Opracowanie modelu laboratoryjnego do oceny kompatybilności materiałów opatrunkowych z podciśnieniowymi systemami leczenia ran

Summary

To badanie przedstawia model laboratoryjny przeznaczony do oceny kompatybilności materiałów do opatrunków z podciśnieniowymi systemami leczenia ran poprzez ocenę ciśnienia i zbierania płynów przez 72 godziny przy ciągłych i przerywanych ustawieniach ciśnienia.

Abstract

Systemy terapii ran podciśnieniowych (NPWT) ułatwiają gojenie się ran poprzez zastosowanie podciśnienia atmosferycznego do łożyska rany, co sprzyja tworzeniu się ziarniny i zmniejsza stan zapalny. Opatrunki na rany mogą być stosowane z tymi systemami w celu przyspieszenia gojenia; jednak wpływ opatrunków na wydajność urządzenia NPWT jest trudny do oceny. Celem pracy było opracowanie laboratoryjnego modelu analogowego mięsa do testowania kompatybilności materiałów opatrunkowych z urządzeniami NPWT. W tym badaniu urządzenie do zaawansowanego leczenia ran na bazie chitozanu zostało ocenione pod kątem jego wpływu na wydajność NPWT przy maksymalnym i minimalnym ciśnieniu terapeutycznym. Celem było wykorzystanie modelu do porównania odczytów ciśnienia i pobierania płynów dla próbek z urządzeniem do pielęgnacji ran z chitozanem i bez niego. Model stołowy został zbudowany przy użyciu plastikowej skrzynki połączonej z wieloma manometrami. Na kawałku boczku wieprzowego powstała okrągła wada, użyta jako analog mięsa i włożona do pudełka. Ubytek wypełniono standardową pianką NPWT lub pianką połączoną z opatrunkiem na ranę. Symulowany płyn ustrojowy zawierający surowicę bydlęcą dodano do pudełka, które następnie testowano przy maksymalnym (-200 mmHg) lub minimalnym (-25 mmHg) ciśnieniu przez 72 godziny. Pomiar ciśnienia i przepływu płynu rejestrowano co 12 godzin. System NPWT z powodzeniem utrzymywał ciśnienie przez 72-godzinny okres testowy, zarówno z opatrunkami testowymi, jak i bez nich. Dodanie opatrunków na rany nie miało wpływu na gromadzenie płynów. Pudełko testowe okazało się skuteczne jako model stołowy, ponieważ można je było uszczelnić i utrzymać warunki próżni przez 72 godziny testu. Model ten z powodzeniem zademonstrował swoją przydatność w ocenie kompatybilności materiałów opatrunkowych z systemami NPWT.

Introduction

Istnieją różne podejścia terapeutyczne, które pomagają w leczeniu i procesie gojenia ran. Takie podejścia terapeutyczne obejmują zaawansowane opatrunki na rany, czynniki wzrostu, tlenoterapię hiperbaryczną, substytuty skóry i podciśnieniową terapię ran (NPWT)¹. NPWT odnosi się do systemów opatrunków na rany, które w sposób ciągły lub okresowy wywierają ciśnienie podatmosferyczne na system, który zapewnia podciśnienie na powierzchni rany. NPWT stała się popularną metodą leczenia ran ostrych lub przewlekłych². System NPWT składa się z pianki otwartokomórkowej, adhezyjnego opatrunku na rany, systemu zbierania płynów oraz pompy ssącej³. Pompa ssąca, czyli podciśnienie, służy do utrzymywania stałego nacisku na ranę, co pomaga zwiększyć przepływ krwi i zmniejszyć ryzyko infekcji⁴. NPWT wspomaga tworzenie się ziarniny, usuwając płyn z rany i zmniejszając obrzęk¹. Klinicznie wielkość ciśnienia ssania stosowanego w przypadku ran waha się od -20 mmHg do -200 mmHg, ale najbardziej odpowiednim badanym ciśnieniem jest -125 mmHg⁵.

