Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Pobranie allotransplantacji unaczynionej i unerwionej ściany brzucha

914 wyświetleń

DOI:

10.3791/68418

18 lipca 2025

W tym artykule

Podsumowanie

Protokół ten opisuje krok po kroku procedurę pobierania unaczynionego i unerwionego alloprzeszczepu ściany jamy brzusznej, szczegółowo opisując jego anatomiczne punkty orientacyjne, wymagania techniczne i przyszłe potencjalne zastosowania kliniczne.

Streszczenie

Rozległe i złożone wady ściany jamy brzusznej, szczególnie te związane z uszkodzeniem jelit lub narządów trzewnych, stanowią poważne wyzwanie medyczne i chirurgiczne. Idealna rekonstrukcja musi przywrócić anatomię, funkcję, czucie i obraz ciała. Obecnie żadna konwencjonalna metoda rekonstrukcji nie spełnia wszystkich tych kryteriów w tak złożonych scenariuszach. Jednak unaczyniona allotransplantacja kompozytowa (VCA) oferuje unikalne rozwiązanie, zapewniając zadowalające wyniki anatomiczne i funkcjonalne - choć kosztem immunosupresji przez całe życie.

Od czasu pierwszego zgłoszonego przypadku u człowieka w 2003 r. na całym świecie przeprowadzono około 40 przeszczepów ścian brzucha, wszystkie w połączeniu z przeszczepem jelitowym lub wielotrzewnym. Chociaż opisano różne adaptacje techniczne, procedura okazała się zarówno bezpieczna, jak i skuteczna dla pacjentów ze złożonymi wadami ściany brzucha. Do tej pory nie podjęto próby przeprowadzenia alloprzeszczepu unerwionej ściany jamy brzusznej u ludzi. Jednak reinerwacja wydaje się być kolejną granicą, z potencjałem poprawy wyników funkcjonalnych i zmniejszenia powikłań.

Protokół ten określa ustandaryzowaną procedurę pobierania i przygotowania unaczynionego alloprzeszczepu kompozytowego ściany brzucha, zaprojektowaną w celu zapewnienia optymalnych wyników i zminimalizowania uszkodzeń tkanek. Przeszczep, unaczyniony przez głębokie dolne naczynia nadbrzusza, jest pobierany z dużymi marginesami, aby umożliwić rekonstrukcję bez napięć. Wyszczególniamy również konkretne kroki wymagane do pobrania unerwionej próbki. Pod koniec zabiegu dwie głębokie dolne tętnice nadbrzusza są kaniulowane, a przeszczep jest perfundowany roztworem konserwującym do transportu. Ostatecznie protokół ten ma na celu standaryzację pobierania przeszczepów powłok brzusznych. Ma to być cenne źródło informacji zarówno do badań translacyjnych, jak i zastosowań klinicznych, zwłaszcza że zainteresowanie przeszczepem powłok brzusznych stale rośnie.

Wprowadzenie

Skuteczne zamknięcie ściany jamy brzusznej po przeszczepieniu jelita (ITx) lub przeszczepie wielotrzewnym (MVTx) stanowi poważne wyzwanie dla chirurgów rekonstrukcyjnych ze względu na różne czynniki - takie jak ograniczona objętość jamy brzusznej biorcy, rozbieżności morfologiczne między dawcą a biorcą, obrzęk pooperacyjny, bliznowaty brzuch i obecność wielu przetok jelitowo-skórnych1, 2,3,4,5,6.

W ciągu ostatnich kilku dekad zaproponowano kilka technik zamykania jamy brzusznej w celu rozwiązania lub przynajmniej złagodzenia powikłań związanych ze złożonymi wadami jamy brzusznej. Należą do nich stosowanie siatek syntetycznych, rozszerzanie skóry, terapia podciśnieniowa oraz uszypułowane lub wolne płaty 2,6,7,8,9,10,11,12,13.

Jednak gdy konwencjonalne metody nie są wykonalne, można rozważyć dwie alternatywne strategie: wybór dawcy z mniejszymi narządami, chociaż może to wydłużyć czas oczekiwania i ryzyko śmiertelności dla pacjentów znajdujących się na listach do przeszczepów (Fishbein i wsp. stwierdzili, że idealny stosunek masy ciała dawcy do biorcy wynosi od 0,76 do 1,1)14 lub zaproponowanie związanego z tym przeszczepu ściany brzucha.

