$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Rodzina Enterobacterales obejmuje bardzo zróżnicowaną grupę Gram-ujemnych pałeczek, z których wiele ma znaczenie kliniczne1. Wśród nich Escherichia coli jest gatunkiem najczęściej izolowanym w laboratoriach mikrobiologii klinicznej i jest szeroko kojarzony z infekcjami zawierającymi prawie wszystkie układy narządów, w tym infekcjami dróg moczowych, infekcjami ran, zapaleniem płuc u pacjentów z osłabioną odpornością, zapaleniem jelit i zapaleniem opon mózgowych u noworodków. Jest również główną przyczyną Gram-ujemnej sepsy i septycznego wstrząsu związanego z endotoksyną. Poza medycyną ludzką E. coli jest również ważnym patogenem weterynaryjnym, powodującym infekcje układowe i oddechowe u różnych gatunków zwierząt, w tym u koni, co rozszerza perspektywę zakresu żywicieli patogenezy E. coli zarówno na ludzi, jak i na zwierzęta2,3,4.
Wytwarzające beta-laktamazę o rozszerzonym spektrum (ESBL) Enterobacterales, w szczególności E. coli i Klebsiella pneumoniae, były związane ze zwiększoną śmiertelnością, przedłużonym pobytem szpitalnym i wyższymi kosztami opieki zdrowotnej1. Powszechne stosowanie antybiotyków jest głównym czynnikiem wywołującym wielolekooporność (MDR) wśród tych organizmów1. Mechanizmy oporu obejmują produkcję karbapenemaz, ESBL, enzymy modyfikujące aminoglikozydy (AME), mutacje sprzyjające oporowi na chinolony oraz zmiany w układach porynowych i efektorowych. U E. coli i Klebsiella pneumoniae oporność jest głównie przenoszona przez plazmidy, ułatwiając przenoszenie poziome genów. Takie cechy odporności są również coraz częściej zgłaszane u E. coli pochodzenia zwierzęcego, w tym u izolatów z bydła, co wspiera koncepcję One Health i wskazuje na potencjalne ryzyko transmisji zoonotycznej2,3.
Karbapenemy są uważane za ostatnie leki w leczeniu ciężkich infekcji wielolekoopornych. Jednak Enterobacterales opornych na karbapenemy (CRE) stały się głównym globalnym problemem zdrowia4. Ta oporność jest głównie spowodowana przez karbapenemaz, w tym metalo-beta-laktamazy klasy B, co przyczynia się do fenotypów rozlegle opornych i uniwersalnie opornych5.
Wielolekoodporne szczepy E. coli znacznie ograniczają opcje terapeutyczne i komplikują leczenie infekcji. Podkreśla to potrzebę alternatywnych strategii leczenia, takich jak terapie skojarzone, aby poprawić wyniki kliniczne. Co więcej, te oporne szczepy są coraz częściej zgłaszane nie tylko w środowiskach klinicznych, ale także ze źródeł żywności, takich jak produkty mleczne. Rozszerza to epidemiologiczne konteksty rozprzestrzeniania się oporności na antybiotyki i wspiera terapię skojarzoną jako potencjalną strategię łagodzenia jej rozprzestrzeniania się i wpływu klinicznego6,7. Aminoglikozydy, tigecyklina i polimyksyny są często stosowane jako leki w infekcjach wielolekoopornych8. Fosfomycin także wykazał działanie przeciwko wytwarzającym ESBL E. coli, szczególnie w infekcjach dróg moczowych9.
Fosfomycin, odkryty po raz pierwszy w 1969 roku, hamuje wczesną syntezę ściany komórkowej bakterii i ponownie pojawił się jako obiecujący lek w terapii skojarzonej10. Efekty synergistyczne między fosfomycinem a aminoglikozydami lub β-laktamiami były zgłaszane w organizmach wielolekoodpornych11,12. Ponadto fosfomycin został oceniony w dużych kohortach klinicznych, wykazując skuteczność w ciężkich infekcjach, gdy jest stosowany samodzielnie lub w reżymach skojarzonych13. Jednak większość wcześniejszych badań obejmuje heterogeniczne populacje bakterii, a dane dotyczące specyficznie oporności E. coli na karbapenemy pozostają ograniczone.
Standardowe metody badania wrażliwości na antybiotyki obejmują rozcieńczanie na agarze, rozcieńczanie w pożywce i rozsiew na dyskach. Testowanie kombinacji na bazie rozcieńczenia agarowego umożliwia ilościową ocenę interakcji przeciwdrobnoustrojowych poprzez określenie WZM i obliczenie FICI. Alternatywne metody, takie jak zabijanie w czasie i gradientowa dyfuzja, dostarczają dynamicznych lub uproszczonych danych dotyczących interakcji, ale mogą różnić się pod względem odtwarzalności i standaryzacji13,14. Ten protokół jest najbardziej odpowiedni do kontrolowanej oceny in vitro zdefiniowanych kombinacji antybiotyków. Jednak nie odzwierciedla w pełni warunków farmakokinetycznych in vivo15. Wśród nich rozcieńczanie na agarze jest uważane za metodę referencyjną do wyznaczania WZM; jednak jego zastosowanie w ocenie aktywności kombinacji fosfomycinu przeciwko opornym na karbapenemy E. coli jest ograniczone.
Niniejsze badanie dostarcza systematycznej oceny kombinacji opartych na fosfomycinie przeciw