Eksperymenty ex vivo NPWT są wyzwaniem ze względu na brak odpowiednich modeli laboratoryjnych do testów. Obecne metody testowania systemów NPWT obejmują symulacje komputerowe analizy metodą elementów skończonych (MES), które zostały wykorzystane do sprawdzenia, jak NPWT wpływa na miejsca nacięć⁶. Inne modele obejmują laboratoryjne modele ran na bazie agaru, które mogą być używane do badania wchłaniania płynów⁷. In vivo, modele świń zostały również wykorzystane do zbadania gojenia się ran⁸. Modele te mają takie zalety, jak łatwość symulacji na komputerze w celu przewidywania, jak rana powinna się zagoić w teorii, a także testowanie płynu przeciąganego przez materiał modelowy. Testy in vivo są decydujące dla określenia, czy system działa na żywych obiektach⁸. Wszystkie te modele mają również wady. Symulacja komputerowa może nie odzwierciedlać dokładnie, jak rana zagoiłaby się w prawdziwym życiu. Model na bazie agaru może pokazywać dobre zbieranie płynów przez ranę, ale może nie reprezentować tego, jak płyn byłby przeciągany przez tkankę i mięśnie⁷. Modele in vivo są drogie i wymagają znacznych zasobów do ukończenia badania. Ponadto utrzymanie zwierząt w stanie półbezruchu może być trudne, więc mogą pojawić się wyzwania związane z ciągnięciem za system, co może mieć mylące skutki.

Model laboratoryjny jest potrzebny do NPWT, aby można było testować nowe materiały do użycia z systemem przy użyciu rzeczywistej tkanki. Nowy model powinien być w stanie odzwierciedlić, w jaki sposób tkanki i mięśnie wpływają na gromadzenie płynów. Nowy model powinien być również w stanie zapewnić odczyty ciśnienia wewnątrz łożyska rany, aby określić, czy rana otrzymywała tak duże ciśnienie, jakie dostarczała pompa próżniowa. Mogą być również testowane nowe materiały/urządzenia, takie jak dodatkowe opatrunki na rany, różne rodzaje pianki i różne opatrunki adhezyjne na wierzchu rany.

Niektóre rany wymagają dodatkowego opatrunku, aby wspomóc proces gojenia, zmniejszając ryzyko infekcji. Innym powodem, dla którego mogą być wymagane dodatkowe materiały opatrunkowe, jest zapobieganie wraśnięciu tkanki między powierzchnią łożyska rany a pianką otwartokomórkową. Ten dodatkowy opatrunek zmniejsza ryzyko przywierania łożyska rany do pianki otwartokomórkowej, co pomaga zmniejszyć uszkodzenia i ból podczas zatrzymywania systemu NPWT⁹. Te dodatkowe opatrunki można umieścić wokół pianki otwartokomórkowej, aby działały jak membrana barierowa między łożyskiem rany a pianką. Niektóre materiały zostały użyte jako łącznik między łożyskiem rany a pianą, takie jak parafina lub gaza zatopiona w wazelinie. Parafina wykazała pozytywny potencjał jako opatrunek na rany, nie wpływając na przenoszenie ciśnienia z systemu do ound⁹. Stwierdzono jednak, że gaza zatopiona w wazelinie hamuje gromadzenie płynów i dlatego nie została uznana za odpowiedni materiał dodatkowy⁹.

Opatrunki na bazie chitozanu mogą być dobrym dodatkowym opatrunkiem do dodania podczas NPWT ze względu na ich działanie przeciwbakteryjne i biokompatybilność^10,11. Chitozan jest N-deacetylowaną pochodną chityny, która jest naturalnym polisacharydem występującym w grzybach i stawonogach^12,13. Chitozan wykazał naturalne właściwości przeciwbakteryjne w szerokim spektrum bakterii Gram-ujemnych i Gram-dodatnich¹⁴. Dlatego membrany chitozanowe stały się popularne w leczeniu ran, ponieważ można je łatwo wyprodukować, mają długi okres trwałości i wykazują wrodzone działanie przeciwdrobnoustrojowe¹⁰. Membrany te wykazują również dobrą biodegradację biokompatybilności i są nietoksyczne¹⁰.

