Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Przezroczyste odlewy stawonogów z żywicy do wykorzystania w edukacji, popularyzacji i badaniach

1.4K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/69206

⸱

16 stycznia 2026

 ,  ,  , 
1Department of Entomology, Texas A&M University, 2Department of Veterinary Integrative Biosciences, Texas A&M University

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj przedstawiamy kluczowe kroki w procesie tworzenia wysokiej jakości stawonogów osadzonych w żywicy, przeznaczonych do nauczania i popularyzacji.

Streszczenie

W naszych wcześniejszych pracach opublikowano protokół tworzenia stawonogów osadzonych w żywicy o znaczeniu medycznym, przeznaczonych do działań edukacyjnych i edukacyjnych. Protokół ten został przyjęty przez różne inicjatywy mające na celu stworzenie techniki montażu, która minimalizuje uszkodzenia stawonogów, tworzy bezpieczny produkt do obsługi oraz zachowuje możliwość rozpoznania cech morfologicznych do identyfikacji. Nasz protokół ewoluował i obecnie tworzy stawonogi osadzone w żywicy, o lepszej jakości dzięki zakupowi dodatkowego sprzętu i modyfikacjom procesów. Przedstawiamy ten ulepszony protokół wraz z krokami minimalizującymi ilość bąbelków, dostosowaniem do różnych typów stawonogów oraz tworzeniem końcowych, wypolerowanych bloków z widocznością z sześciu stron. Przedstawiamy również zagrożenia dotyczące bezpieczeństwa biologicznego, takie jak opary podczas utwardzania żywicy, używanie elektronarzędzi oraz kurz powstający podczas szlifowania i polerowania bloków żywicy. Ten wizualizowany protokół ułatwi przyjęcie przezroczystego odlewu stawonogów do szerszej społeczności. Lista sprzętu i materiałów eksploatacyjnych, które przyjęliśmy przez kilka lat prób i błędów, pozwoli innym programom ocenić, czy protokół ten jest realną opcją do wdrożenia.

Wprowadzenie

Nieuszkodzone, wysokiej jakości okazy są kluczowym źródłem do nauki umiejętności rozpoznawania stawonogów przez uczestników 1,2. Często kolekcje dydaktyczne zawierają delikatne okazy przypięte lub spiczaste, które mogą brakować kluczowych cech podczas częstego kontaktu lub mogą być trudne do obserwacji z różnych kątów, aby zrozumieć przestrzenne relacje kluczowych cech identyfikujących3. Mogą one być frustrujące zarówno dla uczniów, jak i nauczycieli, a rzadkie, trudne do zebrania i nielokalne gatunki mogą być ograniczone lub całkowicie nieobecne w kolekcjach dydaktycznych z obawy przed zniszczeniem próbek.

Oprócz formalnego, instytucjonalnego nauczania, edukacja społeczeństwa jest częścią misji wielu programów akademickich i rozszerzonych, praktyk medycznych i weterynaryjnych, parków i centrów przyrodniczych, muzeów oraz okręgów kontroli komarów i wektorów 4,5. W takich sytuacjach kluczowe są trwałe zachowane okazy, dlatego optymalnie jest pokazywać takie, które przetrwają bezpośrednie badania przez dzieci, przypadkowe uszkodzenia lub upadki. Okazy owadów przypięte lub spiczaste nie oferują trwałości potrzebnej w tych kontekstach edukacyjnych, a okazy w płynnym konserwantze, takim jak etanol, są trudne do oglądania przez pojemniki oraz trudne do wyjmowania i manipulacji. Biorąc pod uwagę, że modele 3D owadów wykazują efekt poprawy edukacji uczniów6, zapewnienie uczniom wysokiej jakości stawonogów konserwowanych w żywicy również powinno przynieść korzyści. Niedawne badanie Bron i in. wykorzystało kleszcze i inne stawonogi osadzone w żywicy do oceny zdolności społeczeństwa do rozpoznawania wektorów kleszczytypu 7. Inny projekt wykorzystał owady z żywicy osadzone w obcych lasach (tzw. 'wędrówki') umieszczone w geocache, aby zwiększyć świadomość na temat obcych szkodników leśnych8. Prace te opierają się na wcześniejszych entomologach, którzy od dekad opracowywali protokoły osadzania owadów w żywicy,czyli 9,10. Podczas pracy z różnymi stawonogami przy opracowywaniu naszego protokołu odkryliśmy, że delikatne owady z łuskami (np. komary) są trudniejsze do osadzenia w żywicy, ponieważ łuski i kończyny często tracą podczas fazy wylewania żywicy. Ponadto okazy przechowywane w etanolu przez dłuższy czas są mniej idealne do użycia w osadzaniu żywicy, ponieważ etanol zaciera ubarwienie ważne do identyfikacji (np. ozdobne wzory na scuta kleszczy).

