Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł badawczy

Opóźnione i postępujące uszkodzenie jąder po ekspozycji u szczurów spowodowane drobnymi cząstkami stałymi (PM2.5)

311 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/69626

⸱

12 grudnia 2025

W tym artykule

Podsumowanie

Ekspozycja na PM2.5 powoduje opóźnione uszkodzenie jąder w modelach szczurów poprzez długotrwałe reakcje zapalne, zwiększoną apoptozę komórek rozrodczych, obniżenie poziomu Connexin-43/Occludin oraz sygnalizację zgodną z aktywacją szlaku JNK, co podkreśla jego długoterminowe zagrożenie dla męskiego zdrowia rozrodczego.

Streszczenie

Drobne cząstki stałe (PM2.5) są coraz częściej powiązane z zaburzeniami rozrodczości u mężczyzn. Jednak ponieważ większość badań pozostaje ostra—skoncentrowana, opóźniona, utrzymująca się lub postępująca, uszkodzenia jąder po ekspozycji—kluczowe dla długoterminowej oceny ryzyka—pozostają słabo poznane. Ustanowiliśmy model szczura o rozdzielczości czasowej, aby określić, czy uraz utrzymuje się, czy pogarsza po ekspozycji. Siedemdziesiąt dwa samce szczurów Sprague-Dawley zostało losowo podzielonych na dziewięć grup (kontrola; pojazd w wieku 24 godzin, 1, 2 i 4 miesiące; PM2.5 w tych samych momentach) i otrzymywał PM2.5 dośrodkowo w dawce 5 mg/kg/dzień przez 7 dni. Zmierzyliśmy ilość jakości plemników i indeksów narządów rozrodczych, badaliśmy histologię i ultrastrukturę jąder, mierzyliśmy poziom testosteronu w surowicy, FSH, LH i E2, profilowaliśmy zapalne mRNA cytokiny (IL-1β, IL-6, TNF-α, IFN-γ), oceniliśmy apoptozę komórek rozrodczych za pomocą TUNEL oraz oceniliśmy białka związane z połączeniami i stresem (Connexin-43, Occludin, JNK). Ekspozycja na PM2.5 powodowała trwałe spadki stężenia i motoryki plemników, a także zwiększoną liczbę nieprawidłowości oraz zaniku jąder i najądrza, które nie wróciły do zdrowia przez 4 miesiące po ekspozycji. Histologia wykazała postępujące przerzedzenie nabłonka mieńczego oraz degenerację ultrastrukturalną. Widoczne były również zaburzenia hormonalne – obniżony poziom testosteronu i zmienione gonadotropiny. Mechanistycznie ekspozycja na PM2.5 utrzymywała podwyższoną ekspresję IL-1β i IL-6, wspierała apoptozę komórek rozrodczych oraz obniżała poziom koneksyny-43 i okludyny, wykazując jednocześnie wzorce zgodne z aktywacją szlaku JNK. Razem te ustalenia wykazują opóźnioną i postępującą toksyczność jąder po zakończeniu ekspozycji na PM2.5 oraz sugerują, że zachowanie integralności złączy i celowanie w JNK może złagodzić długoterminowe szkody rozrodcze.

Wprowadzenie

PM2.5, złożona mieszanina drobnych cząstek o średnicy aerodynamicznej ≤2,5 μm, pochodzi z emisji przemysłowych, spalin pojazdów oraz spalania biomasy i stała się głównym globalnym zanieczyszczeniem środowiska1. Badania epidemiologiczne łączą ekspozycję na PM2.5 z chorobami układu oddechowego i sercowo-naczyniowego2, a także z zaburzeniami układu rozrodczego3. Wpływ na płodność mężczyzn budzi szczególne obawy ze względu na dowody, że zanieczyszczenie powietrza może obniżać jakość plemników4. Czynniki męskie przyczyniają się do ponad połowy przypadków niepłodności na świecie, a wiele badań odnotowuje znaczący spadek parametrów plemników w ostatnich dekadach5. Najnowsze globalne analizy potwierdzają również powszechne spadki jakości plemników w wielu regionach6. Chociaż czynniki takie jak palenie, alkohol, promieniowanie i narażenie na chemikalia są uznane za ryzykowne7, PM2.5 pojawił się jako dodatkowy toksyn rozrodczy wymierzony w jądra8.

