Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Opis przypadku

Rzadki patogen w zgorzeli stopy cukrzycowej: przypadek zakażenia Wohlfahrtiimonas chitiniclastica

611 wyświetleń

DOI:

10.3791/68877

23 września 2025

W tym artykule

Podsumowanie

U 76-letniego mężczyzny z cukrzycą z przewlekłymi owrzodzeniami stóp i gangreną, powikłanymi inwazją robaków, zdiagnozowano Wohlfahrtiimonas chitiniclastica poprzez sekwencjonowanie metagenomiczne. Oczyszczenie, terapia ertapenemem i rekonstrukcja rany doprowadziły do wyzdrowienia, co podkreśla znaczenie wczesnego wykrywania i zaawansowanej diagnostyki rzadkich patogenów u pacjentów z obniżoną odpornością.

Streszczenie

Wohlfahrtiimonas chitiniclastica jest rzadką bakterią Gram-ujemną, zwykle związaną z zakażeniami ran, szczególnie u pacjentów z obniżoną odpornością lub osób narażonych na niehigieniczne warunki. Chociaż przypadki kliniczne są rzadkie, infekcja może prowadzić do poważnych powikłań, takich jak bakteriemia, wstrząs septyczny, a nawet śmierć, jeśli nie zostanie rozpoznana lub nieodpowiednio leczona. Przedstawiamy przypadek 76-letniego mężczyzny z cukrzycą, u którego rozwinęły się przewlekłe, niegojące się owrzodzenia stóp powikłane gangreną i inwazją robaków. Wyzwania diagnostyczne rozwiązano za pomocą metagenomicznego sekwencjonowania nowej generacji, w ramach którego zidentyfikowano W. chitiniclastica wraz z Proteus mirabilis i Corynebacterium striatum. Leczenie obejmowało agresywne chirurgiczne oczyszczanie w celu usunięcia martwiczej tkanki, miejscowe zastosowanie cementu kostnego nasączonego gentamycyną, ogólnoustrojową antybiotykoterapię ertapenemem oraz rekonstrukcję rany za pomocą płata powięziowego opartego na grzbiecie. To połączone podejście zaowocowało znaczną poprawą kliniczną, postępującym gojeniem się ran i wyraźnym zmniejszeniem markerów infekcji. Przypadek ten podkreśla decydującą rolę zaawansowanych technologii sekwencjonowania w identyfikacji rzadkich patogenów w ramach zakażeń wielodrobnoustrojowych, w przypadku których konwencjonalne metody, takie jak spektrometria mas MALDI-TOF, mogą zawieść. Podkreśla również znaczenie integracji precyzyjnej diagnostyki z interwencją chirurgiczną, ukierunkowaną terapią przeciwdrobnoustrojową i rygorystyczną opieką pooperacyjną w celu osiągnięcia pomyślnych wyników. Dokumentując tę niezwykłą prezentację, dążymy do poszerzenia świadomości klinicznej na temat zakażeń W. chitiniclastica i zapewnienia praktycznych ram do leczenia podobnie złożonych zakażeń stopy cukrzycowej.

Wprowadzenie

Wohlfahrtiimonas chitiniclastica jest Gram-ujemnym, nieruchomym prętem zdolnym do kolonizacji różnych gospodarzy zarówno w warunkach tlenowych, jak i beztlenowych, ze znaczną aktywnością chitynazy, która odgrywa ważną rolę w metamorfozie pasożytniczych much 1,2. Samice much składają jaja na powierzchniach błon śluzowych i ranach, tworząc infekcję nidus. Larwy przez pewien czas żywią się płynnymi płynami ustrojowymi, spożytym pokarmem lub żywymi i martwiczymi tkankami żywiciela3. Chociaż zakażenia są rzadkie, liczba doniesień klinicznych rośnie, szczególnie u pacjentów z obniżoną odpornością lub narażonych na niehigieniczne warunki. Tendencja ta wynika częściowo z szerszego zastosowania technologii sekwencjonowania genetycznego, które przyczyniło się do lepszego zrozumienia epidemiologii patogenu4. Klinicznie W. chitiniclastica może powodować miejscowe infekcje ran, ale może również prowadzić do ciężkiej bakteriemii, wstrząsu septycznego, a nawet śmierci, jeśli nie jest leczona5.