W tym badaniu, Foundation DRS, zaawansowane urządzenie do leczenia ran chitozanem i glikozaminoglikanem, zostało zbadane w celu określenia jego biokompatybilności z NPWT. Foundation DRS to biodegradowalne rusztowanie do regeneracji skóry, wyprodukowane z myślą o idealnych właściwościach obsługi i porowatości, aby promować inwazję komórkową i neoangiogenezę w ranach. To urządzenie jest korzystne w leczeniu wielu różnych urazów i zastosowań. Został stworzony do stosowania w szerokim zakresie ran, takich jak odleżyny, owrzodzenia stopy cukrzycowej, oparzenia pierwszego stopnia, rany pourazowe, rany rozejściowe i rany chirurgiczne^10,11. Foundation DRS jest dobrą opcją do stosowania w NPWT ze względu na proces produkcyjny, który zapobiega przekształcaniu się urządzenia w hydrożel, gdy jest mokre. To urządzenie zachowuje otwartą strukturę porów po zwilżeniu, co powinno umożliwić przepływ płynu podczas aplikacji NPWT^12,13.

Celem tego badania było opracowanie analogowego modelu mięsa, który mógłby być wykorzystany do testowania kompatybilności materiałów do opatrunków z urządzeniami NPWT. Klinicznie ciśnienie waha się od -80 mmHg do -125 mmHg dla większości zastosowań NPWT⁴. Aby zasymulować najgorsze warunki użytkowania klinicznego, zastosowano ustawienie wyższego i niższego ciśnienia (-25 mmHg i -200 mmHg). Kolejnym celem tego badania było ustalenie, czy dodanie urządzenia do leczenia ran z chitozanem zakłócało odczyty ciśnienia i zbieranie płynów przez NPWT. Zakłócenia w zbieraniu płynów lub utrata ciśnienia podczas NPWT mogą prowadzić do złego gojenia się ran i słabych wyników klinicznych. Pobieranie płynów powinno być podobne do grup badanych z urządzeniem do pielęgnacji ran z chitozanem i bez niego. Odczyty ciśnienia powinny być również podobne we wszystkich grupach testowych w ciągu 72 godzin. W warunkach klinicznych opatrunek na ranę zmienia się co 48-72 godziny, więc każda próbka była testowana przez 72 godziny w tym badaniu³. Podczas testowania należy obserwować odczyty ciśnienia, aby upewnić się, że nie ma spadku ciśnienia.

Protocol

Szczegóły dotyczące odczynników i sprzętu użytego w tym badaniu są wymienione w Tabeli Materiałów.

1. Utworzenie pola testowego

1. Zaopatrz się w plastikowy pojemnik na 3,2 filiżanki.
2. Utwórz otwór o średnicy 2 cali na środku pokrywy pojemnika. Wykonaj również dwa otwory 3/8 w dwóch rogach pokrywy pojemnika w odległości około 1/2 cala od uszczelki krawędziowej. Użyj otwornicy, aby utworzyć otwory.
   UWAGA: Schemat przedstawiający ogólną konfigurację testową przy użyciu komercyjnej maszyny NPWT podłączonej do zbudowanego w laboratorium laboratoryjnego analogowego pudełka do mięsa jest pokazany w Rysunek 1. Ten schemat przedstawia, w jaki sposób pudełko jest używane do eksperymentów. Pole utworzone na potrzeby tego eksperymentu jest pokazane w Rysunek 2.
3. Na pierwszym z otworów 3/8 podłącz manometr bezpośrednio do otworu.
   UWAGA: Ten manometr był używany do monitorowania spadków ciśnienia na zewnątrz badanej tkanki, co wskazywałoby na nieszczelności w tkance.
4. Na drugim otworze 3/8 przeprowadź małą elastyczną rurkę dożylną o średnicy zewnętrznej mniejszej niż 3/8 przez otwór na długość 7 cali po wewnętrznej stronie pokrywy. Następnie zamontuj rurkę ciśnieniową na manometrze niskiego ciśnienia na zewnątrz pojemnika.
   UWAGA: Rurka ciśnieniowa została umieszczona w łożysku rany podczas testowania.

2. Przygotowanie analogu mięsa

1. Użyj dostępnego w handlu solonego boczku wieprzowego, znanego pod tym tytułem tkanka, do symulacji tkanki mięśniowej i tłuszczowej do badania NPWT.
2. Stwórz okrągły ubytek rany na powierzchni tkanki za pomocą skalpela z ostrzem #21 o szerokości około 1,5 cala i głębokości 0,75 cala. Następnie przebij tkankę przez tłuszcz z każdej strony za pomocą skalpela z ostrzem #21.
3. Po utworzeniu się ubytku rany należy wytrzeć tkankę, aby usunąć nadmiar tłuszczu ze skóry, a następnie zanurzyć się przez noc w wodzie dejonizowanej, aby usunąć nadmiar soli.