Jądra są bardzo wrażliwe na toksyny środowiskowe ze względu na swoją unikalną strukturę fizjologiczną i ciągłą aktywność plemników. Wcześniejsze badania wskazały, że ekspozycja na PM2.5 może powodować uszkodzenia jąder przez wiele szlaków, takich jak stres oksydacyjny, reakcje zapalne oraz zaburzenie bariery krwio-jądra9. Te ostre skutki charakteryzują się obniżoną jakością plemników, nieprawidłową histologią jąder oraz zaburzeniami hormonalnymi10. Jednak większość badań koncentruje się na natychmiastowych urazach, pozostawiając długoterminowe lub opóźnione skutki słabo scharakteryzowane.

Obecne modele ekspozycji na PM2.5 mają wrodzone ograniczenia: wdech całego ciała naśladuje naturalną ekspozycję, ale wymaga specjalistycznego sprzętu i nie ma precyzji dawki11, podczas gdy instylacja śródtchawicowa zapewnia kontrolę dawki, ale jest inwazyjna i nie odtwarza fizjologicznego osadzania cząstek12. Nasz model czasowo-rozdzielony wewnątrznosowy unika tych wad – jego nieinwazyjne podanie jest zgodne z wzorcami odkładania górnych oddechów, umożliwia precyzyjną kontrolę dawki i wspiera długoterminowe wielopunktowe próbkowanie w celu uchwycenia opóźnionego urazu, który przewyższa możliwości tradycyjnych modeli ostrych13.

Nasza dawka PM2.5 5 mg/kg/dzień pokrywa się z paradygmatami subostrej ekspozycji gryzoni, które udowodniono wywoływanie reakcji reprodukcyjnych, a poprzez konwersję powierzchni ciała przybliża ludzką równowartość dawki ~6 razy wyższą niż standardowe poziomy otoczenia w przyspieszaniu długotrwałych objawów toksyczności14. Uwzględnione są gatunki: choć szczury mają zachowaną fizjologię jąder z ludźmi, ich krótszy cykl plemnikowy może przyspieszyć postęp urazu obserwowany w naszych punktachczasowych 15, a podawanie przez nos różni się od ludzkiego odkładania dolnych dróg oddechowych, choć potwierdzono ogólnoustrojowe rozprzestrzenianie toksyn do jąder.

Opóźnione skutki narażenia na toksyny środowiskowe są kluczowe dla oceny długoterminowych ryzyk rozrodczych, ponieważ mogą ujawnić nieodwracalne szkody, które nie są widoczne w krótkoterminowych obserwacjach16. Na przykład niektóre toksyny mogą powodować utajone uszkodzenia jąder, które stopniowo się objawiają lub pogarszają z czasem, nawet po zakończeniu ekspozycji, potencjalnie prowadząc do przewlekłej dysfunkcji rozrodczej17. Biorąc pod uwagę powszechność i trwałość PM2.5, kluczowe jest ustalenie, czy jego toksyczność rozrodcza utrzymuje się lub pogarsza po ekspozycji.

Utrzymujące się zapalenie, stres oksydacyjny i zaburzenia mechanizmów naprawy są prawdopodobnymi czynnikami opóźnienia efektów. Wzrost wyrównania IL-1β, IL-6 i TNF-α wywołany przez PM2.5 może utrzymywać przewlekłe zapalenie, zakłócać spermatogenezę i wspierać apoptozę komórek rozrodczych19. Uszkodzenie białek styków kluczowych, takich jak Connexin-43 i Occludin, osłabia barierę krwio-jądra i może uniemożliwić funkcjonalną regenerację20. Aktywacja szlaku kinazy N-końcowej c-Jun (JNK), mediatora stresu i sygnalizacji apoptotycznej, również została powiązana21.

Pomimo rosnącej świadomości toksyczności rozrodczej PM2.5, istnieje znacząca luka w wiedzy dotyczącej dynamiki czasowej uszkodzenia jąder po zakończeniu ekspozycji. Konkretnie, nadal nie jest jasne, jak długo utrzymują się urazy jąder, czy nasilają się z czasem oraz jakie molekularne szlaki napędzają te opóźnione efekty22. Odpowiadanie na te pytania jest kluczowe dla opracowania ukierunkowanych strategii profilaktycznych i terapeutycznych, które łagodzą szkody reprodukcyjne wywołane przez PM2.5.