Ten opis przypadku opisuje pacjenta z przewlekłym, niegojącym się owrzodzeniem stopy cukrzycowej powikłanym inwazją robaków, u którego ostatecznie zdiagnozowano zakażenie W. chitiniclastica . Raport ilustruje wyzwania diagnostyczne i znaczenie wczesnej identyfikacji za pomocą metagenomicznego sekwencjonowania nowej generacji (mNGS). Ponadto kładzie nacisk na integrację agresywnego chirurgicznego oczyszczania z terapią karbapenemową w celu uzyskania ratowania kończyny. Podkreślając synergię między zaawansowaną diagnostyką a innowacyjną chirurgią rekonstrukcyjną, przypadek ten poszerza scenariusze, w których należy podejrzewać W. chitiniclastica i zapewnia praktyczne ramy do leczenia podobnie złożonych infekcji.

PREZENTACJA PRZYPADKU:

76-letni mężczyzna zgłosił się z owrzodzeniami na prawej stopie, które utrzymywały się przez trzy miesiące i stopniowo prowadziły do czernienia trzeciego i piątego palca. Około trzy miesiące przed przyjęciem do szpitala rozwinął się u niego niewielki wrzód na podeszwowej stronie prawej przedniej części stopy. W ciągu kolejnych tygodni zmiana stopniowo się powiększała i wytwarzała ropną wydzielinę. Początkowo szukał opieki w lokalnym szpitalu, gdzie otrzymał 5-dniową eksperymentalną lekcję doustnych antybiotyków (cefuroksym sodowy, 1 tabletka dwa razy dziennie), ale wykazał minimalną poprawę. Piętnaście dni przed przyjęciem wrzód pogorszył się, z postępującą martwicą i inwazją robaków.

Pacjent miał w wywiadzie cukrzycę ze słabą kontrolą glikemii, zgłaszał częste pomijanie dawek i nieregularne monitorowanie stężenia glukozy we krwi. Jego regularne leki obejmowały doustne tabletki metforminy o przedłużonym uwalnianiu (jedna tabletka, trzy razy dziennie). Miał również historię wszczepienia rozrusznika serca. Pod względem społecznym żył w środowisku wiejskim z ograniczonym dostępem do opieki zdrowotnej i nieoptymalnymi warunkami życia, co mogło przyczynić się do opóźnionego leczenia ran. Był emerytowanym pracownikiem fizycznym z historią chronicznego używania tytoniu (około 20 paczkolat) i okazjonalnego spożywania alkoholu. Historia rodzinna była ujemna w kierunku cukrzycy, choroby naczyń obwodowych lub przewlekłych chorób zakaźnych.

Angiografia tomografii komputerowej (CTA) kończyn dolnych wykazała miażdżycę w obu nogach. Przy przyjęciu badania laboratoryjne wykazały leukocytozę (WBC 14,74 ×10 9/L) z neutrofilią (82,1%), podwyższone stężenie białka C-reaktywnego (126 mg/l) oraz zwiększoną szybkość sedymentacji erytrocytów (72 mm/h), zgodne z zakażeniem ogólnoustrojowym. Hemoglobina glikozylowana (HbA1c) wynosiła 9,2%. W badaniu fizykalnym stwierdzono wyraźny obrzęk prawej stopy, czernienie trzeciego i piątego palca, zmniejszenie tętna w tętnicy grzbietowej i piszczelowej tylnej w porównaniu ze stroną przeciwległą, utratę czucia powierzchownego w prawej kończynie dolnej i brak odczuwania bólu.

Śródoperacyjnie zaobserwowano zgorzel w palcach od trzeciego do piątego, a także na grzbiecie i podeszwie prawej stopy, której towarzyszył ropny drenaż i nieprzyjemny zapach. Zauważono aktywne larwy wijące się w obrębie rany (ryc. 1 i ryc. 2). Usunięto martwicze paliczki, ścięgna i kości, a ogniska osteoszpikowe usunięto. Płat powięziowy o podłożu grzbietowym został obrócony, aby zakryć odsłonięty ubytek kości podeszwowej. Osiągnięto nawadnianie i hemostazę. Impregnowany antybiotykiem cement kostny, przygotowany przez zmieszanie 0,5 g gentamycyny na 40 g cementu, został nałożony na resztki końców kości po wierceniu.

