Identyfikacja DEG
W niniejszym badaniu do analizy bioinformatycznej wykorzystano dwa zestawy danych: GSE78721 oraz GSE12288. W zbiorze GSE78721 zidentyfikowano łącznie 2266 DEG pomiędzy pacjentami z T2DM a próbkami prawidłowymi, w tym 1209 genów o zwiększonej i 1057 genów o zmniejszonej ekspresji (Rysunek 1A). W zbiorze GSE12288 potwierdzono 924 DEG pomiędzy pacjentami z ASCVD a grupą kontrolną, w tym 403 geny z nadekspresją i 521 geny o zmniejszonej ekspresji (Rysunek 1C). 50 najważniejszych DEG zidentyfikowanych w obu zbiorach danych przedstawiono na mapach ciepła widocznych na Rysunku 1B,D. Poprzez przecięcie tych dwóch zbiorów danych zidentyfikowano 32 C-DEG, składających się z 20 genów o zwiększonej i 12 genów o zmniejszonej ekspresji (Rysunek 2A,B).
Wzbogacenie GO i KEGG dla C-DEG
W celu wyjaśnienia funkcji biologicznych i kluczowych szlaków związanych z 32 C-DEG przeprowadzono analizy GO oraz KEGG. Dziesięć najważniejszych terminów związanych z procesem biologicznym (BP), komponentem komórkowym (CC) i funkcją molekularną (MF) wśród C-DEG przedstawiono na Rysunku 3A. Funkcje BP obejmują przede wszystkim regulację aktywacji plazminogenu, regulację fibrynolizy, pozytywną regulację różnicowania kardiocytów, negatywną regulację wiązania białek oraz różnicowanie kardioblastów. Funkcje CC dotyczą kompleksu endopeptydazy serynowej, kompleksów białkowych uczestniczących w adhezji komórka-macierz, skondensowanego chromosomu, specyficznej błony ziarnistej oraz ciałek PML. MF obejmuje strukturalne składniki cytoszkieletu, aktywność aktywatora NADPH oksydazy generującej ponadtlenek, wewnątrzkomórkową aktywność transferazy (fosfotransferaz), aktywność eksopeptydazy serynowej oraz wiązanie IgG (Rysunek 3A). W analizie KEGG C-DEG były głównie zaangażowane w kluczowe szlaki, w tym zapalenie mięśnia sercowego wirusowe, kardiomiopatię arytmogenną prawej komory, kaskady dopełniacza i krzepnięcia, raka prostaty, kardiomiopatię przerostową, kardiomiopatię rozstrzeniową, apoptozę, fagosom oraz przetwarzanie białek w retikulum endoplazmatycznym (Rysunek 3B).
Konstrukcja sieci PPI i screening genów hubowych
Spośród 32 C-DEGów, trzy geny nie wykazały znanych interakcji z innymi C-DEGami w bazie danych STRING i zostały zatem wykluczone z konstrukcji sieci PPI. Platforma STRING została wykorzystana do analizy PPI pozostałych 29 C-DEGów, co ujawniło sieć składającą się z 29 węzłów i 39 krawędzi, zwizualizowaną za pomocą programu Cytoscape (Rycyna 4A). Następnie, na podstawie stopnia łączności, zidentyfikowano osiem kluczowych C-DEGów (HSP90B1, PLAU, SLPI, TOP3A, NCF4, PRF1, TUBA1C oraz CS) (Rycyna 4B).
Różnice w infiltracji komórek odpornościowych i ich korelacja z hubowymi C-DEGami
