Artykuł metodologiczny

Uwidoczniona, uczulona procedura akupunkturowa w chorobie zwyrodnieniowej stawu kolanowego: oceny behawioralne, termiczne i molekularne

DOI:

10.3791/68967

⸱

29 sierpnia 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture, Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Traditional Chinese Medicine, Air Force Medical Center

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badanie to szczegółowo opisuje metodę fiksacji szczurów odpowiednią do fotografowania akupunktury i termografii w podczerwieni. Ponadto wykazuje, że elektroakupunktura w uwrażliwionych punktach akupunkturowych hamuje miejscowy ból zapalny.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroba zwyrodnieniowa stawu kolanowego (KOA), główna przyczyna bólu mięśniowo-szkieletowego i niepełnosprawności funkcjonalnej na całym świecie, pozostaje trudna do leczenia ze względu na ograniczoną skuteczność obecnych interwencji farmakologicznych i chirurgicznych w osiąganiu trwałej ulgi w bólu. Chociaż akupunktura okazała się klinicznie obiecująca w łagodzeniu bólu związanego z KOA, jej mechanizmy leżące u jej podstaw wymagają dalszego wyjaśnienia. Zastosowanie akupunktury do uczulonych punktów akupunkturowych może znacznie zwiększyć skuteczność terapii. Protokół ten ustanawia szczurzy model KOA poprzez dostawowe wstrzyknięcie monojodooctanu sodu (MIA) i systematycznie opisuje protokół akupunktury ukierunkowany na uwrażliwione punkty akupunkturowe, w tym metody ograniczania, lokalizację punktów akupunkturowych i parametry akupunktury. Skuteczność terapeutyczną kompleksowo oceniano poprzez ocenę zachowania bólu, analizę termograficzną stawu kolanowego w podczerwieni, wykrywanie cytokin zapalnych w surowicy oraz badanie histopatologiczne tkanki chrzęstnej. Wyniki wskazują, że akupunktura w uczulonych punktach akupunkturowych znacznie łagodzi fenotypy bólu u szczurów modelowych indukowanych MIA poprzez hamowanie uwalniania mediatorów prozapalnych, blokowanie transmisji sygnału nocyceptywnego, poprawę mikrokrążenia krwi, regulację lokalnej temperatury stawów i opóźnianie zwyrodnienia stawów.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Choroba zwyrodnieniowa stawu kolanowego (KOA), powszechna choroba zwyrodnieniowa stawów, charakteryzuje się przewlekłym stanem zapalnym i patologią całego stawu, w tym erozją chrząstki, przebudową kości podchrzęstnej, rozwojem osteofitów i zapaleniem błony maziowej 1,2. Klinicznie pacjenci zazwyczaj odczuwają ból, osłabienie mięśni, niestabilność stawów, przejściową poranną sztywność i postępujące ograniczenia funkcjonalne. KOA nakłada znaczne globalne obciążenie chorobami, dotykając około 365 milionów osób z niepełnosprawnością funkcjonalną, a modele epidemiologiczne przewidują wzrost liczby przypadków o 74,9% w stosunku do poziomów wyjściowych z 2020 r. do połowy stulecia2050 r. 3. Warto zauważyć, że chociaż ból służy jako główny czynnik motywujący do leczenia4, jednocześnie zaostrza niepełnosprawność funkcjonalną, głęboko zagrażając wielu dziedzinom jakości życia poprzez upośledzenie mobilności i zmniejszoną zdolność do codziennej aktywności. W związku z tym strategie terapeutyczne mają na celu złagodzenie bólu, przywrócenie funkcji i opóźnienie postępu choroby5. Obecna farmakoterapia pierwszego rzutu obejmuje leki przeciwbólowe, niesteroidowe leki przeciwzapalne, chondroitynę i siarczan glukozaminy oraz dostawowe kortykosteroidy w celu zmniejszenia bólu i stanu zapalnego6. Długotrwałe stosowanie tych środków jest jednak ograniczone ze względu na znaczne ryzyko jatrogenne, w szczególności powikłania żołądkowo-jelitowe i zdarzenia niepożądane ze strony układu krążenia7, co podkreśla krytyczną potrzebę bezpieczniejszych i bardziej zrównoważonych alternatyw terapeutycznych.