Po operacji pacjent był leczony ertapenemem podawanym dożylnie (1 g raz na dobę) przez 14 dni, w zależności od profilu patogenu i odpowiedzi klinicznej. Rozmaz śródoperacyjny ujawnił niewielką liczbę komórek nabłonka, liczne pałeczki Gram-ujemne oraz ziarniaki i pałeczki Gram-dodatnie. Konwencjonalna hodowla zidentyfikowała Staphylococcus faecalis (grupa D). Testy wrażliwości na leki wykazały wrażliwość na wankomycynę, penicylinę G, lewofloksacynę, chloramfenikol, cyprofloksacynę i gentamycynę wysokiego poziomu w połączeniu, ale oporność na streptomycynę wysokiego poziomu, erytromycynę i tetracyklinę. Badania przeprowadzono przy użyciu zautomatyzowanego systemu identyfikacji drobnoustrojów i analizy wrażliwości leków zgodnie z wytycznymi CLSI M100-33. Sekwencjonowanie metagenomiczne próbek śródoperacyjnych zidentyfikowało Proteus mirabilis, Wohlfahrtiimonas chitiniclastica i Corynebacterium striatum (ryc. 3). Po operacji i leczeniu markery infekcji znacznie się zmniejszyły, a rana wykazywała postępujące gojenie.

Diagnoza, ocena i planowanie:

Pacjent, 76-letni mężczyzna z cukrzycą ze słabo kontrolowaną glikemią, miał przewlekłe owrzodzenia prawej stopy, które przerodziły się w gangrenę i inwazję robaków. Wstępna ocena obejmowała badanie fizykalne, które wykazało martwicę palców u stóp, ropny drenaż i aktywność larw, a także wyniki badań laboratoryjnych w kierunku leukocytozy (WBC 14,74 ×10 9/L) i neutrofilii (82,1%), zgodnie z zakażeniem ogólnoustrojowym. Angiografia tomografii komputerowej (CTA) kończyn dolnych potwierdziła miażdżycę, przyczyniając się do upośledzenia perfuzji. Śródoperacyjne badania wykazały zapalenie kości i szpiku oraz rozległą tkankę martwiczą, co skłoniło do chirurgicznego oczyszczenia i pobrania próbek mikrobiologicznych.

Wohlfahrtiimonas chitiniclastica jest często izolowany w kontekście infekcji wielodrobnoustrojowych. W tym przypadku metagenomiczne sekwencjonowanie nowej generacji (mNGS) zidentyfikowało W. chitiniclastica, Proteus mirabilis i Corynebacterium striatum. mNGS został wybrany, ponieważ zapewnia rozwiązanie w złożonych infekcjach, które często są niewykrywalne konwencjonalnymi metodami, takimi jak MALDI-TOF MS. Diagnostyka różnicowa obejmowała powszechne patogeny stopy cukrzycowej, takie jak gatunki Pseudomonas i Staphylococcus ; Jednak ekspozycja na robaki i sekwencjonowanie potwierdziły obecność rzadkiego patogenu.

W planie leczenia priorytetowo potraktowano chirurgiczne oczyszczenie w celu zmniejszenia obciążenia mikrobiologicznego, a następnie dożylne podanie ertapenemu (1 g dziennie) w celu pokrycia Gram-ujemnego o szerokim spektrum działania, w tym W. chitiniclastica, który jest zwykle wrażliwy na karbapenemy. Terapia została zaplanowana na 14 dni, dostosowana do profilu patogenu i odpowiedzi klinicznej. Pacjent został poinformowany o częstych działaniach niepożądanych ertapenemu, w tym zaburzeniach żołądkowo-jelitowych (nudności, biegunka) i reakcjach związanych z infuzją, i był ściśle monitorowany przez cały okres hospitalizacji. Kryteria dostosowania terapii obejmowały nasilenie objawów klinicznych (nasilenie rumienia rany, obrzęk lub ropny dreneń) lub podwyższone markery zakażenia, w szczególności WBC >15 × 109/L lub białko C-reaktywne >150 mg/L. W takich przypadkach rozważane byłoby powtórzenie obrazowania za pomocą USG naczyniowego lub MRI, wraz z modyfikacją lub eskalacją antybiotyku.

