Badanie przeprowadzono zgodnie z Deklaracją Helsińską oraz wytycznymi etycznymi szpitala i zostało zatwierdzone przez Drugie Ludowe Szpital Wuxi, Centrum Medyczne Uniwersytetu Jiangnan oraz komisje etyczne (nr etyczny 2024-Y-231). Wszystkie ludzkie próbki biologiczne (krew żylna i alikwoty surowiczne) były przetwarzane zgodnie z przepisami dotyczącymi bezpieczeństwa biologicznego (GB 19489-2008). Wszystkie operacje przeprowadzano w szafie bezpieczeństwa biologicznego, aby zapobiec skażeniu próbek i narażeniu personelu. Utylizacja zużytych próbek biologicznych, skażonych końcówek pipet oraz rurek mikrowirówek przeprowadzono zgodnie ze standardami zarządzania odpadami medycznymi: próbki i materiały skażone były autoklawowano w temperaturze 121 °C przez 30 minut, a następnie przekazywano wykwalifikowanym instytucjom utylizacji odpadów medycznych do centralnego przetwarzania w celu zapewnienia bezpieczeństwa biologicznego.
Projekt badań
Było to jednoośrodkowe retrospektywne badanie kohortowe, mające na celu zbadanie prognostycznej wartości przedoperacyjnej poziomu HGF w surowicy i IBPS dla pooperacyjnych wyników patologicznych pacjentów z OSCC. Projekt badania opiera się na zaleceniach REMARK (Tumor Marker Prognostic Study Report Recommendations). Grupa badawcza uczęszczająca do Oddziału Stomatologicznego Drugiego Szpitala Ludowego Wuxi, Centrum Medycznego Uniwersytetu Jiangnan, od stycznia 2020 do grudnia 2022 roku. Zebrano łącznie 170 przypadków informacji, 165 przypadków uwzględniono po wykluczeniu, 7 przypadków utracono podczas okresu obserwacji, a ostatecznie 79 przypadków w grupie A (zdrowa grupa kontrolna, zdrowe osoby przyjęte do szpitala na badanie fizykalne w tym samym okresie) oraz 79 przypadków w grupie B (grupa OSCC, pacjenci z OSCC). Schemat przepływowy tego badania zilustrowany jest na Rysunku 1. Pobrano uprawnionych uczestników badania za pomocą szpitalnego systemu elektronicznej dokumentacji medycznej oraz bazy danych centrum badań fizykalnych, a także zebrano szczegółowe dane klinicznopatologiczne dla grupy A (zdrowa grupa kontrolna) i grupy B (grupa OSCC). Przeprowadzono pooperacyjną kontrolę pacjentów z grupy B podczas badania, aby zarejestrować nawroty, przerzuty i przeżycie. Uwzględniono tylko zdrową grupę kontrolną do identyfikacji różnic ekspresji markerów zapalnych między pacjentami z OSCC a zdrowymi osobami, co stanowiło racjonalną podstawę do ustalenia wartości progowej dla samodzielnie skonstruowanego IBPS. Oceniono wartość prognostyczną IBPS i zweryfikowano ją w kohorcie pacjentów z OSCC na podstawie ich pooperacyjnych wyników patologicznych. Projekt tego badania zapewnił dokładność danych i naukową wiarygodność badania poprzez rygorystyczne kryteria grupowania, standaryzowany proces testowania laboratoryjnego oraz systematyczny mechanizm obserwacji, zapewniając rygorystyczne ramy badawcze do analizy wartości prognosycznej poziomów HGF i wyników IBPS w pooperacyjnych wynikach patologicznych OSCC, co ma stanowić naukową podstawę do opracowania spersonalizowanych protokołów oceny prognosycznej i strategii terapeutycznych w klinice.
Kryteria włączenia i wykluczenia
Kryteria włączenia: (1) Pacjenci zdiagnozowani z OSCC21; (2) Wiek 40–65 lat; (3) Z pełną informacją kliniczną; (4) Otrzymali kompleksowy, sekwencyjny plan leczenia oparty na operacji i uzupełniony selektywną radioterapią; (5) Pacjenci z dobrą zgodnością i chęcią współpracy z planem leczenia opracowanym w badaniu; (6) Ogólny stan psychiczny pacjentów jest dobry, ich organizmy są zasadniczo zdrowe, potrafią szczerze wyrażać swoje skargi na objawy i odpowiadać na istotne pytania pracowników służby zdrowia; (7) Pacjenci i ich rodziny zostali poinformowani i zlegali, podpisując formularz świadomej zgody.
