Artykuł metodologiczny

Śledzenie indywidualnych wskaźników biegania u myszy przy użyciu dobrowolnego protokołu uruchamiania koła, który minimalizuje izolację społeczną

DOI:

10.3791/67960

⸱

18 kwietnia 2025

 ,  ,  , 
1Department of Biological & Biomedical Sciences, College of Science & Mathematics, Rowan University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ten protokół opisuje skuteczny model dobrowolnego działania w kółko, który może być zaimplementowany w różnych kontekstach badawczych. W przeciwieństwie do innych modeli uruchamiania dobrowolnego, ta metoda pozwala uniknąć izolacji podczas śledzenia metryk biegania u poszczególnych myszy.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dobrowolne bieganie po kółkach (VWR) u gryzoni służy do oceny wydajności i wytrzymałości oraz do symulacji ćwiczeń. W przeciwieństwie do innych paradygmatów ćwiczeń, które wymagają bodźca awersyjnego w celu wywołania aktywnego ruchu, bieganie na kółkach jest dobrowolne. Firma VWR zazwyczaj polega na umieszczeniu kółka do biegania w klatce domowej myszy. Jednak analiza parametrów ćwiczeń może być zazwyczaj przeprowadzana tylko wtedy, gdy myszy są trzymane indywidualnie, podczas gdy ogólne efekty klatki można odnotować, gdy myszy są trzymane w grupie. Dlatego obecne modele zmuszają eksperymentatorów do wyboru między pomiarem indywidualnych parametrów ćwiczeń u myszy trzymanych w jednej osobie a pomiarem efektów grupowych u myszy trzymanych w grupie; W zależności od pytania badawczego i modelu może to być ograniczające.

Dlatego celem tej metody jest zademonstrowanie protokołu, który ocenia VWR w modelu mysim poprzez ilościowe określanie parametrów pracy u poszczególnych myszy, z minimalną izolacją. Informujemy o projektowaniu urządzeń, przygotowaniach przedoperacyjnych i przygotowaniach do eksperymentów. Wyniki 6-tygodniowego protokołu treningowego z wykorzystaniem tego modelu VWR sugerują, że dostarcza on wystarczającego bodźca, aby zwiększyć pamięć rozpoznawania obiektów przestrzennych, co jest porównywalne z efektem klinicznym ćwiczeń. Ten prosty i niedrogi model ułatwia badanie wpływu VWR na wiele pomiarów aktywności kół, minimalizując czynniki, które mogłyby ograniczać lub wpływać na wyniki eksperymentów.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ćwiczenia korzystnie wpływają na zdrowie fizjologiczne i psychiczne oraz mogą poprawić patofizjologię wielu chorób1. Aktywność fizyczna ma kluczowe znaczenie dla zdrowia, a Światowa Organizacja Zdrowia (WHO) poinformowała w 2020 roku, że zwiększenie aktywności fizycznej zmniejsza ryzyko wielu chorób, w tym zaburzeń psychicznych2. Oprócz zapobiegania chorobom, ćwiczenia mogą poprawić funkcjonowanie mózgu poprzez stymulację przepływu krwi3, indukując neurogenezę, szczególnie w hipokampie4, kluczowym regionie mózgu dla uczenia się i pamięci, regulacji hormonalnej5, oraz plastyczności synaptycznej poprzez zwiększanie poziomów czynników neurotroficznych pochodzenia mózgowego6. Dzięki tym mechanizmom ćwiczenia mogą poprawić funkcje poznawcze i pamięć7,8,9. Dodatkowe mechanizmy neurobiologiczne promowane przez ćwiczenia wspierają zdrowie psychiczne, w tym uwalnianie endorfin10, redukcja kortyzolu11, poprawa jakości snu12 oraz hamowanie zapalenia nerwów13. Mamy poprzednio
Wykazano, że dobrowolne ćwiczenia mogą zwiększać odporność na przewlekły stres i zachowania podobne do lęku u samców i samic myszy14. Dowody na to, że aktywność fizyczna poprawia wyniki leczenia chorób, w połączeniu z promowaniem zdrowia psychicznego, podkreślają potrzebę strategii zachęcających do aktywności fizycznej, w tym lepszego zrozumienia prewencyjnego i terapeutycznego potencjału ćwiczeń.

