Method Article

Ilościowa ocena potencjału usuwania węgla makroglonów: Ustandaryzowany protokół do szacowania biomasy i obliczania usuwania węgla

DOI:

10.3791/70068

April 3rd, 2026

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niniejsze badanie przedstawia ustandaryzowany, powtarzalny protokół szacowania biomasy makroalgów oraz obliczania jej potencjału usuwania węgla. Workflow harmonizuje pobieranie próbek, obliczanie i raportowanie, aby poprawić porównywalność w badaniach krzyżowych i jest wykazywany w reprezentatywnych społecznościach wodorostów i sargassumów w północnych i południowych Chinach.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Makroalgi są ważnym elementem systemów niebieskiego węgla. Jednak ich potencjał usuwania węgla pozostaje trudny do porównania w różnych badaniach, ponieważ projekty próbek terenowych, modele szacowania biomasy i procesy księgowe znacznie się różnią. Niniejsze badanie przedstawia ustandaryzowany i powtarzalny protokół szacowania biomasy makroalgów i ilościowego usuwania węgla, integrując cechy biologiczne makroglonów, metody badań ekologicznych morskiej oraz zasady rachunkowania cyklu węglowego w jednolity proces. Protokół określa spójne parametry próbkowania, zharmonizowane kroki obliczeniowe oraz standaryzowane rejestrowanie i raportowanie danych, aby poprawić porównywalność badań międzybadańskich i ułatwić syntezę regionalną. Wykazujemy zastosowanie protokołu, korzystając z reprezentatywnych studiów przypadków ze społeczności wodorostów w północnych Chinach oraz społeczności sargassuma zatocznej w południowych Chinach, reprezentujących kontrastujące taksony i typowe płytkie siedliska przybrzeżne. Stosując ten workflow, zmienność względna wewnątrz zespołu pozostała poniżej 10%, a błąd relatywny zespołu poniżej 15%, zgodnie z ustalonymi progami zmienności. Ogólnie protokół zapewnia operacyjnie przejrzyste ramy do generowania porównywalnych zbiorów danych o niebieskim węglu makroalgów na różnych stanowiskach i w zespołach badawczych, wspierając badania zasobów i oceny usuwania węgla.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Niebieski węgiel odnosi się do węgla wychwytywanego i magazynowanego w ekosystemach morskich. Charakteryzuje się długotrwałym magazynowaniem i wysoką efektywnością sekwestracji, co czyni go ważnym elementem globalnego cyklu węglowego oraz kluczowym naturalnym mechanizmem łagodzenia zmian klimatu1. W systemach niebieskiego węgla makroalgi są szeroko rozproszone w strefach przybrzeżnych, międzypływowych i podpływowych oraz wiążą atmosferyczneCO2 z węglem organicznym poprzez fotosyntezę. Część tej produkcji może być eksportowana do głębszych lub morskich wód, gdzie może przyczyniać się do długoterminowego magazynowania węgla, podczas gdy inna część pozostaje w biomasie2.

Jednak obecne oceny potencjału usuwania węgla przez makroalgony są nadal ograniczone przez ograniczoną standaryzację metodologiczną3. To ograniczenie odzwierciedla się głównie w trzech aspektach. Po pierwsze, metody szacowania biomasy różnią się znacząco w zależności od badań. Na przykład rozmiar kwadratu i wysiłek próbkowania różnią się bardzo (np. 0,25 m² do 4 m²), a w niektórych przypadkach replikacja nie jest wdrażana, co prowadzi do dużych wahań w szacunkach biomasy opartych na powierzchni. Po drugie, proces obliczeń niebieskiego węgla (lub usuwania węgla) i wybór parametrów są często niespójne, co prowadzi do rozbieżnych wyników rachunkowych nawet w podobnych warunkach ekologicznych. Po trzecie, nie istnieje jednolity protokół rejestrowania i raportowania danych, co zmniejsza porównywalność wyników badań i ogranicza syntezę regionalną4.

Dla makroalg konieczne jest podejście standaryzowane, ponieważ ich ścieżka usuwania węgla różni się od ścieżki ukorzenionych roślin przybrzeżnych, takich jak namorzyny i trawy morskie. Zamiast polegać głównie na zakopaniu osadów na miejscu wzrostu, usuwanie węgla z makroalgów jest ściślej powiązane z szybkim nagromadzeniem biomasy i eksportem materii organicznej za morze. Ten mechanizm, wraz z wysoką produktywnością i szybkim rotacją, sprawia, że spójność metodologiczna jest szczególnie istotna przy porównywaniu miejsc i gatunków w regionach5.

Aby wypełnić tę lukę, opracowujemy kompletny, ustandaryzowany protokół, który integruje cechy biologiczne makroalgów, metody badań ekologicznych morza oraz rozliczanie cyklu węglowego w jednolity przepływ pracy. Protokół jest zorganizowany w pięć modułów: (1) zasady projektowania i zakres zastosowań, (2) standaryzowane szacowanie biomasy, (3) ustandaryzowane obliczenia niebieskiego węgla, (4) kontrola jakości i zarządzanie danymi oraz (5) weryfikacja protokołu. Walidujemy zastosowalność, korzystając z reprezentatywnych studiów przypadków z północnej społeczności kelpowej i południowej społeczności sargassumów zatoki, ilustrując zastosowanie w gatunkach, cyklach życiowych i płytkich siedliskach przybrzeżnych6.

