Wielomodalna diagnostyka i leczenie gruźlicy żołądka: opis przypadku

Podsumowanie

Niniejszy opis przypadku przedstawia etapowy wielomodalny przepływ diagnostyczny gruźlicy żołądka, integrując gastroskopię, obrazowanie przekrojowe poprzeczne, endoskopowe USG, histopatologię oraz badania molekularne w celu potwierdzenia infekcji, gdy biopsje powierzchowne nie są diagnostyczne.

Streszczenie

Gruźlica żołądka jest wyjątkowo rzadką formą gruźlicy pozapłucnej, często objawiając się niespecyficznymi objawami i endoskopowymi wyglądami, często przypominając guzy podśluzowe, owrzodzenia lub nowotwory. Te nakładania się, wraz z ograniczonym wynikiem biopsji powierzchownych, mogą opóźnić ostateczną diagnozę. Naukowcy opisują przypadek gruźlicy żołądka i podkreślają metodologiczną zaletę multimodalnej strategii diagnostycznej integrującej endoskopię, obrazowanie przekrojowe poprzeczne, histologię oraz badania molekularne, aby stopniowo zawęzić niepewność diagnostyczną. Gastroskopia wykazała miejscową zmianę żołądka, natomiast obrazowanie doprowadziło do komplementarnej charakterystyki zmian i sugerowało możliwe wystąpienie pozabrzuszkowe, co skłoniło do dalszej oceny pod kątem infekcji ziarniniacznej. Powtarzane próbki endoskopowe nie ustaliły diagnozy, dlatego wykonano laparoskopową częściową gastrektomię, aby uzyskać odpowiednią ilość głębokich tkanek do kompleksowej oceny. Badanie histopatologiczne wykazało zapalenie ziarniniastego z martwicą kazuzową, a badania molekularne potwierdziły zakażenie kompleksem Mycobacterium tuberculosis , potwierdzając gruźlicę żołądka. Przebieg pooperacyjny przebiegł bez komplikacji, a pacjent otrzymał standardową terapię przeciwgruźlicową. Objawy ustąpiły i nie zaobserwowano nawrotu podczas długoterminowej kontroli. Ten przypadek podkreśla praktyczne wyzwania diagnostyczne i oferuje powtarzalne, stopniowe podejście, które może pomóc lekarzom podejrzewać, różnicować i potwierdzać gruźlicę żołądkową wcześniej, w podobnych objawach.

Wprowadzenie

Gruźlica żołądka jest wyjątkowo rzadkim objawem zakażenia Mycobacterium tuberculosis w ludzkim organizmie¹. Jej częstość występowania jest niezwykle niska, a nawet w regionach o wysokim obciążeniu gruźlicą zajęcie żołądka zwykle odpowiada za mniej niż 1% przypadków gruźlicy żołądka^{pokarmowego 2}. To niskie zachorowanie przypisuje się kilku lokalnym czynnikom ochronnym, w tym bakteriobójczemu działaniu kwasu żołądkowego, integralności bariery śluzowej żołądka oraz szybkiemu opróżnianiu żołądka, które łącznie zmniejszają utrzymujący się kontakt bakterii ze ścianą żołądka³.

Objawy kliniczne gruźlicy żołądka są heterogeniczne i pozbawione cech patognomonicznych, a objawy i objawy różnią się w zależności od lokalizacji zmiany, głębokości wystąpienia i postępu choroby⁴. Pacjenci mogą występować z bólem lub dyskomfortem w górnej części brzucha, nudnościami, wymiotami, anoreksją oraz utratą masy^{ciała 5}. Gdy zachorowanie żołądka współistnieje z gruźlicą pozabrzuszną, mogą również występować objawy konstytucyjne, takie jak niska gorączka, nocne poty i zmęczenie⁶. Jednak te objawy są niespecyficzne, a podejrzenia kliniczne często są opóźnione, ponieważ choroba może przypominać typowe choroby żołądka, w tym chorobę wrzodów peptycznych, raka żołądka, chłoniaka i guzy podśluzówkowej⁷.

