kluczowe modyfikacje obejmują inne warunki hodowli ESC, zmniejszoną liczbę komórek wejściowych, ulepszone medium różnicowania, zmodyfikowany protokół różnicowania oraz korektę gęstości zasiewów do analizy wysokoprzepustowej z użyciem płyt wielodołkowych. Kilka aspektów protokołu jest szczególnie istotnych dla osiągnięcia wiarygodnych i powtarzalnych wyników........

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

Podziękowania

Chcielibyśmy podziękować obecnym i byłym członkom laboratorium Tanaka za wsparcie i dyskusje w opracowaniu tego protokołu. Szczególnie dziękujemy A. Pelzlowi za krytyczną lekturę rękopisu, udzielenie uwagi i pomoc przy tworzeniu schematów oraz E. Chatzidakiemu za krytyczne czytanie rękopisu, redakcję i wsparcie przy tworzeniu schematów, a także za pozyskanie finansowania PUD 25 wspólnie z Juergenem A. Knoblichem. Publikacja ta została sfinansowana przez Austriacki Fundusz Naukowy (FWF): "Samodzielny projekt publikacji numer PUD 25". Dodatkowo projekt ten otrzymał dofinansowanie od Europejskiej Rady Badań (ERC) w ramach programu badawczo-innowacyjnych Horyzont 2020 Uni....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Antena 35 mm | Nr 1.5 Slip | Średnica szkła 14 mm | NiepowlekaneMatTek CorporationCat# P35G-1.5-14-C
AccutaseInvitrogenKatalog# 00-4555-56
Frakcja V albuminy (BSA) (pH 7,0)Panreac AppliChemCat# A1391
Kwas retinoowy All-TransMerckCat# R2625
Suplement B-27 (50X), bez surowicyGibcoCat# 17504044
Macierz błony podstawowej (Matrigel)CorningCat# BDL354234Stężenie białka 10 mg/ml 
Mikropłyty Ultra CellCarrier-96PerkinElmerCat# 6055302
CellProfiler 4Stirling i in. 2021https://cellprofiler.org
CHIR 99021TocrisKatalog# 4423
SZEŚCIENNE-R+(N)Matsumoto i in., 2019Nie ma
DimetylosiarkowotlenekSigma AldrichCat# D2650
DMEM/F-12, bez glutaminyGibcoCat# 21331020
Dulbecco' s Sól fizjologiczna buforowana fosforanowo (DPBS, 1X)GibcoCat# 14190144
Wirówka Eppendorf 5810 REppendorfCat# 5811000015
Eppendorf Microtube 3810XMerckCat# EP0030125150
Stożkowe rury wirówkowe FalconCorningCat# 352095
ŻelatynaMerckCat# G2500
L-glutamina (200 mM)GibcoCat# A2916801
Inkubator CO2 HeracellVIOS 160i, 165 lThermoFisher ScientificCat# 51033557
ImarisInstrumenty Oksfordzkiehttps://imaris.oxinst.com
Odwrócony mikroskop fazowy LED (CKX53)Olympus
2-Merkaptoetanol (50 mM)GibcoCat# 31350010
Myszy monoklonalny anty-OCT-3/4Santa Cruz BiotechnologyCat# sc-5279; RRID:AB_628051Użyj 1:200
Myszy monoklonalny anty-PAX3DSHBCat# PAX3-C; RRID:AB_528426Użyj 1:100
Monoklonalne króliki anty-SHHTechnologie sygnalizacji komórkowejKatalog# 2207; RRID:AB_2188191Użyj 1:300
Monoklonalne króliki anty-beta; 3-TubulinTechnologie sygnalizacji komórkowejKatalog# 5568; RRID:AB_10694505Użyj 1:500
Myszy monoklonalny anty-ZO-1InvitrogenKatalog #33-9100; RRID:AB_2533147Użyj 1:200
Myszy LIFQkineCat# Qk018-1000
Suplement N-2 (100X)GibcoCat# 17502048
Ośrodek neurobazalnyGibcoCat# 21103049
Paraformaldehyd, odczynnik, krystalicznyMerckCat# P6148
PD 0325901TocrisCat# 4192
Roztwór penicylina i streptomycynaGibcoCat# 15140130
Mikroskop z kontrastem fazowym
Poliklonalny lek anty-FOXA2 u kozyR& DCat# AF2400; RRID:AB_2294104Użyj 1:400
Poliklonalny anty-SOX1 dla kózR& D SystemsCat# AF3369; RRID:AB_2239879Użyj 1:200
Dane RNA-Seq związane z Rysunkiem 6Ishihara i in., 2022GEO: GSE214368
Mikrobiologiczna szafka bezpieczeństwa SafeFAST PremiumGrupa Dasit SZYBCIEJCat# F00025200000
Pirowinian sodu (100 mM)GibcoCat# 11360070
Obracający się dysk konfokalny mikroskop odwrócony (IX3)Olympus
Triton X-100Sigma AldrichCat# 9036-19-5

Bibliografia

  1. Hiiragi, T., Solter, D. First cleavage plane of the mouse egg is not predetermined but defined by the topology of the two apposing pronuclei. Nature. 430 (6997), 360-364 (2004).
  2. Louvet-Vallée, S., Vinot, S., Maro, B. Mitoti....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Organoidy cewy nerwowejmodele in vitropluripotencjalne kom rki macierzysteindukcja neuronalnaformowanie wzorcao rodkowy uk ad nerwowyprotok hodowli organoid wmorfogeneza tkankowa