W tym badaniu pochłanianie węgla przez makroalgony określa się jako usuwanie węgla, a nie długoterminowe sekwestrowanie węgla. Ponieważ makroalgi zazwyczaj rosną na twardych podłożach bez bezpośredniego zakopania osadów na stanowisku, nie spełniają one z natury kryterium magazynowania >100 lat. Tylko część węgla pochodzącego z makroglonów może osiągnąć sekwestrację na skalę stulecia poprzez eksport i późniejsze zakopanie detrytu.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Użyj tego protokołu do generowania porównywalnych szacunków biomasy makroglonów i szacunków usuwania węgla na różnych miejscach i zespołach badawczych. Przegląd całego przepływu pracy przedstawiono na Rysunku 1.

1. Podstawy projektowania protokołów

  1. Zasady projektowania
    1. Dostosuj próbkowanie i szacowanie biomasy do cech biologicznych makroalg oraz lokalnego kontekstu ekologicznego (np. forma wzrostu, struktura wspólnoty oraz dynamika składników odżywczych i sezonowych), aby pomiary odzwierciedlały naturalną zmienność.
    2. Wybierz okno pobierania próbek tak, aby odpowiadało lokalnemu okresowi intensywnego wzrostu docelowych makroglonów i unikniał pobierania próbek podczas okresów spoczynku lub rozkładu.
    3. Określ zawartość węgla za pomocą zweryfikowanych metod analizy pierwiastkowej. Dokumentuj przygotowanie próbek, ustawienia analityczne i procedury kalibracyjne, a następnie konsekwentnie stosuj tę samą metodę we wszystkich próbkach7.
    4. Oszacuj tempo usuwania węgla za pomocą wcześniej zdefiniowanych ram obliczeniowych. Parametryzuj terminy związane z fotosyntezą, korzystając z lokalnie odpowiednich danych środowiskowych (np. czas trwania światła i temperatura wody) oraz źródeł danych fizjologicznych, jeśli to możliwe.
    5. Zapisz każdy krok jako jednoznaczną instrukcję operacyjną i określ kryteria akceptacji (progi QC) dla pomiarów terenowych i laboratoryjnych, aby zapewnić powtarzalność w różnych regionach i zespołach8.
    6. Używaj powszechnie dostępnego sprzętu laboratoryjnego i terenowego (np. wagi, suszarka, analizator pierwiastkowy, taśma miarska) i raportuj kluczowe specyfikacje (np. rozdzielczość wagi, temperatura suszenia).
    7. Usprawnić procedury bez usuwania wymagań kontroli jakości i priorytetyzować kroki, które istotnie wpływają na biomasę, zawartość dwutlenku węgla i wyniki obliczeniowe.
  2. Zakres zastosowań
    1. Stosuj ten protokół do przymocowanych i pływających makroglonów (np. wodorostów i sargassum).
    2. Nie stosuj tego protokołu wobec mikroalg ani alg planktonowych.
    3. Ogranicz zastosowanie do płytkich wód przybrzeżnych (np. obszary przybrzeżne, zatoki i strefy międzypływowe), gdzie pobieranie próbek jest operacyjnie wykonalne. Ustal docelową granicę głębokości na <20 m dla rutynowych operacji pobierania próbek.
    4. Nie stosuj tego protokołu do głębokomorskich społeczności makroalgowych, gdzie warunki pobierania próbek i wymagania sprzętowe przekraczają konwencjonalne możliwości badawcze9.