Koncepcja ta została po raz pierwszy wprowadzona przez Leviego i wsp. w 2003 r.15 , a następnie ulepszona w wersji mikronaczyniowej przez Ciprianiego i wsp.16. Jest to wykonalna i bezpieczna procedura o wielu zaletach, zwłaszcza biorąc pod uwagę, że immunosupresja jest już wymagana w przypadku przeszczepów jelitowych lub wielotrzewnych. Bardzo ważne jest jednak przeprowadzenie badań przesiewowych pod kątem przeciwwskazań dawcy, takich jak przepukliny lub wybrzuszenia brzucha w wywiadzie, wcześniejsze operacje w jamie brzusznej lub otyłość.

Główną zaletą allotransplantacji ściany brzucha jest możliwość monitorowania immunosupresji i odrzucenia przez komponent skórny przeszczepu, który służy zarówno jako modulator immunologiczny, jak i widoczny strażnik aktywności immunologicznej gospodarza. Stanowi to cenne narzędzie do wczesnego wykrywania odrzucenia przeszczepu jelitowego i, co ważniejsze, pomaga uniknąć niepotrzebnej nadmiernej immunosupresji w przypadkach dysfunkcji przeszczepu niezwiązanej z odrzuceniem immunologicznym1, 7,18.

Pomimo obiecujących zmian, allotransplantacja powłok brzusznych pozostaje rzadką interwencją chirurgiczną, z zaledwie około czterdziestoma przypadkami zgłoszonymi na całym świecie19,20. Przypadki te są opisane głównie w seriach przypadków i przeglądach 5,15,16,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30 . Ponadto literatura na temat pozyskiwania unerwionych przeszczepów ścian jamy brzusznej jest bardzo ograniczona; Do tej pory nie przeprowadzono takich zabiegów u żywych ludzi31. Oczekuje się jednak, że reinerwacja znacznie poprawi wyniki funkcjonalne27. Niniejszy artykuł ma na celu przedstawienie krok po kroku protokołu pobierania alloprzeszczepu ściany jamy brzusznej - w tym specyfikę techniczną jego zreinerwiowanej odmiany.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Laboratorium Anatomii Wydziału Medycyny w Nicei we Francji hojnie udostępniło preparaty i materiały wykorzystane w niniejszym badaniu. Badanie zostało zatwierdzone przez Francuską Krajową Komisję Etyczną (numer zatwierdzenia 83.2024) i przeprowadzone zgodnie z zasadami Deklaracji Helsińskiej.

Allograft ściany brzusznej, o kształcie zbliżonym do pięciokąta, rozciąga się od wyrostka xifoidalnego do spojenia łonowego. Obejmuje on, w jednym bloku, skórę i tkankę podskórną, oba mięśnie proste brzucha, fragmenty mięśni wewnątrzbrzusznych, zewnętrznych oraz poprzecznych brzucha, głęboką powięź mięśniową, powięź poprzeczną oraz powięź otrzewnej ściennej. Przeszczep jest unaczyniony przez obustronne głębokie naczynia epigastryczne dolne, które zostają przecięte proksymalnie w miejscu ich odejścia od naczyń zewnętrznych biodrowych.

1. Rysunek przedoperacyjny (Rysunek 1)

  1. Umieścić pacjenta w pozycji tyłem na stole operacyjnym, z ramionami wzdłuż ciała. Zabezpieczyć oczy i zapewnić odpowiednie wyścielenie punktów nacisku.
  2. Za pomocą pisaka dermograficznego wyznaczyć granicę górną, rysując linię rozpoczynającą się od wyrostka mieczykowatego mostka. Przedłużyć linię bocznie, prowadząc ją wzdłuż dolnego brzegu klatki piersiowej po obu stronach, aż do pionowej linii znajdującej się 2-3 cm bocznie od kolca przedniego górnego kości biodrowej.
  3. Wyznaczyć granicę boczną, korzystając z pionowej linii umieszczonej 2-3 cm bocznie od kolca przedniego górnego kości biodrowej. Od tego punktu poprowadzić linię w dół do miejsca wyczuwalnego tętna tętnicy udowej, około 7-10 cm poniżej więzadła pachwinowego.
  4. Wyznaczyć granicę dolną, prowadząc linię od tętna tętnicy udowej w kierunku kolca łonowego po każdej ze stron, tworząc trójkąt, którego wierzchołek znajduje się poniżej więzadeł pachwinowych. Połączyć obie strony rysunku wzdłuż linii środkowej, kończąc na spojeniu łonowym.