Główną barierą diagnostyczną opisaną w szerszej literaturze jest to, że rutynowa endoskopowa biopsja kleszczy często nie jest diagnostyczna, szczególnie gdy zmiany są głównie podśluzówkowe lub gdy zmiany ziarniskowe są nieregularne, co prowadzi do błędu próbkowania⁸. Aby to przezwyciężyć, przedstawiona tutaj strategia diagnostyczna multimodalna zapewnia istotne korzyści w porównaniu z konwencjonalnymi jednomodalnymi badaniami endoskopowymi. Integrując obrazowanie przekrojowe poprzeczne, głębokie pobieranie tkanek oraz badania molekularne (PCR), to kompleksowe podejście znacząco zwiększa pewność diagnostyczną i minimalizuje opóźnienia, gdy konwencjonalne kwasotrwałe barwienia wynoszą^{minus 9}.

Głównym celem tego protokołu jest sformalizowanie powtarzalnego, stopniowo diagnostycznego procesu podejrzenia gruźlicy żołądka. Uzasadnieniem przedstawienia tego konkretnego przypadku jest pokazanie, jak klinicyści mogą systematycznie radzić sobie z niepewnością diagnostyczną, gdy początkowe biopsje powierzchowne zawodzą, a zmiana silnie przypomina guz podśluzkowy.

Ten reprezentatywny przypadek jest wysoce odpowiedni dla klinicystów i endoskopistów poszukujących praktycznych wskazówek dotyczących leczenia nietypowych, opornych zmian żołądka, które współistnieją z niewyjaśnionymi ogólnoustrojowymi wynikami, takimi jak limfadenopatia¹⁰. Stosując ten protokół multimodalny, praktycy mogą poprawić wczesne rozpoznanie, uniknąć niepotrzebnych radykalnych resekcji oraz skuteczniej rozpocząć ukierunkowaną terapię przeciwgruźlicową w warunkach klinicznych¹¹.

Prezentacja przypadku:
70-letnia kobieta wystąpiła z miesięczną historią bólu brzucha, bez typowych objawów konstytucyjnych gruźlicy. Badanie fizykalne i podstawowe badania laboratoryjne nie przyniosły żadnych uwag, ale gastroskopia wykazała nieokreśloną zmianę podnabłonkową w dnie żołądka.

Diagnoza, ocena i plan:
Ze względu na niediagnostyczną wydajność powierzchownych biopsji endoskopowych, wykonano obrazowanie przekrojowe i ultrasonografię, które wykazały jednoczesną limfadenopatię ogólnoustrojową oraz guz pochodzący z mięśnia propria. Aby postawić ostateczną diagnozę, wykonano laparoskopową częściową gastrektomię w celu pełnego pobrania tkanek o pełnej grubości. Histopatologia wykazała zapalenie ziarniniakowe z martwicą kaseuszową, a kolejna reakcja łańcuchowa polimerazy tkankowej (PCR) potwierdziła obecność kompleksu Mycobacterium tuberculosis. Pacjent został pomyślnie leczony standardową terapią przeciwgruźlicą pierwszego rzutu, co doprowadziło do całkowitego ustąpienia objawów bez powikłań.

Protokół

Protokół ten został przeprowadzony zgodnie z wytycznymi Instytucjonalnego Komitetu Etyki Badań Ludzkich Szpitala Ludowego Dongguan, zgodnie z numerem zatwierdzenia LW 2026-001. Przed wszystkimi procedurami diagnostycznymi, terapeutycznymi i kontrolnymi uzyskano pisemną świadomą zgodę pacjenta.