Obserwacja po leczeniu została zorganizowana tak, aby zapewnić ciągłość opieki: inspekcje ran co 3-5 dni w okresie hospitalizacji, kompleksowa ocena ran i naczyń krwionośnych po 2 tygodniach od wypisu ze szpitala oraz comiesięczne przeglądy przez 3 miesiące w celu monitorowania gojenia się ran, stanu naczyń krwionośnych i kontroli glikemii. Rekonstrukcję rany za pomocą płata powięziowego po stronie grzbietowej przeprowadzono w celu rozwiązania problemu utraty tkanek i przyspieszenia gojenia. Za wyborem ertapenemu przemawiała jego stabilność wobec beta-laktamaz o rozszerzonym spektrum działania oraz aktywność wobec beztlenowców, co miało kluczowe znaczenie w środowisku ran martwiczych. Potencjalne powikłania obejmowały oporność na środki przeciwdrobnoustrojowe, zakażenie miejsca operowanego lub awarię płata, co wymagało czujnego monitorowania. Podejście to podkreśla konieczność zaawansowanej diagnostyki i wielodyscyplinarnego leczenia u pacjentów z obniżoną odpornością z rzadkimi i złożonymi infekcjami.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Uzyskano pisemną świadomą zgodę pacjenta na publikację szczegółów klinicznych i obrazów klinicznych, zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi. Identyfikatory pacjentów zostały zanonimizowane we wszystkich dokumentach.