2. Ustandaryzowany proces szacowania biomasy

  1. Przygotowanie wstępne
    1. Określaj okresy pobierania próbek na podstawie lokalnych warunków środowiskowych i fenologii specyficznej dla gatunku, a nie miesięcy kalendarzowych.
    2. Zdefiniuj "okres intensywnego wzrostu" jako okres maksymalnego nagromadzenia biomasy i aktywności fotosyntezycznej, na podstawie lokalnych obserwacji lub dowodów regionalnych.
    3. Wybierz czas próbki, korzystając z informacji fenologicznych specyficznych dla konkretnego miejsca w układach niskich i wysokich szerokości geograficznych. Dokumentuj podstawy wyboru czasu (np. lokalne rejestry monitoringu lub badania regionalne)10.
  2. Ustawianie kwadratów i próbkowanie
    1. Umieść ramę kwadratową stabilnie na podłożu w każdym punkcie próbkowania (Rysunek 2). Upewnij się, że różnica wysokości pionowej w ramce wynosi <5 cm (sprawdź za pomocą linijki lub stałego odniesienia).
    2. Wybierz miejsca pobierania próbek, aby odzwierciedlić przestrzenną heterogeniczność społeczności makroglonów w obrębie obszaru badanego. W strefach międzypływowych umieść kwadraty w ciągu 1 godziny po odpływie, aby zminimalizować wysychanie i wpływ związany z ekspozycją powietrza na biomasę i pomiary węgla.
    3. Ustal co najmniej 3-5 stanowisk (lub bloków) na obszar badania, w zależności od zakresu siedlisk i heterogeniczności. Na każdym stanowisku należy próbkować 3 kwadraty (minimalna suma: 9-15 kwadratów na obszar badania).
    4. Ustalić powierzchnię kwadratową zgodnie z morfologią gatunku i formą wzrostu (np. 1 m² dla społeczności zdominowanych przez wodorosty; 2 m² dla pływających lub rzadko rozmieszczonych makroalgów)11.
    5. Przeprowadź wstępną kontrolę zmienności, używając pierwszych trzech kwadratów na każdym stanowisku. Jeśli współczynnik zmienności (CV) suchej biomasy na jednostkę powierzchni przekracza 10%, dodaj kwadraty, aż CV spadnie do ≤10%. Kluczowe standaryzowane parametry próbkowania i progi akceptacji są podsumowane w Tabeli 1.
    6. Pobrane próbki umieszczaj na lodzie zaraz po zbiorach. Utrzymuj temperaturę transportu na poziomie 5-10 °C, aby ograniczyć degradację termiczną.
    7. Dostarczaj próbki do laboratorium w ciągu 24 godzin po pobraniu. Jeśli transport przekracza 24 godziny, utrzymuj próbki w miejscu dopasowania zasolenia wody morskiej i regularnie monitoruj stan próbek.
  3. Pomiar parametrów biomasy
    1. Pomiar masy na świeżym
      1. Wyjmij próbki z worków i delikatnie spłukuj wodą dejonizowaną 2-3 razy, aby usunąć przylegające osady i sole. Ogranicz całkowity czas płukania do ≤30 s, aby zmniejszyć utratę wody w tkankach. Regularnie zbieraj biomasę z każdego kwadratu (w tym uchwytów, spiców i ostrzy, chyba że projekt badania wymaga inaczej).
      2. Osusz wilgoć powierzchniową za pomocą chłonnego papieru. Wymień papier 2-3 razy, aż na powierzchni próbki nie pozostanie widoczna woda.
      3. Włóż próbkę do wcześniej zważonego pojemnika (np. zlewki lub szalki Petriego). Waż za pomocą wagi elektronicznej z precyzją ≥0,01 g. Po stabilizacji zapisz masę brutto i oblicz masę świeżą netto (g), odejmując masę pojemnika.
      4. Waż każdą próbkę trzy razy z rzędu. Użyj średniej jako ostatecznej świeżej masy. Jeśli dowolne dwa odczyty różnią się o >2%, sprawdź stan próbki (np. kapiąca woda lub niestabilne położenie) i powtarzaj ważenie, aż spełniono kryterium.
    2. Pomiar masy suchej
      1. Po pomiarze świeżej masy losowo wybierz trzy reprezentatywne podpróbki z każdej próbki kwadratowej. Upewnij się, że każda podpróbka waży >10 g. Susz podpróbki w temperaturze 60 °C. Po każdym okresie suszenia schładz podpróbki do temperatury pokojowej w osuszaczu przed ważeniem.
      2. Pozostałe materiały przechowuj do analizy zawartości węgla. Jeśli analiza odbędzie się w ciągu 24 godzin, przechowuj w lodówce w 4-10 °C w szczelnych, oznakowanych pojemnikach i trzymaj próbki w ciemności. Dla dłuższego przechowywania mroź w temperaturze −20 °C.
      3. Kontynuuj suszenie aż do osiągnięcia stałej masy. Zdefiniuj stałą masę jako różnicę ≤0,05 g między dwoma kolejnymi pomiarami. Zapisz masę suchą podpróbki (g).
      4. Oblicz stosunek suchych do świeżych (Rdf) jako (sucha masa) / (świeża masa) dla każdej podpróbki. Jeśli CV Rdf wynosi ≤5%, użyj średniej Rdf , aby przeliczyć całkowitą masę świeżą na całkowitą masę suchą dla danego kwadratu. Jeśli CV przekracza 5%, zwiększ liczbę podpróby do pięciu i oszacuj ponownie Rdf.
    3. Pomiar wysokości i pokrycia instalacji
      1. Losowo wybierz 10 reprezentatywnych osobników (sporofity/liście) w każdym kwadracie. Zmierz wysokość talusa (cm) od punktu przymocowania do najwyższej nienaruszonej żywej tkanki (z wyłączeniem złamanych/erodowanych końcówek). Zapisz wysokość osobników i oblicz średnią wysokość kwadratu (Havg).
      2. Dla skupistych glonów wybierz 3-5 skupisk, zmierz średnią wysokość na skupisko i oblicz ogólną liczbę Havg.
      3. Zmierz pokrycie metodą siatki. Podziel kwadrat na 100 równych siatek (10 cm × 10 cm).
      4. Policz liczbę siatek, w których pokrycie glonami przekracza 50% (N). Oblicz pokrycie jako C (%) = (N/100) × 100 i raportuj do jednego miejsca po przecinku21. Gdzie N to liczba siatek na 100.
  4. Model obliczeń biomasy
    1. Obliczanie biomasy na jednostkę powierzchni: Wszystkie równania, zmienne i jednostki raportujące używane w procesie obliczeń biomasy są podsumowane w Tabeli 2.
      1. Oblicz masę świeżą na jednostkę powierzchni (FWper, g/m2): figure-protocol-1 (1)
      2. Oblicz masę suchą na jednostkę powierzchni (DWna g/m2): figure-protocol-2 (2)
        Gdzie A to powierzchnia kwadratu (m2), FWtot to całkowita świeża masa kwadratu (g).
        UWAGA: Jeśli w punkcie próbkowania istnieje wiele replikacji, oblicz FWna każde replikowanie i DWna każde powtórzenie i podaj średnią jako wartość punktu próbkowania
    2. Szacowanie biomasy populacji
      1. Określ obszar rozmieszczenia populacji (S, m2). Jeśli dostępne są obrazy zdalnodetekcyjne, połącz pomiary terenowe z obrazami zdalnego wykrywania, aby uzyskać współrzędne graniczne, wyznaczyć granicę populacji w oprogramowaniu GIS i odpowiednio obliczyć S12. Jeśli obrazy zdalnego wykrywania nie są dostępne, zmierz długość i szerokość populacji taśmą mierniczą. Oszacuj S za pomocą wzoru na prostokątny obszar i podziel nieregularne obszary na wiele prostokątów do osobnych obliczeń przed sumowaniem w celu uzyskania całkowitej wartości S.
      2. Oblicz całkowitą biomasę populacji (B, t): figure-protocol-3 (3)
        Gdzie 106 przelicza gramy na tony metryczne. (t; 1 t = 103 kg).
      3. Jeśli biomasa różni się w poszczególnych podregionach populacji (np. obszary marginalne i rdzeniowe), oblicz DWna każdą partię osobno, pomnóż przez powierzchnię każdej partii i zsumuj wyniki, aby uzyskać B.
    3. Dynamiczne obliczanie biomasy
      1. Oblicz tempo wzrostu (r, dzień 1):figure-protocol-4 (4)
        GdzieDW end to sucha masa na jednostkę powierzchni na koniec okresu (g/m²),DW start to sucha masa na jednostkę powierzchni na początku okresu (g/m²), a t to czas wzrostu (dni).
      2. Oblicz średnią roczną biomasę (DWavg_year, g/m2) jako średnią DWi ze wszystkich zdarzeń pobierania próbek w ciągu jednego roku:
        figure-protocol-5   (5)
        Gdzie n to liczba próbek na rok (bezwymiarowa), odnosząca się do całkowitej liczby niezależnych zdarzeń próbkowania przeprowadzonych w ciągu jednego roku (np. sezonowych lub miesięcznych badań), i to indeks reprezentujący każdy czas próbki w ciągu roku używany do obliczenia rocznej średniej biomasy, a DWi to sucha masa na jednostkę powierzchni i-tego zdarzenia próbkowania (g/m²).