Aby rozszerzyć nasze kolekcje dydaktyczne stawonogów zarówno do formalnej nauki w klasach (np. entomologia medyczna i weterynaryjna), jak i programów edukacyjnych i edukacyjnych dla społeczeństwa, opracowaliśmy protokół dla wyraźnego odlewania stawonogów11. Opublikowaliśmy te metody, ponieważ większość firm komercyjnych produkujących owady w żywicy zachowuje swoje protokoły w tajemnicy. Od czasu naszej publikacji w 2018 roku zakupiliśmy dodatkowy sprzęt i dodatkowo zoptymalizowaliśmy protokół, który jest obecnie prezentowany tutaj. W Tabeli Materiałów przedstawiamy cały sprzęt i materiały eksploatacyjne używane w tym protokole.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

UWAGA: Zagrożenia związane z protokołem produkcji żywicy obejmują narażenie na toksyczne opary z nieutwardzonej żywicy, kontakt z nieutwardzoną żywicą i katalizatorem, użycie elektronarzędzi oraz powstawanie kurzu podczas etapów cięcia/szlifowania/polerowania. Przy pracy z nieutwardzoną żywicą potrzebny jest okap wyparowy lub dobrze wentylowane miejsce oraz rękawice nitrylowe. Jeśli żywica lub katalizator zetkną się ze skórą, natychmiast umyj to miejsce mydłem i wodą. Podczas cięcia/szlifowania/polerowania utwardzonych bloków żywicy należy nosić odpowiednio dopasowany pół-face respirator.

1. Przygotowanie okazu i etykiety

UWAGA: Przygotowanie okazów zależy od używanego stawonoga. Próbki i etykiety powinny być przygotowane i odłożone do użytku przed przygotowaniem warstwy żywicy 1.