Schemat planowania nacięcia brzusznego na zwłokach.
Rycina 1: Rysunek przedoperacyjny. Ciągła niebieska linia reprezentuje chirurgiczne nacięcie skóry w allotransplantacji ściany brzucha. (1) wyrostek mieczowaty, (2) dolny łuk żebrowy, (3) kolec przedni górny kości biodrowej, (4) więzadło pachwinowe, (5) spojenie łonowe. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

2. Górne nacięcie (Rysunek 2)

  1. Wykonaj obustronne podżebrowe nacięcie skóry wzdłuż wcześniej zaznaczonej linii, używając zimnego ostrza skalpela.
  2. Kontynuuj nacięcie przez tkankę podskórną za pomocą elektrokoagulatora, aż do dotarcia do powięzi mięśniowej.
  3. Nacinaj powięź pokrywającą mięśnie proste brzucha, aby odsłonić brzuszce mięśniowe.
  4. Przetnij przyczepy żebrowe mięśni prostych brzucha elektrokoagulatorem.
  5. Zidentyfikuj naczynia nadbrzuszne górne, podwiąż je, a następnie przetnij.
  6. Za każdym zmobilizowanym mięśniem prostym kolejno nacinaj głęboką aponeurozę mięśniową, powięź przekrośną oraz powięź otrzewnej ściennej.
  7. Bocznie rozpreparuj mięśnie skośne zewnętrzne i zidentyfikuj linię półksiężycowatą.

Schemat preparatu z sekcji anatomicznej chirurgicznej; przedstawia warstwy, w tym skórę, tłuszcz i mięśnie brzucha.
Rycina 2: Górne nacięcie. Górne oddzielenie allograftu brzusznego umożliwia wizualizację mięśni ściany brzucha. (1) lewy mięsień prosty brzucha, (2) prawy mięsień prosty brzucha, (3) linia biała, (4) głęboka aponeuroza mięśniowa. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

3. Nacięcia boczne (Rysunek 3)

  1. Wykonaj nacięcie skóry zimnym ostrzem zgodnie z uprzednio wyznaczonymi liniami bocznymi.
  2. Kontynuuj nacięcie przez tkankę podskórną przy użyciu elektrokoagulatora, aż do osiągnięcia warstwy aponeurotycznej mięśni skośnych zewnętrznych brzucha.
  3. Zidentyfikuj linię półksiężycowatą, a następnie wykonaj pionowe nacięcie w aponeurozie mięśnia skośnego zewnętrznego brzucha, około 2-3 cm bocznie od linii półksiężycowatej.
  4. Nacinaj mięsień skośny zewnętrzny brzucha, a następnie mięsień skośny wewnętrzny brzucha, zachowując odległość od 2 do 3 cm bocznie od linii półksiężycowatej, aby uniknąć uszkodzenia nerwów piersiowo-lędźwiowych.
  5. Zidentyfikuj płaszczyznę rozdzielenia między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha.
  6. Zlokalizuj nerwy piersiowo-lędźwiowe przebiegające między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha i ostrożnie odsuń je bocznie tak daleko, jak to możliwe.
  7. Po zabezpieczeniu nerwów piersiowo-lędźwiowych nacinaj mięsień poprzeczny brzucha, następnie powięź mięśnia poprzecznego brzucha, a na koniec otrzewną ścienną.

Schemat techniki abdominoplastyki, ilustrujący nacięcia i warstwy anatomiczne w celach edukacyjnych.
Rycina 3: Nacięcie boczne i identyfikacja nerwów piersiowo-lędźwiowych. Boczna dyssekcja ukazuje nerwy piersiowo-lędźwiowe przebiegające między mięśniem skośnym wewnętrznym a mięśniem poprzecznym brzucha. Allograft jest unoszony w kierunku od głowowym do ogonowym. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) prawy mięsień skośny wewnętrzny, (10) lewy mięsień skośny wewnętrzny, (11) prawy mięsień skośny zewnętrzny, (12) lewy mięsień skośny zewnętrzny, (13) prawy mięsień prosty brzucha, (14) lewy mięsień prosty brzucha, (15) powięź otrzewnej ścienna. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

4. Uwalnianie allograftu od strony czaszkowej do ogonowej

  1. Rozpocząć uwalnianie allograftu od strony kranialnej do kaudalnej, pozostawiając go przytwierdzonym do ciała dawcy w jego dolnych krawędziach.
  2. Zidentyfikować głębokie pieńki tętnic i żył epigastrycznych dolnych znajdujące się na głębokiej powierzchni mięśni prostych brzucha.