Akupunktura i elektroakupunktura są szeroko stosowane w leczeniu choroby zwyrodnieniowej stawów, wykazując skuteczność w łagodzeniu bólu kolana i poprawie funkcjonalności stawów 8,9, a Światowa Organizacja Zdrowia (WHO) uznała zapalenie stawów za priorytetowy warunek terapii akupunkturowej. Zarówno jako cele stymulacji, jak i efektory, punkty akupunkturowe pozostają kluczowe w badaniach nad akupunkturą, gdzie ich wygląd morfologiczny, wymiary przestrzenne i reaktywność funkcjonalna ulegają dynamicznym zmianom podczas stanów chorobowych, zjawisko określane jako "uczulenie na punkty akupunkturowe"10,11. Co najważniejsze, ten proces uczulania moduluje obszar pola recepcyjnego i reakcję terapeutyczną punktów akupunkturowych, określając w ten sposób skuteczność leczenia. Poprzednie badania przedkliniczne 12,13 wykazały uczulenie w Yanglingquan (GB34, zlokalizowany w przednim zagłębieniu i poniżej głowy kości strzałkowej, w pobliżu bocznej strony kończyny tylnej) i Zusanli (ST36, położony po przedniej stronie nogi, boczna granica więzadła rzepki jest obniżona do przedniego punktu środkowego, 3/16 stawu skokowego) w modelach zwierzęcych KOA. Laserowe obrazowanie plamkowe wykazało podwyższoną miejscową perfuzję krwi w tych punktach akupunkturowych, podczas gdy obrazowanie fotoakustyczne paradoksalnie nie wykazało istotnych zmian strukturalnych w mikrokrążeniu, co sugeruje, że zmiany mikrokrążenia podczas uczulenia na akupunkturów w KOA są przede wszystkim funkcjonalne, a nie strukturalne. Badania nad mechanizmami leżącymi u podstaw tego zjawiska wymagają wykorzystania modeli szczurzych; Jednak słabe przestrzeganie procedur u zwierząt powoduje znaczne nakłady czasu. Aby rozwiązać te problemy, opracowano aparat do unieruchamiania szczurów, specjalnie zaprojektowany, aby ułatwić dostęp do punktów akupunkturowych kończyn dolnych i zwiększyć skuteczność zabiegów elektroakupunktury.

Termografia w podczerwieni, jako funkcjonalna metoda obrazowania, wykorzystuje bezdotykowe czujniki podczerwieni do wykrywania promieniowania cieplnego z predefiniowanych obszarów zainteresowania, z danymi przetworzonymi komputerowo generującymi pseudokolorowe termogramy do analizy ilościowej14,15. Technika ta umożliwia nieinwazyjne monitorowanie zmian hemodynamicznych skóry poprzez pomiar zmian temperatury związanych z wahaniami przepływu krwi w tkankach skórnych, naczyniowych i mięśniowych16, ułatwiając w ten sposób wizualną ocenę funkcjonalnych zmian mikrokrążenia w punktach akupunkturowych. W tym badaniu uwrażliwienie na ból w punktach akupunkturowych GB34 i ST36 zostało najpierw zweryfikowane za pomocą algometru elektronicznego, a następnie połączone zastosowanie szybkiego barwienia zielenią safraniny O, analiza IL-1β i TNF-α, obrazowanie termograficzne w podczerwieni i oceny behawioralne związane z bólem w celu zbadania przeciwbólowych skutków stymulacji elektroakupunkturą w punktach akupunkturowych GB34 i ST36 u szczurów z chorobą zwyrodnieniową stawu kolanowego wywołaną jodooctanem sodu (MIA).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie protokoły eksperymentalne zostały zatwierdzone i rygorystycznie nadzorowane przez Komitet Etyki Zwierząt Uniwersytetu Medycyny Chińskiej w Pekinie (ID: bucm-2024091102-3197), a wszystkie procedury były ściśle przestrzegane zgodnie z Przewodnikiem National Institutes of Health (NIH) dotyczącym opieki i wykorzystania zwierząt laboratoryjnych. W badaniu wykorzystano trzydzieści samców szczurów rasy Sprague-Dawley (zakres wagowy: 210-250 g). Stosowane odczynniki i sprzęt są wymienione w Tabeli Materiałów.

