Wszystkie procedury kliniczne były przeprowadzane zgodnie z Deklaracją Helsińską i zatwierdzone przez Komitet Etyki Szpitala Szanghajskiego w Changhai (Aprobata nr CHEC2022-156). Wszyscy uczestnicy uzyskali pisemną świadomą zgodę. Eksperymenty na zwierzętach zostały zatwierdzone przez Komisję Etyczną Changhai Medical College (Zatwierdzenie nr CHEC2022-156) i spełniał krajowe standardy opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi.
Cechy kliniczne
Rekrutacja pacjentów i grupowanie
Od sierpnia 2022 do marca 2023 roku 78 pacjentów z niepłodnością zdiagnozowaną z zespołem niedoboru nerek-yin10 i poszukujących ART zostało zrekrutowanych z Centrum Medycyny Rozrodczej Pierwszego Szpitala Afiliowanego Uniwersytetu Medycznego Marynarki oraz z oddziału ambulatoryjnego Szpitala Yueyang Uniwersytetu Tradycyjnej Medycyny Chińskiej Uniwersytetu w Szanghaju. Uczestnicy zostali losowo przydzieleni do grupy kontrolnej lub grupy leczeń (po 39 przypadków każda) przy użyciu generowania liczb losowych SPSS 23.0.
Kryteria diagnostyczne
Zachodnia diagnoza medyczna była następcą opinii Komitetu American Society for Reproductive Medicine (ASRM) z 2020 roku dotyczącej wskaźników rezerwy jajnikowej11. Kryteria obejmowały FSH ≥ 10 IU/L, estradiol ≥ 80 pg/mL, liczbę pęcherzyków antralnych (AFC) < 7 oraz AMH < 0,5-1,1 ng/mL. Zespół niedoboru nerki i yiny został zdiagnozowany zgodnie z Ginekologią Tradycyjnej Medycyny Chińskiej12 oraz Kryteriami Skuteczności Diagnostycznej zespołów TCM13.
Kryteria włączenia i wykluczenia
Kryteria włączenia zostały zaplanowane IVF/ICSI-ET z wykorzystaniem protokołu antagonisty; wywiad słabej odpowiedzi jajników (< 5 pobranych komórek jajowych); wiek 20-40 lat; spełnia kryteria zarówno DOR, jak i zespołu TCM; oraz podpisał świadomą zgodę. Kryteria wykluczenia obejmowały patologię endometrium (lipy, gruźlica, dysplazja, nowotwory), malformacje macicy, choroby współistniejące (cukrzyca, toczeń), niedawną terapię hormonalną (< 3 miesiące), historię operacji miednicy, nieprawidłowości chromosomowe lub alergię na leki. Kryteria eliminacji stosowano dla odstępstw od protokołu, działań niepożądanych, wycofania lub spontanicznego poczęcia w ciągu 2 tygodni od zapisania się na studia.
Metoda leczenia
Obie grupy przeszły ocenę wyjściową w dniu 2-3 miesiączki za pomocą ultrasonografii przezpochwowej oraz testów hormonalnych. Grupa kontrolna otrzymała schemat antagonistów: rekombinowany FSH lub ludzką gonadotropinę menopauzalną, początkowa dawka 225 U/dzień domięśniowo przez 5 dni, a następnie dostosowanie dawki w zależności od wzrostu mieszków mieszkowych. Gdy średnica przedniego pęcherzyka przekraczała 12 mm, rozpoczęto dawkę antagonisty GnRH (0,125 mg/dzień podskórnie), która była kontynuowana aż do momentu wyzwalającego. Gdy ≥ 1 pęcherzyk osiągnął 18 mm, ≥ 2 17 mm, a ≥ 3 16 mm, owulacja była wywołana 250 μg rekombinowanym hCG, a następnie pobierano oocyty po 34-36 godzinach.
Grupa stosowała ten sam protokół, dodając wywar Yangjing Zhongyu (YZD), podawany doustnie 2 razy dziennie (rano i wieczorem), po jednym wywarze dziennie, począwszy od dnia 2-3 cyklu menstruacyjnego aż do dnia wyzwalającego. Formuła kliniczna zawierała Rehmannia 12 g, Paeonia lactiflora 12 g, Cornus officinalis 10 g oraz Angelica sinensis 12 g.
Wskaźniki obserwacji
Wyniki kliniczne obejmowały parametry wyjściowe: wiek, BMI (obliczane jako waga (kg)/wzrost² (m²)), czas trwania niepłodności, FSH, dawka/czas trwania gonadotropiny, wyniki zespołu niedoboru nerek-yin, liczba pęcherzyków antralnych (ocenianych za pomocą USG przezpochwowego, średnica 2-9 mm), pobrane oocyty, oocyty Metaphase II (MII) (zidentyfikowane podczas pobierania oocytów), zapłodnione zarodki, rozszczepienia, wysokiej jakości zarodki (określone według standardowych kryteriów laboratoryjnych embriologii), oraz kliniczną ciążę, która została zdefiniowana jako obecność pęcherzyka ciążowego na USG w 6-7 tygodniu ciąży.