Analiza ta koncentrowała się wyłącznie na zbiorze danych T2DM (GSE78721), aby wstępnie zbadać zmiany w mikrośrodowisku immunologicznym w kontekście T2DM oraz ich związek z genami węzłowymi (hub genes). Do wizualizacji zależności między zbiorem danych T2DM a poziomami infiltracji 22 typów komórek odpornościowych wykorzystano wykresy skrzypcowe (Rysunek 5A; szczegóły w Tablicy uzupełniającej 3). Analiza infiltracji komórek odpornościowych wykazała wyższą proporcję aktywowanych komórek dendrytycznych w grupie T2DM w porównaniu z grupą kontrolną (P = 0,049), podczas gdy proporcja spoczynkowych komórek dendrytycznych była istotnie niższa w grupie T2DM (P = 0,023). Ponadto relacja między poziomami ekspresji ośmiu węzłowych C-DEG a poziomami infiltracji 22 różnych typów komórek odpornościowych została zwizualizowana za pomocą mapy ciepła (Rysunek 5B). Warto zauważyć, że ekspresja TOP3A wykazała silną dodatnią korelację z poziomem infiltracji limfocytów T regulatorowych (Tregs) (P < 0,001), natomiast ekspresja SLPI była silnie dodatnio skorelowana z infiltracją limfocytów T gamma delta (P < 0,001). Odwrotnie, ekspresja NCF4 wykazała silną ujemną korelację z poziomem infiltracji aktywowanych komórek NK (P < 0,001), ekspresja PRF1 była silnie ujemnie skorelowana z poziomem infiltracji makrofagów M2 (P < 0,001), a ekspresja PLAU była silnie ujemnie powiązana z poziomem infiltracji naiwnych limfocytów B (P < 0,001).
Sieć potencjalnych interakcji lek-cel dla hubowych C-DEG
Spośród ośmiu zidentyfikowanych hubowych C-DEG, CS i TOP3A nie zostały wymienione jako znane cele lekowe w bazie danych DGIdb i tym samym zostały wykluczone z późniejszej analizy sieci kandydatów na leki i ich celów. W celu zidentyfikowania leków o potencjalnej roli terapeutycznej w T2DM i ASCVD, pozostałe sześć hubowych C-DEG zostało wprowadzonych do bazy danych DGIdb (szczegóły w Tabeli uzupełniającej 4). Następnie wykorzystano program Cytoscape do skonstruowania sieci kandydatów na leki i ich cele, ilustrującej powiązania między hubowymi C-DEG a kandydackimi lekami celowanymi (Rycina 6). Sieć ta obejmowała sześć hubowych C-DEG, 136 leków molekularnych oraz 137 krawędzi. W szczególności dla TUBA1C, NCF4, PRF1, SLPI, HSP90B1 i PLAU zidentyfikowano odpowiednio 82, 5, 3, 4, 1 i 42 kandydackich leków celowanych, z których większość sklasyfikowano jako leki przeciwnowotworowe, przeciwzapalne oraz przeciwzakrzepowe.
Walidacja ekspresji hubowych C-DEG
Z powodu braku CS i TOP3A jako potencjalnych celów terapeutycznych w bazie danych DGIdb oraz faktu, że ich funkcje biologiczne są mniej bezpośrednio powiązane ze strategiami terapeutycznymi w kontekście badań nad T2DM i ASCVD, w walidacji eksperymentalnej skupiono się na pozostałych sześciu hubowych C-DEG (HSP90B1, PLAU, SLPI, NCF4, PRF1 oraz TUBA1C). Aby dalej zbadać rolę tych hubowych C-DEG, przeprowadzono analizy qRT-PCR i western blot w celu oceny poziomów ekspresji kluczowych genów w różnych grupach (Rycina 7 i Rycina 8). Poziomy ekspresji TUBA1C, NCF4, SLPI, HSP90B1 i PLAU były znacząco podwyższone u pacjentów z T2DM i ASCVD w porównaniu z odpowiednimi grupami kontrolnymi osób zdrowych, natomiast ekspresja PRF1 była obniżona. Wyniki te sugerują, że geny te mogą odgrywać istotną rolę w progresji schorzeń u pacjentów z T2DM i ASCVD.
DOSTĘPNOŚĆ DANYCH:Zbiory danych dotyczących ekspresji genów GSE78721 oraz GSE12288, wykorzystane do analizy bioinformatycznej w niniejszym badaniu, są dostępne w publicznej bazie danych NCBI GEO. Surowe dane z części walidacji eksperymentalnej wygenerowane w ramach niniejszego badania zostały udostępnione w Pliku uzupełniającym 1.