1. Ocena pacjenta i wstępna ocena

  1. Uzyskano kompleksowy wywiad medyczny, koncentrujący się na czasie trwania cukrzycy, kontroli glikemii (poziom HbA1c), historii choroby naczyń obwodowych i wcześniejszych interwencjach (np. wszczepieniu rozrusznika serca). Udokumentowano przewlekłą progresję owrzodzenia stopy i inwazję robaków.
  2. W badaniu fizykalnym oceniano obrzęk prawej stopy, martwicę tkanki (trzeci i piąty palec u nogi), deficyty czucia oraz wizualne potwierdzenie aktywności robaków. Sfotografowano morfologię rany (ryc. 1 i ryc. 2).
  3. Badania laboratoryjne obejmowały pełną morfologię krwi (CBC), białko C-reaktywne (CRP) i wskaźnik sedymentacji erytrocytów (OB).
    1. W przypadku morfologii krwi (WBC, neutrofile) krew pełną (3 ml) pobrano do probówki EDTA, którą delikatnie odwrócono 8-10 razy i przeanalizowano w ciągu 4 godzin.
    2. Do badania CRP krew (2-3 ml) zebrano do probówki separatora surowicy, pozostawiono do krzepnięcia na 20-30 minut, odwirowano w temperaturze 1500-2000 × g przez 10 minut i przeanalizowano tego samego dnia.
    3. W przypadku OB krew pełną (2 ml) pobrano w probówce z 3,2% cytrynianem sodu, delikatnie wymieszano i przeanalizowano metodą Westergrena w ciągu 4 godzin.
      UWAGA: Przechowywać/transportować krew w temperaturze 2-8 °C, jeśli opóźnienie wynosi >1 godziny.
  4. Angiografię tomografii komputerowej (CTA) kończyn dolnych wykonano na skanerze warstwowym przy użyciu następujących parametrów: akwizycja spiralna od przepony do palców stóp, kolimacja 0,6-0,625 mm, czas obrotu 0,33-0,5 s, skok 0,8-1,2, napięcie lampy 100-120 kVp, prąd 150-300 mA.
    1. Kontrast joheksolu (350 mg I/mL, 1,0-1,5 ml/kg, łącznie 80-120 ml) wstrzykiwano przez 18-20 g dożylnie przedłokciowego w stężeniu 4-5 ml / s, a następnie 30-40 ml płuczek solą fizjologiczną. Śledzenie bolusa zostało uruchomione przy 150 HU.
    2. Obrazy zostały zrekonstruowane w warstwie o grubości 0,75-1,25 mm; Przetwarzanie końcowe zestawu danych angiografii CT obejmowało rekonstrukcję wielopłaszczyznową (MPR), projekcję maksymalnej intensywności (MIP) i trójwymiarowe renderowanie objętości (VR).
      1. MPR wykonano w celu przeformatowania akwizycji spiralnej na płaszczyzny osiowe, strzałkowe, czołowe i skośne o grubości warstwy 0,75-1,25 mm, co umożliwiło ocenę struktur anatomicznych z wielu orientacji.
      2. Obrazy MIP zostały wygenerowane przy użyciu projekcji płytowych (10-20 mm) w celu wyświetlenia wokseli o najwyższych wartościach tłumienia wzdłuż każdej linii wzroku, wzmacniając w ten sposób struktury naczyniowe i zwapniałe, jednocześnie tłumiąc otaczające tkanki miękkie.
      3. W przypadku VR dane wolumetryczne zostały przetworzone na dedykowanej stacji roboczej z segmentacją opartą na progach i przypisywaniem nieprzezroczystości, tworząc oznaczone kolorami modele 3D kości, tkanek miękkich i naczyń krwionośnych, które można obracać i powiększać w celu poprawy zrozumienia przestrzennego i planowania chirurgicznego.
  5. Obchodzenie się z tkanką zarażoną robakami:
    UWAGA: Procedury były zgodne z poziomem bezpieczeństwa biologicznego 2 (BSL-2). Personel nosił fartuchy, rękawice, okulary ochronne i maski N95.
    1. Larwy usuwano za pomocą kleszczy pod nawadnianiem, umieszczano w szczelnych pojemnikach i zanurzano w 70-95% etanolu w celu utylizacji.
    2. Zanieczyszczone narzędzia dezynfekowano 0,1% podchlorynem sodu przez ≥10 min (0,5% w przypadku silnych zanieczyszczeń). Odpady zakaźne pakowano w czerwone worki chroniące przed zagrożeniem biologicznym i sterylizowano w autoklawie w temperaturze 121 °C przez ≥15 min lub spalano. Ostre przedmioty wyrzucano do pojemników odpornych na przebicie.

2. Procedury diagnostyczne

  1. Śródoperacyjną tkankę martwiczą i drenaż ropny pobrano jako próbki podczas chirurgicznego oczyszczania.
  2. Próbki barwiono metodą Grama i hodowano zarówno w warunkach tlenowych, jak i beztlenowych.
  3. Metagenomiczne sekwencjonowanie nowej generacji (mNGS) przeprowadzono na śródoperacyjnych próbkach tkanek.
    1. Biopsje tkanek (~0,5 × 0,5 × 0,5 mm) homogenizowano w 100 μl 1× PBS przez 5-8 min i dostosowano do 200 μL.
    2. DNA i RNA wyekstrahowano oddzielnie od homogenizowanych próbek.
      1. W celu przetworzenia DNA, DNA gospodarza zubożono przez traktowanie 1 U benzonazą i 0,5% Tween-20 w temperaturze 37 °C przez 5 minut, a następnie ekstrakcję przy użyciu wspomnianego zestawu DNA. Stężenie DNA określono ilościowo za pomocą testu dsDNA HS.
      2. Wszystkie biblioteki DNA i RNA zostały sprawdzone za pomocą zestawu DNA Kit i oznaczone ilościowo za pomocą fluorometru przed sekwencjonowaniem.
    3. Biblioteki zostały sprawdzone i zsekwencjonowane na platformie sekwencjonowania (np. SE-75, ~2 × 107 odczytów/próbkę). Odczyty < 50 pz, niskiej jakości lub DNA gospodarza zostały usunięte.
    4. Odczyty mikrobiologiczne zostały dostosowane do wewnętrznej bazy danych. Progi wykrywalności były następujące: SMRN-r ≥10 (jeśli również w kontroli ujemnej), SMRN ≥3 (jeśli nie występuje w kontroli ujemnej), SMRN >1 dla bakterii wewnątrzkomórkowych/trudnych do lizy; wirusy wymagane ≥3 nienakładające się na siebie regiony genomu; Czas realizacji ~16-19 h.
  4. Diagnostyka różnicowa obejmowała powszechne patogeny stopy cukrzycowej, takie jak Pseudomonas aeruginosa i Staphylococcus aureus. Organizmy te zostały wykluczone ze względu na mNGS i korelację kliniczną.