1. Zwierzęta doświadczalne i grupy doświadczalne

  1. Umieść zwierzęta w dedykowanym pomieszczeniu dla zwierząt.
  2. Utrzymuj temperaturę otoczenia na poziomie 22 °C ± 2 °C, wilgotność względną na poziomie 50%-60% i 12-godzinny cykl światła/ciemności. Należy zapewnić ad libitum dostęp do pożywienia i wody przez cały czas trwania badania.
  3. Po 7-dniowym okresie aklimatyzacji losowo podziel szczury na pięć grup eksperymentalnych (n = 6 na grupę): grupa normalna kontrolna (Con), grupa pozorowanej operacji (pozorowana), grupa modelowa (MIA), grupa nieustalona (NF) i grupa elektroakupunktury (EA).

2. Opracowanie modelu KOA indukowanego monojooctanem

  1. Umieść szczury w komorze indukcyjnej. Znieczulenie należy użyć 4% izofluranu w tlenie do indukcji, a następnie utrzymać poniżej 1,5%-2,0% izofluranu podawanego przez maskę na twarz (zgodnie z instytucjonalnie zatwierdzonymi protokołami).
  2. Napraw szczury w lewym bocznym leżeniu. Usuń włosy za pomocą delikatnego kremu do depilacji na prawym stawie kolanowym i okolicach.
  3. Trzykrotnie zdezynfekuj prawy staw kolanowy jodonem od wewnątrz na zewnątrz, a następnie powtórz te same kroki 75% etanolem.
  4. Utrzymuj prawe kolano w zgięciu pod kątem 90°. Zidentyfikuj dolną granicę rzepki i guzowatość piszczeli. Wsunąć igłę 22-G (0,7 mm × 30 mm) 3-5 mm w przestrzeń stawową przez boczną lub przyśrodkową granicę więzadła rzepki pod kątem natarcia skóry 30°-45°. Potwierdzić umieszczenie dostawowe i powoli wlać 50 μl roztworu MIA (1 mg/50 μL). W przypadku kontroli pozorowanej należy wstrzyknąć równoważną objętość sterylnego roztworu soli fizjologicznej.
  5. Wykonaj pięć pasywnych manipulacji zakresem ruchu, aby zapewnić równomierne wewnątrzstawowe rozproszenie leku. Zwróć zwierzę do jego domowej klatki w celu rekonwalescencji pooperacyjnej.

3. Procedura mocowania szczurów

  1. Zabezpiecz szczura w czarnym rękawie przytrzymującym. Utwórz okrągły otwór o średnicy 1,5 cm w prawym dolnym kwadrancie, przez który wygina się prawa kończyna tylna, jak pokazano na rysunku 1A.
  2. Bezpieczne sparowane nylonowe opaski kablowe (5 mm × 300 mm), oddalone od siebie o 6,8 cm, przez plastikową ramę siatkową. Umieść górne unieruchomienie w okolicy pachowej i zakotwicź dolne unieruchomienie w obręczy miednicy, jak pokazano na rysunku 1B, C, E.
    UWAGA: Grupa NF nie jest poddawana procedurom opisanym w kroku 3.2.

4. Zabieg elektroakupunktury

  1. Rozpocznij interwencję elektroakupunkturą czwartego dnia po kolejnym trzydniowym procesie fiksacji.
  2. Wykonaj aseptyczne przygotowanie w obszarach punktu akupunkturowego GB34 i ST36. Patrz rysunek 1D , aby zapoznać się ze znormalizowanym mapowaniem anatomicznym powierzchni tych loci.
  3. Wprowadź jednorazowe sterylne igły do akupunktury (średnica: 0,25 mm; długość: 13 mm) do akupunkturów. Podłącz GB34 do anody, a ST36 do katody zgodnie z protokołem elektrostymulacji (rysunek 1G).
  4. Po 20-minutowej sesji elektroakupunktury wyłącz urządzenie. Odłącz elektrody od uchwytów igieł i ostrożnie wyjmij igły do akupunktury, aby zakończyć procedurę terapeutyczną. Stosuj interwencje codziennie przez dwa kolejne tygodnie.
    UWAGA: Z wyjątkiem grupy NF, pozostałe trzy grupy nie otrzymały leczenia, ale były unieruchomione na 20 minut dziennie w taki sam sposób, jak grupa EA.