5. Dolne cięcie i dyssekcja szypuły (Rycina 4, Rycina 5 oraz Rycina 6)

  1. Wykonać nacięcie skóry wzdłuż dolnej, wcześniej wyznaczonej linii, używając zimnego skalpela.
  2. Kontynuować preparowanie tkanki podskórnej za pomocą skalpela elektrycznego, aż do osiągnięcia powięziowej płaszczyzny mięśniowej kończyny dolnej w obrębie uda.
  3. Zidentyfikować żyłę odpiszczelną wielką; podwiązać ją i przeciąć. Zlokalizować skórny nerw boczny uda i go przekroić.
  4. Naciąć powięź kończyny dolnej, która musi zostać włączona w skład pobranego przeszczepu.
  5. Odwarstwić dwa trójkątne płaty powięziowo-skórne znajdujące się pod więzadłami pachwinowymi, aż do odsłonięcia naczyń udowych.
  6. Po obu stronach ostrożnie wypreparować tętnicę i żyłę udową wraz z ich odgałęzieniami bocznymi (powierzchownymi naczyniami najniższych naczyń brzusznych oraz powierzchownymi naczyniami obręczylicznymi). Kontynuować preparowanie w kierunku tętnicy i żyły biodrowej zewnętrznej, identyfikując i zachowując głębokie naczynia najniższych naczyń brzusznych oraz głębokie naczynia obręczyliczne. Zabezpieczyć głębokie naczynia najniższych naczyń brzusznych za pomocą silikonowej pętli. W przypadku dawców z bijącym sercem należy upewnić się, że tętnienie tętnicze jest utrzymane przez cały czas trwania procedury, oraz potwierdzić, że brzegi skóry allograftu krwawią, co jest wskaźnikiem perfuzji.
  7. Kontynuować preparowanie powyżej więzadła pachwinowego, usuwając powięź mięśniową nad mięśniem biodrowym, aby uniknąć uszkodzenia głębokich naczyń obręczylicznych.
  8. Za pomocą skalpela elektrycznego oddzielić mięśnie proste brzucha od ich przyczepów łonowych, dbając o zachowanie ciągłości głębokich naczyń najniższych naczyń brzusznych.
  9. Podwiązać i przekroić zawartość kanału pachwinowego: sznur nasienny i nerw biodrowo-pachwinowy u mężczyzn lub więzadło okrągłe macicy i nerw biodrowo-pachwinowy u kobiet.
  10. Zakończyć preparowanie poprzez podwiązanie i przecięcie głębokich naczyń obręczylicznych, powierzchownych naczyń obręczylicznych oraz powierzchownych naczyń najniższych naczyń brzusznych u ich ujść do naczyń biodrowych zewnętrznych i udowych. Upewnić się, że dwa głębokie pieńki naczyniowe najniższych naczyń brzusznych pozostają przytwierdzone zarówno do allograftu ściany brzusznej, jak i do ciała dawcy.

Sekcja zwłok człowieka przedstawiająca anatomię klatki piersiowej i jamy brzusznej; opisowy schemat chirurgiczny.
Rycina 4Unaczynienie allograftu. Ten widok przedni ukazuje wszystkie naczynia (tętnice i żyły) oraz nerwy, które należy zidentyfikować. W tle, w jamie brzusznej, widoczne są narządy jamy brzusznej. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) prawa tętnica biodrowa zewnętrzna, (10) lewa tętnica biodrowa zewnętrzna, (11) prawa tętnica naczasowa dolna, (12) lewa tętnica naczasowa dolna, (13) prawa żyła naczasowa dolna, (14) lewa żyła naczasowa dolna, (15) prawa żyła biodrowa zewnętrzna, (16) lewa żyła biodrowa zewnętrzna, (17) prawa tętnica biodrowa obwodnia głęboka, (18) lewa tętnica biodrowa obwodnia głęboka, (19) prawa tętnica biodrowa obwodnia powierzchowna, (20) prawa tętnica naczasowa dolna powierzchowna, (21) wspólny pień lewej tętnicy naczasowej dolnej powierzchownej i lewej tętnicy biodrowej obwodniej powierzchownej. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Disekcja chirurgiczna, badania anatomiczne, odsłonięcie oznakowanych mięśni i nerwów, zastosowanie w badaniach edukacyjnych.
Rycina 5Unaczynienie allograftu (lewa strona). Na tym widoku z lewej strony widoczne są cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe. Ponadto, w tym przypadku występuje wspólny pień między lewą powierzchowną tętnicą nadbrzuszną dolną a lewą powierzchowną tętnicą obwodową biodrową. (1) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) lewa tętnica biodrowa zewnętrzna, (6) lewa tętnica brzuszna dolna głęboka, (7) lewa żyła brzuszna dolna głęboka, (8) lewa żyła biodrowa zewnętrzna, (9) lewa tętnica biodrowa obwodowa głęboka, (10) wspólny pień lewej tętnicy brzusznej dolnej powierzchownej i lewej tętnicy biodrowej obwodowej powierzchownej. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Procedura chirurgiczna, wypreparowane nerwy oznaczone numerami 1-11 w kończynie górnej. Badanie anatomiczne, edukacja medyczna.
Rycina 6: Unaczynienie allograftu (strona prawa). Na tym widoku prawostronnym widoczne są cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe. Tutaj prawa tętnica epigastryczna powierzchowna dolna oraz prawa tętnica biodrowa obwodna powierzchowna odchodzą oddzielnie od tętnicy udowej. (1) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (3) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (5) prawa tętnica biodrowa zewnętrzna, (6) prawa tętnica epigastryczna głęboka dolna, (7) prawa żyła epigastryczna głęboka dolna, (8) prawa żyła biodrowa zewnętrzna, (9) prawa tętnica biodrowa obwodna głęboka, (10) prawa tętnica biodrowa obwodna powierzchowna, (11) prawa tętnica epigastryczna powierzchowna dolna. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