Jedną z metod badania wpływu ćwiczeń na funkcje biologiczne jest wykorzystanie modeli ćwiczeń gryzoni. Modele te są skuteczne w zwiększaniu pojemności minutowej serca i indukowaniu produkcji mleczanu do różnych poziomów w zależności od intensywności i częstotliwości ćwiczeń. Typowe modele używane do badania terapeutycznego efektu ćwiczeń obejmują pływanie, trening na bieżni i trening interwałowy o wysokiej intensywności15. Wadą niektórych modeli są jednak mimowolne lub wymuszone ćwiczenia, które mogą być stresującym doświadczeniem. Na przykład, gdy myszy są poddawane bieganiu na bieżni w modelowym urazie niedokrwiennym mózgu, zgłoszono podwyższone zachowanie podobne do lęku w teście w otwartym polu, podwyższony poziom kortykosteronu, uszkodzenie neuronów lub podwyższony poziom cytokin16. Alternatywnie, modele ćwiczeń dobrowolnych, w tym VWR, mogą uniknąć potencjalnie stresujących doświadczeń, pozwalając gryzoniom na swobodne bieganie, bez potrzeby kondycjonowania lub wzmacniania17. Działanie firmy VWR jest zwykle wykonywane poprzez zapewnienie ciągłego dostępu do koła jezdnego w klatce mieszczącej 4–5 myszy lub klatkach z pojedynczą myszą. W związku z tym firma VWR zapewnia warunki niestresujące, ponieważ nie wymaga negatywnego bodźca ani bezpośredniej interwencji ze strony eksperymentatora i może zapewnić mechanizm radzenia sobie lub wzbogacić doświadczenie18,19,20.

Celem tej metody jest zaproponowanie prostego i niedrogiego protokołu VWR, który umożliwia śledzenie poszczególnych bieżących wskaźników przy minimalnej izolacji. Myszy są trzymane w grupach, aby uniknąć długotrwałej izolacji społecznej, a parametry biegowe są rejestrowane dla poszczególnych myszy poprzez izolowanie myszy na arenie do biegania tylko przez 2 godziny dziennie. Szczegółowe informacje dotyczą 6-tygodniowego modelu VWR, w którym 10 myszy C57BL/6 miało dostęp do kółek jezdnych przez 2 godziny dziennie, podczas gdy 10 myszy C57BL/6 miało dostęp do zablokowanych kół. Wyniki potwierdziły, że protokół VWR był w stanie z powodzeniem śledzić poszczególne parametry biegowe przy minimalnej izolacji i pośredniczyć w korzystnym wpływie ćwiczeń na pamięć przestrzenną indukowaną hipokampem w teście rozpoznawania obiektów przestrzennych (SORT).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Uniwersytetu Rowan. Samce myszy ważyły od 20 g do 27 g i na początku badania miały 8-10 tygodni. Myszy trzymano w grupach po 4 osoby, w kontrolowanym środowisku (12:12 h cykl światła/ciemności) z dostępem ad libitum do pożywienia i wody.

1. Ustawienie kół

  1. Na zewnętrznym środkowym obwodzie każdego koła przyklej jeden magnes. Magnes ten zostanie wykryty przez cenzora prędkościomierza do monitorowania VWR (Rysunek 1A).
  2. Po przeciwnej stronie koła przyklej przedmiot o wadze podobnej do magnesu (monetę), aby zrównoważyć i zapobiec niepożądanemu obrotowi spowodowanemu ciężarem magnesu.
  3. Utwórz stolik dla prędkościomierza i koła. Za pomocą białej płyty piankowej wytnij kawałek o kształcie uzupełniającym do podstawy koła i przyklej go do podstawy (Rysunek 1B).
  4. Po włożeniu nowego kompletu baterii do prędkościomierza, należy ustawić rozmiar koła podczas wstępnego programowania, mierząc zewnętrzny obwód koła.
  5. Przyklej cenzora prędkościomierza do platformy. Upewnij się, że cenomierz prędkościomierza jest umieszczony równolegle do magnesu koła, aby umożliwić prawidłowe rejestrowanie ruchu (Rysunek 1C). Za każdym razem, gdy magnes przechodzi przez czujnik, będzie to liczone jako jeden obrót.
  6. Owiń cenzor i drut taśmą klejącą, aby uniknąć gryzienia drutu przez myszy (Rysunek 1D).