Zwierzęta doświadczalne
Tutaj 30 samic szczurów Sprague-Dawley o stopniu SPF (8 tygodni, 160-200 g) zostało aklimatyzowanych w warunkach kontrolowanych (23 ± 2 °C, wilgotność 40%-45%, cykl światła/ciemności 12 godzin) z pokarmem ad libitum i wodą.
Przygotowanie leków
YZD przygotowywano z Rehmannia 30 g, Angelica 15 g, Paeonia lactiflora 15 g oraz Cornus officinalis 15 g. Zioła były wywarzane w wodzie, filtrowane przez filtr o średnicy 200 mesh, a następnie koncentrowane pod obniżonym ciśnieniem w temperaturze 70 °C. Ostateczne roztwory dla dawek niskich, średnich i wysokich to 0,34 g/mL, 0,68 g/mL oraz 1,35 g/mL, co odpowiada 0,5x, 1,0x i 1,2x dawki klinicznej YZD. Wywary przechowywano w temperaturze 4 °C.
Modelowanie i grupowanie
Model DOR został wywołany przez podanie glikozydów tripterygiu w dootrzewnowej (40 mg/kg dziennie przez 15 dni). Szczury zostały losowo przydzielone do grup leczenia pustymi (n = 6), modelowych (n = 6) oraz YZD (niskie, średnie i wysokie dawki; n = 6 każda). Podawanie gawu (10 mL/kg masy ciała) było wykonywane 1 razy dziennie, począwszy od pierwszego dnia podawania glikozydów tripterygium, kontynuowano przez 15 dni.
Cytologia pochwowa
Etapy cyklu rui oceniano za pomocą cytologii złuszczającej pochwy. Rozmazy z pochwy pobierano raz dziennie (08:00-10:00) sterylnymi wacikami watowymi, rozcieńczano w 30 μL soli fizjologicznej i badam pod mikroskopem świetlnym z 100-krotnym powiększeniem. Okres obserwacji trwał 15 kolejnych dni. Normalny indeks cyklu rujowego definiowano jako odsetek szczurów wykazujących regularne cykle rujowe trwające 4-5 dni w tym okresie.
Testy hormonalne
Cała krew była pobierana pod znieczuleniem, na koniec 15-dniowego okresu leczenia przez nakłucie serca, pozostawiona do zakrzepnięcia w temperaturze pokojowej przez 30 minut i wirowana w 1000 x g przez 15 minut w temperaturze 4 °C, aby uzyskać surowicę. Poziomy E2 i FSH były mierzone metodą ELISA zgodnie z instrukcjami producenta.
Histologia jajnika
Tkanka jajnika była pobierana bezpośrednio po eutanazji poprzez chirurgiczne usunięcie obu jajników, płukana zimną solą fizjologiczną w celu usunięcia krwi, a następnie utrwalona w 4% paraformaldehydzie w temperaturze 4 °C przez 24-48 godzin. Tkanki były odwodniane w oczyszczonym etanolu, oczyszczane ksylenem, osadzane w parafinie i przecinane w 4-5 μm. Fragmenty były barwione hematoksyliną i eozyną, odwodnione, oczyszczane i mocowane.
Analiza statystyczna
Dane zostały przeanalizowane za pomocą SPSS 26.0. Zmienne normalne zostały wyrażone jako średnia ± SD i porównane testem t; zmienne nienormalne jako mediana (IQR) i porównane testem Mann-Whitney U. Zmienne kategoryczne wyrażono w procentach i porównano za pomocą testu chi-kwadrat. P < 0,05 uznano za istotne statystycznie. Dla spójności te same metody statystyczne zastosowano do analiz danych (brak osobnego opisu testu Student na teście t).
Bezpieczeństwo i utylizacja odpadów
Paraformaldehyd, ksylen i glikozydy tripterygium były przetwarzane w certyfikowanych okapach oparowych z rękawiczkami, goglami i fartuchami laboratoryjnymi; Wycieki i skażone materiały jednorazowe były zbierane w oznaczonych pojemnikach na odpady niebezpieczne i utylizowane zgodnie z instytucjonalnym standardem biobezpieczeństwa biologicznego. Wszystkie procedury z udziałem paraformaldehydu, ksylenu i glikozydów tripterygium wykonywano w okapach oparowych z odpowiednim sprzętem ochronnym (rękawice, fartuchy laboratoryjne, gogle). Odpady chemiczne i zwłoki zwierząt zostały utylizowane zgodnie z wytycznymi instytucjonalnego dotyczącym biobezpieczeństwa.