Pozostają istotne luki dotyczące czasu trwania, postępu oraz mechanizmów urazu jąder wywołanego PM2.5 po zakończeniu ekspozycji. Niniejsze badanie rozwiązuje te luki, oceniając punkty końcowe związane z rozrodem; histopatologię; profile hormonalne – w szczególności hormon folikulostymulujący (FSH), hormon luteinizujący (LH) oraz estradiol (E2); stan zapalny; apoptoza; oraz ekspresję białek barierowych w wielu punktach po ekspozycji. Wyniki te dostarczają wglądu w długoterminowe ryzyko rozrodcze PM2.5 i wspierają strategie zdrowia publicznego mające na celu ochronę płodności mężczyzn.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt były przeprowadzane zgodnie z przepisami instytucjonalnymi i zatwierdzone przez Komitet Etyki Zwierząt Kolegium Zdrowia Fujian (Wniosek o zatwierdzenie projektu: DW2024-01).

Bezpieczeństwo i odpady niebezpieczne
Toksyczne odczynniki, w tym formalina, czterotlenek osmu i chloroform, były obsługiwane w certyfikowanym okapie wyparowym, przy użyciu odpowiednich środków ochrony osobistej. Halogenowane odpady organiczne oraz roztwory zawierające osm były zbierane w wyznaczonych pojemnikach i utylizowane zgodnie z wymaganiami instytucjonalnymi. Pentobarbital sodowy był rejestrowany jako substancja kontrolowana, a ostre przedmioty były bezpiecznie obchodzone przez cały okres badania.

Materiał i obsługa PM2.5
Do dawkowania użyto standardowego materiału referencyjnego PM2.5. Zgodnie z ustalonymi procedurami przygotowania cząstek suchy, suchy proszek był zawieszany w sterylnym PBS w wymaganym stężeniu i sonikowany w kąpieli wodnej przez 10-15 minut tuż przed użyciem, bez powierzchniowo czynnego. Codziennie przygotowywano zawieszenia sprawne, na nowo. Poziomy endotoksyny oceniano za pomocą testu lizatu amebocytów limulus i były niewykrywalne. W razie potrzeby uwzględniano kontrolę polimyksyny B, aby wykluczyć efekty wywołane LPS.

Budowa modeli zwierzęcych in vivo
Siedemdziesiąt dwa samce szczurów Sprague-Dawley z SPF (2 miesiące, 190 ± 10 g) zostały umieszczone w warunkach standardowych i losowo podzielone na dziewięć grup (n = 8 na grupę), składających się z grupy kontrolnej, grup pojazdowych pobranych w wieku 24 godzin, 1, 2 i 4 miesięcy oraz grup wystawionych na PM2,5 w tych samych momentach. PM2.5 podawano donosowo w dawce 5 mg∙kg-1∙day-1 w dawce 10-20 μL na naris pod lekką znieczuleniem izofluranowym raz dziennie przez 7 dni. Po podaniu szczury były umieszczane na plecach przez 1-2 minuty, aby ułatwić wdychanie. Zwierzęta były utrzymywane do eutanazji w wyznaczonych punktach po ekspozycji, a masa ciała była rejestrowana do obliczeń współczynnika narządów. Punkty końcowe obejmowały współczynniki narządów, jakość plemników, histologię i ultrastrukturę, hormony rozrodcze w surowicy oraz testy molekularne.

Morfologia narządów rozrodczych i ocena jakości plemników
Jądra i najądrza były przecinane pod głęboką znieczuleniem pentobarbitalowym, wyciskane i ważone w celu obliczenia współczynników narządów. Plemniki pobrano z najądrza ogona przez mielenie w wcześniej podgrzanym buforze w temperaturze 37 °C. Stężenie określono za pomocą hemocytometru. Ruchliwość oceniano poprzez badanie co najmniej 200 plemników na pięciu lub więcej niepokrywających się polach na wcześniej podgrzanych preparatach. Morfologię oceniono po utrwaleniu, rozmazaniu i barwieniu eozyn-nigrosyną lub Diff-Quik, przy czym na szczura przypadło co najmniej 200 plemników. Wszystkie oceny były zaślepiane, a techniczne repliki uśredniono, aby uzyskać jedną wartość na każde zwierzę.