Kryteria wykluczenia: (1) Pacjenci z nowotworami złośliwymi o mieszanym innych niż OSCC; (2) Pacjenci z kombinacją ciężkich chorób ogólnoustrojowych lub chorob układu odpornościowego; (3) Pacjenci z mieszaną dysfunkcją krzepnięcia krwotocznego, lub ciężkimi wadami czynności sercowej, wątroby lub nerek, ciężkimi chorobami sercowo-naczyniowymi lub innymi poważniejszymi chorobami; (4) Skojarzone przewlekłe choroby zakaźne, połączone z innymi chorobami przenoszonymi drogą płciową (np. kiła, rzeżączka itp.); (5) Skojarzone zaburzenia funkcji mózgu, serca, wątroby i nerek; (6) Pacjenci biorący udział w badaniach klinicznych lub badaniach klinicznych; (7) Wniosek o przerwanie leczenia lub automatyczne wypis z powodów osobistych; (8) Inne schorzenia, które według lekarza badanego nie powinny być uwzględniane; (9) Inne okoliczności wpływające na wskaźniki obserwacji kontrolnej.
Metoda grupowania
Podzielono uczestników badania na dwie grupy: grupę A: zdrową grupę kontrolną (n = 79), grupę B: grupę OSCC (n = 79).
Kolekcja wskaźników
Zebrano podstawowe informacje o pacjentach z obu grup.
Zbieranie próbek
Pobrano próbki krwi żylnej na czczo (5 mL) od wszystkich uczestników wcześnie rano przed operacją i utrzymywano w temperaturze pokojowej (25 ± 2 °C) podczas transportu. Przetworzono próbki krwi w ciągu 30 minut (1 800 s) od pobrania. Przelano surowicę supernatantową do aliquotów o pojemności 0,5 mL za pomocą sterylnych mikrowirówek polipropylenowych po wirowaniu w 3 000 × g przez 15 minut w temperaturze pokojowej (25 ± 2 °C). Natychmiast umieściłem wszystkie aliquoty w zamrażarce o temperaturze ultraniskiej temperatury o temperaturze -80 °C do długotrwałego przechowywania do analizy i unikniano powtarzających się cykli zamrożenia i rozmrażania (w razie potrzeby nie więcej niż jeden cykl zamrożenia i rozmrażania).
Poziom HGF w surowicy
Określono stężenia surowicy HGF za pomocą komercyjnego zestawu enzymatycznego immunosorbentnego (ELISA) zgodnie z instrukcjami producenta22. Krótko rozmroziłem próbki surowicy w temperaturze 4 °C przez 30 minut, aby uniknąć denaturacji białek, a następnie rozcieńczono w proporcji 1:1 z buforem rozcieńczającym dostarczonym w zestawie. Dodałem standardy, kontrolne i rozcieńczone próbki surowicy (100 μL na dołek) do płytki ELISA i inkubowałem w temperaturze 37 °C przez 60 minut. Po 5-krotnym umyciu płytki dostarczonym buforem do mycia dodałem pierwotny sprzęg przeciwciał i inkubowałem w 37 °C przez kolejne 30 minut. Po drugiej rundzie płukania dodano chromogeniczne podłoże, a reakcję inkubowano w 37 °C w ciemności przez 15 minut, a reakcję zakończono roztworem stop. Zmierzono absorpcję przy 450 nm za pomocą czytnika ELISA w ciągu 10 minut po zakończeniu testu. Zastosowano standardowe procedury kontroli jakości na cały etap testu, w tym użycie kalibratorów i kontrolnych w zestawie. Współczynnik zmienności wewnątrz testu (CV) wynosił < 5%, a CV między testami < 8%, co potwierdza wiarygodną wydajność analityczną.
Obliczenia IBPS
Analizowano próbki surowicy za pomocą automatycznego analizatora hematologicznego XN3000 oraz towarzyszących odczynników23. Próbki surowicy rozmroziłem w 4 °C przez 20 minut i wyrównano do temperatury pokojowej (25 ± 2 °C) na 10 minut przed badaniem. Rutynowe badania krwi wykonano w temperaturze 25 ± 2 °C, aby uzyskać liczbę leukocytów, neutrofilów, limfocytów i płytek krwi, a następnie obliczono NLR (liczbę neutrofilów/limfocytów) i PLR (liczbę płytek/limfocytów). Regularna kalibracja instrumentów testowych była wykonywana przy 25 °C, z CV wewnątrzpartiowym < 3% i CV między partiami < 5% dla wskaźników rutyny krwi. Zastosowano test immunoturbidymetryczny do pomiaru zawartości CRP w surowicy w automatycznym analizatorze biochemicznym. Próbki surowicy rozmrażano w 4 °C przez 20 minut i równoważono do 37 °C przez 5 minut przed wykryciem. Wykonano test w temperaturze 37 °C z czasem inkubacji 10 minut i monitorowano reakcję w trybie ciągłym na 546 nm. Instrument był obsługiwany ściśle zgodnie z instrukcją do zakończenia testu. Wykrywanie CRP przy CV wewnątrzpartiowym < 4%, a CV między partiami < 6%. Punktacja została przeprowadzona według naszej domowej skali IBPS. System punktacji IBPS odnosi się do metody konstrukcyjnej wcześniejszych wyników prognozowania stanu zapalnego i dostosowuje wagi wskaźników na podstawie wyników przedeksperymentalnych tego badania. Wartość NLR ≤3,0 została oceniona jako 0 punktów, 3,0–5,0 jako 1 punkt, >5,0 jako 2 punkty. Wartości PLR ≤150 zostały ocenione jako 0 punktów, 150–300 jako 1 punkt, a >300 jako 2 punkty. Zawartość CRP ≤50 mg/L to 0 punktów, 50–100 mg/L to 1 punkt, a >100 mg/L to 2 punkty. Łączny wynik IBPS = wynik CRP + wynik NLR + wynik PLR. Kryteria stratyfikacji: ≤ 4 punkty dla średnio-niskiego ryzyka, 5–6 punktów dla wysokiego ryzyka. Wartości progowe i kryteria punktacji dla NLR, PLR i CRP zostały ustalone na podstawie wcześniej opublikowanych wyników prognostycznych o zapale w połączeniu z analizą danych eksploracyjnych w obecnej populacji badanej, zamiast stosować optymalizację statystyczną, taką jak indeks Youdena czy analiza charakterystyki operacyjnej odbiorcy.