3. Ustandaryzowany proces obliczania niebieskiego węgla

  1. Określenie zawartości dwutlenku węgla
    1. Suszone próbki, które osiągnęły już stałą wagę (czyli zarezerwowany materiał do analizy zawartości węgla), należy umieścić w kruszarce i mielić przez 2-3 minuty, aby ujednolicić materiał. Użyj mechanicznego młynka lub moździerza, aby uzyskać jednolite cząstki odpowiednie do analizy węgla.
    2. Przesij ujednolicony materiał przez sito o średnicy 100 metek (apertura ≈150 μm). Zbierz frakcję podsiedza i przelej ją do wcześniej ponumerowanych, wcześniej wysuszonych fiolek.
    3. Przechowuj próbki wstępnie obrobione w osuszaczu, aby zminimalizować pobieranie wilgoci. Zakończ pomiar zawartości węgla w ciągu 7 dni.
    4. Sprawdź obecność wilgoci podczas przechowywania i w razie potrzeby stosuj korekcję suchej masy. Waż aliquot przechowywanej próbki wstępnie obrobionej jakom wcześniej, następnie ponownie susz aliquot w piekarni w temperaturze 60 °C do stałej masy i waż jako mpo tym.
    5. Oblicz tempo pobierania wilgoci (MR, %) jako: figure-protocol-6 (6)
      Raportując zawartość dwutlenku węgla, wyrażaj wartości na zasadzie prawdziwej suchej masy za pomocą MR, gdy pobieranie wilgoci jest niepomijalne.
  2. Metoda benchmark: analiza elementarna
    1. Przed określeniem próbki skalibruj analizator pierwiastkowy na podstawie certyfikowanego materiału referencyjnego. Upewnij się, że błąd kalibracyjny wynosi <0,5%.
    2. Ustaw warunki pracy: temperatura spalania 950 °C, temperatura redukcji 650 °C oraz przepływ gazu nośnego 200 mL/min.
    3. Waż 5-10 mg wcześniej przetworzonej próbki do wcześniej zważonej kapsułki cynej, następnie złóż i zagęszczaj kapsułkę, aby zapobiec wycieku podczas spalania.
    4. Załaduj kapsułę do analizatora pierwiastkowego i pozwól instrumentowi automatycznie zakończyć spalanie, redukcję, separację i wykrywanie.
    5. Powtórz to określenie trzy razy dla każdej próbki. Użyj wartości średniej jako końcowej zawartości węgla (C, %)
      figure-protocol-7   (7)
      Gdzie mC to masa węgla w próbce (mg), mpróbki to całkowita masa analizowanej próbki (mg).
    6. Jeśli względne odchylenie standardowe (RSD, %) trzech pomiarów przekracza 1%, ponownie mierz, aż spełnione zostaną kryteria akceptacji. Oblicz RSD jako:
      figure-protocol-8   (8)
      Gdzie SD to odchylenie standardowe trzech miar C, a C̄ to ich średnia.
  3. Alternatywna metoda: Palenie (strata przy zapłonie)
    1. Stosuj tę metodę tylko wtedy, gdy analizator pierwiastkowy jest niedostępny. Wyraźnie zaznacz tę metodę w raporcie i zastosuj procedurę korekty opisaną w 3.3.5.
    2. Włóż 5-10 g wcześniej przetworzonej wysuszonej próbki do tygla. Wysusz w temperaturze 60 °C do stałej masy, następnie spal w piecu tłumiczym w 550 °C przez 4-6 godzin. Schłodzić w osuszaczu i zważyć resztki.
    3. Oblicz C (%) jako: figure-protocol-9 (9)
      Gdzie m0 to sucha masa próbki przed spaleniem (mg),m popiół to masa pozostałości po spaleniu (mg).
    4. Dla każdej partii określ C dla 3-5 reprezentatywnych próbek za pomocą analizy pierwiastkowej. Dopasuj równanie korekcyjne między C pochodzącym ze spalania a C z analizy pierwiastkowej i zastosuj równanie korekcyjne do wszystkich wyników uzyskanych ze spalania z tej samej partii.