  1. Wybierz próbkę do umieszczenia w żywicy.
    1. Kleszcze: Usuń kleszcze przechowywane w zamrażarce lub w 70% etanolu. Umieść dorosłe i nimfalne kleszcze usunięte z 70% etanolu między dwoma szkiełkami mikroskopu, jednocześnie delikatnie naciskając po obu stronach kleszcza, aby usunąć nadmiar etanolu, który może znajdować się wewnątrz kleszcza. Następnie umieść kleszcza na płaskiej powierzchni i pozwól mu wyschnąć przez co najmniej 5 minut przed dodaniem go do żywicy.
      UWAGA: Kleszcze przechowywane w zamrażarce nie muszą być dociskane między szkiełkami mikroskopowymi, ale powinny stać w temperaturze pokojowej, jak wspomniano powyżej.
    2. Komary: Nowo wyklute dorosłe komary najlepiej osadzają się w żywicy, ponieważ najczęściej mają wszystkie cechy diagnostyczne (łuski itp.). Aby pozyskać świeżo wyklute dorosłe komary, gdy istnieje kolonia lub naturalne populacje z pola, umieść larwy lub poczwarki w wodzie w komorze wylęgnowej, a po eklatacji dorosłe osobniki wejdą do górnej komory kubka wyklęsków. Włóż świeżo wyklute dorosłe komary do zamrażarki, aby je zabiły, następnie usuń i pozwól je odstać w temperaturze pokojowej przez co najmniej 5 minut przed dodaniem do żywicy.
      UWAGA: Czas zabijania komarów w zamrażarce zależy od temperatury zamrażarki (np. komary są zabijane w ~10 minut po umieszczeniu w zamrażarce o temperaturze -80 °C). Dorosłe komary powinny być używane w ciągu kilku godzin od zabicia, ponieważ komary wysychają po dłuższym przechowywaniu w zamrażarce.
    3. Komary i inne larwy/larwy Diptera: Usuń larwy z etanolu i namocz w katalizatorze żywicy przez co najmniej 20 minut przed dodaniem do żywicy.
      UWAGA: Umieszczenie tych próbek w katalizatorze zastępuje etanol w ich organizmie, nie wysuszając próbki i nie powodując jej kurczenia się.
    4. Inne stawonogi: Dla wielu stawonogów należy stosować się do powyższych wskazówek dotyczących innych kleszczy lub komarów, w zależności od delikatności cech zewnętrznych.
  2. Twórz etykiety z pożądanymi informacjami (np. nazwy naukowe i etapy cyklu życia). Drukuj etykiety na arkuszach przezroczystych za pomocą drukarki laserowej (nie atramentowej). Przyciąć etykiety na odpowiedni rozmiar.
    1. Użyj czcionki w rozmiarze 8 Times New Roman kursywą. Używaj czcionki w rozmiarze 12, Times New Roman kursywą dla cykli życia lub większych okazów.
    2. W przypadku kolekcji dydaktycznych zawierających praktyczne egzaminy laboratoryjne upewnij się, że stawonogi w żywicy są oznaczone w taki sposób, by instruktorzy mogli powiedzieć, jakiego gatunku są, ale nie uczniowie testowani pod kątem umiejętności rozpoznawania. W tym kontekście używaj małych kodów QR o rozmiarze około 1 cm2, które pozwalają smartfonowi podłączyć się do strony internetowej zawierającej informacje o danym gatunku.
      UWAGA: Należy dbać o to, aby etykiety były cięte równomiernie i równomiernie, aby poprawić jakość.

2. Warstwa żywicy 1

UWAGA: Wszystkie etapy związane z nieutwardzoną żywicą wykonuje się wewnątrz okapu wypuszczającego na zewnątrz, ponieważ powstają szkodliwe opary. Wykonywanie tych kroków w dobrze wentylowanym miejscu, na przykład na zewnątrz, to kolejna opcja.

  1. Załóż rękawice nitrylowe przed pracą z nieutwardzoną żywicą lub katalizatorem.
    UWAGA: Jeśli podczas przygotowywania warstw żywicy na rękawiczkach dostanie się zbyt dużo żywicy, należy je zdejmować, uważając, aby uniknąć kontaktu żywicy ze skórą. Jeśli rękawice zawierają nieutwardzoną żywicę, zostaw je w okapie na 24 godziny, aby całkowicie utwardziły, zanim wyrzucisz je do śmieci. Jeśli żywica ma kontakt ze skórą, natychmiast umyj dotknięte miejsce mydłem i wodą, zgodnie z instrukcjami na etykiecie.
  2. Odmierz około 60 ml (~2 oz) żywicy w plastikowym kubku. Wlej żywicę z plastikowego kubka do plastikowej miski. Umieść plastikową miskę z żywicą w kąpieli wodnej o temperaturze 32 °C.
    UWAGA: Żywicy nie powinno się podgrzewać w kąpieli wodnej dłużej niż 15 minut.
  3. Dodaj 12 kropli katalizatora (~540 μL) do plastikowej miski zawierającej żywicę. Powoli i ostrożnie mieszaj żywicę i katalizator plastikową łyżką przez ~1 minutę.
    UWAGA: Stosunek żywicy do katalizatora może się różnić w zależności od marki żywicy. Jeśli stosunek różni się od powyższego, należy stosować się do zaleceń producenta.
  4. Wlej mieszankę żywicy i katalizatora z plastikowej miski do silikonowej formy umieszczonej na drewnianym bloku w garnku ciśnieniowym (patrz krok 5.1).
    UWAGA: Lepkość mieszanki powinna być podobna do syropu kukurydzianego (lub podgrzanego miodu).
  5. Poczekaj około 5-20 minut, aż żywica zacznie twardnieć i będzie wystarczająco lepka, zanim dodasz próbkę.
    UWAGA: Czas utwardzania żywicy zależy od wielu czynników, takich jak temperatura, wilgotność i wysokość wysokości.