5. Test mechanicznego progu wycofania (MWT)

  1. W cichym otoczeniu, w temperaturze pokojowej 24 °C ± °C, umieść szczury na platformie do testowania stóp z dnem z siatki ze stali nierdzewnej i korpusem klatki z tworzywa organicznego.
  2. Stymuluj środkowy obszar prawej tylnej łapy lub wyznaczone punkty akupunkturowe w pionie za pomocą sondy o średnicy 0 mm elektronicznego detektora bólu Electric Von Frey. Stopniowo i równomiernie zwiększaj intensywność stymulacji, aż do zaobserwowania reakcji unikania wycofania łapy. Zapisz wartość wyświetlaną w tym momencie jako mechaniczny próg wycofania.
    UWAGA: Każdy szczur jest mierzony raz w odstępach 10-minutowych, a jako wynik końcowy wyznacza się średnią z trzech kolejnych prób.

6. Test opóźnienia wycofania łapy (PWL)

  1. Zaaklimatyzuj szczury na platformie termicznej przez 5 minut przed formalną oceną.
  2. Podczas testowania utrzymuj temperaturę powierzchni platformy na poziomie 55,0 °C ± 0. °C. Rozpocznij odmierzanie czasu, gdy prawa tylna łapa zetknie się z rozgrzaną powierzchnią i przestań odmierzać czas po zaobserwowaniu pierwszej pozytywnej reakcji (lizanie łapy, skakanie lub szybkie wycofanie). Zdefiniuj zarejestrowany czas trwania jako PWL.
    UWAGA: Wykonaj trzy pomiary na szczura w 5-minutowych odstępach między próbami. Oblicza się średnią wartość jako reprezentatywną PWL.

7. Obrazowanie termowizyjne w podczerwieni

UWAGA: Wypiluj kończyny tylne dzień przed termografią, aby wyeliminować wpływ włosów na pomiar temperatury.

  1. Utrzymać warunki eksperymentalne w temperaturze otoczenia 2 °C przy wilgotności względnej 60% przy oświetleniu dźwiękochłonnym i rozproszonym.
  2. Unieruchomić szczura w czarnym rękawie przytrzymującym z prawą tylną kończyną wysuniętą przez okrągły otwór. Umieścić na stole operacyjnym na 10 min.
    UWAGA: Jeśli szczur nie uspokoi się po 10 minutach, wydłuż czas oczekiwania, aż się uspokoi, zanim przejdziesz do następnego kroku.
  3. Rejestruj obrazy termowizyjne stawów kolanowych bocznych i brzusznych za pomocą kamery termowizyjnej w odległości 5 cm, skonfigurowanej na emisyjność 0,97, częstotliwość odświeżania 9 Hz i rozdzielczość podczerwieni 160 × 120 pikseli.
  4. Przetwarzanie pozyskanych danych termograficznych w podczerwieni za pomocą dedykowanego oprogramowania analitycznego umożliwia precyzyjną kwantyfikację parametrów termicznych za pomocą komputerowej analizy spektralnej.

8. Test immunoenzymatyczny (ELISA)

  1. Znieczulić szczury przez dootrzewnowe wstrzyknięcie 20% roztworu uretanu (1,2 g/kg). Otwórz jamę brzuszną i wprowadź igłę do pobierania krwi do aorty brzusznej. Włożyć koniec igły do próżniowego naczynia do pobierania krwi bez antykoagulantu.
  2. Pozwól próbkom krwi krzepnąć przez 30 minut. Odwirować w temperaturze 1006. x g przez 15 minut w temperaturze °C. Określić ilościowo poziomy białka w surowicy za pomocą testu BCA.
  3. Zmierz stężenia IL-1β i TNF-α za pomocą komercyjnych zestawów ELISA zgodnie z protokołami producenta.

9. Safranina szybko zabarwia się na zielono

UWAGA: Po pobraniu krwi z aorty brzusznej należy wyciąć prawy staw kolanowy za pomocą nożyczek chirurgicznych, zachowując 1 mm segmenty kostno-stawowe zarówno bliższej części kości udowej, jak i dystalnej kości piszczelowej. Ostrożnie oczyścić okołostawowe tkanki miękkie.