4. Obliczanie tempa usuwania węgla

  1. Tempo usuwania węgla oparte na tempie wzrostu
    1. Oblicz tempo usuwania węgla (CR, g C m-2 d-1): figure-protocol-10 (10)
      Gdzie ΔDW to wzrost biomasy na jednostkę powierzchni (DWend−DWstart, g m⁻²). C to zawartość węgla (w systemie dziesiętnym, np. 35,2% = 0,352), t to czas wzrostu (dni).
      UWAGA: Użyj tych samych węzłów czasu startu i końca, co DWstart iDW end , aby zdefiniować t oraz zapisać daty próbkowania i długość interwału dla reprodukcji.
  2. Szybkość usuwania węgla oparta na wydajności podstawowej (metoda jasno-ciemna butelka)
    1. Przygotuj parowane butelki inkubacyjne (jasne i ciemne). Przepłucz butelki trzy razy wodą morską na miejscu, następnie napełnij je wodą morską na miejscu, minimalizuj przestrzeń nad wodą i etykietuj butelki wcześniej.
    2. Umieść reprezentatywny materiał makroalgowy w każdej butelce. Użyj ilości biomasy, która zapobiega zagęszczeniu i pozwala glonom zachować naturalną orientację podczas inkubacji.
    3. Skalibruj miernik tlenu rozpuszczonego (DO) zgodnie z instrukcjami producenta, używając wody nasyconej powietrzem jako punktu wyjścia. Potwierdź, że błąd pomiarowy wynosi ≤0,1 mg L⁻¹.
    4. Zmierz początkową DO w lekkiej i ciemnej butelce i zapisz wartości (DO₀, białe i DO₀, czarne, mg L⁻¹).
    5. Inkubuj butelki przez 24 godziny w warunkach niemal naturalnych i świetlnych w miejscu pobierania próbek. Podczas inkubacji utrzymuj butelki w niezakłóconym i unikaj przegrzania spowodowanego bezpośrednią ekspozycją na słońce lub artefaktami zacieniającymi.
    6. Zmierz ostateczny DO w lekkiej i ciemnej butelce (DO₁, biała i DO1, , mg L⁻¹).
    7. Oblicz zmiany DO jako: figure-protocol-11 (11)
      figure-protocol-12   (12)
    8. Oblicz netto produkcję tlenu jako: figure-protocol-13 (13)
      Gdzie V to objętość wody morskiej (L).
    9. Przekształc produkcję tlenu w wiązanie węgla (fiksacja C, mg C): figure-protocol-14 (14)
      Gdy Onetto to produkcja netto tlenu (mgO2), współczynnik 0,375 to (1mg 02 odpowiada 0,375 mg C stałemu)
    10. Oblicz tempo usuwania węgla na podstawie pierwotnej produktywności (produktywność CR, g C m⁻² d⁻¹) jako:
      figure-protocol-15   (15)
      gdzie 1000 przelicza mg na g, A to pole próbki (projekcyjne) (m²), a t to czas inkubacji (dni).
      UWAGA: Podczas inkubacji upewnij się, że glony pozostają w stanie naturalnym i unikaj zakłóceń fizycznych. Rejestruj temperaturę wody morskiej oraz przybliżone warunki świetlne podczas inkubacji, aby raportować spójność.
  3. Całkowanie i korekta obu metod
    1. Oblicz średni CR jako: figure-protocol-16 (16)
    2. Oblicz błąd względny (RE) jako: figure-protocol-17 (17)
      UWAGA: Jeśli RE < 10%, użyj CRavg jako końcowego CR. Jeśli RE ≥10%, zweryfikuj węzły czasowe i spójność operacyjną (np. dopasowanie definicji interwału wzrostu, czasu inkubacji i oszacowania powierzchni próbki) i powtórz kroki pomiaru lub obliczeń, które najbardziej przyczyniają się do rozbieżności.
    3. Oblicz skorygowany CR (CR corr, g C m⁻² d⁻¹) jako: figure-protocol-18 (18)
      GdzieCR to mierzona szybkość usuwania węgla (g C m⁻² d⁻¹),światło T to mierzony czas trwania światła (h).T light_stand to standardowy czas trwania światła (h).