6. Odzwyczajanie i kondycjonowanie przeszczepu (Rysunek 7)

  1. Pozostaw allograft ściany brzusznej na szypułach naczyń epigastrycznych dolnych głębokich podczas usuwania trzewi brzusznych. W tym czasie umieść przeszczep w sterylnym naczyniu wypełnionym chłodnym roztworem soli fizjologicznej.
  2. Po całkowitym usunięciu trzewi brzusznych zidentyfikuj i zaznacz naczynia epigastryczne dolne głębokie po obu stronach – zazwyczaj jest to jedna tętnica i dwie żyły na każdą stronę. Ostrożnie wypreparuj i podwiąż naczynia w miejscu ich odgałęzienia od naczyń zewnętrznych tętnicy i żyły biodrowej. Przetnij naczynia, aby uwolnić przeszczep.
  3. Zakaniuluj każdą tętnicę epigastryczną dolną głęboką, używając kaniuli naczyniowej wyposażonej w kranik. Przymocuj kaniulę do światła tętnicy za pomocą podwiązki.
  4. Podłącz zestaw do irygacji do kaniul i przepłucz przeszczep 1-3 L roztworu konserwującego University of Wisconsin (UW) schłodzonego do 4 °C. Utrzymuj przepływ na poziomie około 100 mL/min pod niskim ciśnieniem (<100 mmHg) do momentu, aż płyn odpływający stanie się klarowny. Krok ten zapewnia optymalne chłodzenie i konserwację przeszczepu przed transplantacją.

Schemat sekcji anatomicznej przedstawiający struktury nerwowe; zestaw do edukacyjnej analizy anatomicznej.
Rysunek 7: Wolny allograft brzuszny. Lewy obraz przedstawia stronę głęboką wolnego allograftu, a prawy obraz przedstawia stronę powierzchowną wolnego allograftu. Ten allotransplantat ściany brzusznej jest teraz gotowy do przyjęcia roztworu konserwującego i do transportu. (1) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (2) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2 lewy, (3) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (4) lewy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4 lewy, (5) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°1, (6) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°2, (7) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°3, (8) prawy nerw piersiowo-lędźwiowy n°4, (9) lewa głęboka tętnica nadbrzuszna dolna, (10) prawa głęboka tętnica nadbrzuszna dolna, (11) lewa głęboka żyła nadbrzuszna dolna, (12) prawa głęboka żyła nadbrzuszna dolna, (13) lewa głęboka tętnica obwodnia biodrowa, (14) prawa głęboka tętnica obwodnia biodrowa, (15) wspólny pień lewej powierzchownej tętnicy nadbrzusznej dolnej i lewej powierzchownej tętnicy obwodnia biodrowej, (16) prawa powierzchowna tętnica obwodnia biodrowa, (17) prawa powierzchowna tętnica nadbrzuszna dolna, (18) lewy mięsień prosty brzucha, (19) prawy mięsień prosty brzucha, (20) linia łukowata. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Ciało dawcy wypreparowane do tego badania było kobietą o wzroście 1,69 m i standardowej morfologii ciała. Pobrany alloprzeszczep ściany jamy brzusznej mierzył 40 cm wysokości i 21 cm szerokości, przy stosunkowo jednolitej grubości 43 mm.

Z każdej strony udało się wyizolować cztery nerwy piersiowo-lędźwiowe dobrego kalibru (o średnicy około 1 mm). Nerwy te zostały wypreparowane bocznie w płaszczyźnie anatomicznej między wewnętrznymi skośnymi i poprzecznymi mięśniami brzucha, uzyskując średnią d...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Zgodnie z aktualną literaturą, allotransplantacja ściany brzucha okazała się skuteczną opcją rekonstrukcyjną w złożonych warunkach przeszczepu narządów. Obecne wskazania do stosowania tej techniki operacyjnej ograniczają się do przypadków, w których konwencjonalne metody rekonstrukcji powłok jamy brzusznej nie są możliwe podczas przeszczepienia narządów do jamy brzusznej. Należą do nich sytuacje takie jak wielobliznowaty i zwłóknieniony brzuch wynikający z powtarzających się operacji jamy brzusznej, obecność wielu przeto...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do zadeklarowania konfliktu interesów.