  1. Zanurz stawy kolanowe w 4% paraformaldehydzie (PFA) na 72 godziny. Dokładnie spłukać solą fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS) pod delikatnym mieszaniem, aby zapewnić całkowite usunięcie PFA.
  2. Zanurzyć próbki w roztworze odwapniającym kwasu etylenodiaminotetraoctowego (EDTA) w temperaturze °C na 4 tygodnie. Roztwór EDTA należy wymieniać co 2 dni. Delikatnie nakłuć tkankę igłą; Brak oporu wskazuje na zakończenie odwapnienia. Płukać odwapnione próbki PBS przez 4-6 godzin, aby usunąć resztki EDTA.
  3. Odwodnić próbki za pomocą automatycznego odwadniacza. Zanurzyć w parafinie i pozostawić do zestalenia się w sztywne bloki. Ciąć bloki zatopione w parafinie za pomocą mikrotomu w celu uzyskania plastrów o grubości 4 μm. Przełóż plastry do łaźni wodnej. Po rozwinięciu wyjmij sekcje i umieść je na szklanych szkiełkach. Suszyć w komorze o kontrolowanej temperaturze przez 12 godzin.
  4. Umieść szkiełka w ksylenie (I) na 10 minut i ksylenie (II) na kolejne 10 minut. Moczyć kolejno w bezwodnym etanolu (I), bezwodnym etanolu (II), 90% etanolu i 75% etanolu przez 5 minut. Spłucz ultraczystą wodą.
  5. Szkiełkowanie szkiełkami z roztworem Fast Green przez 2 min. Płukać pod bieżącą wodą, aż chrząstka stanie się szklista i przezroczysta z wyraźnie widocznymi lukami pod mikroskopem. Różnicować w 1% roztworze kwasu octowego przez 10 s, monitorując, aż pozostałości niebieskiego zabarwienia zostaną całkowicie usunięte. Natychmiast spłucz ultraczystą wodą.
  6. Bejca ślizga się roztworem Safraniny O przez 15 minut, aż macierz chrząstki wykaże jednolite, intensywne rubinowo-czerwone zabarwienie, a tkanka kostna stanie się bladoróżowa.
  7. Moczyć szkiełka sekwencyjnie w bezwodnym etanolu (I), (II), (III) i (IV) przez 10 s każdy. Zanurz w świeżo przygotowanym ksylenie (I) i ksylenie (II) na 10 minut każdy.
  8. Usuń szkiełka i nałóż neutralną żywicę na powierzchnię szkiełka, ostrożnie unikając kontaktu z tkanką. Umieść krawędź szkiełka nakrywkowego na szkiełku podstawowym i powoli opuść, aby zapobiec tworzeniu się pęcherzyków. Zetrzyj nadmiar ksylenu i żywicy. Suszenie na powietrzu przez noc w temperaturze pokojowej. Umieść wysuszone skrawki pod mikroskopem optycznym w celu obrazowania.

10. Analiza statystyczna

  1. Korzystaj z oprogramowania SPSS do analizy statystycznej. Wyraż dane jako średnią ± odchylenie standardowe.
  2. Analizuj dane MWT i PWL za pomocą powtarzalnej miary ANOVA. Porównywanie innych zestawów danych w grupach przy użyciu jednokierunkowej usługi ANOVA.
  3. Wyraź wyniki jako średnią ± odchylenie standardowe (SD). Zdefiniuj istotność statystyczną jako p < 0,05.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Podczas całego eksperymentu nie padło żadne zwierzę. Wyniki czasu trwania procedury operacyjnej i liczby odczepień igieł dla każdego szczura zarówno w grupie NF, jak i EA wykazały, że grupa EA, po ograniczeniu nylonowymi opaskami kablowymi, doświadczyła skróconego czasu operacji i mniejszej liczby odczepień igieł (P < 0,001; Rysunek 1H,I). Analiza progów bólu w punktach akupunkturowych nie wykazała statystycznie istotnych różnic we wrażliwości bólu mechanicznego ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

MIA, inhibitor metabolizmu, selektywnie zakłóca komórkową glikolizę tlenową, indukując w ten sposób apoptozę chondrocytów 17,18,19. Dostawowe podanie MIA powoduje zubożenie chondrocytów, a następnie zwyrodnienie chrząstki stawowej, charakteryzujące się nieprawidłowościami morfologicznymi i zmianami histopatologicznymi, które bardzo przypominają patologię choroby zwyrodnieniowej stawówu człowieka 20. W zwi...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszyscy autorzy zadeklarowali brak potencjalnego konfliktu interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Badania te były wspierane przez Narodowy Kluczowy Program Badawczo-Rozwojowy Chin (grant 2023YFC3502700) oraz Fundusze Badań Podstawowych dla Uniwersytetów Centralnych (2025-JYB-XJSJJ014)