Histologiczna i ultrastrukturalna analiza tkanki jądrowej
Jądra były utrwalane w 10% neutralnie buforowanej formalinie, przetwarzane przez stopień etanolu i ksylenu, osadzone w parafinie oraz przecięte w 5 μm do barwienia HE. Przekroje barwione oceniano za pomocą systematycznego losowego pobierania próbek, z wyłączeniami dla cięć skośnych, artefaktów lub słabego fiksowania. Średnice rurek obliczano na podstawie osi ortogonalnych, a grubość nabłonka mierzono w równomiernie rozmieszczonych punktach. Analizy zostały zaślepione, a na szczura oceniono co najmniej 10 kanalików.

W przypadku TEM małe bloki tkanek były utrwalane w glutaraldehydzie, post-fiksowane w czterotlenku osmu, odwodniane, infiltrowane żywicą i polimeryzowane. Ultracienkie przekroje były barwione octanem uranilowym i cytrynianem ołowiu oraz obrazowane przy napięciu 60-120 kV przy stałych ustawieniach. QC obejmowało ocenę integralności błon i mitochondriów oraz unikanie artefaktów ekstrakcyjnych.

Test immunosorbentny związany z enzymami (ELISA)
Krew pobierano z aorty brzusznej pod znieczuleniem, w ustalonym oknie porannym, aby kontrolować zmienność okołodobową. Po zakrzepnięciu i wirowaniu surowica została alicytatowana i przechowywana w temperaturze −80 °C. Testosteron, FSH, LH i E2 zostały ilościowo zidentyfikowane za pomocą zwalidowanej platformy immunoaseje. Próbki były uruchamiane w duplikatach z odpowiednimi kontrolami, a precyzja testu była zgodna ze specyfikacją platformy. Próbki hemolizowane lub lipemiczne zostały wykluczone.

Ilościowa reakcja łańcuchowa polimerazy w czasie rzeczywistym (RT-qPCR)
Całkowite RNA zostało wyekstrahowane z tkanki jąder za pomocą fenol-chloroformu i oczyszczone poprzez wytrącanie izopropanolu oraz płukanie etanolem. Jakość RNA została zweryfikowana spektrofotometrycznie. zsyntetyzowano cDNA, a RT-qPCR wykonano z chemią barwnikową w standardowych warunkach cyklicznych, po czym przeprowadzono analizę krzywej stopienia. Poziomy ekspresji zostały znormalizowane do GAPDH metodą 2−ΔΔCq .

Analiza zachodniej plamy
Lizaty białkowe przygotowywano w buforze RIPA z inhibitorami proteazy, ilościowo określano za pomocą testu BCA i denaturowano w buforze obciążającym. Transfer SDS-PAGE i PVDF przeprowadzono w warunkach kontrolowanych. Błony były blokowane, inkubowane pierwotnymi przeciwciałami przeciwciałami do Connexin-43, Okludyny, JNK i GAPDH, a następnie nałożone na przeciwciała wtórne sprzężone z HRP. Pasma wykrywano za pomocą chemiluminescencji, a densytometria obejmowała odejmowanie tła, normalizację do GAPDH oraz skalowanie do grupy kontrolnej.

Analiza statystyczna
Dane zostały zgłoszone jako średnie ± SD. Zastosowano jednokierunkową ANOVA z testem post hoc Tukeya lub testem t-Studenta, gdzie to było stosowne, a dane nieparametryczne analizowano testem Mann-Whitney U . Wartość p < 0,05 uznano za istotną.

Ukończenie i oczyszczenie
Wszystkie niebezpieczne odpady chemiczne zostały zarejestrowane i odpowiednio utylizowane. Surowe dane, w tym wyjścia instrumentów i pliki analityczne, były archiwizowane wraz z odpowiednimi notatkami, aby zapewnić możliwość śledzenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Utrzymujące się pogorszenie funkcji rozrodczych u samców u szczurów, charakteryzujące się obniżoną jakością plemników i upośledzonym rozwojem narządów rozrodczych spowodowanym ekspozycją na PM2.5