Podziękowania

Autorzy pragną wyrazić szczerą wdzięczność osobom, które hojnie ofiarowały swoje ciała nauce, umożliwiając w ten sposób badania anatomiczne. Wnioski uzyskane z takich badań mogą przyczynić się do znacznego poszerzenia wiedzy naukowej i poprawy opieki nad pacjentem. W związku z tym ci darczyńcy i ich rodziny zasługują na nasze najgłębsze uznanie.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
11,5" Medium Premium Surgiclip II Auto Szwy Aplikator do naczyńWirus Covidien
Szew jedwabny 2-0 
Kleszcze AdsonWspółczynnik zarządzania rybami (MPM106-2112A
Bipolarne kleszcze do krzepnięciaOlsen20-1320I
Custodiol HTK Roztwór do perfuzji kończynNiezbędne farmaceutyki Inc.Stosowanie poza wskazaniami rejestracyjnymi
Zestaw do irygacji pęcherza moczowego Baxter Healthcare Corp.
Skalpel jednorazowy #15Sklar
DLP 3 mm kaniula naczyniowa końcówkaMedtronic Inc
Kauteryzacja cienkoigłowaCormedica (Kormedica)
Rozszerzacze kleszczyWskaźnik WPI15910
Zawór odcinający dożylnie
Mikro nożyczkiWskaźnik WPI504492
Diatermia monopolarnaLaboratorium doliny
Piła oscylacyjnaGPC Medyczne
Roztwór soli fizjologicznej 0,9%GenDepotS0600-101
Sterylny bandaż Esmarcha 
Sterylny długopis chirurgiczny do znakowaniaKardynalne zdrowie212PR powiedział:
Nożyczki do zezaSurtex powiedział:102-4109
Nici Ethilon 4.0Etyka1667G
Strzykawka 10 mlAgilent9301-6474
Trzy sterylne plastikowe torby do pobierania i trzy sterylne opaski zaciskowe
Kleszcze do tkanekWspółczynnik zarządzania rybami (MPM106-0511
Pętla statkuDeroyal (Królewski)30-711