3. Interwencja chirurgiczna

  1. Przeprowadzono radykalne oczyszczanie w celu wycięcia martwiczej tkanki miękkiej, kości kostnej i zakażonych ścięgien. Larwy były ręcznie usuwane z rany.
  2. Rekonstrukcję rany uzyskano poprzez obrócenie grzbietowo osadzonego płata powięziowego w celu zakrycia odsłoniętego ubytku kości podeszwowej. Uzyskano hemostazę, a ranę dokładnie przepłukano solą fizjologiczną.
  3. Cement kostny nasączony antybiotykiem przygotowano przez dodanie 0,5 g gentamycyny do 40 g cementu i nałożono na pozostałe końce kości po wierceniu.

4. Antybiotykoterapia

  1. Dożylnie ertapenem (1 g raz na dobę) podawano empirycznie w celu pokrycia Gram-ujemnego, w tym Wohlfahrtiimonas chitiniclastica, który jest zwykle wrażliwy na karbapenemy.
  2. Antybiotykoterapię kontynuowano przez 14 dni i dostosowywano w zależności od odpowiedzi klinicznej i markerów zakażenia, takich jak liczba krwinek białych i poziom CRP.

5. Opieka pooperacyjna

  1. Poziom glukozy we krwi był regularnie monitorowany, a dawki insuliny dostosowywano tak, aby utrzymać HbA1c poniżej 7,5%.
  2. Rana była codziennie sprawdzana pod kątem oznak infekcji, a morfologia krwi i markery stanu zapalnego były monitorowane co tydzień.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

76-letni mężczyzna z cukrzycą z przewlekłą gangreną prawej stopy i inwazją robaków (ryc. 1 i ryc. 2) poddano kompleksowemu leczeniu, w tym radykalnemu oczyszczeniu tkanki martwiczej, usunięciu ognisk kostno-szpikowych i rekonstrukcji rany za pomocą grzbietowo osadzonego płata powięziowego. Metagenomiczne sekwencjonowanie nowej generacji (mNGS) próbek śródoperacyjnych zidentyfikowało Wohlfahrtiimonas chitiniclastica jako główny patogen, z 97,96% pokrycie...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Wohlfahrtiimonas chitiniclastica to niefermentująca bakteria w kształcie pałeczki, Gram-ujemna, która jest oksydazo-dodatnia i katalazo-dodatnia. Po raz pierwszy odkryto go u larw pasożytniczej muchy Wohlfahrtia magnifica6. Samice much składają jaja na ranach i powierzchniach błon śluzowych, powodując infekcję nidus. Larwy żywią się przez pewien czas martwiczymi lub żywotnymi tkankami żywiciela, płynami ustrojowymi lub spożytym pokarmem3. Kilka czynników, ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie występuje konflikt interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zestaw DNA Agilent 2100 HSAgilent Technologies, Santa Clara, Kalifornia, Stany Zjednoczone5067-4626 (DNA 1000) / 5067-4627 (DNA HS)*Służy do kontroli jakości biblioteki i analizy fragmentów
Agilent 2100 HS DNA, kubit 3.0Agilent Technologies, Santa Clara, Kalifornia, Stany ZjednoczoneG2939BAPrzyrząd do bibliotecznej kontroli jakości, sparowany z zestawem HS DNA
bioMé System rieux VITEK 2bioMé rieux, Marcy-l'É toile, Francja414532Zautomatyzowana identyfikacja drobnoustrojów i badanie wrażliwości na środki przeciwdrobnoustrojowe
Illumina NextSeq 500  Illumina Inc., San Diego, Kalifornia, Stany ZjednoczoneIllumina Inc.,SY-415-1001Wysokoprzepustowa platforma sekwencjonowania
QIAamp UCP Zestaw DNA patogenówWysokoprzepustowa platforma sekwencjonowania50214Ekstrakcja DNA patogenu z wyczerpaniem DNA gospodarza
Fluorometr Qubit 3.0Thermo Fisher Scientific, Waltham, Massachusetts, Stany ZjednoczoneQ33216 powiedział:Kwantyfikacja DNA i RNA
Siemens SOMATOM Definition AS 64-warstwowy Siemens Healthineers, Erlangen, NiemcyN/ASłuży do obrazowania angiografii tomografii komputerowej (CTA)