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Pipetor o regulowanej objętości 0-10ulSerwis bioIC012395160823
Pipeta o regulowanej objętości 0-200ulSerwis bioIC021029160323
Probówki Eppendorf 1,5 mlSerwis bioEP-150-M
Końcówka do mikropipet 10ulSerwis bioZobacz materiał TP-10 TGL
Strzykawka 1mlSzanghaj Zhiyu Sprzęt medyczny Co., LTDZobacz materiał ZSQ-1
Końcówka do mikropipet 200ulSerwis bioTP-200
Igła o rozmiarze 22 Kruuse powiedział:112416c
Probówki Eppendorfa o pojemności 2 mlSerwis bioEP-150-M
5 ml czerwonej probówki z krwiąShanghai Xinle Biotechnology Co., LTDCXG-5R
75% alkoholuTechnologia dezynfekcji Shandong Anjie Gaoke Co., LTD75-500ml
Szkiełko przylegająceBadanie CITOTEST188105
Automatyczna myjka do płytRayto powiedział:Przekaźnik RT-3100C
Igła do pobierania krwiJiangxi Ruibang Industrial Group Co., LTDCXZ-07
Safranina w tkance kostnej i stały zielony roztwór barwiącyShanghai Yuan Ye Biotechnology Co., Ltd.Czynnik R32730
Szkło nakrywkoweCitotest Labware Manufacturing Co., Ltd10212432C
OdwadniaczDIAPATADonatello
Waga elektronicznaMETTLER-TOLEDOME203E/02
Elektrotermiczny piec do suszenia strumieniowegoZakład obowalniczyŻEL-70
Maszyna do zatapianiaWuhan Junjie Electronics Co., LtdJB-P5
Przyjazny dla środowiska przezroczysty płyn do odparafinowaniaSerwis bioG1128-1L
Detektor etykiet enzymatycznychBioTeKEpoka
EtanolSCRC (Organizacja Współpracy Gospodarczej)100092683
Kwas etylenodiaminotetraoctowy Macklin powiedział:60-00-4
Wacik beztłuszczowyCaoxian Hualu Materiał sanitarny Co., LtdTZMQ-500 powiedział:
Wirówka z chłodzeniem o dużej prędkościSmokD3024R
Szybkoobrotowa szlifierka do tkanekSerwis bioKZ-III-F
Analgezjometr z gorącą płytąPodstawa KewKW-CT-1
System obrazowaniaNikonNIKON DS-U3
Kamera termowizyjna na podczerwieńTesto AGTesto 865
JodoforTechnologia dezynfekcji Shandong Anjie Gaoke Co., LTDDF-500 powiedział:
Miękki IRTesto AG
IzofluranRWD nauki przyrodniczePrzekaźnik Przemysłowy R510-22-10
Rękawiczki lateksowePekin Ruijing Latex Products Co., LtdZłącze RJJC-S
Mechaniczne urządzenie do testowania szturchania łapPodstawa KewKW-RB
MIASigma206-165-7
Neutralna gumaSCRC (Organizacja Współpracy Gospodarczej)10004160
Normalny butanolSCRC (Organizacja Współpracy Gospodarczej)100052190
Normalny roztwór soli fizjologicznejSZYMONSLYS-500ml
Parafina w płynieMacklin powiedział:8012-95-1
Utrwalacz paraformaldehydu (neutralny)Serwis bioG1101 powiedział:
Krajalnica patologiiSzanghaj Leica Instrument Co., LtdZobacz materiał RM2016
Szczur IL-1 beta  Zestaw ELISA GER0002-96TSerwis bioAC30253754
Szczur TNF-alfa Zestaw ELISA GER0004-96tSerwis bioAC40253711
Szczury SDPekin Sibefei Biotechnology Co., LtdSCXK (jing) 2024-0001 
Maszyna do znieczulania małych zwierząt  YuYAN ABM
Maska chirurgicznazwycięzcaWJKZ-1
Rozsiewacz tkanekZhejiang Kehua Instrument Co., Ltd KD-P
System polerowania wodą ultraczystąAiken water ElAK-RO-C2
Pionowy mikroskop optycznyNikonNIKON ECLIPSE E100
UretanoweMacklin powiedział:2621-79-6
Mieszalnik wirowySerwis bioSamolot MV-100
KsylenSCRC (Organizacja Współpracy Gospodarczej)10023418