5. Przekształcenie magazynowania węgla i strumienia węgla

  1. Oblicz magazynowanie węgla (magazyn C, t C): figure-protocol-19 (19)
    Gdzie Bavg_year to średnia roczna biomasa populacji (t), a C to zawartość węgla (dziesiętna)
  2. Zdefiniuj roczny strumień węgla (Fc, t C rok-1) jako skorygowany długoterminowy pochłaniacz węgla (CSlong_corr):
    figure-protocol-20   (20)
  3. Przekształć Fc na równoważny CO2 : figure-protocol-21 (21)
    gdzie 1 t C = 3,67 tCO2. Zależności między magazynowaniem węgla, tempem usuwania węgla, metrykami pochłaniania węgla oraz konwersjami strumienia stosowanymi w tym protokole są podsumowane na Rysunku 3.

6. System kontroli jakości

  1. Kontrola jakości na etapie próbkowania
    1. Zapewnienie jednolitego szkolenia dla personelu pobierającego próbki, aby zapewnić ustandaryzowane operacje dotyczące ustawienia kwadratów, pobierania próbek i rejestracji parametrów (patrz Tabela 1).
    2. Przeprowadzenie oceny po szkoleniu. Wymaganie, aby błąd układu kwadratowego wynosił <5%, a błąd pomiaru świeżej wagi <2%. Umożliwienie personelowi udziału w próbkowaniu terenowym dopiero po jego zdaniu oceny.
    3. Kalibruj wagi elektroniczne przy użyciu standardowych wag (np. 100 g lub 500 g) przed każdą sesją próbkowania. Zapisz wyniki kalibracji w tabeli kalibracyjnej instrumentów. Ponownie skalibruj wagę, jeśli zostanie przesunięta podczas pobierania próbek.
    4. Skalibruj lokalizatory GPS w miejscu o znanych współrzędnych przed pobraniem próbki. Upewnij się, że błąd pozycjonowania wynosi <5 m. Jeśli pomiary są wykonywane w warunkach zacienienia lub słabego sygnału, zapisz odchylenie i popraw współrzędne podczas przetwarzania danych13.
    5. Codziennie kalibruj termometry wodne i mierniki zasolenia, stosując standardowe roztwory. Upewnij się, że błąd kalibracji temperatury wody wynosi <0,2 °C, a błąd kalibracji zasolenia <0,2.
    6. Mierz temperaturę i zasolenie wody w wodzie morskiej w każdym miejscu pobierania próbek w momencie pobierania i zapisuj wartości w bazie danych.
    7. Ustaw trzy kwadraty replikacyjne dla każdego punktu próbkowania. Jeśli współczynnik zmienności DWna pomiędzy tymi trzema kwadratami przekracza 10%, dodaj jeszcze dwa kwadraty replikacyjne i powtarzaj do momentu, gdy współczynnik zmienności wynosi <10%.
    8. Wszystkie pobrane próbki należy przechowywać w warunkach chłodzonych (5-10 °C) do czasu zakończenia procesu laboratoryjnego, aby umożliwić dodatkowe powtarzalne określenie w razie potrzeby.
    9. Ustaw trzy równoległe określenia dla masy świeżej, masy suchej i zawartości węgla dla każdej próbki kwadratowej. Wymagaj, aby względne odchylenie standardowe wynosiło <5% i powtórz wyznaczenie, jeśli kryterium nie zostanie spełnione.
  2. Kontrola jakości na etapie analizy eksperymentalnej
    1. Przeprowadz wstępne przygotowanie i analizę próbek w czystym środowisku laboratoryjnym, aby zminimalizować zanieczyszczenie pyłem i odczynnikami organicznymi.
    2. Codziennie wycieraj i dezynfekuj powierzchnie eksperymentalne alkoholem oraz susz lub sterylizuj sprzęt wielokrotnego użytku z wyprzedzeniem14.
    3. Przed każdym użyciem sprawdź ciśnienie gazu nośnego w analizatorze elementarnym i upewnij się, że przekracza ono 0,5 MPa. Rozpocznij pomiar tylko wtedy, gdy wahania temperatury w piecu spalającym wynoszą <5 °C.
    4. Oczyść rurę spalania po zakończeniu każdej partii pomiarów i po ostygnięciu pieca do bezpiecznej temperatury roboczej, aby zminimalizować zanieczyszczenie próbką krzyżową15.
    5. Zero wag elektronicznych przed użyciem. Mierz masę świeżą i suchą trzy razy. Wymaga, aby względne odchylenie standardowe wynosiło ≤2% dla masy świeżej i ≤5% dla masy suchej. Określ zawartość węgla co najmniej trzykrotnie na próbkę i zastosuj kryterium akceptacji określone w Sekcji 3 (określenie zawartości węgla).
    6. Wykonaj inkubacje pierwotnej produktywności co najmniej w duplikatach na miejsce i powtarzaj inkubacje, gdy progi błędu pomiaru zostaną przekroczone.
  3. Przegląd danych
    1. Przydziel dwóch recenzentów do audytu danych eksperymentalnych. Wymagaj od pierwszego recenzenta sprawdzenia kompletności oryginalnych zapisów (metadane próbkowe, parametry instrumentów i wyniki pomiarów).
    2. Wymagaj od drugiego recenzenta sprawdzania dokładności obliczeń (np. Rdf, DWper, CR i kolejne konwersje).
    3. Dokumentuj problemy wykryte podczas audytu i wdrażaj ponowne pomiary lub ponowne obliczenia, gdy jest to konieczne.
    4. Zapisuj dzienniki kalibracji instrumentów, względne odchylenia standardowe równoległych określeń oraz notatki dotyczące obsługi nieprawidłowych danych jako dowód QC i łącz te rekordy QC z każdą partią próbkowania w bazie16.