figure-protocol-1
Rysunek 1: Ustawienie urządzenia do jazdy na kole. (A) Magnes i moneta przyklejone (czerwona strzałka) po przeciwnych stronach zewnętrznej krawędzi koła. (B) Platforma wykonana z płyty piankowej (czerwona strzałka) używana jako stolik dla cenzora prędkościomierza. (C) Cenzor prędkościomierza na peronie (czerwona strzałka); (D) Oklejony taśmą cenzora (czerwona strzałka) i sfinalizowana konfiguracja koła. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

2. Ustawienie aparatury

  1. Wykorzystaj aparaturę behawioralną i podziel pudełko o wymiarach 40 cm x 40 cm x 35 cm (h) na cztery ćwiartki, aby indywidualnie przetestować cztery myszy w tym samym czasie.
    1. Wytnij dwa kawałki białej płyty piankowej w oparciu o następujące wymiary: dł. 30 cm, szer. 40 cm (Rysunek 2A).
    2. Na środku boku płyty piankowej o szerokości 40 cm wykonaj nacięcie o szerokości 20 cm, aby umożliwić przecięcie dwóch płyt piankowych.
    3. Przykryj płytę piankową wodoodpornym papierem samoprzylepnym, aby umożliwić łatwe czyszczenie między grupami.
    4. Podziel pudełko o wymiarach 40 cm x 40 cm x 35 cm (h) na cztery ćwiartki (20 cm x 20 cm x 30 cm (h) za pomocą dwóch przecinających się płyt piankowych (Rysunek 2B).
  2. Umieść jedno przygotowane koło (sprawdź konfigurację koła powyżej) w rogu każdej ćwiartki i przyklej drut do ściany. Przyklej prędkościomierze z boku przezroczystego aparatu z pleksiglasu (Rysunek 2C).

figure-protocol-2
Rysunek 2: Ustawienie aparatury. (A) Płyta piankowa przycięta i oklejona; (B) Aparat z pleksiglasu podzielony na cztery ćwiartki; (C) jedno koło umieszczone w rogu kwadrantu z drutem prędkościomierza przyklejonym do ściany. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

3. VWR

UWAGA: Oprócz wskaźników prędkościomierza, użyliśmy oprogramowania do śledzenia zachowań, systemu śledzenia zachowań ANY-maze, aby dostarczyć dodatkowych informacji o śledzeniu zachowań.

  1. Sesje VWR należy przeprowadzać codziennie, w fazie świetlnej codziennie o tej samej porze (od 9:00 do 11:00). Umieść myszy bez ćwiczeń na identycznych arenach na 2 godziny, ale z zablokowanymi kołami. Zablokuj koła za pomocą gorącego kleju, aby unieruchomić środek obrotu koła i wyłączyć obrót.
  2. Umieść myszy w pomieszczeniu VWR, aby przyzwyczaiły się do nich na 30-60 minut.
  3. Zresetuj wszystkie prędkościomierze.
  4. Umieść każdą mysz w rogu kwadrantu, w którym może swobodnie działać przez 2 godziny.
  5. Po 2 godzinach wróć myszy z powrotem do ich domowej klatki i zapisz dane prędkościomierza.
  6. Oczyść areny i koła za pomocą 70% etanolu między obiema grupami.

4. SORTOWANIE

UWAGA: Pod koniec 5 tygodni VWR przeprowadzono SORTOWANIE, aby sprawdzić, czy ćwiczenia poprawiły funkcjonowanie hipokampa zgodnie z opublikowanym protokołem21.