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Giorgino, R., et al. Knee osteoarthritis: Epidemiology, pathogenesis, and mesenchymal stem cells: What else is new? An update. Int J Mol Sci. 24 (7), 6405(2023).
  2. Li, J., et al. MRI-based texture analysis of infrapatellar fat pad to predict knee osteoarthritis incidence. Radiology. 304 (3), 611-621 (2022).
  3. Yang, G., et al. Burden of knee osteoarthritis in 204 countries and territories, 1990-2019: Results from the global burden of disease study 2019. Arthritis Care Res (Hoboken). 75 (12), 2489-2500 (2023).
  4. Vincent, T. L. Peripheral pain mechanisms in osteoarthritis. Pain. 161 Suppl 1 (1), S138-S146 (2020).
  5. Kolasinski, S. L., et al. American College of Rheumatology/arthritis foundation guideline for the management of osteoarthritis of the hand, hip, and knee. Arthritis Care Res (Hoboken). 72 (2), 149-162 (2020).
  6. Kongtharvonskul, J., et al. Efficacy and safety of glucosamine, diacerein, and NSAIDs in osteoarthritis knee: A systematic review and network meta-analysis. Eur J Med Res. 20 (1), 24(2015).
  7. Brophy, R. H., Fillingham, Y. A. Aaos clinical practice guideline summary: Management of osteoarthritis of the knee (nonarthroplasty), third edition. J Am Acad Orthop Surg. 30 (9), e721-e729 (2022).
  8. Corbett, M. S., et al. Acupuncture and other physical treatments for the relief of pain due to osteoarthritis of the knee: Network meta-analysis. Osteoarthritis Cartilage. 21 (9), 1290-1298 (2013).
  9. Ahsin, S., Saleem, S., Bhatti, A. M., Iles, R. K., Aslam, M. Clinical and endocrinological changes after electroacupuncture treatment in patients with osteoarthritis of the knee. Pain. 147 (1-3), 60-66 (2009).
  10. Wang, X., et al. Knowledge mapping of acupoint sensitization and acupoint specificity: A bibliometric analysis. Front Neurosci. 17, 1292478(2023).
  11. Ding, N., et al. Mast cells are important regulator of acupoint sensitization via the secretion of tryptase, 5-hydroxytryptamine, and histamine. PLoS One. 13 (3), e0194022(2018).
  12. Ding, N., et al. Laser speckle imaging of sensitized acupoints. Evid Based Complement Alternat Med. , 7308767(2018).
  13. Ding, N., et al. Lack of association between acupoint sensitization and microcirculatory structural changes in a mouse model of knee osteoarthritis: A pilot study. J Biophotonics. 12 (6), e201800458(2019).
  14. Schiavon, G., et al. Infrared thermography for the evaluation of inflammatory and degenerative joint diseases: A systematic review. Cartilage. 13 (2_suppl), 1790s-1801s (2021).
  15. Tattersall, G. J. Infrared thermography: A non-invasive window into thermal physiology. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 202, 78-98 (2016).
  16. Zheng, S. Y., et al. Lumbar temperature change after acupuncture or moxibustion at weizhong (bl40) or chize (lu5) in healthy adults: A randomized controlled trial. J Integr Med. 23 (2), 145-151 (2025).
  17. Pitcher, T., Sousa-Valente, J., Malcangio, M. The monoiodoacetate model of osteoarthritis pain in the mouse. J Vis Exp. (111), e53746(2016).
  18. Bove, S. E., et al. Weight bearing as a measure of disease progression and efficacy of anti-inflammatory compounds in a model of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 11 (11), 821-830 (2003).
  19. Kwon, M., Nam, D., Kim, J. Pathological characteristics of monosodium iodoacetate-induced osteoarthritis in rats. Tissue Eng Regen Med. 20 (3), 435-446 (2023).
  20. De Sousa Valente, J. The pharmacology of pain associated with the monoiodoacetate model of osteoarthritis. Front Pharmacol. 10, 974(2019).
  21. Neugebauer, V., Han, J. S., Adwanikar, H., Fu, Y., Ji, G. Techniques for assessing knee joint pain in arthritis. Mol Pain. 3, 8(2007).