1. Kwalifikacja pacjentów i wstępna ocena

1. Historia medyczna
   1. Zarejestrowano główną dolegliwość oraz udokumentowano pojawienie się objawów, czas trwania, lokalizację, charakter, czynniki obciążające (np. poposiłkowe lub nocne) oraz czynniki łagodzące.
   2. Zarejestrowano towarzyszące objawy (np. beknięcie, nudności, wymioty, refluks, wzdęcia, biegunkę, dreszcze, gorączkę, krwiomoczność/melenę) oraz oceniono objawy alarmowe (np. niezamierzona utrata masy ciała, utrzymująca się gorączka).
   3. Udokumentowana historia medyczna oraz obecne leki (np. nadciśnienie i cukrzyca typu 2; terapia przeciwnadciśnieniowa i obniżająca poziom glukozy).
   4. Przesiewowo pod kątem czynników ryzyka związanych z gruźlicą (historia narażenia, wcześniejsza gruźlica, immunosupresja) oraz historii nowotworów.
2. Badanie fizykalne
   1. Oceniono stan ogólny i parametry życiowe (ciśnienie krwi, tętno, temperatura, częstość oddechu), aby potwierdzić stabilność kliniczną.
   2. Zbadałem skórę i twardówkę pod kątem żółtaczki.
   3. Palpowane powierzchowne obszary węzłów chłonnych (szyjny, nadpraklawikalny, pachowy) ręcznie, używając poduszek palca wskazującego i środkowego, aby ocenić powiększenie, tkliwość lub fiksację.
   4. Systematycznie zbadano brzuch za pomocą wizualnej inspekcji, auskultywacji dźwięków jelitowych oraz lekkiej i głębokiej palpacji manualnej w celu oceny rozciągnięć, tkliwości (w tym odbicia/osłony), wyczuwalnych mas oraz znaku Murphy'ego.
   5. Zbadano stawy i kończyny dolne pod kątem nieprawidłowości (np. obrzęk, rumieniak, deformacja).
3. Wstępne badania laboratoryjne
   1. Pobrano kompletną morfologię krwi (CBC) przy użyciu standardowego sprzętu laboratoryjnego (patrz Tabela materiałów).
   2. Wykonano badania funkcji wątroby i nerek [aminotransferaza alaninowa (ALT), aminotransferaza asparagianowa (AST), bilirubina, kreatynina, mocznik].
   3. Uzyskano elektrolity w surowicy [sód (Na⁺), potas (K⁺), chlorek (Cl⁻)].
   4. Uzyskano testy krzepnięcia [czas protrombinowy (PT), aktywowany czas częściowej tromboplastyny (APTT)] oraz troponinę serca, gdy klinicznie wskazane były zalecenia.
   5. Uzyskano markery nowotworowe w surowicy [np. rakowo-embrężowy antygen (CEA), antygen węglowodanowy 19–9 (CA19–9), alfa-fetoproteina) (AFP)] wspierające diagnozę różnicową.
   6. Wykonano badanie utajonej krwi w kału.
   7. Oceniano Helicobacter pylori metodą instytucjonalną (serologia, test oddechowy mocznika lub antygen stolca).
      UWAGA: Zanotowano zastosowaną metodę oraz jej próg interpretacyjny.