7. Zarządzanie danymi

  1. Ustal ustandaryzowany szablon bazy danych przed pracą terenową i używaj tego samego szablonu w różnych lokalizacjach i zespołach.
  2. Zapisz informacje o próbkowaniu próbek, w tym nazwę obszaru badań, numer bloku, współrzędne GPS punktów pobierania, datę pobierania, personel pobierania oraz warunki pogodowe.
  3. Rejestruj parametry środowiskowe, takie jak temperatura wody, zasolenie, głębokość wody, czas trwania światła (światło T) oraz stężenie rozpuszczonego tlenu, jeśli jest dostępne.
  4. Rejestruj dane biomasy, w tym powierzchnię kwadratową (A), masę świeżą kwadratu (FWtot), suchą masę kwadratową (DWtot), stosunek sucho-suchy (Rdf), biomasę na jednostkę powierzchni (DWna powierzchnię), powierzchnię rozkładu populacji (S) oraz całkowitą biomasę populacji (B).
  5. Zapisz niebieskie wskaźniki węgla, w tym zawartość węgla (C), tempo usuwania węgla (CR), krótkoterminowe pochłaniacze węgla (CSkrótkie), skorygowane długoterminowe pochłaniacze dwutlenku węgla (CSlong_corr), magazynowanie węgla (magazyn C) oraz strumień węgla (Fc).
  6. Zapisz dane kontroli jakości, w tym rekordy kalibracji instrumentów, względne odchylenia standardowe równoległych określeń oraz instrukcje dotyczące nieprawidłowego przetwarzania danych16.
  7. Regularnie dokumentuj etykiety etapów wzrostu (np. okres intensywnego vs. nieintensywnego) i zapisuj miesiąc/rok dla każdej kampanii próbkowej.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Przypadek 1: Ocena potencjału usuwania węgla populacji wodorostów na północnym morzu

Obszar badań i okresy pobierania próbek: Pobieranie próbek terenowych przeprowadzono na obszarze akwakultury wodorostów na morzu w Qingdao, prowincja Shandong (głębokość wody: 5-8 m). Pomiary zebrano w okresie intensywnego wzrostu (maj 2022) oraz okresie bez intensywnego wzrostu (listopad 2022).

Układ próbko...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Główną zaletą tego protokołu jest bezpośrednie uwzględnienie zmienności metodologicznej w istniejących ocenach potencjału usuwania węgla z makroalgów. W praktyce różnice w specyfikacjach kwadratowych, podejściach pomiarowych i modelach obliczeniowych mogą prowadzić do szacunków pochłaniaczy dwukrotnych do trzech nawet w obrębie tego samego systemu przybrzeżnego17. Poprzez standaryzację sekwencji operacyjnej, definicji parametrów i logiki obliczeniowej, protokół poprawia porównywalność między lokal...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów do zgłoszenia.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Prace te zostały wsparte przez badania nad technologią innowacji przemysłowych dla nowoczesnego morskiego hodowli Morskiej Guangdong (2024-MRI-001), Projekt Nauki i Technologii miasta Shantou, prowincja Guangdong (STKJ2025010, STKJ2025037) oraz Fundację Prowincjonalnego Laboratorium Biotechnologii Morskiej Prowincji Guangdong (GPKLMB201901). Dziękujemy Centrum Morskim Zhuhai oraz Uniwersytetowi Shantou za zapewnienie zaplecza badawczego. Szczególne podziękowania dla zespołów terenowych z Qingdao i Xiamen za zbieranie danych oraz analityków laboratoryjnych za pomiary zawartości węgla. Dziękujemy również współtwórcom danych teledetekcji oraz wsparciu technicznego GIS.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Waga elektronicznaMETTLER TOLEDOML204TDo ważenia próbek
Analizator pierwiastkowyThermo FisherFlashSmartDo analizy zawartości węgla
PiekarnikMemmertUN55Do suszenia próbek
Urządzenie GPSGarminGPSMAP 65Dla lokalizacji nagrań
Miernik tlenu rozpuszczonegoYSIProODODo pomiaru poziomu DO

