Wszystkie badania zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Leczenia Zwierząt Uniwersytetu Medycznego w Xuzhou. Odczynniki i używany sprzęt są wymienione w Tabeli Materiałów.
1. Model zwierzęcy
Dorosłe samce i samice szczurów Sprague-Dawley (SD) o wadze 250–300 g zostały zakupione w Centrum Eksperymentalnych Zwierząt Uniwersytetu Medycznego Xuzhou. Szczury hodowano w specjalnym, wolnym od patogenów pomieszczeniu. Procedury eksperymentów na zwierzętach, w tym leczenie, opieka i wybór punktów końcowych, były zgodne z wytycznymi "Animal Research: Reporting In Vivo Experiments". Eksperymenty na zwierzętach przeprowadzono z randomizacją. Szczury SD zostały podzielone na cztery grupy (n = 8 na grupę): Grupa normalna (bez operacji, karmienie normalne) (grupa normalna), grupa pozorowana (operacja pozorowa: nacięcie skóry i mięśni bez przecięcia więzadła krzyżowego przedniego [ACLT], następnie poddanie soli fizjologicznej), grupa KOA/NC (operacja ACLT + wylew z soli fizjologicznej), grupa KOA/OST (operacja ACLT + wylew OST). Model KOA kolana szczura został skonstruowany metodą przecięcia więzadła krzyżowego przedniego (ACLT), jak opisanowcześniej 29. Grupa z solą fizjologiczną otrzymała sól fizjologiczną przez gavage, a grupa OST przez gavage przez 4 tygodnie. Dawka OST to 50 mg/kg masy ciała (rozpuszczona w PEG 400 i rozcieńczona solą fizjologiczną), a częstotliwość podawania to raz dziennie przez 4 tygodnie w podsekcji Szczury. Następnie szczury były uśpione do analizy (zgodnie z zatwierdzonymi protokołami instytucjonalnymi). Tkanki były natychmiast zamrażane w ciekłym azocie lub utrwalane w 4% paraformaldehydzie.
2. Hodowla komórkowa
Linia komórkowa ludzkich chondrocytów (C28/I2) została pozyskana z American Type Culture Collection (ATCC, Manassas, VA). Komórki zostały wyhodowane zgodnie z wytycznymi ATCC i użyte w ciągu 6 miesięcy.
Warunki hodowla: Medium DMEM/F-12 uzupełnione o 10% surowicy płodowej bydła i 1% penicylin-streptomycyny, inkubowane w 37 °C w inkubatorze nawilżającym 5%CO2 .
Zabiegi: Komórki zostały zasiane w ilości 1 × 106 komórek /dołek w płytkach 6-dołkowe; po 24 godzinach adhezji traktowano je samodzielnie LPS (1 μg/mL) lub OST (100 μM) przez 24 godziny.
3. Testy żywotności komórek
Komórki chondrocytów były współinkubowane z OST lub LPS w różnych stężeniach w płytkach 96-dołkowych. Test CCK8 odzwierciedla żywotność komórek poprzez wykrywanie absorbancji (OD450 nm) za pomocą czytnika mikropłyt, przy czym wyższe wartości OD wskazują na bardziej żywotne komórki.
Gradient stężenia OST: 0, 25, 50, 100, 200, 400 μM (inkubowany przez 24 godziny). Test CCK8 wykazał żywotność komórek >90% we wszystkich stężeniach, potwierdzając nietoksyczność związku.
Gradient stężenia LPS: 0, 0,1, 0,5, 1, 2 μg/mL (inkubowany przez 24 godziny). Grupa LPS o pojemności 1 μg/mL miała ~50% żywotności komórek (w porównaniu do grupy Ctrl), dlatego to stężenie wybrano do kolejnych eksperymentów.
4. Barwienie hematoksyliny i eozyny (H&E) oraz barwienie Safanin O
Tkanki były osadzane w parafinie, odwoskowane, nawilżane i barwione odczynnikami H&E oraz Safranin O/Fast Green zgodnie z zaleceniami producenta. Warunki barwienia: stężenie robocze AO wynosiło 1 μg/mL; komórki inkubowano w temperaturze 37 °C przez 5 minut w ciemności.
Metoda ilościowa: Wskaźnik pozytywności AVO został obliczony poprzez liczenie komórek zawierających pomarańczowe punkty w 5 losowych polach (powiększenie ×400) na próbkę za pomocą oprogramowania ImageJ. Następnie fragmenty były rejestrowane pod mikroskopem BX43 (powiększenie ×400).
5. Cytometria przepływowa
Komórki zostały pobrane i ponownie zawiesinowane w roztworze Annexin-V FITC/PI do analizy apoptozy. Warunki inkubacji: Komórki były ponownie zawieszane w temperaturze 1× 106 komórek /mL w roztworze Annexin-V FITC/PI (KeyGEN) i inkubowane w temperaturze pokojowej przez 15 minut w ciemności.
Strategia bramkowania: Forward scatter (FSC) kontra Do wykluczenia odpadów komórkowych stosowano bramki rozpraszania bocznego (SSC); Komórki FITC⁺/PI⁻ z Załącznika-V zostały zdefiniowane jako wczesne apoptotyczne, a komórki FitC⁺/PI⁺ z Załącznika-V jako późne apoptotyczne. Wykres bramkowy jest zawarty w Pliku Uzupełniającym 1 (surowe dane cytometrii przepływowej). Komórki były zbierane za pomocą cytometru przepływowego. Dane zostały przeanalizowane za pomocą oprogramowania Flow Jo.