3. Obciążenie komory testowej

1. Wypełnij dno komory testowej pianką otwartokomórkową o grubości 1.5 cala. Następnie połóż chusteczkę na piance.
   UWAGA: Ręcznie wyśrodkuj próbkę tkanki tak, aby utworzony ubytek rany znajdował się bezpośrednio pod otworem w górnej części pokrywy.
2. W przypadku grup eksperymentalnych należy dodać urządzenie do pielęgnacji ran z chitozanem wewnątrz ubytku rany, tak aby spód i boki ubytku były zakryte. Następnie wypełnij pozostałą część ubytku pianką o otwartych komórkach.
3. Włóż rurkę ciśnieniową podłączoną do manometru na komorze testowej do pianki o otwartych komórkach, która jest używana do wypełnienia ubytku. Upewnij się, że rurka ta jest umieszczona mniej więcej w połowie odległości od powierzchni ubytku rany.
4. Przykryj tkankę adhezyjnym opatrunkiem na rany. Następnie należy wykonać małe nacięcie na opatrunku adhezyjnym, bezpośrednio na środku pianki otwartokomórkowej, wypełniając ubytek rany.
5. Przeciągnij dyszę próżniową przez pokrywę komory testowej i umieść ją na wierzchu opatrunku samoprzylepnego, w miejscu, w którym wykonano małe nacięcie. Po umieszczeniu dyszy próżniowej zamknij pokrywę komory testowej, aby docisnąć samoprzylepny opatrunek i dyszę próżniową w dół, co pomaga uzyskać uszczelnienie.
6. Podłącz kanister na płyn o pojemności 500 ml do pompy próżniowej, a następnie podłącz dyszę próżniową do pojemnika na płyny.

4. Tworzenie symulowanego płynu ustrojowego

1. Utwórz symulowany płyn ustrojowy zgodnie z Marques et al.¹⁵.
2. Przygotować symulowany płyn ustrojowy, łącząc 8,035 g NaCl, 0,355 g_NaHCO3, 0,225 g KCl, 0,231 g_K2HPO₄3H₂O, 0,311 g Cl₂Mg6H₂O, 0,292 g CaCl, 0,072 g NaSO₄^2-, 6,118 g (HOCH₂)₃CNH₂, i 39 ml 1 M HCl w 960 ml wody dejonizowanej, aby doprowadzić całkowity roztwór do 1 l.
   UWAGA: Skład symulowanego płynu ustrojowego przedstawiono w Tabeli 1.
3. Następnie połącz symulowany płyn ustrojowy z surowicą bydlęcą w stosunku 3:1. Uzupełnij końcowy roztwór 5% z 10 razy więcej antybiotyków/leków przeciwgrzybiczych w celu kontroli mikrobiologicznej. Wymieszaj roztwór po dodaniu surowicy bydlęcej i antybiotyków/leków przeciwgrzybiczych, a następnie przechowuj go w lodówce.
   UWAGA: Ostateczne rozwiązanie będzie określane jako kompletne rozwiązanie. Roztwór ten nie powinien być utrzymywany w sterylnej formie i powinien być świeży przed badaniem każdej próbki.