  1. Przeprowadź sesje habituacyjne i SORTUJ podczas fazy światła w pomieszczeniu z oświetleniem otoczenia. Przeprowadź sesje habituacyjne dzień przed SORT, podczas których przenieś myszy do indywidualnych klatek i wprowadź je do pomieszczenia testowego na co najmniej 30 minut aklimatyzacji.
    1. Wyznacz jeden z rogów areny jako "róg zwalniający" i upewnij się, że każda mysz jest skierowana w stronę rogu zwalniania, aby swobodnie eksplorować arenę przez 6 minut. Wróć myszy do ich indywidualnej klatki, aby oczyścić arenę 70% etanolem.
  2. Powtórz krok 4.1.1 2x, aby każda mysz przeszła przez trzy sesje habituacji. Po zakończeniu sesji habituacyjnych przywróć wszystkie myszy do ich domowych klatek.
  3. Po 24 godzinach należy zwrócić myszy do pomieszczenia testowego i pozwolić im przyzwyczaić się w indywidualnych klatkach przez 30-60 minut przed badaniem.
  4. Umieść dwa różne przedmioty w przeciwwadze na arenie w odległości 6 x 6 cm od dwóch niezwalnianych narożników.
  5. Umieść każdą mysz skierowaną w stronę rogu zwalniającego, aby swobodnie eksplorować obiekty przez 10 minut. Umieść myszy z powrotem w ich indywidualnych klatkach na 20 minut i wyczyść obiekty i areny 70% etanolem.
  6. Przesuń jeden z dwóch obiektów i przymocuj go w odległości 6 x 6 cm od nowego narożnika, który nie jest zwalniany, bez modyfikowania położenia drugiego obiektu.
  7. Umieść każdą mysz skierowaną w stronę rogu zwalniania, aby swobodnie eksplorować obiekty przez 10 minut, zanim wrócisz do swojej domowej klatki. Nagraj ten test za pomocą zautomatyzowanego oprogramowania, aby zmierzyć czas badania dla każdego obiektu i obliczyć procentowy czas badania w następujący sposób:
    % czasu dochodzenia = figure-protocol-3

5. Analiza statystyczna

  1. Wyraż wszystkie dane jako średnie ± SEM.
  2. Wykonuj analizy statystyczne za pomocą oprogramowania do analizy statystycznej o istotności ustawionej na p ≤ 0,05. Przeanalizuj wyniki SORT za pomocą testu T Studenta.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W tym badaniu, 20 samców myszy C57BL/6 zostało losowo przydzielonych do jednej z dwóch grup: niećwiczących (NO-EX) lub ćwiczących (VWR) przez 6 tygodni. Poszczególne parametry biegowe były rejestrowane codziennie na prędkościomierzach i wykreślane poniżej ± SEM (Rysunek 3A-C). Przez 6 tygodni myszy były najbardziej aktywne w 2 tygodniu, podczas którego spędzały średnio 2 135,87 ± 351,14 s na kole, pokonując dystans 1,16 ± 0,25 km z prędkością 2,25 ± 0,14 km/h. Z kolei najniższe parame...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Naukowcy wykorzystują różne paradygmaty ćwiczeń do oceny aktywności fizycznej i jej skutków u gryzoni, w tym paradygmaty dobrowolnego i wymuszonego biegania. W porównaniu z paradygmatami ćwiczeń wymuszonych firma VWR umożliwia myszom swobodne bieganie z mniejszą intensywnością, co minimalizuje stresujące warunki22. Obecnie badacze mogą zbierać parametry ćwiczeń poszczególnych myszy, umieszczając je pojedynczo 23,24,25,26,27,28,29,30,31 lub rejestrować globalne pa...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
ANY-box 5-Behavior Test SystemStoelting65000https://stoeltingco.com/Neuroscience/ANY-box-Multi-Configuration-Behavior-Apparatus~9838
Licznik rowerowy Przewodowe prędkościomierze rowerowe i licznikikilometrów IPSXP Nie dotyczyDowolna przewodowa prędkościomierz, która mierzy różnicę, czas, prędkość może działać
Przezroczysta samoprzylepna wkładka ochronna Marka Con-TactN/Ahttps://con-tactbrand.com/products/clear-cover%E2%84%A2-clear-matte?_pos=1&_fid=be2dc000c&_ss=c
GraphPad Prism 
  Klej błyskawiczny 496  Super BonderLoctiteS-24546https://www.uline.com/Product/Detail/S-24546/Adhesives-Glue-Epoxy/Loctite-Instant-Adhesive-496-Super-Bonder?pricode=WB0948&gadtype=pla&id=
S-24546& _source=1& gclid=Cjw
KCAjw68K4BhAuEiwAylp3klS0FN
ur-l_xKkue1NUmruDDV48QO5b2tVH
W9Bc08s9eZKmedj-yxBoCgIEQAvD_BwE
Magnesy neodymowe Pro MagND018-6Jeśli wybierasz inne magnesy, upewnij się, że są wystarczająco silne, aby mogły zostać wykryte przez cenzora
  Koła do ćwiczeń dla małych zwierząt Silent Spinner (mini 11,4 cm)KayteeSKU# 100079369https://www.kaytee.com/all-products/ kółko do ćwiczeń dla małych zwierząt/ciche kołowrotki
Białe deski piankowePacon5553https://pacon.com/foam-board-350/pacon-foam-board-20-x-30-white-10pkg-2.html