Aby zbadać wpływ PM2.5 na funkcje rozrodcze u mężczyzn, jakość plemników, współczynniki narządów rozrodczych oraz powiązane wskaźniki, przeanalizowano u dziewięciu grup samców szczurów. Analizy przeprowadzono względem 24-godzinnego punktu po ekspozycji. Chociaż nie uwzględniono punktu...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Krótkotrwała ekspozycja na PM2.5 została poprzedzona postępującym, po-ekspozycjowym pogorszeniem funkcji rozrodczych mężczyzn w ciągu 1-4 miesięcy. Wyniki te potwierdzają zależność od czasu toksyczność reprodukcyjną, która utrzymuje się po zakończeniu dawkowania, oraz przedłużają wcześniejsze obserwacje zaburzeń rozrodczych związanych z PM2.523.

Aby zwiększyć powtarzalność, ustandaryzowaliśmy cztery elementy. Po pierwsze, regularność ekspozycji utrzymywano poprzez norma...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów do zgłoszenia.

Podziękowania

Prace te zostały wsparte przez Fundację Nauk Przyrodniczych prowincji Fujian w Chinach (Grant nr 2023J01170).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1% czterotlenku osmuTCI, ChinyO0308Do analizy po fiksacji w TEM tkanki jądrowej
10% neutralna formalina buforowanaSolarbio, ChinyPC0020Do utrwalania próbek tkanki jąder w barwieniu HE
2,5% glutaraldehyduSolarbio, ChinyG1102Do utrwalania próbek tkanki jąder w analizie TEM
75% etanoluAcros Organics, USA61509-0040Do oczyszczania wytrąconego RNA w RT - qPCR
Automatyczny obrazownik chemiluminescencjiBio-Rad, USAChemiDocWykorzystywany do automatycznego obrazowania sygnałów chemiluminescencyjnych w western blottingu.
Zestaw do testowania białka BCASolarbio, ChinyPC0020Do określenia całkowitego stężenia białka w analizie Western blot
Bufor blokującyNieokreślonaT7131AStosowane w analizie Western blot do eliminacji wiązań niespecyficznych
ChloroformAcros Organics, USA327270010Stosowane w separacji RNA podczas RT - qPCR
Connexin - 43Abcam, USAAB11370Wykrywa ekspresję i rozmieszczenie kluczowego białka barierowego krwi – jąder, aby pomóc ocenić integralność bariery
Zestaw ECLBiosharp, ChinyBL520BDo wizualizacji pasm białek w analizie zachodnich blotek
Zestawy ELISA (na testosteron, FSH, LH, E2)Abcam, Wielka Brytaniaab108666; ab108702; ab108651; ab108667Do wykrywania hormonów rozrodczych w surowicy
EosinSolarbio, ChinyG1002Stosowany w barwieniu tkanki jąder HE
Żywica epoksydowaSolarbio, ChinyGP2001Do osadzania próbek tkanki jąder w analizie TEM
GAPDHAbcam, USAab128915Ocenia apoptozę komórek jąder wywołaną przez PM2.5 i dostarcza morfologicznej podstawy do badania jej wpływu na apoptozę komórek jąder