3. Próbki w żywicy

  1. Umieść okaz w centrum pierwszej warstwy żywicy, aby upewnić się, że cechy diagnostyczne (np. przetchlonce larw much) są tak ułożone, by łatwo je oglądać.
  2. Umieść etykietę na pierwszej warstwie żywicy w pożądanej odległości od próbki.

4. Warstwa żywicy 2

  1. Odmierz około 60 ml (~2 oz) żywicy w plastikowym kubku. Wlej żywicę z plastikowego kubka do plastikowej miski. Umieść plastikową miskę z żywicą w kąpieli wodnej o temperaturze 32 °C.
    UWAGA: Żywicy nie powinno się podgrzewać w kąpieli wodnej dłużej niż 15 minut.
  2. Dodaj 12 kropli katalizatora (~540 μL) do plastikowej miski zawierającej żywicę. Powoli i ostrożnie mieszaj żywicę i katalizator plastikową łyżką przez ~1 minutę.
    UWAGA: Intensywne mieszanie powoduje powstawanie nadmiernych bąbelków, które mogą pozostać w finalnym produkcie i zmniejszyć przejrzystość okazu (Rysunek 1). Mieszanka może również wydawać się lekko zielona po zakończeniu mieszania.
  3. Powoli wylewaj drugą mieszankę żywicy i katalizatora z plastikowej miski bezpośrednio na próbki i wzdłuż krawędzi wnętrza formy, wypełniając pozostałą przestrzeń w formie (rysunek 2C).
    UWAGA: Lepkość mieszanki powinna być podobna do syropu kukurydzianego (lub podgrzanego miodu).
  4. Wykonaj ostateczne poprawki okazu, takie jak przesunięcie kończyn (nóg, skrzydeł, anteny) w razie potrzeby (rysunek 2D).
  5. Zdejmuj i wyrzucaj rękawiczki zgodnie z protokołem utylizacji.

5. Garnek ciśnieniowy

  1. Włóż do doniczki kawałek drewna, aby podnieść powierzchnię, na której mają być umieszczone i zarządzane formy.
    UWAGA: Formy można umieścić w doniczce na bloku drewna przed wylaniem pierwszej warstwy, aby uniknąć przypadkowego rozlania lub przesuwania próbki, które mogłoby nastąpić, gdyby formy były przenoszone po wylaniu żywicy przed zatwardzaniem warstw.
  2. Bezpiecznie zamknij garnek i przystosuj ciśnienie do 60 psi (Rysunek 3). Zostawiaj formy w garnku ciśnieniowym przez około 24 godziny.
    UWAGA: Formy można pozostawić w garnku ciśnieniowym do 72 godzin bez widocznych różnic w końcowym produkcie.
  3. Zwolnij ciśnienie i wyjmij formy z garnka ciśnieniowego.
  4. Usuń bloki żywiczne z form i pozostaw je w temperaturze pokojowej, aż pozostałe kroki będą gotowe do wykonania.
    UWAGA: Powierzchnie żywicy mogą być lekko lepkie w dotyku (np. dotknięcie żywicy zostawi ślad odcisków palców), a boki, które dotknęły formy, mogą mieć pewne wybielanie powierzchni. Te niedoskonałości powierzchni zostaną usunięte podczas następujących procedur.

6. Przygotowanie produktu końcowego

UWAGA: Cięcie, szlifowanie i polerowanie odbywa się w osobnym budynku z odkurzaczem warsztatowym, ze względu na powstawanie kurzu i potrzebę ochrony respiratora. Maska powinna być założona i odpowiednio wyregulowana, aby dobrze przylegała do twarzy osoby ciącej, szlifowej lub polerującej utwardzone bloki żywicy przed wykonaniem kolejnych kroków. Na Uniwersytecie Texas A&M nasz program Ochrony Środowiska i Bezpieczeństwa wymaga od każdego pracownika przejścia testu dopasowania respiratora z użyciem półmaski z filtrem cząstek P100 National Institute for Occupational Safety and Health.