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bull, F. C., et al. World Health Organization 2020 guidelines on physical activity and sedentary behaviour. Br J Sports Med. 54 (24), 1451-1462 (2020).
  2. Physical activity. , World Health Organization (WHO). https://www.who.int/health-topics/physical-activity (2024).
  3. Gliemann, L., Vestergaard Hansen, C., Rytter, N., Hellsten, Y. Regulation of skeletal muscle blood flow during exercise. Curr Opin Physiol. 10, 146-155 (2019).
  4. Liu, P. Z., Nusslock, R. Exercise-mediated neurogenesis in the hippocampus via BDNF. Front Neurosci. 12, 52(2018).
  5. Hackney, A. C., Lane, A. R. Exercise and the regulation of endocrine hormones. Prog Mol Biol Transl Sci. 135, 293-311 (2015).
  6. De la Rosa, A., et al. Long-term exercise training improves memory in middle-aged men and modulates peripheral levels of BDNF and Cathepsin B. Sci Rep. 9 (1), 3337(2019).
  7. De Miguel, Z., et al. Exercise plasma boosts memory and dampens brain inflammation via clusterin. Nature. 600 (7889), 494-499 (2021).
  8. Roig, M., Nordbrandt, S., Geertsen, S. S., Nielsen, J. B. The effects of cardiovascular exercise on human memory: A review with meta-analysis. Neurosci Biobehav Rev. 37 (8), 1645-1666 (2013).
  9. Babaei, P., Azari, H. B. Exercise training improves memory performance in older adults: A narrative review of evidence and possible mechanisms. Front Hum Neurosci. 15, 771553(2022).
  10. Harber, V. J., Sutton, J. R. Endorphins and exercise. Sports Med. 1 (2), 154-171 (1984).
  11. De Nys, L., et al. The effects of physical activity on cortisol and sleep: A systematic review and meta-analysis. Psychoneuroendocrinology. 143, 105843(2022).
  12. Alnawwar, M. A., et al. The effect of physical activity on sleep quality and sleep disorder: A systematic review. Cureus. 15 (8), e43595(2023).
  13. Mee-inta, O., Zhao, Z. -W., Kuo, Y. -M. Physical exercise inhibits inflammation and microglial activation. Cells. 8 (7), 691(2019).
  14. Elias, E., Zhang, A. Y., White, A. G., Pyle, M. J., Manners, M. T. Voluntary wheel running promotes resilience to the behavioral effects of unpredictable chronic mild stress in male and female mice. Stress. 26 (1), 2203769(2023).
  15. Hastings, M. H., et al. Animal models of exercise from rodents to pythons. Circ Res. 130 (12), 1994-2014 (2022).
  16. Svensson, M., et al. Forced treadmill exercise can induce stress and increase neuronal damage in a mouse model of global cerebral ischemia. Neurobiol Stress. 5, 8-18 (2016).
  17. Manzanares, G., Brito-da-Silva, G., Gandra, P. G. Voluntary wheel running: patterns and physiological effects in mice. Braz J Med Biol Res. 52 (1), e7830(2018).
  18. Garland, T. Jr, et al. The biological control of voluntary exercise, spontaneous physical activity and daily energy expenditure in relation to obesity: human and rodent perspectives. J Exp Biol. 214 (Pt 2), 206-229 (2011).
  19. Meijer, J. H., Robbers, Y. Wheel running in the wild. Proc Biol Sci. 281 (1786), 20140210(2014).
  20. Banjanin, S., Mrosovsky, N. Preferences of mice, Mus musculus, for different types of running wheel. Lab Anim. 34 (3), 313-318 (2000).
  21. Denninger, J. K., Smith, B. M., Kirby, E. D. Novel object recognition and object location behavioral testing in mice on a budget. J Vis Exp. (141), e58593(2018).
  22. Manzanares, G., Brito-da-Silva, G., Gandra, P. G. Voluntary wheel running: patterns and physiological effects in mice. Braz J Med Biol Res. 52 (1), e7830(2018).
  23. Scott, K. S., Chelette, B., Chidomere, C., Phillip West, A., Dantzer, R. Cisplatin decreases voluntary wheel-running activity but does not impair food-motivated behavior in mice. Brain Behav Immun. 111, 169-176 (2023).