HematoksylynaSolarbio, ChinyG1077Stosowany w barwieniu tkanki jąder HE
System obrazowaniaNikon, JaponiaNikon DS-U3Wykorzystywane do obrazowania próbek pod mikroskopem.
IzopropanolAcros Organics, USAAC447080025Stosowane w wytrącaniu RNA podczas RT - qPCR
JNK Abcam, USAab124956Analizuje molekularny mechanizm uszkodzenia jąder spowodowanego przez PM2.5 oraz identyfikuje typy komórek, w których jest aktywowany
  Czytnik mikropłytURZĄDZENIA MOLEKULARNE, USASpectraMax iD3Wykorzystywane do wykrywania sygnałów na mikropłytkach (np. absorpcja, fluorescencja).
OklumenynaAbcam, USAab31721Rozumie stopień uszkodzenia krwi i bariery jąder oraz bada interakcje między odpowiednimi białkami
Mikroskop optycznyChongqing Opto – Instrument elektroniczny, ChinyBDS200Wykorzystywany do ogólnej obserwacji mikroskopowej optycznej.
  Mikrotom patologicznyShanghai Kaiyu Instrument, ChinyRM2016Używany do cięcia fragmentów tkanek patologicznych.
Pentobarbital sodowySolarbio, ChinyG1102Stosowany do zastrzyków dootrzewnowych u szczurów przed pobraniem krwi
Standardowe materiały referencyjne PM2.5Narodowy Instytut Metrologii, ChinyGBW13643Dla ekspozycji na PM2.5 w grupie eksperymentalnej
Membrana poliwinylidendifluorku (PVDF)Thermo Fisher, USA88585Stosowane w analizie Western blot do transferu białek
Zestaw odczynników PrimeScript RTTAKARA, JaponiaRR037QDo syntezy cDNA w RT - qPCR
System PCR w czasie rzeczywistymRoche, SzwajcariaLightCycler 480Wykorzystywany do reakcji łańcuchowej polimerazy w czasie rzeczywistym do analizy ekspresji genów.
Bufor lizy RIPATAKARA, Japonia  RR9161Do ekstrakcji białek w analizie Western blot
ShakerThermo, USAMAXQ-4000Używany do wstrząsania próbek w eksperymentach.
SPSSIBM, USA28Do analizy danych
Sól fizjologiczna sterylnaSolarbio, ChinyS8160Stosowane w grupowym traktowaniu pojazdów
Zestaw TB Green Premix Ex Taq IITAKARA, JaponiaRR820SStosowane w RT - qPCR
Transmisyjny mikroskop elektronowy (TEM)Hitachi, JaponiaHT7800/HT7700Wykorzystywany do ultrastrukturalnej obserwacji na skali nano.
Odczynnik TrizolAmbion, Chiny15596018Do ekstrakcji całkowitego RNA w RT - qPCR
UltramikrotomLeica, NiemcyLeica UC7Używany do cięcia ultracienkich sekcji do TEM.
Uniwersalny System Transferu Białek / Maszyna Do Filtrowania Transferu BiałekBio-Rad, USATrans-Blot TurboWykorzystywany do transferu białka w western blottingu.
Pionowy mikroskop optycznyNikon, JaponiaNikon Eclipse E100Wykorzystywany do pionowej obserwacji optycznej mikroskopowej.
Octan uraniluMerck, Niemcy201030Do barwienia ultracienkich przekrojów w analizie TEM tkanki jąder