5. Warunki testowe

1. Dostosuj ustawienia pompy próżniowej dla próbek w zależności od warunków testu.
   UWAGA: Grupy testowe to: Grupa 1 Kontrola (n = 3): Sama piana z ciągłym ssaniem na poziomie -200 mmHg; Grupa 2 Kontrola (n = 3): Sama piana z przerywanym ssaniem od 0 do -200 mmHg; Grupa 3 (n = 3): Chitozanowe urządzenie do leczenia ran pod pianką z ciągłym ssaniem przy -200 mmHg; Grupa 4 (n = 3): Chitozanowe urządzenie do leczenia ran pod pianką z przerywanym odsysaniem od 0 do -200 mmHg; Grupa 5 Kontrola (n = 3): Sama piana z ciągłym ssaniem na poziomie -25 mmHg; Grupa 6 Kontrola (n = 3): Sama piana z przerywanym ssaniem od 0 do -25 mmHg; Grupa 7 (n = 3): Chitozanowe urządzenie do leczenia ran pod pianką z ciągłym ssaniem przy -25 mmHg; Grupa 8 (n = 3): Chitozanowe urządzenie do leczenia ran pod pianką z przerywanym ssaniem od 0 do -25 mmHg.
2. W przypadku grup prób maksymalnego ciśnienia ustaw ciśnienie na -200 mmHg. W przypadku grup prób minimalnego ciśnienia ustaw ciśnienie na -25 mmHg. Następnie ustaw pompę próżniową na ciśnienie przerywane lub ciągłe. Uruchom wszystkie próbki dla 72 h.
   UWAGA: Ciągłe ustawienie wywierało nacisk w sposób ciągły przez 72 godziny. Ustawienie przerywane wywierało ciśnienie w stosunku 5/2 (5 minut ciśnienia, a następnie 2 minuty bez ciśnienia) przez 72 godziny. Wartości maksymalne i minimalne zostały wybrane w oparciu o zakres ciśnienia, z którego mogą korzystać kliniczne systemy NPWT. Cykl trwający 72 godziny został wybrany na podstawie czasu, w którym NPWT jest zwykle stosowany klinicznie przed wykonaniem zmiany opatrunku³.
3. Podczas badania zapisuj ciśnienie na manometrze i ilość płynu w kanistrze do zbierania płynów co 12 godzin przez 72 godziny.
4. Jeśli ilość analogu płynu ustrojowego spadnie poniżej 75% górnej części komory testowej, jak zaobserwowano wizualnie, wyjmij wtórny manometr i dodaj kompletny roztwór do komory.
   UWAGA: Przygotowanie próbek i ustawienie do testowania można zobaczyć w Rysunek 3.
5. Po 72 godzinach wyłącz pompę próżniową i odłącz kanister z płynem od dyszy próżniowej. Wyjmij kanister na płyn z pompy próżniowej.
6. Wyjmij tkankę z komory testowej i zdejmij adhezyjny opatrunek na rany. Następnie wyjmij piankę o otwartych komórkach i obserwuj, czy urządzenie do pielęgnacji ran z chitozanem jest nadal nienaruszone. Jest uważany za nienaruszony, jeśli można go usunąć bez łamania, rozrywania lub rozdzierania; Jednak drobne rozdarcia lub przerzedzenia są dopuszczalne, jeśli membranę można całkowicie usunąć.

6. Analiza statystyczna

1. Do analizy statystycznej należy wykorzystać wartości ciśnienia, które były rejestrowane co 12 godzin w okresie badania z trzech próbek testowych na warunki badania. Do analizy statystycznej wykorzystano końcową wartość zbierania płynu z trzech próbek testowych dla każdego warunku testowego.
   UWAGA: Dla wszystkich analiz statystycznych poziom istotności ustalono na α = 0,05.
2. Oblicz średnią i odchylenia standardowe (n = 3/grupę) w każdym punkcie czasowym. Przed wykonaniem analizy statystycznej należy przeprowadzić test normalności dla każdej grupy za pomocą testu Shapiro-Wilka (np. ciągłe ssanie przy -200 mmHg, ciągłe ssanie przy -25 mmHg, przerywane ssanie przy -200 mmHg i przerywane ssanie przy -25 mmHg), aby określić, czy odpowiedni jest test ANOVA czy Kruskala-Wallisa.
3. Analizuj dane dla grup eksperymentalnych i kontrolnych poddanych tym samym warunkom próby ciśnieniowej (np. ciągłe ssanie przy -200 mmHg; ciągłe ssanie przy -25 mmHg; przerywane ssanie przy -200 mmHg lub przerywane ssanie przy -25 mmHg) przy użyciu dwukierunkowego testu ANOVA lub Kruskala Wallisa, używając typu membrany i czasu jako głównych czynników.
4. W przypadku stwierdzenia różnic statystycznych należy przeprowadzić analizy post-hoc. Użyj testu post-hoc HSD Tukeya po ANOVA lub testu post-hoc Dunna po teście Kruskala-Wallisa, aby określić, które grupy są różne.
5. Korzystając z końcowych wartości zbierania płynów dla każdej próbki w grupie kontrolnej i eksperymentalnej, wykonaj dwustronny test t przy założeniu nierównych wariancji.
   UWAGA: Ciśnienie było analizowane w każdym punkcie czasowym, aby upewnić się, że nie nastąpił znaczący spadek ciśnienia w czasie trwania testu. Podczas gdy zbieranie płynów było badane za każdym razem, analizowano je tylko w końcowym punkcie czasowym. Dzieje się tak, ponieważ każda tkanka miała inny profil tłuszczowy i mięśniowy, co skutkowało różnymi szybkościami zbierania płynów, co sprawia, że ogólne gromadzenie płynów jest bardziej przydatne do analizy niż zbieranie płynów według punktów czasowych.