2. Przepływ diagnostyczny dla zmian w pokarcie i ogólnoustrojowych

1. Gastroskopia i początkowe pobieranie próbek
   1. Wykonano diagnostyczną gastroskopię w celu oceny przełyku, żołądka (w tym dna w retrofleksji) oraz dwunastnicy.
   2. Udokumentowano lokalizację, rozmiar, makroskopowy wygląd oraz podejrzewaną warstwę pochodzenia oraz archiwalne reprezentatywne obrazy.
   3. Sklasyfikowano wrzód dwunastnicy za pomocą standardowego endoskopowego systemu zaawansowania (np. stadium aktywne z wysiękiem) oraz archiwalnych obrazów.
   4. Pozyskano biopsje kleszczy z powierzchni zmiany i sąsiedniej błony śluzowej (fragmenty ≥6, gdy było to technicznie możliwe) za pomocą endoskopowych kleszczy (patrz Tabela materiałów) i umieściłem próbki w 10% neutralnej formalinie buforowanej (patrz Tabela materiałów).
   5. Oznaczone próbki z identyfikatorami pacjentów i miejscami pobierania zostały dostarczone do patologii w ciągu 1 godziny od pobrania.
   6. Rozpoczęto terapię supresyjną kwasu dla aktywnego wrzodu i ponownie oceniono reakcję objawową podczas obserwacji.
2. Obrazowanie przekrojowe
   1. Wykonano tomografię klatki piersiowej (CT) bez kontrastu przy użyciu standardowego protokołu dla dorosłych (np. 120 kVp; automatyczna modulacja prądu rurkowego; wysokość dźwięku 0,9–1,2).
   2. Rekonstruowane obrazy o grubości 1,0 mm z wielopłaszczyznowym formatowaniem i przeglądane przy użyciu okien płuc i śródpiersiowych.
   3. Udokumentowano guzki płucne (lokalizacja, maksymalna średnica, gęstość) oraz chłoniaki przyśrodkowej/hilarnej (stacje, średnica krótkoosi).
   4. Porównanie z wcześniejszymi badaniami obrazowymi, gdy były dostępne do oceny zmian interwałów.
3. Tomografia komputerowa górnej części brzucha z wzmocnionym kontrastem
   1. Wykonano tomografię komputerową górnej części brzucha z dodatkiem kontrastu, chyba że jest wskazana przeciwwskazania.
   2. Podano jodowany kontrast (patrz Tabela materiałów) w ilości 1,5 mL/kg (maksymalnie 120 mL) za pomocą wtryskiwacza mocy z prędkością 3,0 mL/s, a następnie przepłukano sól fizjologiczną 30–40 ml (patrz Tabela materiałów).
   3. Faza tętnicza nabywała w 25–30 s oraz faza żylna wrotna 60–70 s po wstrzyknięciu i rekonstruowana z grubością plastry 1,0–1,25 mm.
   4. Udokumentowano pogrubienie/wzmocnienie ściany pokarmowej (bulwęszka dwunastnicowa, serce, tętno żołądka) oraz zmapowano limfadenopatię brzuszną (okołosięczkową, wątrobową, zaotrzewnowową) według lokalizacji i wielkości.
4. Endoskopowe USG (EUS) i pobieranie próbek
   1. Wykonano EUS za pomocą echoendoskopu liniowego (typowy zakres częstotliwości 5–12 MHz; patrz Tabela materiałów).
   2. Zlokalizowano zmianę i określono warstwę pochodzenia (np. muscularis propria) oraz zarejestrowaną wielkość uszkodzenia (np. 12,4 mm × 5,3 mm), echogeniczność, jednorodność oraz cechy akustyczne tylne za pomocą archiwizacji obrazów.
   3. Przeprowadzono aspirację/biopsję cienką igłą pod wpływem EUS w celu poprawy wydajności tkanek pod zmianami podśluzkowymi.
   4. Użyłem igły o średnicy 22 gauge (patrz Tabela materiałów) i wykonałem 3 przejścia (2 przejścia z zasysaniem przy użyciu strzykawki 10 mL; 1 przejście bez ssania), z 10–15 ruchami tam i z powrotem na przejście pod ciągłą wizualizacją ultradźwiękową.
   5. Przygotowałem bezpośrednie rozmazy z każdego przejścia; natychmiast zafiksowałem jeden szkiełko w 95% etanolu do cytologii i wysuszyłem jeden preparat na powietrzu dla szybkiego barwienia, jeśli było dostępne.
   6. Umieściłem resztki w 10% neutralnej buforowanej formalinie, aby stworzyć blok komórkowy do histologii, a osobną część umieszczono w sterylnej probówce do badań molekularnych.
   7. Monitorowano pod kątem natychmiastowych powikłań (ból, krwawienie, perforacja) przez co najmniej 2 godziny po zabiegu oraz dokumentowano parametry życiowe i stan objawów.
      UWAGA: Jeśli przedstawiony przypadek nie obejmował aspiracji cienkiej igły (FNA)/biopsji cienkiej igły (FNB), należy zastąpić kroki 2.4.3–2.4.7 dokładną metodą pobierania próbek i wyraźnie określić ograniczenie.