  1. Przytnij bloki żywicy na odpowiedni rozmiar piłą taśmową.
    UWAGA: Należy zachować ostrożność w równomiernych/zrównoważonych blokach z okazami wyśrodkowanymi (Rysunek 4A).
  2. Przeszlifuj wszystkie sześć boków bloku żywicy za pomocą szlifierki tarczowej (rysunek 4B). Powtórz kroki dla wszystkich stron, używając szlifierki taśmowej 4 x 30 cali o ziarnistości 600 (Rysunek 5A), a następnie szlifuj wszystkie strony szlifierką taśmową 1 x 30 cali o ziarnistości 2000 (Rysunek 5B).
    UWAGA: Aby uzyskać jak największą przejrzystość w finalnym produkcie, trzymaj każdą stronę bloku żywicy w tej samej orientacji dla każdego typu taśmy.
  3. Delikatnie przytrzymaj czerwony krem z tlenku glinu i polerowanie kół na koło polerujące przez kilka sekund, a następnie delikatnie przytrzymaj blok żywicy przy kółku polerującym pod kątem 45° (Rysunek 5C).
  4. Użyj materiału, aby usunąć nadmiar lakieru ze wszystkich stron bloku żywicy. Powtarzaj tyle razy, ile trzeba, aż osiągniesz pożądaną klarowność.
  5. Powtórz te same kroki, używając drugiego koła polerującego z białą, diamentową polerką. Powtarzaj tyle razy, ile trzeba, aż osiągniesz pożądaną klarowność i zniknie kolorowa nawierzchnia z czerwonego lakieru.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Próbki z powodzeniem osadzone są otoczone przezroczystą i bezbarwną żywicą, a wszystkie boki są gładkie. Próbka będzie wyraźnie widoczna z każdej strony bloku żywicy. Cechy okazów ważne do identyfikacji, takie jak wzory kolorystyczne, kształt i rozmiar łusek oraz inne cechy anatomiczne, będą widoczne za pomocą mikroskopu rozcinającego. Mniej pożądane cechy powstałych stawonogów w żywicy czasem pojawiają się, gdy na okaz pojawia się warstwa pęcherzyków powietrza, brakuje łusek, brakuje czę...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Przygotowanie okazów

Metody konserwacji mogą zależeć od badanego okazu. Typowe metody konserwacji próbek obejmują stosowanie 70% etanolu lub zamrażanie, które są kompatybilne z osadzeniem żywicy. Metody te są przydatne w zachowaniu kluczowych cech okazu, takich jak ubarwienie, łuski, włoski i inne cechy fizyczne.

Przygotowanie warstw żywicy i umiejscowienie próbki

Przy użyciu żywicy optymalne są formy si...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów do ujawnienia.