Results

Celem badania było opracowanie laboratoryjnego modelu NPWT, który wykorzystuje analog tkankowy, oraz wykorzystanie modelu do zbadania kompatybilności materiałów do opatrunków z podciśnieniową maszyną do leczenia ran. Model wykorzystano do zbadania, czy maszyna NPWT jest w stanie utrzymać ciśnienie w czasie po dodaniu urządzenia do pielęgnacji ran. Model wykorzystano również do określenia, czy ciśnienie wytwarzane i płyn zbierany przez maszynę NPWT w obecności urządzenia do leczenia ran były różne w porównaniu z brakiem u...

Discussion

Istnieje kilka modeli stacjonarnych dla NPWT, ale mają one znaczne ograniczenia. Loveluck i wsp. opracowali model komputerowy MES, aby określić, w jaki sposób NPWT wpływa na zszyte miejsca nacięć, ale nie uwzględnili dodatkowych materiałów do opatrunku ran⁶. Rycerz i wsp. opracowali modele oparte na agarze do oceny dystrybucji roztworu do wkraplania do ran podczas NPWT⁷. Podczas gdy agar stanowił pożywkę do oceny rozkładu rozpuszczalnych w wodzie materiałów/barwników w różn...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
100x antybiotyki/grzybice	Gibco	15240062	Jest to 100X antybiotyki/leki przeciwgrzybicze stosowane w symulowanym płynie ustrojowym
3 M KCI ACTIV. System terapii AC	Produkty KCI Mdical	VFTR006619	Jest to pompa próżniowa wykorzystana w badaniu.
Kanister 3 M KCI InfoV.A.C z żelem 500 ml	eSutures.com	M8275063	Są to kanistry do zbierania płynów użyte w badaniu
3 M KCI V.A.C GranuFoam Medium Dressing Kit, SensaT.R.A.C		M8275052	Są to zestawy opatrunków z dyszą próżniową, w tym pianka otwartokomórkowa.
Surowica bydlęca	Gibco	16170086	Użyto tego do zmieszania z symulowanym płynem ustrojowym i antybiotykami/środkami przeciwgrzybiczymi
Chlorek wapnia	Fisher Scientific	C614-500	Użyto go do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Excel/Powerpoint	Microsoft Office	N/A	Użyto go do uruchomienia statystyk i stworzenia schematu dla Rysunek 1
Foundation DRS Solo	BioNova Medycyna	Nie dotyczy	Jest to zaawansowane urządzenie do leczenia ran chitozanem użyte w badaniu.
Kwas solny	Fisher Scientific	SA54-1	Został on wykorzystany do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Magensium Chloride	Fisher Scientific	M33-500	Został wykorzystany do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami	Thermo Scientific	J62036. K3	Użyto go do rozcieńczenia 100x antybiotyku/antybiotyku do 10x
chlorku potasu	SIGMA	P-3911	Użyto go do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Fosforan potasu Dibasic	Fisher BioReagents	BP363-500	Użyto go do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Penuometr PRM 0 do -10 w Hg	PRM Filtracja	PGCNBTY630652J10HG	Do komory testowej potrzebne są dwa manometry.
Solony boczek wieprzowy	Hormel Food Corporations	UPC: 0003760037988	Solony boczek wieprzowy można kupić w firmie Kroger. Nie można go pokroić w plastry. Najlepiej jest wybierać próbki, które mają mniej tłuszczu i więcej mięśni.
Wodorowęglan sodu	SIGMA	S5761-500G	Został on wykorzystany do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Chlorek sodu	Fisher Scientific	S640-500	Został on wykorzystany do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Siarczan sodu	Fisher Scientific	BP166-100	Został on wykorzystany do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Tris(hydroksymetylo)aminometan	Fisher Scientific	BP152-500	Zostało to wykorzystane do stworzenia symulowanego płynu ustrojowego
Tupperware Brands Corp, Kissimmee , FL	Tupperware	N/A To	jest pudełko używane jako komora testowa.