Bibliografia

  1. Alexandrides, I. J., Liu, P., Marshall, D. M., Nery, J. R., Tzakis, A. G., Thaller, S. R. Abdominal wall closure after intestinal transplantation. Plast Reconstr Surg. 106 (4), 805-812 (2000).
  2. Di Benedetto, F., et al. Use of prosthetic mesh in difficult abdominal wall closure after small bowel transplantation in adults. Transplant Proc. 37 (5), 2272-2274 (2005).
  3. Carlsen, B. T., Farmer, D. G., Busuttil, R. W., Miller, T. A., Rudkin, G. H. Incidence and management of abdominal wall defects after intestinal and multivisceral transplantation. Plast Reconstr Surg. 119 (4), 1247-1255 (2007).
  4. Zanfi, C., et al. Incidence and management of abdominal closure-related complications in adult intestinal transplantation. Transplantation. 85 (11), 1607-1609 (2008).
  5. Berli, J. U., et al. Current concepts and systematic review of vascularized composite allotransplantation of the abdominal wall. Clin Transpl. 27 (6), 781-789 (2013).
  6. Fortunato, A. C., et al. Technique for closing the abdominal wall in intestinal and multivisceral transplantation. Ann Transplant. 27, e934595(2022).
  7. Kimata, Y., et al. Anterolateral thigh flap for abdominal wall reconstruction. Plast Reconstr Surg. 103 (4), 1191-1197 (1999).
  8. Ng, R. W., Chan, J. Y., Mok, V., Li, G. K. Clinical use of a pedicled anterolateral thigh flap. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 61 (2), 158-164 (2008).
  9. Gondolesi, G. E., Aguirre, N. F. Techniques for abdominal wall reconstruction in intestinal transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 22 (2), 135-141 (2017).
  10. Alleyne, B., Ozturk, C. N., Rampazzo, A., Johnson, J., Gurunluoglu, R. Combined submuscular tissue expansion and anterior component separation technique for abdominal wall reconstruction: long-term outcome analysis. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 70 (6), 752-758 (2017).
  11. Wooten, K. E., Ozturk, C. N., Ozturk, C., Laub, P., Aronoff, N., Gurunluoglu, R. Role of tissue expansion in abdominal wall reconstruction: a systematic evidence-based review. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 70 (6), 741-751 (2017).
  12. Patel, N. G., Ratanshi, I., Buchel, E. W. The best of abdominal wall reconstruction. Plast Reconstr Surg. 141 (1), 113e-136e (2018).
  13. Aliotta, R. E., Gatherwright, J., Krpata, D., Rosenblatt, S., Rosen, M., Gurunluoglu, R. Complex abdominal wall reconstruction, harnessing the power of a specialized multidisciplinary team to improve pain and quality of life. Hernia. 23 (2), 205-215 (2019).
  14. Fishbein, T. M., Bodian, C. A., Miller, C. M. National sharing of cadaveric isolated intestinal allografts for human transplantation: a feasibility study. Transplantation. 69 (5), 859-863 (2000).
  15. Levi, D. M., et al. Transplantation of the abdominal wall. Lancet. 361 (9376), 2173-2176 (2003).
  16. Cipriani, R., et al. Abdominal wall transplantation with microsurgical technique. Am J Transplant. 7 (5), 1304-1307 (2007).
  17. Gerlach, U. A., et al. Abdominal wall transplantation: skin as a sentinel marker for rejection. Am J Transplant. 16 (6), 1892-1900 (2016).
  18. Barnes, J., Issa, F., Vrakas, G., Friend, P., Giele, H. The abdominal wall transplant as a sentinel skin graft. Curr Opin Organ Transplant. 21 (5), 536-540 (2016).
  19. Honeyman, C., et al. Abdominal wall transplantation: indications and outcomes. Curr Transplant Rep. 7, 279-290 (2020).
  20. Reed, L. T., Echternacht, S. R., Shanmugarajah, K., Hernandez, R., Langstein, H. N., Leckenby, J. I. Twenty years of abdominal wall allotransplantation: a systematic review of the short- and long-term outcomes. Plast Reconstr Surg. 150 (5), 1062e-1070e (2022).
  21. Selvaggi, G., et al. Expanded use of transplantation techniques: abdominal wall transplantation and intestinal autotransplantation. Transplant Proc. 36 (5), 1561-1563 (2004).
  22. Selvaggi, G., Levi, D. M., Cipriani, R., Sgarzani, R., Pinna, A. D., Tzakis, A. G. Abdominal wall transplantation: surgical and immunologic aspects. Transplant Proc. 41 (2), 521-522 (2009).
  23. Allin, B. S. R., et al. A single center experience of abdominal wall graft rejection after combined intestinal and abdominal wall transplantation. Am J Transplant. 13 (8), 2211-2215 (2013).
  24. Giele, H., et al. Remote revascularization of abdominal wall transplants using the forearm. Am J Transplant. 14 (6), 1410-1416 (2014).
  25. Avashia, Y. J., Mackert, G. A., May, B., Erdmann, D., Ravindra, K. V. Abdominal wall transplantation. Curr Transplant Rep. 2, 269-275 (2015).
  26. Giele, H., Vaidya, A., Reddy, S., Vrakas, G., Friend, P. Current state of abdominal wall transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 21 (2), 159-164 (2016).
  27. Park, S. H., Eun, S. H. Abdominal wall transplant surgery. Exp Clin Transplant. 16 (6), 745-750 (2018).
  28. Molitor, M., Oliverius, M., Sukop, A. Abdominal wall transplantation. Biomed Pap Med Fac Univ Palacky Olomouc Czech Repub. 162 (3), 184-189 (2018).