Rysunek 1: Identyfikacja DEG w zbiorach danych GSE78721 i GSE12288. (A,C) Wykresy wulkaniczne DEG odpowiednio w GSE78721 i GSE12288. Jako próg selekcji przyjęto |logFC|≥ 0.5 oraz P < 0.05; geny o zwiększonej ekspresji zaznaczono na czerwono, a geny o zmniejszonej ekspresji na zielono. (B,D) Mapy ciepła dla 50 najważniejszych DEG odpowiednio w GSE78721 i GSE12288. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rysunek 2: Diagram Venna C-DEG z dwóch zbiorów danych. (A) Diagram Venna dla C-DEG o zwiększonej regulacji w T2DM i ASCVD w zbiorach danych GSE78721 oraz GSE12288. (B) Diagram Venna dla C-DEG o zmniejszonej regulacji w T2DM i ASCVD w zbiorach danych GSE78721 oraz GSE12288. Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rycina 3: Analiza wzbogacenia funkcjonalnego i szlaków dla C-DEG. Wykresy słupkowe analiz wzbogacenia GO (A) i KEGG (B). Współrzędne pionowe wskazują opis poszczególnych elementów GO lub szlaków KEGG, a współrzędne poziome wskazują liczbę wzbogaconych C-DEG. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

Rycina 4: Sieć PPI i screening genów hubowych wśród C-DEG. (A) Sieć PPI dla C-DEG. Kolor czerwony i niebieski reprezentują odpowiednio zwiększone i zmniejszone C-DEG. (B) Wśród C-DEG zidentyfikowano osiem genów hubowych. Węzły reprezentują C-DEG, a krawędzie oddziaływania między C-DEG. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tej ryciny.

Rysunek 5: Analiza infiltracji komórek odpornościowych. (A) Różnice w infiltracji 22 typów komórek odpornościowych pomiędzy grupą T2DM a grupą kontrolną. Oś pozioma: podtypy komórek odpornościowych; Oś pionowa: względny poziom infiltracji komórek odpornościowych. (B) Mapa ciepła korelacji ekspresji 8 kluczowych C-DEGs oraz poziomów infiltracji 22 typów komórek odpornościowych. Czerwone kwadraty: korelacja dodatnia; Niebieskie kwadraty: korelacja ujemna. Ciemniejsze kolory wskazują silniejsze korelacje. Kliknij tutaj, aby wyświetlić większą wersję tego rysunku.

Rysunek 6: Kandydacka sieć celów lekowych dla sześciu hubowych C-DEG. Czerwone węzły reprezentują hubowe C-DEG, zielone węzły reprezentują kandydackie leki celowane, a krawędzie między nimi reprezentują pary oddziaływań. Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.

Rycina 7: Walidacja ekspresji kluczowych genów u pacjentów z T2DM i ASCVD metodą qRT-PCR. Poziomy ekspresji mRNA dla HSP90B1 (A), PLAU (B), SLPI (C), NCF4 (D), PRF1 (E) i TUBA1C (F) zostały określone za pomocą qRT-PCR. Prosimy kliknąć tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tej ryciny.

Rysunek 8: Walidacja ekspresji kluczowych genów u pacjentów z T2DM i ASCVD za pomocą metody Western blot. Poziomy ekspresji białek HSP90B1 (A), PLAU (B), SLPI (C), NCF4 (D), PRF1 (E) oraz TUBA1C (F) zostały wykryte za pomocą analizy Western blot. Aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku, kliknij tutaj.
Tabela uzupełniająca 1. Macierz ekspresji genów dla zbioru danych GSE78721, wykorzystana do analizy transkrypcyjnej T2DM w niniejszym badaniu.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 2. Macierz ekspresji genów dla zbioru danych GSE12288, wykorzystana do analizy transkryptomicznej ASCVD w niniejszym badaniu.Proszę kliknąć tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 3: Analiza infiltracji komórek odpornościowych w zbiorze danych GSE78721.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Tabela uzupełniająca 4: Potencjalne oddziaływania lek-cel dla wspólnych genów hub o różnej ekspresji.Kliknij tutaj, aby pobrać ten plik.
Plik uzupełniający 1: Surowe dane wygenerowane w ramach części walidacji eksperymentalnej w niniejszym badaniu.Aby pobrać ten plik, kliknij tutaj.