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ni, Z. J., Zhang, Y. S., Chu, H. Y., Li, B., Zhang, M. L., Sun, Y. Q., Hu, S. X. Synergetic effect of light and nutrients on the release of dissolved organic carbon from juveniles of Saccharina japonica. Acta Hydrobiol. Sin. 46 (12), 1909-1915 (2022).
  2. Stauber, J. L., Adams, M. S., Batley, G. E., Golding, L. A., Hargreaves, I., Peeters, L., Reichelt-Brushett, A. J., Simpson, S. L. A generic environmental risk assessment framework for deep-sea tailings placement. Sci. Total Environ. 845, 157311(2022).
  3. Xiang, C., Zhong, Y., Li, G., Song, X., Huang, Y. Planktonic carbon metabolism of an underwater coral atoll in the oligotrophic sea: a case study of Zhongsha Atoll, Central South China. Front. Mar. Sci. 10, 100123(2023).
  4. Xu, H., Pang, T., Zhang, L., Liu, J. Photosynthetic performance of the red algae Gracilariopsis lemaneiformis under high seawater pH: Excess reactive oxygen production due to carbon limitation. Photochem. Photobiol. 101 (2), 254-262 (2025).
  5. Zhang, D., Sun, J. Z., Fu, M. H., Li, C. J. Photosynthetic performance and antioxidant activity of Gracilariopsis lemaneiformis under phosphorus deficiency at elevated temperatures. Front. Mar. Sci. 11, 999999(2024).
  6. Zhang, Z., et al. Assessment and spatial pattern of carbon sequestration potential of mariculture in Sansha Bay. Ocean Coast. Manag. 220, 106001(2024).
  7. Liu, B., Wang, L., Wang, R., Zhou, Z., Peng, C. Effects of desiccation-rewetting cycles on the carbon sequestration capacity of Ulva pertusa. J. Ocean Univ. China. 24 (1), 45-55 (2025).
  8. Liu, Z., Liang, G., Wang, H., Zhang, Y., Li, J. Carbon sink and environmental benefit analysis of seaweed cultivation in China. Chin. J. Eco-Agric. 32 (4), 789-798 (2024).
  9. Xie, Y., Su, J., Shao, K., Fan, J. Research progress of carbon sink measurement and assessment methods for marine fisheries. Hebei Fish. 45 (3), 23-31 (2023).
  10. Xu, T. Toxic effects of copper pollution on three macroalgae under ocean acidification. [PhD thesis]. , Jiangsu Ocean University. (2022).
  11. Wu, S. Research on model and application of coastal ecosystem service value evaluation. [Master's thesis]. , Dalian Ocean University. (2022).
  12. Hu, T., Su, J., Shao, K., Fan, J. Research progress on carbon sequestration processes, mechanisms, and sequestration modes of shellfish and algae culture. Fish. Sci. Technol. Inf. 51 (6), 102-110 (2024).
  13. Song, S., et al. Research on the collaborative development path of marine carbon sinks and marine energy. J. Mar. Inf. Technol. Appl. 19 (2), 12-21 (2023).
  14. Liu, H., Liu, H., Wang, Q., Xi, F., Yin, Y. Accounting of marine ecosystem gross ecosystem product (GEP): A case study of Fuzhou City. Ecol. Econ. 242, 107406(2024).
  15. Xie, Y., Su, J., Shao, K., Hu, T., Ming, H., et al. Long-term response of microbial communities to the degradation of DOC released from Undaria pinnatifida. Mar. Environ. Res. 192, 105852(2024).
  16. Luo, H. Photosynthetic physiology of Enhalus acoroides. and carbon sequestration rate and storage of its seagrass bed. [Master's thesis]. , Hainan Tropical Ocean University. (2024).
  17. Tian, K., et al. Community structure of macroalgae and estimation of biological carbon sequestration in mussel farming areas of Gouqi Island J. Zhejiang Ocean Univ. 44 (1), 33-41 (2024).
  18. Tao, X. Photosynthetic carbon sequestration capacity of macroalgae and their physiological responses to coupled acidification and temperature. [Master's thesis]. , Shanghai Ocean University. (2024).
  19. Min, Z., Wang, K., Wang, H., Fu, W., Wu, B. Advances in carbon sequestration technology using marine microalgae. Mar. Biol. Res. 20 (4), 456-470 (2024).
  20. Ying, M., Quan, W., Wang, T., Zhang, P., Kang, H. Research and application of carbon sequestration enhancement technology for large phytoplankton in Zhejiang's shallow seas. [Master's thesis]. , Wenzhou Vocational College of Science and Technology. (2022).
  21. Wernberg, T., Filbee-Dexter, K., de Bettignies, T., Leclerc, J. C., Davoult, D., et al. Smaller plants in warmer water could have implications for future kelp forests. Sci. Rep. 15, 9300(2025).
  22. Pedersen, M. F., Filbee-Dexter, K., Frisk, N. L., Sárossy, Z., Wernberg, T. Carbon sequestration potential increased by incomplete anaerobic decomposition of kelp detritus. Mar. Ecol. Prog. Ser. 663, 143-156 (2021).
  23. Smale, D. A., King, N., Pessarrodona, A., Burrows, M. T., Moore, P. J. Intra- and inter-decadal scale variability in kelp population structure reveals both stability and decline in a critical foundation species. Divers. Distrib. 31 (4), 554-567 (2025).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Macroalgae Carbon RemovalBiomass EstimationStandardized ProtocolBlue CarbonCarbon Removal CalculationMarine Ecological SurveyCarbon Cycle AccountingKelp CommunitySargassum CommunityCoastal Habitats

Related Articles