6. Transfekcja plazmidów i mimika
MiR-34a mimika (34a-mimika), niespecyficzna kontrolna mimika (NC) została pozyskana z komercyjnego źródła. Komórki były transfekcowane plazmidami za pomocą LipofektaminyTM 3000 zgodnie z instrukcjami producenta.
7. Zabarwienie pomarańczowym akrydynem
Autofagia była zwykle oceniana za pomocą barwienia pomarańczowego akrydyną w komórkach. Po leczeniu komórek LPS lub OST w określonych stężeniach przez 24 godziny, były inkubowane AO (1 μg/mL) w temperaturze 37 °C przez 5 minut w ciemności. Obrazy zostały wykonane za pomocą mikroskopu konfokalnego laserowego. Wskaźnik pozytywności AVO obliczono poprzez liczenie komórek zawierających pomarańczowe punkty w 5 losowych polach (powiększenie ×400) na próbkę za pomocą oprogramowania ImageJ. Dane podawane są jako średnia ± SD z trzech niezależnych eksperymentów.
8. Obserwacje mikroskopem transmisyjnym elektronowym
Próbki zostały utrwalone w 2,5% glutaraldehydu i 1% czterotlenku osmu, następnie odwodnione, płukane i impregnowane. Po polimeryzacji próbki były cięte na sekcje o grubości 70 nm za pomocą ultramikrotomu. Ultrastrukturę komórek obserwowano za pomocą transmisyjnej mikroskopii elektronowej.
9. Immunoblotting
Przeciwciało monoklonalne myszy (ABS) przeciwko Bcl-2 (#68103), przeciwciało poliklonalne królika przeciwko LC3 (#14600-1-AP), IL-6 (21865-1-AP) oraz przeciwciało monoklonalne myszy przeciwko β-Actin (#66009-1-lg) zostały zakupione od Proteintech. Komercyjnie uzyskano wtórne Abs sprzężone z IRDye 800CW koziego (poliklonalnego) anty-IgG (H+L) lub IRDye 800CW koziego (poliklonalnego) anty-mysiego IgG (H+L). Komórki były lizowane w teście lizy całej komórki, oddzielonej elektroforezą w żelu SDS-poliakrylamidowym. Białka wykryto przy użyciu pierwotnych Abs i odpowiadających im wtórnych Abs. Obciążenie białkiem wynosiło 30 μg na tor; rozcieńczenia przeciwciał pierwotnych: Bcl-2 (1:1000), LC3 (1:1500), β-tubulina (1:5000); przeciwciała wtórne (IRDye 800CW) zastosowano w stosunku 1:10 000, IL-6 (1:800). Następnie pasma białkowe zostały uchwycone przez ulepszony system ultrazmodernizowanego chemiluminescencyjnego laserowego skanowania. Pasma białkowe były ilościowo określane przez oprogramowanie ImageJ.
10. Ilościowa reakcja łańcuchowa polimerazy w czasie rzeczywistym (qRT-PCR)
Całkowite RNA zostały wyizolowane z komórek za pomocą odczynnika Trizol. cDNA uzyskane z całkowitych RNA zostały zsyntetyzowane przy użyciu zestawu regent cDNA i przeanalizowane metodami SYBR Green. cDNA uzyskane z miRNA zostały zsyntetyzowane przy użyciu zestawu cDNA pierwszej nici miRcute plus miRNA i przeanalizowane przez zestaw qPCR miRcute plus miRNA. Wszystkie procedury były wykonywane zgodnie z protokołem producenta. Wyrażenie transkryptu docelowego zostało obliczone metodą 2-△△CT . GADPH i U6 były używane jako kontrola ładowania mRNA i miRNA, odpowiednio. Sekwencja prymarów jest wymieniona w Tabeli 1.
11. Testy reportera lucyferazy
Plazmid reporterowy typu dzikiego psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR (WT) oraz psiCHECK2-Bcl-2-3′UTR z mutantem w miejscu wiązania miR-34a (Mut). Reporterzy i mimik miR-34a zostali współtransfektowani do komórek chondrocytów za pomocą LipofektaminyTM 3000. Komórki były pobierane i lizowane po 24 godzinach transfekcji. Intensywność lucyferazy była następnie mierzona za pomocą zestawu Dual-LumiTM Luciferase Reporter Gene Assay zgodnie z instrukcjami producenta.
12. Testy analizy chodu
System MGT-PR był używany do obserwowania ruchów kończyn szczurów w każdej grupie. Przed testami szczury mogły się przystosować do środowiska pasa startowego. Dane dotyczące chodu podczas swobodnego chodzenia zostały zarejestrowane, a dla każdego szczura zarejestrowano trzy kolejne ważne próby chodzenia. Analizowane parametry obejmowały długość kroku, czas zamachu oraz koordynację między prawą a lewą kończyną tylną.
13. Analiza statystyczna
Eksperymenty przeprowadzono w trzech egzemplarzach i niezależnie powtórzono co najmniej trzy razy. Analiza statystyczna została przeprowadzona za pomocą oprogramowania GraphPad Prism 9. Dane wykazano jako średnią ± SD. Różnice statystyczne oceniano za pomocą jednokierunkowego testu ANOVA (test po-hoc Tukeya) dla wielu porównań lub dwustronnego testu Student's t dla dwóch porównań eksperymentalnych grup. Różnice uznano za istotne przy p < 0,05.