  29. Erdmann, D., et al. Small bowel and abdominal wall transplantation: a novel technique for synchronous revascularization. Am J Transplant. 19 (7), 2122-2126 (2019).
  30. Bustos, V. P., et al. Abdominal wall vascularized composite allotransplantation: a scoping review. J Reconstr Microsurg. 38 (6), 481-490 (2022).
  31. Lupon, E., et al. Allotransplantations de tissus composites en France : mise au point [Vascularized composite allografts in France: an update]. Ann Chir Plast Esthet. 70 (2), 140-147 (2025).
  32. Atia, A., Hollins, H., Hernandez, J. A., Erdmann, D. Abdominal wall transplantation. Reconstructive Transplantation. , Springer Nature. Switzerland. 301-309 (2023).
  33. Nasir, S., Bozkurt, M., Klimczak, A., Siemionow, M. Large antigenic skin load in total abdominal wall transplants permits chimerism induction. Ann Plast Surg. 61 (5), 572-579 (2008).
  34. Jin, J., et al. Use of abdominal wall allotransplantation as an alternative for the management of end stage abdominal wall failure in a porcine model. J Surg Res. 162 (2), 314-320 (2010).
  35. Yang, J., Erdmann, D., Chang, J. C., et al. A model of sequential heart and composite tissue allotransplant in rats. Plast Reconstr Surg. 126 (1), 80-86 (2010).
  36. Quigley, M. A., Fletcher, D. R., Zhang, W., Nguyen, V. T. Development of a reliable model of total abdominal wall transplantation. Plast Reconstr Surg. 132 (4), 988-994 (2013).
  37. Lao, W. W., Wang, Y. L., Ramirez, A. E., Cheng, H. Y., Wei, F. C. A new rat model for orthotopic abdominal wall allotransplantation. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2 (4), e136(2014).
  38. Broyles, J. M., et al. Reconstruction of large abdominal wall defects using neurotized vascular composite allografts. Plast Reconstr Surg. 136 (4), 728-737 (2015).
  39. Cipriani, R., Negosanti, L., Pinto, V., Sgarzani, R., Gelati, C., Contedini, F. Abdominal wall transplantation and technique. Abdominal Solid Organ Transplantation: Immunology, Indications, Techniques and Early Complications. Pinna, A. D., Ercolani, G. , Springer International. 379-389 (2015).
  40. Light, D., et al. Total abdominal wall transplantation: an anatomical study and classification system. Plast Reconstr Surg. 139 (6), 1466-1473 (2017).
  41. Huger, W. E. Jr The anatomic rationale for abdominal lipectomy. Am Surg. 45 (9), 612-617 (1979).
  42. Hollenbeck, S. T., et al. The extended abdominal wall flap for transplantation. Transplant Proc. 43 (5), 1701-1705 (2011).
  43. Broyles, J. M., et al. Functional abdominal wall reconstruction using an innervated abdominal wall vascularized composite tissue allograft: a cadaveric study and review of the literature. J Reconstr Microsurg. 31 (1), 39-44 (2015).
  44. Singh, D. P., et al. Novel technique for innervated abdominal wall vascularized composite allotransplantation: a separation of components approach. Eplasty. 14, e34(2014).
  45. Duchateau, J., Declety, A., Lejour, M. Innervation of the rectus abdominis muscle: implications for rectus flaps. Plast Reconstr Surg. 82 (2), 223-228 (1988).
  46. Hammond, D. C., Larson, D. L., Severinac, R. N., Marcias, M. Rectus abdominis muscle innervation: implications for TRAM flap elevation. Plast Reconstr Surg. 96 (1), 105-110 (1995).
  47. Mori, H., Akita, A., Hata, Y. Anatomical study of innervated transverse rectus abdominis musculocutaneous and deep inferior epigastric perforator flaps. Surg Radiol Anat. 29 (2), 149-154 (2007).
  48. Rozen, W. M., Tran, T. M. N., Ashton, M. W., Barrington, M. J., Ivanusic, J. J., Taylor, G. I. Refining the course of the thoracolumbar nerves: a new understanding of the innervation of the anterior abdominal wall. Clin Anat. 21 (4), 325-333 (2008).
  49. Gurunluoglu, R., Rosen, M. J. Recipient vessels for microsurgical flaps to the abdomen: a systematic review. Microsurgery. 37 (6), 707-716 (2017).
  50. Atia, A., et al. Surgical techniques for revascularization in abdominal wall transplantation. J Reconstr Microsurg. 36 (7), 522-527 (2020).
  51. Atia, A., et al. Synchronous abdominal wall and small-bowel transplantation: a 1-year follow-up. Plast Reconstr Surg Glob Open. 8 (7), e2995(2020).
  52. Severance, G., Walsh, L. Rehabilitation after bilateral hand transplantation in the quadrimembral patient: review and recommendations. Tech Hand Up Extrem Surg. 17 (4), 215-220 (2013).
  53. Lupon, E., et al. Engineering vascularized composite allografts using natural scaffolds: a systematic review. Tissue Eng Part B Rev. 28 (3), 677-693 (2022).
  54. Sasaki, H., et al. Selective Bcl-2 inhibition promotes hematopoietic chimerism and allograft tolerance without myelosuppression in nonhuman primates. Sci Transl Med. 15 (690), eadd5318(2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Przeszczep ściany brzusznejunaczyniony złożony alloprzeszczepkonserwacja przeszczepuregeneracja nerwówreinnerwowany alloprzeszczepgłębokie naczynia epigastryczne dolnenerwy piersiowo-lędźwiowepobieranie tkanekuszkodzenie reperfuzyjnepowrót funkcji