Bibliografia

  1. Li, F., et al. Environmental pollution and human fertility: investigating the relationship between PM2.5 exposure and assisted reproductive technology outcomes. BMC Public Health. 25 (1), 1357(2025).
  2. Hayes, R. B., et al. PM2.5 air pollution and cause-specific cardiovascular disease mortality. Int J Epidemiol. 49 (1), 25-35 (2020).
  3. Montano, L., et al. Air pollution and COVID-19: a possible dangerous synergy for male fertility. Int J Environ Res Public Health. 18 (1), 1-15 (2021).
  4. Nassan, F. L., et al. Residential distance to major roadways and semen quality, sperm DNA integrity, chromosomal disomy, and serum reproductive hormones among men attending a fertility clinic. Int J Hyg Environ Health. 221 (6), 830-837 (2018).
  5. Aliakbari, F., et al. A review of methods for preserving male fertility. Zygote. 30 (3), 289-297 (2022).
  6. Santi, D., et al. Seasonal variation of semen parameters correlates with environmental temperature and air pollution: a big data analysis over 6 years. Environ Pollut. 235 (1), 806-813 (2018).
  7. Gabrielsen, J. S., Tanrikut, C. Chronic exposures and male fertility: the impacts of environment, diet, and drug use on spermatogenesis. Andrology. 4 (4), 648-661 (2016).
  8. Wang, C., et al. Exposure to automobile exhaust-derived PM2.5 induces spermatogenesis dysfunction by damaging UPR(mt) of prepubertal rats. Ecotoxicol Environ Saf. 245 (1), 114087(2022).
  9. Lafuente, R., García-Blàquez, N., Jacquemin, B., Checa, M. A. Outdoor air pollution and sperm quality. Fertil Steril. 106 (4), 880-896 (2016).
  10. Li, D., et al. Multiple organ injury in male C57BL/6J mice exposed to ambient particulate matter in a real-ambient PM exposure system in Shijiazhuang, China. Environ Pollut. 248 (1), 874-887 (2019).
  11. Chen, T., Jia, G., Wei, Y., Li, J. Beijing ambient particle exposure accelerates atherosclerosis in ApoE knockout mice. Toxicol Lett. 223 (2), 146-153 (2013).
  12. Liu, F., Li, W., Pauluhn, J., Trübel, H., Wang, C. Lipopolysaccharide-induced acute lung injury in rats: comparative assessment of intratracheal instillation and aerosol inhalation. Toxicology. 304 (1), 158-166 (2013).
  13. Seo, Y., et al. Optimizing anesthesia and delivery approaches for dosing into lungs of mice. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 325 (3), L262-L269 (2023).
  14. Liu, B., et al. Spermatogenesis dysfunction induced by PM2.5 from automobile exhaust via the ROS-mediated MAPK signaling pathway. Ecotoxicol Environ Saf. 167 (1), 161-168 (2019).
  15. Fang, F., et al. Changes in the antioxidant level, cell cycle progression and apoptosis of testicular cells in rats with diet-induced impaired glucose regulation. Zhonghua Nan Ke Xue. 19 (5), 403-408 (2013).
  16. Zhou, L., et al. PM2.5 exposure impairs sperm quality through testicular damage dependent on NALP3 inflammasome and miR-183/96/182 cluster targeting FOXO1 in mouse. Ecotoxicol Environ Saf. 169 (1), 551-563 (2019).
  17. McCue, K., DeNicola, N. Environmental exposures in reproductive health. Obstet Gynecol Clin North Am. 46 (3), 455-468 (2019).
  18. Yang, R., et al. Chemical composition and transgenerational effects on Caenorhabditis elegans of seasonal fine particulate matter. Toxics. 11 (4), 1-12 (2023).
  19. Wong, E. W., Cheng, C. Y. Impacts of environmental toxicants on male reproductive dysfunction. Trends Pharmacol Sci. 32 (5), 290-299 (2011).
  20. Zheng, S., et al. Fine particulate matter (PM2.5) and the blood-testis barrier: an in vivo and in vitro mechanistic study. Environ Health Perspect. 133 (4), 47006(2025).
  21. Zhang, B. Y., et al. Schisandrin B alleviates testicular inflammation and Sertoli cell apoptosis via AR-JNK pathway. Sci Rep. 14 (1), 18418(2024).
  22. Allard, E. K., Boekelheide, K. Fate of germ cells in 2,5-hexanedione-induced testicular injury. II. Atrophy persists due to a reduced stem cell mass and ongoing apoptosis. Toxicol Appl Pharmacol. 137 (1), 149-156 (1996).
  23. Wei, X., et al. Inter- and trans-generational impacts of real-world PM2.5 exposure on male-specific primary hypogonadism. Cell Discov. 10 (1), 44(2024).
  24. Liu, J., et al. Maternal exposure to PM2.5 disrupting offspring spermatogenesis through induced Sertoli cells apoptosis via inhibin B hypermethylation in mice. Ecotoxicol Environ Saf. 241 (1), 113760(2022).
  25. Ren, L., et al. Maternal exposure to PM2.5 induces the testicular cell apoptosis in offspring triggered by the UPR-mediated JNK pathway. Toxicol Res (Camb). 11 (2), 226-234 (2022).
  26. Liu, J., et al. Fine particle matter disrupts the blood-testis barrier by activating TGF-beta3/p38 MAPK pathway and decreasing testosterone secretion in rat. Environ Toxicol. 33 (6), 711-719 (2018).
  27. Thangavel, P., Park, D., Lee, Y. C. Recent insights into particulate matter (PM2.5)-mediated toxicity in humans: an overview. Int J Environ Res Public Health. 19 (1), 1-20 (2022).
  28. Curbani, F., de Oliveira Busato, F., do Nascimento, M. M., Olivieri, D. N., Tadokoro, C. E. Inhale, exhale: why particulate matter exposure in animal models are so acute. Environ Pollut. 251 (1), 230-237 (2019).
  29. Mruk, D. D., Cheng, C. Y. The mammalian blood-testis barrier: its biology and regulation. Endocr Rev. 36 (5), 564-591 (2015).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Ekspozycja na PM25jakość plemnikówtoksyczność rozrodczamodel szczurzyapoptoza komórek linii zarodkowejcytokiny zapalnezaburzenia endokrynneścieżka JNK