  22. Wang, J., Jia, R., Zheng, X., Liu, R., Zong, W. Superoxide dismutase response and the underlying molecular mechanism induced by iodoacetic acid. Chemosphere. 234, 513-519 (2019).
  23. Hyllested, J. L., Veje, K., Ostergaard, K. Histochemical studies of the extracellular matrix of human articular cartilage--a review. Osteoarthritis Cartilage. 10 (5), 333-343 (2002).
  24. Pauli, C., et al. Comparison of cartilage histopathology assessment systems on human knee joints at all stages of osteoarthritis development. Osteoarthritis Cartilage. 20 (6), 476-485 (2012).
  25. Ohashi, Y., Uchida, K., Fukushima, K., Inoue, G., Takaso, M. Mechanisms of peripheral and central sensitization in osteoarthritis pain. Cureus. 15 (2), e35331(2023).
  26. Arendt-Nielsen, L., Skou, S. T., Nielsen, T. A., Petersen, K. K. Altered central sensitization and pain modulation in the CNS in chronic joint pain. Curr Osteoporos Rep. 13 (4), 225-234 (2015).
  27. Kim, Y., et al. The effects of intra-articular resiniferatoxin on monosodium iodoacetate-induced osteoarthritic pain in rats. Korean J Physiol Pharmacol. 20 (1), 129-136 (2016).
  28. Neugebauer, V., Schaible, H. G. Evidence for a central component in the sensitization of spinal neurons with joint input during development of acute arthritis in cat's knee. J Neurophysiol. 64 (1), 299-311 (1990).
  29. Zhang, M., et al. Acupoint sensitization is associated with increased excitability and hyperpolarization-activated current (i(h)) in c- but not aδ-type neurons. Neuroscience. 404, 499-509 (2019).
  30. Li, R., Liu, M., Lv, Y., Jing, F. Mast cells in acupoint sensitization: Mechanisms and research advances. Am J Chin Med. 53 (5), 1265-1284 (2025).
  31. Tu, J. F., et al. Thermal sensitization of acupoints in patients with knee osteoarthritis: A cross-sectional case-control study. J Integr Med. 23 (3), 289-296 (2025).
  32. Li, S., et al. Metabolic profiling of dialysate at sensitized acupoints in knee osteoarthritis patients: A study protocol. Medicine (Baltimore). 98 (45), e17843(2019).
  33. Yang, J., et al. Effects of acupuncture on serotonin, histamine, substance P, and tryptase levels at sensitized points in model rats with knee osteoarthritis. J Tradit Chin Med Sci. 11 (04), 500-512 (2024).
  34. Redfors, B., Shao, Y., Omerovic, E. Influence of anesthetic agent, depth of anesthesia and body temperature on cardiovascular functional parameters in the rat. Lab Anim. 48 (1), 6-14 (2014).
  35. Wu, J., et al. Engineering exosomes derived from tnf-α preconditioned IPFP-MSCs enhance both yield and therapeutic efficacy for osteoarthritis. J Nanobiotechnology. 22 (1), 555(2024).
  36. Liao, C. R., et al. Advanced oxidation protein products increase tnf-α and il-1β expression in chondrocytes via NADPH oxidase 4 and accelerate cartilage degeneration in osteoarthritis progression. Redox Biol. 28, 101306(2020).
  37. Kapoor, M., Martel-Pelletier, J., Lajeunesse, D., Pelletier, J. P., Fahmi, H. Role of pro-inflammatory cytokines in the pathophysiology of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 7 (1), 33-42 (2011).
  38. De Marziani, L., et al. Symptoms and joint degeneration correlate with the temperature of osteoarthritic knees: An infrared thermography analysis. Int Orthop. 49 (1), 101-108 (2025).
  39. De Marziani, L., et al. Infrared thermography in symptomatic knee osteoarthritis: Joint temperature differs based on patient and pain characteristics. J Clin Med. 12 (6), 2319(2023).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Uczulone punkty akupunkturoweprotok akupunkturyocena behawioralna b lutermografia podczerwonacytokiny zapalnehistopatologia chrz stkiszczurzy model KOAmikrokr enie stawoweprzekazywanie sygna w nocyceptywnych

Powiązane artykuły