Bibliografia

  1. Kozyk, M., Strubchevska, K., Fisher, J. Wohlfahrtiimonas chitiniclastica: A rare infection reported in an adult with liver cirrhosis. Clin Case Rep. 11 (2), e6972(2023).
  2. Kopf, A., et al. Comparative genomic analysis of the human pathogen Wohlfahrtiimonas chitiniclastica provides insight into the identification of antimicrobial resistance genotypes and potential virulence traits. Front Cell Infect Microbiol. 12, 912427(2022).
  3. Robbins, K., Khachemoune, A. Cutaneous myiasis: A review of the common types of myiasis. Int J Dermatol. 49 (10), 1092-1098 (2010).
  4. Kopf, A., Bunk, B., Riedel, T., Schrottner, P. The zoonotic pathogen Wohlfahrtiimonas chitiniclastica- current findings from a clinical and genomic perspective. BMC Microbiol. 24 (1), 3(2024).
  5. Leeolou, M. C., et al. A rare case of Wohlfahrtiimonas chitiniclastica infection in California. JAAD Case Rep. 17, 55-57 (2021).
  6. Tóth, E. M., et al. Wohlfahrtiimonas chitiniclastica gen. nov., sp. nov., a new gammaproteobacterium isolated from Wohlfahrtia magnifica (Diptera: Sarcophagidae). Int J Syst Evol Microbiol. 58 (Pt 4), 976-981 (2008).
  7. De Smet, D., Goegebuer, T., Ho, E., Vandenbroucke, M., Lemmens, A. First case of Wohlfahrtiimonas chitiniclastica isolation from a patient with a foot ulcer infection in Belgium. Acta Clin Belg. 78 (3), 245-247 (2023).
  8. Harfouch, O., Luethy, P. M., Noval, M., Baghdadi, J. D. Wohlfahrtiimonas chitiniclastica monomicrobial bacteremia in a homeless man. Emerg Infect Dis. 27 (12), 3195-3197 (2021).
  9. Calderaro, A., Chezzi, C. Maldi-tof MS: A reliable tool in the real life of the clinical microbiology laboratory. Microorganisms. 12 (2), 322(2024).
  10. Chiu, C. Y., Miller, S. A. Clinical metagenomics. Nat Rev Genet. 20 (6), 341-355 (2019).
  11. Li, K., et al. Sepsis and hepatapostema secondary to Chromobacterium violaceum infection on lower limb skin: A case report. Infect Drug Resist. 17, 1003-1010 (2024).
  12. Dong, Y., et al. Post-COVID reactivation of latent Bartonella henselae infection: A case report and literature review. BMC Infect Dis. 24 (1), 422(2024).
  13. Ohtani, H. Granuloma cells in chronic inflammation express CD205 (DEC205) antigen and harbor proliferating T lymphocytes: Similarity to antigen-presenting cells. Pathol Int. 63 (2), 85-93 (2013).
  14. Ergin, N. Ö, Demirel, M., Özmen, E. An exceptional case of suture granuloma 30 years following an open repair of Achilles tendon rupture: A case report. J Orthop Case Rep. 7 (3), 50-53 (2017).
  15. Liu, Y. F., Ni, P. W., Huang, Y., Xie, T. Therapeutic strategies for chronic wound infection. Chin J Traumatol. 25 (1), 11-16 (2022).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Zaka enie ranysekwencjonowanie metagenomicznechirurgiczne opracowanie ranyantybiotykoterapiazaka enie polimikrobowecement kostny z gentamycynrekonstrukcja p atem powi ziowym