Podziękowania

Doceniamy byłych i obecnych studentów studiów licencjackich, którzy przyczynili się do rozwoju produkcji żywicy, w tym Jake'a Hosta, Katelyn Humlicek, Erika Aguirre Cordero, Isaaca Lunę, Michaela Rileya, Elise Hoffman, Megan Nicholson, Allison Speed oraz Jesusa Rene Garcia Lunar. Wsparcie finansowe zapewniły Wydział Entomologii Uniwersytetu Texas A&M oraz program Texas EcoLab (GLH, RCR). Następujące stawonogi zamontowane w żywicy podczas tego badania zostały udostępnione przez Centers for Disease Control and Prevention do dystrybucji przez BEI Resources, NIAID, NIH: Adult Rhodnius prolixus, Strain CDC, NR-44077; NIAID, NIH: Dorosły Haemaphysalis longicornis, NR-51846; NIAID, NIH: Dorosły Rhipicephalus sanguineus, NR-42512; NIAID, NIH: Dorosły Dermacentor variabilis, NR-42513; NIAID, NIH: Dorosły Ixodes scapularis, NR-42510; oraz NIAID, NIH: Adult Amblyomma americanum, NR-42514. Lutzomyia longipalpis zostały dostarczone przez Walter Reed Army Institute of Research do dystrybucji przez BEI Resources, NIAID, NIH: Adult Lutzomyia longipalpis, Strain Jacobina, Brazylia (LLJB), NR-44015. Simulium vittatum użyte w tej pracy zostały wykonane przy wsparciu rozkazu zadaniowego NIH C-08, nr kontraktu. HHSN2722017000351, Rozkaz zadaniowy nr 75N93020F00002, uzyskany przez BEI Resources, NIAID, NIH: Simulium vittatum, Adult, NR-53893.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Sprężarka powietrzaCalifornia Air Tools CAT-1P1060S Light & Cicha przenośna sprężarka powietrza, srebrnaCalifornia Air Toolshttps://a.co/d/07y4iGha
Wąż sprężarki powietrzaCalifornia Air Tools HFH25.25 Hybrider Flex 1/4 cala 25 stóp hybrydowy wąż powietrzny z szybkozłączkami powietrznymi, niebieskiCalifornia Air Toolshttps://a.co/d/0cboxu7J
Piła taśmowaG0803 9" Piła taśmowa stołowahttps://www.grizzly.com/products/grizzly-9-benchtop-bandsaw-w-laser-guide-quick-release/g0803z (Analog Machine)
Szlifierka taśmowaBucktool 1 x 30 cali szlifierka taśmowa z tarczą 5 cali z kluczem do przechowywania i łatwym zdejmowaniem pokrywy na pasekBucktoolhttps://a.co/d/017GmVQI
Koło polerujące6-calowy benchtop buffer Heavy Duty 1/2 HP; Zawiera dwa koła polerująceCentralna Maszynahttps://a.co/d/0iGsbSCu
Szlifierka tarczowaSzlifierka tarczowa BUCKTOOL 5.0A o wymiarach 4 cale x 36 cali i 6 cali z silnikiem bezpośrednim napędem 3/4HP i przenośną bazą ALBucktoolhttps://a.co/d/08AsKXva
Polerowanie kółka x2Wymiana klocków do koła polerującegoEnkayhttps://a.co/d/07WajxZ5
Garnek ciśnieniowyCALIFORNIA AIR TOOLS 255C, 2,5 galona garnka ciśnieniowa do odlewów, niebieskaCalifornia Air Toolshttps://a.co/d/0j3vGi3P
Odkurzanie w sklepie, żeby zbierać kurzBUCKTOOL 1.2 HP Auto Start 750CFM Zbieracz kurzu z 3 workami do odprowadzania kurzu, o pojemności 5.4 sześciennej i reduktorem 5 PCS do stolarstwa DC50Bucktoolhttps://a.co/d/0cEA39ii
Kąpiel wodnaJOANLAB cyfrowa termostatyczna kąpiel wodnaJoanLabhttps://a.co/d/0gJLNyWG
Przedmioty jednorazowe
Polerowanie kół do polerowania, czerwonySCOTTCHEN Red Buffing Polerowanie Pasta tnąca gruba, Jewelry RougeScottchenhttps://a.co/d/caLtcNL
Polerowanie kół do polerowania, białeD2903 Pasta polerująca 1-funtowaWoodstockhttps://a.co/d/061T4kWU
Półmaska respiratora3M Rugged Comfort Quick Latch Half-faceset Respirator wielokrotnego użytku 6502QL, NIOSH3Mhttps://a.co/d/0g3wMldi
Filtry półmaskiFiltr cząstek 3M P100 Ochrona Układu Oddechowego, 2097/071184 (AAD)3Mhttps://a.co/d/05a6ydbM
ŻywicaPrzezroczysta żywica odlewnicza, plastik z tapuTap Plastichttps://www.tapplastics.com/product/mold_making_materials/casting_products/tap_clear_lite_casting_resin/75
Katalizator żywicznyPłynny katalizator MEKP, plastik z kranuTap Plastichttps://www.tapplastics.com/product/fiberglass/polyester_resins/tap_mekp_liquid_catalyst/40
Żywica i Katalizator żywiczny (alternatywa)Przezroczysta żywica UV do odlewania, Solarez (w zestawie MEKP Catalyst)Solarezhttps://solarez.com/solarez-clear-casting-uv-resin.html
Taśmy szlifierskieŚcierniki Red Label 4 x 36 w 600 grit węglik krzemuŚcierniki Red Labelhttps://a.co/d/0hkYmjI7
Tarcze szlifierskie1 x 30 o ziarnistości 2000 o ziarnistości 9 mikronów niebieski pas polerski z amortyzowanym ultraelastycznym podkładem z mylaruZapas do ostrzenia Prohttps://a.co/d/01pCnNnN
Tarcze szlifierskieNorton Metalite R228 PSA Disk, klej czuły na ciśnienie, tlenek glinu, 5' ’ Średnica, ziarnistość 80Nortonhttps://a.co/d/0cqqdpMq
Formy silikonoweFormy silikonowe kwadratowe do żywicy, duże formy żywicowe, błyszczące formy głębokie kwadratowe 6,6''x 2'' w (z 2 małymi formami kwadratowymi lub prostokątnymi)https://a.co/d/06Qasc1G
Arkusze przezroczystościPrzezroczysta folia przezroczysta do druku OHP 8,5 x 11 cali dla projektorów nagłownych, dla drukarek laserowychCraftiffhttps://a.co/d/07L2g0AT