  24. Hamm, S. E., et al. Prolonged voluntary wheel running reveals unique adaptations in mdx mice treated with microdystrophin constructs ± the nNOS-binding site. Front Physiol. 14, 1166206(2023).
  25. Williams, Z. A. P., et al. Sex-specific effects of voluntary wheel running on behavior and the gut microbiota-immune-brain axis in mice. Brain Behav Immun Health. 30, 100628(2023).
  26. Ehichioya, D. E., et al. Gut microbiota depletion minimally affects the daily voluntary wheel running activity and food anticipatory activity in female and male C57BL/6J mice. Front Physiol. 14, 1299474(2023).
  27. Kim, M. -J., et al. Sex differences in body composition, voluntary wheel running activity, balance performance, and auditory function in CBA/CaJ mice across the lifespan. Hear Res. 428, 108684(2023).
  28. Yusifova, M., et al. Voluntary wheel running exercise does not attenuate circadian and cardiac dysfunction caused by conditional deletion of Bmal1. J Biol Rhythms. 38 (3), 290-304 (2023).
  29. Bittel, A. J., Bittel, D. C., Gordish-Dressman, H., Chen, Y. -W. Voluntary wheel running improves molecular and functional deficits in a murine model of facioscapulohumeral muscular dystrophy. iScience. 27 (1), 108632(2024).
  30. Leimbacher, A. C., et al. Voluntary exercise does not always suppress lung cancer progression. iScience. 26 (8), 107298(2023).
  31. Zhang, Y., et al. Trimethylamine N-oxide aggravated cognitive impairment from APP/PS1 mice and protective roles of voluntary exercise. Neurochem Int. 162, 105459(2023).
  32. Zhang, W., et al. Notch1 is involved in physiologic cardiac hypertrophy of mice via the p38 signaling pathway after voluntary running. Int J Mol Sci. 24 (4), 3212(2023).
  33. Wan, C., et al. Long-term voluntary running improves cognitive ability in developing mice by modulating the cholinergic system, antioxidant ability, and BDNF/PI3K/Akt/CREB pathway. Neurosci Lett. 836, 137872(2024).
  34. Weegh, N., et al. Wheel running behaviour in group-housed female mice indicates disturbed wellbeing due to DSS colitis. Lab Anim. 54 (1), 63-72 (2020).
  35. Coleman, A. L., et al. Short-term social isolation induces depressive-like behaviour and reinstates the retrieval of an aversive task: Mood-congruent memory in male mice. J Psychiatry Neurosci. 38 (4), 259-268 (2013).
  36. Desan, P. H., Silbert, L. H., Maier, S. F. Long-term effects of inescapable stress on daily running activity and antagonism by desipramine. Pharmacol Biochem Behav. 30 (1), 21-29 (1988).
  37. DeVallance, E., et al. Effect of chronic stress on running wheel activity in mice. PloS One. 12 (9), e0184829(2017).
  38. Liu, P. Z., Nusslock, R. Exercise-mediated neurogenesis in the hippocampus via BDNF. Front Neurosci. 12, 52(2018).
  39. Erickson, K. I., et al. Exercise training increases size of hippocampus and improves memory. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (7), 3017-3022 (2011).
  40. Zhang, S., et al. The effect of aerobic exercise on cognitive function in people with Alzheimer's disease: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Int J Environ Res Public Health. 19 (23), 15700(2022).
  41. Nystoriak, M. A., Bhatnagar, A. Cardiovascular effects and benefits of exercise. Front Cardiovasc Med. 5, 135(2018).
  42. Kirwan, J. P., Sacks, J. P., Nieuwoudt, S. The essential role of exercise in the management of type 2 diabetes. Cleve Clin J Med. 84 (7 Suppl 1), S15-S21 (2017).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Myszy z pomiarem parametr w biegumyszy w izolacji spo ecznejmyszy w grupowej klatcegryzonie w badaniu zachowa ruchowychrozpoznawanie obiekt w przestrzennychledzenie aktywno ci indywidualnejaparatura behawioralna dla myszyfunkcja hipokampa u myszy

Powiązane artykuły