3. Interwencja chirurgiczna i potwierdzające badania laboratoryjne

1. Laparoskopowa częściowa gastrektomia
   1. Potwierdzono brak przeciwwskazań chirurgicznych (np. niekontrolowana koagulopatia, niestabilna choroba krążeniowo-płucna) oraz przeanalizowano wyniki badań przedoperacyjnych.
   2. Wywołano znieczulenie ogólne i ustalono zapalenie płuc na 12–14 mmHg.
   3. Wkładano standardowe porty laparoskopowe (np. 10 mm port kamery umbilikalnej plus 2–3 porty robocze; patrz Tabela materiałów) i przeprowadzano systematyczne badania.
   4. Zlokalizowano zmianę na podstawie przedoperacyjnych informacji endoskopowych/obrazowych (np. dno w pobliżu serca/większa krzywizna).
   5. Wykonano klinową/częściową gastrektomię w celu usunięcia zmiany z brzydkim marginesem ≥1 cm, gdy było to anatomicznie możliwe, i osiągnięto hemostazę oraz bezpieczne zamknięcie zgodnie z praktyką instytucjonalną.
   6. Próbkę natychmiast dostarczyć do patologii, odnotować czas do utrwalenia i ukierunkować ją (bliższą/dystalną lub przednią/tylną) do oceny ogólnej.
2. Histopatologia
   1. Tkanka stała w 10% neutralnej buforowanej formalinie przez 24–48 godzin w temperaturze pokojowej.
   2. Pobrano reprezentatywne obszary (centrum zmiany, styk z sąsiednią tkanką oraz obszary o silnej martwiczości, gdy były obecne), przetworzono pod kątem osadzenia parafiny i wycięto przekroje o grubości 3–4 μm.
   3. Wykonano barwienie hematoksyliny i eozyny (H&E) oraz oceniono pod kątem zapalenia ziarniniastego i martwicy (w tym martwicy kaseuszowej).
   4. Wykonano specjalne barwienia: okresowe barwienie kwasowo-schiffowe (PAS) oraz okresowe kwasowo-srebrne barwienie metenaminy (PASM) dla pierwiastków grzybowych oraz barwienie Ziehl–Neelsena lub auraminy–rodaminy dla kwasotrwałych pałeczek.
      UWAGA: Negatywne barwienie kwasowolno-kwasotrwałego bycia (AFB) nie wykluczało gruźlicy; interpretacja została zintegrowana z badaniami molekularnymi oraz wynikami kliniczno-obrazowymi.
3. Badania molekularne [reakcja łańcuchowa polimerazy tkankowej (PCR)]
   1. Wybrano tkanki do badań molekularnych przy użyciu czystych narzędzi, aby uniknąć zanieczyszczenia krzyżowego, oraz zastosowano oddzielne obszary pracy na etapach przed i po amplifikacji.
   2. Ekstrakt DNA z świeżej tkanki (preferowanej) lub tkanki z formaliną zafiksowaną, osadzoną w parafinie (FFPE) przy użyciu walidowanego zestawu do ekstrakcji. Dla tkanek FFPE deparafinizowane fragmenty ksylenem (2 × 10 min), następnie stopniowe płukania etanolem (100%, 95%, 70%) (patrz Tabela materiałów dla odczynników) i suszenie na powietrzu przed lizą.
   3. Wykonano PCR w czasie rzeczywistym celujące kompleks M. tuberculosis (np. IS6110 lub inny zweryfikowany cel).
   4. Zastosowano następujące warunki cykliczne jako standardowy profil PCR w czasie rzeczywistym: początkowa denaturacja w 95 °C przez 5 minut; 40 cykli 95 °C przez 15 s i 60 °C przez 60 s.
   5. Zinterpretowano wyniki na podstawie progów laboratoryjnych [np. próg cyklu (Ct) ≤ 38 jako pozytywny, Ct 38–40 jako nieokreślony wymagający powtórzenia testów oraz brak amplifikacji jako ujemny] oraz potwierdzono wyniki nieokreślone przez powtarzalną ekstrakcję i powtarzalną PCR.
      UWAGA: Zamień gen(y) docelowych genów i progi Ct na te używane przez laboratorium, jeśli są różne.
4. Test uwalniania interferonu gamma (IGRA)
   1. Przeprowadzono badanie IGRA z pełnej krwi w celu wsparcia oceny zakażenia gruźlicą.
   2. Pobrano 1 ml krwi do każdej probówki do badania [kontrola bez kontroli, rurki antygenowe z bulkulozy gruźlicy, kontrola mitogenów] i wymieszano przez odwrócenie 10 razy bezpośrednio po pobraniu.
   3. Inkubowano probówki w 37 °C przez 16–24 godziny, wirowano w dawce 2 000–3 000 × g przez 15 minut oraz pobierano osocze do pomiaru interferonu gamma enzymatycznego (ELISA).
   4. Zinterpretowano IGRA jako dodatnie, gdy (antygen gruźlicy − nik) ≥0,35 IU/mL i ≥25% zera, przy odpowiedniej odpowiedzi mitogenowej na kryterium testu.
      UWAGA: Jeśli IGRA nie została przeprowadzona w tym przypadku, podaj to wyraźnie i podaj powód.
5. Integracja diagnostyczna
   1. Ustalono diagnozę poprzez integrację (i) zapalenia ziarniniaczkowego z martwicą kaseuszową w histologii, (ii) molekularnych dowodów kompleksu M. tuberculosis w PCR oraz (iii) wspierających wyników klinicznych i obrazowych.
   2. Uwzględniono alternatywne diagnozy (np. nowotwory, chłoniak, infekcja grzybicza) oraz negatywne wyniki potwierdzające wykluczenie.