Wizyty kontrolne
W tym badaniu przeprowadzono standaryzowaną, 20-miesięczną kontrolę w celu oceny wyników pooperacyjnych u pacjentów. Czas rozpoczęcia kontroli przypadał na dzień operacji u pacjentów z grupy B (grupa OSCC), a zakończenie przypadał na 31 sierpnia 2024 roku. Zastosowano połączenie kontroli ambulatoryjnej i telefonicznej. Podczas każdej kontroli wykonywano badanie fizykalne i badanie obrazowe, aby potwierdzić obecność nawrotu lub przerzutów guza. Głównymi wskaźnikami prognostycznymi były ogólne przeżycie (OS) oraz przeżycie bez choroby (DFS). OS definiowano jako czas od dnia operacji do śmierci z powodu dowolnej przyczyny. DFS definiowano jako czas od dnia operacji do nawrotu, progresji lub śmierci z powodu przyczyn związanych z guzem.
Obliczanie wielkości próby
Badanie to wykorzystało G*Power 3.1.9.7 do oszacowania wielkości próby, aby wyjaśnić wartość prognostyczną poziomów HGF i wyniki IBPS dla pooperacyjnych wyników patologicznych u pacjentów z OSCC. Ustalono poziom testu na poziomie α 0,05 (obustronny), skuteczność testu na poziomie 85% oraz przewidywaną AUC czynnika zapalnego na poziomie 0,75, zgodnie z obliczeniem oprogramowania, a do spełnienia wymagań statystycznych analizy krzywej ROC i regresji wielofaktorowej potrzebnych było 75 przypadków w każdej grupie. Biorąc pod uwagę niepewność potencjalnego wycofania się i brakujące dane, ostatecznie ustalono wielkość próby na 79 przypadków na grupę, aby zapewnić wystarczającą skuteczność statystyczną do wyciągania wiarygodnych wniosków.
Analiza statystyczna
Do analizy danych użyto oprogramowania statystycznego SPSS 28.0. GraphPad Prism 9.0 służy do rysowania krzywych przeżycia, natomiast Lucidchart do tworzenia diagramów przepływu. Najpierw przetestowano dane z badania pod kątem rozkładu normalnego. Porównano cechy bazowe grupy A i grupy B za pomocą niezależnego testu t próbek dla danych pomiarowych oraz testu χ2 dla danych liczebnych. Opisano charakterystyki bazowe jako liczbę [n (%)] oraz dane pomiarowe (wyrażone jako x ± s). Wskaźniki takie jak HGF, NLR, PLR i CRP zostały wyrażone jako x ± s, a porównania między grupami tych wskaźników również wykonano za pomocą niezależnego testu t-testu próbek. Analiza regresji logistycznej binarnej została wykorzystana do badania związku między poziomami HGF, wynikami IBPS a wynikami patologicznymi po operacji (zmienna zależna, 1 = niekorzystna, 0 = korzystna), przy czym dodatnie współczynniki regresji wskazują na dodatną korelację między wskaźnikami a niepożądanymi rezultatami. Metoda Kaplan-Meier została użyta do wyrysowania krzywych OS i DFS grupy A i grupy B, a test logaritmicznego rangu do porównania statystycznych różnic w wskaźnikach przeżycia między grupami. Wartość prognostyczną powyższych wskaźników dla pacjentów z OSCC została przeanalizowana przy użyciu krzywej charakteryzacji operacyjnej odbiorcy (ROC) oraz powierzchni pod krzywą (AUC) w celu określenia optymalnej wartości progowej, czułości i swoistości. Dane liczne przedstawiono jako n (%), a porównanie między grupą A i grupą B przeanalizowano za pomocą testu χ2 . Wszystkie testy statystyczne były dwustronne, a P < 0,05 wskazywało na statystycznie istotną różnicę.