Bibliografia

  1. Schauff, M. E. E. National Museum of Natural History. , (2001).
  2. Wiedenmann, R. N., Dowling, A. P. G., Barnes, J. K. What is the value of your insect collection. Am Entomol. 60 (2), 4(2014).
  3. Moghaddam, M. H. G., Moghaddam, M. G., Rakhshani, E., Mokhtari, A. An upgrade pinning block: a mechanical practical aid for fast labelling of the insect specimens. Biodivers Data J. 5, e20648(2017).
  4. Poh, K. C., Machtinger, E. T. An extension of their work: extension's role in vector-borne disease education. Am Entomol. 67 (1), 4(2021).
  5. Whiffin, A. L. Carri-on communicating: creating portable insect displays for entomological outreach. Nat Hist Collect Museomics. 2, 1-8 (2025).
  6. Callohuari, Y. T., Seiter, N. J., Gibson, J. C., Becker, T. M., Kaufmann, S. The use of 3D models in teaching insect morphology and identification: a case study. J Integr Pest Manag. 16 (1), 32(2025).
  7. Bron, G. M., Fenelon, H., Paskewitz, S. M. Assessing recognition of the vector of Lyme disease using resin-embedded specimens in a Lyme endemic area. J Med Entomol. 58 (2), 866-872 (2021).
  8. Smith, J. H., Coyle, D., Thomason, J., Matthews, T., Riggins, J. J. Geocaching: a new instructional tool for natural resources extension and outreach. J Ext. 59 (3), 16(2021).
  9. Burgmans, J. Embedding entomological specimens in an improved polyester resin. N Z Entomol. 4 (1), 61-66 (1968).
  10. Miles, P. M. Preservation of insect and plant specimens in transparent plastics. Plant Pathol. 1, 65-68 (1952).
  11. Bejcek, J. R., et al. Clear resin casting of arthropods of medical importance for use in educational and outreach activities. J Insect Sci. 18 (2), 34(2018).
  12. Maulana, A. A., Damayanti, D. R., Zanuba, A. F., Gumilang, F. K., Megasari, D. Bioplastic resin as a preservation medium for insect comparative effectiveness of polyester resin and catalysts. 9th Int Semin Res Month 2024. NST Proc. , 208-213 (2025).
  13. Gourichon, B., Binetruy, C., Krawczak, P. A new numerical procedure to predict dynamic void content in liquid composite molding. Compos Part A Appl Sci Manuf. 37 (11), 1961-1969 (2006).
  14. Upton, M. S., Mantle, B. L. Methods for Collecting, Preserving and Studying Insects and Other Terrestrial Arthropods. , 5th ed, Paragon Printers Australasia; The Australian Entomological Society. (2010).
  15. Gullan, P. J., Cranston, P. S. The Insects: An Outline of Entomology. , Blackwell Science Ltd. 405-421 (2000).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Monta stawonog wpreparaty edukacyjneidentyfikacja morfologicznaprotok zatapiania w ywicyodlewanie w autoklawie do odgazowywaniakonserwacja okaz wpolerowane bloki ywicznekwestie bezpiecze stwa biologicznegokolekcje popularyzatorskie
Przezroczyste odlewy stawonogów z żywicy do wykorzystania w edukacji, popularyzacji i badaniach
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.