4. Zarządzanie terapeutyczne i kontrolna terapia przeciwgruźlicza

1. Skonsultowałem się ze specjalistami chorób zakaźnych, aby potwierdzić schemat leczenia po potwierdzeniu diagnozy.
2. Zastosowano standardową terapię przeciwgruźlicową pierwszego rzutu (ryfampicina, izoniazyd, pirazynamid, ethambutol) zgodnie z zaleceniami instytucjonalnymi/krajowymi.
3. Dostosowane dawki na podstawie masy ciała oraz funkcji wątroby/nerek oraz udokumentowanych wyników wyjściowych i kontrolnych wyników laboratoryjnych.
4. Monitorowano pod kątem działań niepożądanych (nietolerancja przewodu pokarmowego, wątroby, wysypka, objawy wzrokowe) i kontrolowane zgodnie z praktyką instytucjonalną.
5. Zaplanowana kontrola na 2 tygodnie po wypisie, a następnie co 4 tygodnie podczas wczesnego leczenia, z kolejnymi odstępami czasu dostosowanymi do reakcji klinicznej.
6. Wykonałem morfologię i badania funkcji wątroby podczas każdej wizyty.
7. Oceniano ustąpienie objawów i przesiewowe badania pod kątem nawrotu na podstawie oceny klinicznej oraz powtarzających obrazów/endoskopii, gdy klinicznie to wskazało.

Wyniki

Wstępne wyniki oceny
70-letnia kobieta zgłaszała się z bólem brzucha przez miesiąc. Nie zgłaszała znanego narażenia na gruźlicę i zaprzeczała objawom konstytucyjnym lub alarmującym, takim jak nudności, wymioty, gorączka i znaczna utrata masy ciała. Jej historia medyczna obejmowała dobrze kontrolowane nadciśnienie i cukrzycę typu 2, leczone przewlekłymi lekami doustnymi. Podczas badania fizykalnego była czujna i stabilna hemodynamicznie. Nie stwierdzono żółtaczki ani wyczuwalnej powierzchownej chłonnop...

Dyskusja

Gruźlica żołądka jest rzadkim objawem gruźlicy pokarmowej i może pojawić się poprzez rozprzestrzenianie się hematogennym lub limfatycznym, bezpośrednie rozszerzenie z sąsiednich zmian lub implantację w środowisku osłabionym przez błonę śluzową. Ponieważ objawy są niespecyficzne, a endoskopowe często pokrywają się z chorobą wrzodów peptycznych, nowotworami, chłoniakami i guzami podnabłonkowymi, diagnoza jest często opóźniona i może wymagać stopniowego podejścia, które integruje kontekst kliniczny z potwierdzeniem tkankowy...

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule

Nazwa	Firma	Numer katalogowy	Komentarze
Zestaw do barw odpornych na kwasy (Ziehl– Neelsen)	BD Difco	215073	Do barwienia AFB; akceptowalna alternatywa dla barwienia auraminowego
Wirówka (2 000 i ndash; 3 000 i razy; g)	Eppendorf	5810 R	Separacja plazmowa dla IGRA
Pokrywki	Citotest	10212424C	Do przygotowania mikroskopii
Tomograf komputerowy (wielodetektorowy)	Siemens Healthineers	Definicja SOMATOM AS+	Dowolne ≥ 64-slice CT akceptowalne; zapis kVp, grubość przekroju, fazy
Jednorazowe kleszcze do biopsji	Boston Scientific	1395 (Szczęka promienista 4)	Do biopsji śluzowo-powierzchniowych; dowolne sterylne, jednorazowe kleszcze akceptowalne
Zestaw do ekstrakcji DNA (FFPE)	QIAGEN	56404 (Zestaw tkanek QIAamp DNA FFPE)	Jeśli używam sekcji FFPE do PCR
Zestaw do ekstrakcji DNA (tkanka)	QIAGEN	69504 (DNeasy Krew i Zestaw Tkanek)	Do ekstrakcji świeżej tkanki DNA
Czytnik tablic ELISA	BioTek (Agilent)	Synergia H1	Dla odczytu IGRA ELISA (jeśli używasz zestawu wymagającego czytnika)
Procesor ultradźwiękowy EUS	Olympus	EU-ME2	Dowolny odpowiednik procesora EUS jest akceptowalny
Igła EUS-FNA/FNB, 22G	Cook Medical	EchoTip Ultra (22G)	Jeśli w twojej sprawie używano FNA/FNB; wskaźnik rekordu i liczbę przejść
Gastrofoskop	Olympus	GIF-HQ190	Standardowy gastroscope diagnostyczny; akceptowalne modele równoważne
Grocott' Sreber methenaminy (GMS/PASM)	Abcam	ab150680	Badania przesiewowe grzybiczy (PASM/GMS)
H& Zestaw barwienia lub odczynniki do barwienia H& E	Sigma-Aldrich (Merck)	HT110116	Barwienie hematoksylyną i eozyną
Zestaw testowy IGRA	Qiagen	QuantiFERON-TB Gold Plus	IGRA dla pełnokrwistych; kryteria interpretacji rekordów
Oprogramowanie do analizy i etykietowania obrazów	NIH	ImageJ/Fiji	Do dodawania pasków skali lub adnotacji do obrazów histologicznych
Insufflator	Karl Storz	ENDOMAT	Utrzymuj zapalnicę otrzewnowinową; rejestruj zastosowane ciśnienie
Laparoskop	Karl Storz	26003BA	laparoskop 10 mm; akceptowalny równoważnik
Worek do pobierania próbek laparoskopowych	Medycyna stosowana	Endo Catch II	Dla bezpiecznego wyodrębniania próbki
Zszywacz laparoskopowy (klinowa/częściowa gastrektomia)	Medtronic	Endo GIA	Użyj zszywacza instytucjonalnego; typu kartridża do płyt, jeśli to istotne
Wieża laparoskopowa (kamera + źródło światła)	Karl Storz	IMAGE1 S	Akceptowalny jest każdy odpowiednik systemu obrazowania laparoskopowego
Echoendoskop liniowy EUS	Olympus	GF-UCT180	Zalecany liniowy EUS do próbkowania; akceptowalny równoważny
Szkiełka mikroskopowe	Citotest	188105	Do cytologicznych rozmazów
Mikrotom	Leica Biosystems	RM2235	Dla 3– 4 μ m podział
Medium montażowe	Sigma-Aldrich (Merck)	6522	Coverslipping
Złożony zestaw PCR MTB (zatwierdzony)	Sansure Biotech	Zestaw diagnostyczny DNA MTB	Użyj swojej instytucji' zweryfikowanego kompleksu MTB PCR; rejestruj cel i próg Ct
Niejonowy kontrast jodowany (do tomografii)	GE Healthcare	Omnipaque 350	Używaj standardowego kontrastu instytucjonalnego; zapisuj stężenie i dawkę
System osadzania parafiny	Leica Biosystems	HistoCore Arcadia	Dowolny odpowiednik systemu osadzania jest akceptowalny
Zestaw do bejcowania PAS	Sigma-Aldrich (Merck)	395B	Do badań przesiewowych grzybów
Materiały do czyszczenia PCR (końcówki filtrów)	Thermo Fisher Scientific	2069G	Używaj końcówek odpornych na aerozol, aby zmniejszyć zanieczyszczenie
Wtryskiwacz mocy dla kontrastu	Bayer	MEDRAD Stellant	Każdy dopuszczalny wtryskowywak; rejestruj szybkość wstrzykiwania i przepłukanie soli fizjologicznej
Instrument PCR w czasie rzeczywistym	Roche	LightCycler 480 II	Każdy zweryfikowany system PCR w czasie rzeczywistym jest akceptowalny
Pojemnik na próbki (nieszczelny)	Thermo Fisher Scientific	02-544-208	Do transportu tkanek utrwalonych formaliną
Oprogramowanie statystyczne/figuracyjne	Oprogramowanie GraphPad	Pryzmat	Jeśli używany do wykresu; opcjonalnie
Strzykawka (10 mL)	BD	309604	Do ssania podczas FNA przy użyciu
System gastroskopu wideo (diagnostyczna endoskopia górnego układu przewodu pokarmowego)	Olympus	CV-190 (procesor), CLV-190 (źródło światła)	Akceptowalna jest każda równoważna platforma endoskopyjna; Używany model zapisu
10% neutralna formalina buforowana	Sigma-Aldrich (Merck)	HT501128	Utrwalanie próbek biopsji i resekcji
37 stopni i stopień inkubatora; C inkubator	Thermo Fisher Scientific	Heratherm	Dla inkubacji IGRA
95% etanolu	Sigma-Aldrich (Merck)	459844	Natychmiastowe ustalenie preparatów cytologicznych